RU2402338C1 - Method for preparing activated mononuclear leukocytes - Google Patents
Method for preparing activated mononuclear leukocytes Download PDFInfo
- Publication number
- RU2402338C1 RU2402338C1 RU2009110095/15A RU2009110095A RU2402338C1 RU 2402338 C1 RU2402338 C1 RU 2402338C1 RU 2009110095/15 A RU2009110095/15 A RU 2009110095/15A RU 2009110095 A RU2009110095 A RU 2009110095A RU 2402338 C1 RU2402338 C1 RU 2402338C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- mnl
- culture medium
- activated
- cells
- cyclodextrin
- Prior art date
Links
Images
Abstract
Description
Настоящее изобретение относится к области медицины, в частности к способам получения активированных мононуклеарных лейкоцитов (МНЛ), и может быть использовано для иммунотерапии онкологических заболеваний.The present invention relates to medicine, in particular to methods for producing activated mononuclear leukocytes (MNL), and can be used for immunotherapy of cancer.
В настоящее время для адоптивной иммунотерапии злокачественных новообразований используют способ введения в организм активированных клеток крови. Достигнуты положительные результаты иммунотерапии интерлейкином-2 (ИЛ-2) и активированных этим препаратом лимфокинактивированных киллеров (ЛАК). ИЛ-2/ЛАК-иммунотерапия используется в качестве противоопухолевого средства, особенно при лечении опухолевых серозитов (плевритов, асцитов и перикардитов), а также химиорезистентных новообразований [Давыдов М.И., Нормантович В.А., Киселевский М.В., Волков С.М. Адоптивная иммунотерапия при опухолевых плевритах: клинико-лабораторное исследование. Российский онкологический журнал. 2000. - №6 - с.14-17; Киселевский М.В., Блюменберг А.Г. Адоптивная иммунотерапия рака яичников. - Сборник статей, приуроченный к Европейской школе по онкологии. 2001,- с.164-176; Astul P., Viallat J.R., Laurent J.C., Bradely М., Boutin С. Intrapleural recombinant IL-2 in passive immunotherapy for malignant affusion. Chest. 1993. - Vol.103 - №1 - p.209-213; Borden E.C., Sondel P.M. Lymphokines and cytokines as cancer treatment: immunotherapy realized. Cancer. 1990. - Vol.65 - p.800-814; Ebihara Т., Koyama S. Lymphokine-activated suppressor (LAK) cells in patients with gastric carcinoma. Cancer Immunology Immunotherapy. 1989. - Vol.28 - p.218-224; Liu X., Li D., Zhang C, Ba D. Treatment of 121 patients with malignant effusion due to advanced lung cancer by intrapleural transfer of autologous or allogenic LAK cells combined with rIL-2. Medical Science Journal. 1993. - Vol.8 - p.186-189].Currently, for the adoptive immunotherapy of malignant neoplasms, a method of introducing activated blood cells into the body is used. The positive results of immunotherapy with interleukin-2 (IL-2) and lymphokinactivated killer cells (LAC) activated by this drug were achieved. IL-2 / LAC immunotherapy is used as an antitumor agent, especially in the treatment of tumor serositis (pleurisy, ascites and pericarditis), as well as chemoresistant neoplasms [Davydov MI, Normantovich VA, Kiselevsky MV, Volkov CM. Adaptive immunotherapy for tumor pleurisy: a clinical and laboratory study. Russian Oncology Journal. 2000. - No. 6 - p. 14-17; Kiselevsky M.V., Blumenberg A.G. Adaptive immunotherapy of ovarian cancer. - A collection of articles dedicated to the European School of Oncology. 2001, p. 164-176; Astul P., Viallat J.R., Laurent J.C., Bradely M., Boutin C. Intrapleural recombinant IL-2 in passive immunotherapy for malignant affusion. Chest. 1993. - Vol. 103 - No. 1 - p. 209-213; Borden E.C., Sondel P.M. Lymphokines and cytokines as cancer treatment: immunotherapy realized. Cancer 1990. - Vol. 65 - p. 800-814; Ebihara T., Koyama S. Lymphokine-activated suppressor (LAK) cells in patients with gastric carcinoma. Cancer Immunology Immunotherapy. 1989. - Vol. 28 - p. 218-224; Liu X., Li D., Zhang C, Ba D. Treatment of 121 patients with malignant effusion due to advanced lung cancer by intrapleural transfer of autologous or allogenic LAK cells combined with rIL-2. Medical Science Journal. 1993. - Vol.8 - p.186-189].
Известен способ получения ЛАК для терапии злокачественных новообразований путем инкубации in vitro выделенных из крови донора МНЛ с препаратами рекомбинантного интерлейкина-2 (ИЛ-2) «Ронколейкин» (Биотех, РФ) или «Пролекин» (Chiron, Голландия) в концентрации 500-3000 ME в 1 мл питательной среды в течение 48-72 ч [Биологические методы лечения онкологических заболеваний. Под ред. В.Т.ДеВита, С.Хелмана. - М.: Медицина, 2002]. Рекомендованный при терапии рака легких курс введения ЛАК, полученных этим способом, предусматривает 1-2-кратное внутриплевральное введение по 10-100 млн. клеток в течение недели в сочетании с 4-5-кратными ежедневными введениями препарата ИЛ-2 внутриплеврально по 500000-1000000 ME [Добрица В.П., Ботерашвили Н. М. и др. Современные иммуномодуляторы для клинического применения. Руководство для врачей. - С.-П.: Политехника. 2001].A known method of producing a LAC for the treatment of malignant neoplasms by in vitro incubation of MNL donated from the blood of a donor with preparations of recombinant interleukin-2 (IL-2) “Roncoleukin” (Biotech, RF) or “Prolekin” (Chiron, Holland) at a concentration of 500-3000 ME in 1 ml of culture medium for 48-72 hours [Biological methods of treating cancer. Ed. V.T. DeVita, S. Helman. - M .: Medicine, 2002]. Recommended for the treatment of lung cancer, the LAC administration route obtained by this method provides for 1-2-fold intrapleural administration of 10-100 million cells per week in combination with 4-5-fold daily injections of IL-2 intrapleurally at 500,000-1000000 ME [Dobritsa VP, Boterashvili N. M. et al. Modern immunomodulators for clinical use. A guide for doctors. - S.-P.: Polytechnic. 2001].
Недостатками этого способа являются:The disadvantages of this method are:
1) необходимость использования для активации лимфоцитов высоких концентраций дорогостоящих препаратов;1) the need to use high concentrations of expensive drugs to activate lymphocytes;
2) введение ЛАК, полученных этим способом, и ИЛ-2 в рекомендованных дозах и режимах онкологическим больным может вызвать негативные побочные эффекты в виде гипертермии и озноба;2) the introduction of LAC obtained by this method, and IL-2 in recommended doses and regimens for cancer patients can cause negative side effects in the form of hyperthermia and chills;
3) ИЛ-2 приводит к активации и пролиферации преимущественно лимфоидного пула, не влияя на моноцитарно-макрофагальное звено.3) IL-2 leads to the activation and proliferation of the predominantly lymphoid pool, without affecting the monocytic-macrophage link.
Для повышения биодоступности, эффективности и снижения выраженности побочных эффектов цитокинотерапии, предусматривающей введение клеток крови, активированных экзогенными цитокинами, разрабатываются новые способы их получения. В частности, для этой цели создаются липосомальные и пегилированные формы препаратов цитокинов. Перспективным направлением в данной области является использование в качестве наноплатформ для биологически-активных веществ циклодекстринов (ЦД) - полисахаридов бактериального и синтетического происхождения [Pharmaceutical Manufacturing Handbook: Production and Processes, ed. by Shayne Cox Gad. - John Wiley&Sons Inc., 2008; Lurri В., Cerchiara Т., Bigucci F., Caponio D., Zecchi V. Bovine serum albumin nanospheres carring progesterone inclusion complexes. - Drug Delivery. 2005. - Vol.12 - p.281-287; Maestrelli F., Garsia-Fuentes M., Mura P., Alonso M.J. A new drug nanocarrier consisting of chitosan and hydroxypropylcyclodextrin. European Journal Biopharmaceutical. 2006. - Vol.69 - №2 - p.79-86].To increase the bioavailability, effectiveness and reduce the severity of side effects of cytokine therapy, which involves the introduction of blood cells activated by exogenous cytokines, new methods for their preparation are being developed. In particular, liposomal and pegylated forms of cytokine preparations are created for this purpose. A promising area in this area is the use of cyclodextrins (CDs), polysaccharides of bacterial and synthetic origin, as nanoplatforms for biologically active substances [Pharmaceutical Manufacturing Handbook: Production and Processes, ed. by Shayne Cox Gad. - John Wiley & Sons Inc., 2008; Lurri B., Cerchiara T., Bigucci F., Caponio D., Zecchi V. Bovine serum albumin nanospheres carring progesterone inclusion complexes. - Drug Delivery. 2005 .-- Vol. 12 - p. 281-287; Maestrelli F., Garsia-Fuentes M., Mura P., Alonso M.J. A new drug nanocarrier consisting of chitosan and hydroxypropylcyclodextrin. European Journal of Biopharmaceutical. 2006. - Vol.69 - No. 2 - p. 79-86].
Наиболее близким к предлагаемому способу получения активированных МНЛ является способ, описанный Y. Kuroki с соавт. [Kuroki Y., Ochiai Н., Kurokawa М., Niwayama S., Kishimoto С, Tazawa К., Fujimaki M. Augmentation of murine lymphokine-activated killer cell cytotoxicity by beta-cyclodextrin-benzaldehyde. Journal Cancer Research Clinical Oncology. 1991 - Vol.117 - p.109-114]. Данный способ принят за прототип. Прототип включает получение ЛАК из мононуклеарных лейкоцитов селезенки мышей (МНЛ СМ) линии С3Н/Не после их инкубации с комбинацией экзогенного ИЛ-2 и β-циклодекстрин-бензальдегида (β-ЦД-БА). Для освобождения от макрофагов клетки селезенки инкубировали 45 минут при t=37°C в среде RPMI-1640 (Sigma, USA), содержащей 10% суспензии кварца (KAC-2; JIMRO, Takasaki, Japan) и 10% свежей сыворотки крови C3H/He мышей. Затем суспензию клеток наслаивали на фиколл-пак (Pharmacia Inc., Piscataway, N.J.), центрифугировали при 3000 rpm в течение 30 мин, клетки собирали в интерфазе фиколл-пака и после двукратной отмывки средой RPMI-1640 помещали в полную питательную среду (ППС) - среду RPMI-1640, содержащую 10% фетальной бычьей сыворотки, инактивированной при t=56°C в течение 30 мин (Filtron, Victoria, Australia), 2 мМ L-глутамина, 100 МЕ/мл пенициллина G, 100 мкг/мл стрептомицина, 20 мкг/мл гентамицина, 2 мкг/мл фунгизона и 0,05 мМ 2-меркаптоэтанола. К МНЛ СМ в концентрации 5×105-6,5×105 кл/мл, культивировавшимся в ППС при t=37°C в 5% CO2 в течение 7 суток, однократно на 3 сутки инкубации добавляли β-ЦД-БА в дозе 200-400 мкг на 1 мл ППС и двукратно на 3 и 5 сутки инкубации ИЛ-2 в дозе 500-700 ME на 1 мл ППС. Описанный способ обеспечивал повышение противоопухолевой цитотоксической активности МНЛ селезенки здоровых животных в сравнении с инкубацией клеток с ИЛ-2 на 10-12%, в сравнении с инкубацией клеток с β-ЦД-БА на 5-7%. Цитотоксическая активность МНЛ селезенки мышей с привитой саркомой, активированных комбинацией ИЛ-2 и β-ЦД-БА, была на 15-22% выше соответствующей активности клеток, культивировавшихся с ИЛ-2 и β-ЦД-БА в монорежимах.Closest to the proposed method for producing activated MNL is the method described by Y. Kuroki et al. [Kuroki Y., Ochiai N., Kurokawa M., Niwayama S., Kishimoto C, Tazawa K., Fujimaki M. Augmentation of murine lymphokine-activated killer cell cytotoxicity by beta-cyclodextrin-benzaldehyde. Journal Cancer Research Clinical Oncology. 1991 - Vol.117 - p.109-114]. This method is adopted as a prototype. The prototype involves obtaining LAC from mononuclear leukocytes of the spleen of mice (MNL SM) of the C3H / He line after incubation with a combination of exogenous IL-2 and β-cyclodextrin-benzaldehyde (β-CD-BA). To release macrophages, spleen cells were incubated for 45 minutes at t = 37 ° C in RPMI-1640 medium (Sigma, USA) containing 10% quartz suspension (KAC-2; JIMRO, Takasaki, Japan) and 10% fresh blood serum C3H / He is a mice. Then, the cell suspension was layered on ficoll-pack (Pharmacia Inc., Piscataway, NJ), centrifuged at 3000 rpm for 30 min, cells were collected at interphase of ficoll-pack, and after washing twice with RPMI-1640 medium, they were placed in complete nutrient medium (PPS) - RPMI-1640 medium containing 10% fetal bovine serum inactivated at t = 56 ° C for 30 min (Filtron, Victoria, Australia), 2 mM L-glutamine, 100 IU / ml penicillin G, 100 μg / ml streptomycin , 20 μg / ml gentamicin, 2 μg / ml fungizone and 0.05 mm 2-mercaptoethanol. To MNL SM at a concentration of 5 × 10 5 -6.5 × 10 5 cells / ml, cultivated in PPS at t = 37 ° C in 5% CO 2 for 7 days, β-CD-BA was added once on the 3rd day of incubation. at a dose of 200-400 μg per 1 ml of PPS and twice on the 3rd and 5th day of incubation of IL-2 at a dose of 500-700 ME per 1 ml of PPS. The described method provided an increase in the antitumor cytotoxic activity of MNL of the spleen of healthy animals in comparison with incubation of cells with IL-2 by 10-12%, in comparison with incubation of cells with β-CD-BA by 5-7%. The cytotoxic activity of MNL of the spleen of mice inoculated with sarcoma activated with a combination of IL-2 and β-CD-BA was 15-22% higher than the corresponding activity of cells cultured with IL-2 and β-CD-BA in mono-modes.
К недостаткам описанного способа следует отнести:The disadvantages of the described method include:
1) удаление из клеточной взвеси макрофагов и дендритных клеток - клеток-мишеней для полисахарида ЦД, что исключает возможность усиления активности эффекторов противоопухолевого иммунитета за счет костимулирующего действия активированных циклодекстрином макрофагов и дендритных клеток;1) removal of macrophages and dendritic cells, target cells for CD polysaccharide, from the cell suspension, which excludes the possibility of enhancing the activity of antitumor immunity effectors due to the co-stimulating effect of macrophages and dendritic cells activated by cyclodextrin;
2) незначительное усиление эффекта при применении комбинации ИЛ-2 и β-ЦД-БА для стимуляции клеток здоровых мышей относительно эффекта воздействия этих веществ в монорежиме;2) a slight increase in the effect when using a combination of IL-2 and β-CD-BA to stimulate healthy mouse cells relative to the effect of exposure to these substances in mono mode;
3) для достижения эффективности комбинации ИЛ-2/β-ЦД-БА использовали относительно высокие концентрации ее компонентов;3) to achieve the effectiveness of the combination of IL-2 / β-CD-BA, relatively high concentrations of its components were used;
4) в работе использовался нефармакопейный препарат ИЛ-2;4) the non-pharmacopeia drug IL-2 was used in the work;
5) способ предполагает использование относительно дорогого препарата β-циклодекстрин-бензальдегида;5) the method involves the use of a relatively expensive preparation of β-cyclodextrin-benzaldehyde;
6) апробация данного способа проведена только на клетках мышей линии С3Н/Не.6) the testing of this method was carried out only on cells of mice of the line C3H / He.
Задачей настоящего изобретения является создание более эффективного способа получения активированных МНЛ из крови донора или пациента.An object of the present invention is to provide a more efficient method for producing activated MNL from the blood of a donor or patient.
Предлагаемый способ предусматривает следующие стадии:The proposed method involves the following stages:
а) выделение МНЛ из крови пациента или донора путем отделения их от сыворотки крови, эритроцитов и нейтрофилов;a) the allocation of MNL from the blood of a patient or donor by separating them from blood serum, red blood cells and neutrophils;
б) инкубация выделенных МНЛ с комплексом ИЛ-2/ЦД, содержащим ИЛ-2 в концентрации 50-100 МЕ/мл и β-ЦД в концентрации 1×10-5-1×10-3 М в 1 мл, и получение из них активированных клеток - ИЛ-2/ЦД-МНЛ.b) incubation of the isolated MNL with the IL-2 / CD complex containing IL-2 at a concentration of 50-100 IU / ml and β-CD at a concentration of 1 × 10 -5 -1 × 10 -3 M in 1 ml, and obtaining of activated cells - IL-2 / CD-MNL.
Способ осуществляется следующим образом: МНЛ выделяют из стабилизированной гепарином в дозе 25 ед/мл периферической крови на одноступенчатом градиенте фиколла (ПанЭко, РФ или Sigma, USA) плотностью 1,077 г/см3 центрифугированием при 400 g в течение 20-30 мин. Лимфоидные клетки, образовавшие интерфазное кольцо, собирают пипеткой и трехкратно отмывают в среде RPMI-1640 (Sigma, USA или ПанЭко, РФ). После каждой отмывки в 10-кратном объеме среды клетки осаждают центрифугированием при 200 g. Затем МНЛ осаждают центрифугированием, подсчитывают с использованием 5% раствора трипанового синего (ПанЭко, РФ) и ресуспендируют в ППС - среде RPMI-1640 (Sigma, USA или ПанЭко, РФ), содержащей 10% фетальной бычьей сыворотки, инактивированной при t=56°C в течение 30 минут (HyClone Laboratories, Logan, UK), 2 мМ L-глутамина, 100 мкг/мл пенициллина и 100 мкг/мл сульфата стрептомицина (Sigma, USA или ПанЭко, РФ). Концентрация клеток в суспензии должна соответствовать 5×105-6×105 кл/мл. Для получения ИЛ-2/ЦД-МНЛ к 10 мл МНЛ добавляют 1 мл раствора комплекса ИЛ-2/ЦД, полученного при инкубации на шейкере ST-3L (Elmi, Latvia) при 800-1200 rpm в течение 45-60 минут смеси в ППС препарата «Ронколейкин» (Биотех, РФ) или «Пролекин» (Chiron, Holland) в концентрации 50-100 МЕ/мл и β-ЦД в концентрации 1×10-5-1×10-3 М в молярном соотношении 1:1, или 1:3, или 1:10. В качестве контроля берут МНЛ, активированные препаратом ИЛ-2 в концентрации, использованной в прототипе, соответствующей 500 ME в 1 мл среды культивирования. Клетки инкубируют в пластиковых флаконах объемом 100-250 мл фирмы Costar или аналогичных флаконах других фирм в CO2-инкубаторе (Guan, France) в течение 18-48 ч при t=37°C в 5% CO2.The method is as follows: MNL is isolated from heparin-stabilized at a dose of 25 units / ml peripheral blood on a single-stage ficoll gradient (PanEco, RF or Sigma, USA) with a density of 1.077 g / cm 3 by centrifugation at 400 g for 20-30 minutes. Lymphoid cells forming an interphase ring are pipetted and washed three times in RPMI-1640 medium (Sigma, USA or PanEco, RF). After each washing in a 10-fold volume of medium, the cells are pelleted by centrifugation at 200 g. Then, MNL is precipitated by centrifugation, counted using a 5% trypan blue solution (PanEco, RF) and resuspended in PPS medium RPMI-1640 (Sigma, USA or PanEco, RF) containing 10% fetal bovine serum inactivated at t = 56 ° C for 30 minutes (HyClone Laboratories, Logan, UK), 2 mM L-glutamine, 100 μg / ml penicillin and 100 μg / ml streptomycin sulfate (Sigma, USA or PanEco, RF). The concentration of cells in suspension should correspond to 5 × 10 5 -6 × 10 5 cells / ml. To obtain IL-2 / CD-MNL, 1 ml of a solution of the IL-2 / CD complex obtained by incubation on a ST-3L shaker (Elmi, Latvia) at 800-1200 rpm for 45-60 minutes was added to 10 ml of MNL PPS of the drug “Roncoleukin” (Biotech, RF) or “Prolekin” (Chiron, Holland) at a concentration of 50-100 IU / ml and β-CD at a concentration of 1 × 10 -5 -1 × 10 -3 M in a molar ratio of 1: 1, or 1: 3, or 1:10. As a control, take MNL activated by the IL-2 preparation at the concentration used in the prototype, corresponding to 500 ME in 1 ml of culture medium. Cells are incubated in costar 100-250 ml plastic bottles or similar bottles of other companies in a CO 2 incubator (Guan, France) for 18-48 hours at t = 37 ° C in 5% CO 2 .
МНЛ, активированные комплексом ИЛ-2/ЦД, демонстрируют более высокую цитотоксическую активность, чем ЛАК (фиг.1). В проведенных нами экспериментах в качестве клеток-мишеней были использованы клетки эритромиелоидного лейкоза человека линии К-562 (фиг.2). В отличие от ЛАК, стимулированных оптимальной (500 МЕ/мл) и субоптимальной (50 МЕ/мл) дозами ИЛ-2, и МНЛ, культивировавшихся в присутствии β-ЦД, в культуре ИЛ-2/ЦД-МНЛ появляется большое количество крупных прилипающих дендритоподобных клеток (фиг.3-6). Это подтверждают и результаты проточной цитометрии (фиг.7-10). Этот метод позволил установить особенности фенотипа ИЛ-2/ЦД-МНЛ, представленными CD25high, CD58high, CD3/CD16 high; CD56high; CD16/CD56high; HLA-DRhigh, в сравнении с ЛАК и МНЛ (табл.).MNL activated by the IL-2 / CD complex exhibit higher cytotoxic activity than LAC (Fig. 1). In our experiments, as target cells were used cells of human erythromyeloid leukemia line K-562 (figure 2). In contrast to LACs stimulated by optimal (500 IU / ml) and suboptimal (50 IU / ml) doses of IL-2 and MNL, cultivated in the presence of β-CD, a large number of large adherents appear in the IL-2 / CD-MNL culture dendritic cells (FIGS. 3-6). This is confirmed by the results of flow cytometry (Fig.7-10). This method made it possible to establish the features of the IL-2 / CD-MNL phenotype represented by CD25 high , CD58 high , CD3 / CD16 high ; CD56 high ; CD16 / CD56 high ; HLA-DR high , in comparison with LAC and MNL (tab.).
Пример 1. Оценка противоопухолевого действия ИЛ-2/ЦД-МНЛ на клетках линии К-562Example 1. Evaluation of the antitumor effect of IL-2 / CD-MNL on cells of the line K-562
Цитотоксическую активность ЛАК и ИЛ-2/ЦД-МНЛ определяли относительно опухолевых клеток линии К-562. Опухолевые клетки (1×104 в 1 мл) инкубировали в ППС с ИЛ-2/ЦД-МНЛ и ЛАК в соотношении 1:5 в плоскодонных 96-луночных планшетах (Costar, USA) в течение 18 часов при t=37°C в 5% CO2. Клетки просматривали и фотографировали с помощью инвертоскопа Axiovert (Zess, Германия). Затем в лунки добавляли витальный краситель МТТ и по значению оптической плотности, измеряемой на планшетном фотометре (Multiscan MS, Sweden), рассчитывали индекс цитотоксической активности (ИЦА) [Шпакова А.П., Павлова К.С., Булычева Т.И. МТТ - колориметрический метод определения цитотоксической активности естественных киллерных клеток. Клиническая лабораторная диагностика. 2000. - №2 - с.20-23]. Как представлено на фиг.1, цитотоксическая активность ИЛ-2/ЦД-МНЛ на 20% выше по сравнению с ЛАК, полученными при инкубации МНЛ с ИЛ-2 в оптимальной дозе 500 ME в 1 мл среды культивирования.The cytotoxic activity of LAK and IL-2 / CD-MNL was determined relative to tumor cells of the K-562 line. Tumor cells (1 × 10 4 in 1 ml) were incubated in PPS with IL-2 / CD-MNL and LAC in a ratio of 1: 5 in flat-bottomed 96-well plates (Costar, USA) for 18 hours at t = 37 ° C in 5% CO 2 . Cells were scanned and photographed using an Axiovert invertoscope (Zess, Germany). Then, MTT vital dye was added to the wells, and the cytotoxic activity index (ICA) was calculated from the value of optical density measured on a plate photometer (Multiscan MS, Sweden) [Shpakova AP, Pavlova KS, Bulycheva T.I. MTT is a colorimetric method for determining the cytotoxic activity of natural killer cells. Clinical laboratory diagnostics. 2000. - No. 2 - p.20-23]. As shown in figure 1, the cytotoxic activity of IL-2 / CD-MNL is 20% higher compared to the LAC obtained by incubating MNL with IL-2 at an optimal dose of 500 ME in 1 ml of culture medium.
Пример 2. Определение особенностей фенотипа ИЛ-2/ЦД-МНЛ методом проточной цитометрии (FACS-анализ).Example 2. Determination of the features of the phenotype of IL-2 / CD-MNL by flow cytometry (FACS analysis).
Определение экспрессии поверхностных маркеров проводили при помощи моноклональных антител против соответствующих антигенов (Caltag Laboratories, USA), результаты учитывали методом проточной цитофлюориметрии на проточном питометре FACScan (Becton Dickinson, USA). На МНЛ исследовали уровни экспрессии дифференцировочных антигенов CD3, CD4, CD16; активационного антигена CD25; молекул адгезии CD56, CD58; антигенпрезентирующих молекул CD83, HLA-DR; рецептора ЛПС CD14, а также костимулирующих молекул CD80, CD11a. Гейт популяции клеток устанавливали на основе комбинации прямого и бокового светорассеяния и размера клеток. При учете результатов подсчитывали 5000 событий в гейте. Статистическую обработку результатов проводили при помощи программного пакета WINMDI 2.8.The expression of surface markers was determined using monoclonal antibodies against the corresponding antigens (Caltag Laboratories, USA), the results were taken into account by flow cytometry using a FACScan flow pitometer (Becton Dickinson, USA). At MNL, the expression levels of the differentiating antigens CD3, CD4, CD16 were examined; activation antigen CD25; adhesion molecules CD56, CD58; antigen-presenting molecules CD83, HLA-DR; LPS receptor CD14, as well as costimulatory molecules CD80, CD11a. Gate cell populations were established based on a combination of direct and side light scattering and cell size. When taking into account the results, 5000 events in the gate were counted. Statistical processing of the results was carried out using the WINMDI 2.8 software package.
Как следует из данных таблицы, ИЛ-2 в комплексе с ЦД в отличие от монорежима ИЛ-2 в субоптимальной концентрации приводит к увеличению экспрессии антигенов НК (CD 16), молекул адгезии (CD58; CD56) и антигенной презентации (HLA-DR), а также активационного маркера - рецептора к ИЛ-2 (CD25).As follows from the table, IL-2 in combination with CD, in contrast to the mono-mode of IL-2 at a suboptimal concentration, leads to an increase in the expression of NK antigens (CD 16), adhesion molecules (CD58; CD56) and antigenic presentation (HLA-DR), as well as an activation marker, a receptor for IL-2 (CD25).
Изобретение иллюстрировано следующими фигурами.The invention is illustrated by the following figures.
Фиг.1 - Возрастание интенсивности индекса цитотоксической активности (ИЦА) ИЛ-2/ЦД-МНЛ в сравнении с МНЛ, ЛАК и МНЛ, активированными β-ЦД в монорежиме (ЦД-МНЛ).Figure 1 - Increasing the intensity of the index of cytotoxic activity (ICA) IL-2 / CD-MNL in comparison with MNL, LAC and MNL activated β-CD in mono mode (CD-MNL).
Фиг.2 - Фотография интактных клеток линии К-562. Увеличение 100. Добавлен МТТ.Figure 2 - Photograph of intact cells of the line K-562.
Фиг.3 - Фотография ЛАК, активированных ИЛ-2 в оптимальной концентрации 500 ME в 1 мл среды, после 18 ч инкубации с клетками К-562. Увеличение 100. Добавлен МТТ.Figure 3 - Photograph of LAC activated by IL-2 at an optimal concentration of 500 ME in 1 ml of medium, after 18 hours of incubation with K-562 cells.
Фиг.4 - Фотография ЛАК, активированных ИЛ-2 в субоптимальной концентрации 50 ME в 1 мл среды, после 18 ч инкубации с клетками К-562. Увеличение 100. Добавлен МТТ.Figure 4 - Photograph of LAC activated by IL-2 at a suboptimal concentration of 50 ME in 1 ml of medium, after 18 hours of incubation with K-562 cells.
Фиг.5 - Фотография МНЛ, активированными β-ЦД в монорежиме, после 18 ч инкубации с клетками К-562. Увеличение 100. Добавлен МТТ.Figure 5 - Photograph of MNL activated by β-CD in mono mode, after 18 hours of incubation with K-562 cells.
Фиг.6 - Фотография ИЛ-2/ЦД-МНЛ после 18 ч инкубации с клетками К-562. Увеличение 100. Добавлен МТТ.6 is a photograph of IL-2 / CD-MNL after 18 hours of incubation with K-562 cells.
Фиг.7 - График, отражающий уровень экспрессии поверхностных маркеров интактных МНЛ (контроль). Горизонтальная ось графика - интенсивность сигнала для данного параметра. Вертикальная ось - количество событий.7 is a Graph reflecting the expression level of surface markers of intact MNL (control). The horizontal axis of the graph is the signal intensity for this parameter. The vertical axis is the number of events.
Фиг.8 - График, отражающий уровень экспрессии поверхностных маркеров ЛАК, активированных ИЛ-2 в оптимальной концентрации 500 ME в 1 мл среды. Горизонтальная ось - интенсивность сигнала для данного параметра. Вертикальная ось - количество событий.Fig. 8 is a graph showing the expression level of surface markers of LAK activated by IL-2 at an optimal concentration of 500 ME in 1 ml of medium. The horizontal axis is the signal intensity for this parameter. The vertical axis is the number of events.
Фиг.9 - График, отражающий уровень экспрессии поверхностных маркеров ЛАК, активированных ИЛ-2 в субоптимальной концентрации 50 ME в 1 мл среды. Горизонтальная ось - интенсивность сигнала для данного параметра. Вертикальная ось - количество событий.Fig. 9 is a graph showing the expression level of surface markers of LAK activated by IL-2 at a suboptimal concentration of 50 ME in 1 ml of medium. The horizontal axis is the signal intensity for this parameter. The vertical axis is the number of events.
Фиг.10 - График, отражающий уровень экспрессии поверхностных маркеров ИЛ-2/ЦД-МНЛ. Горизонтальная ось - интенсивность сигнала для данного параметра. Вертикальная ось - количество событий.Figure 10 is a Graph showing the expression level of surface markers of IL-2 / CD-MNL. The horizontal axis is the signal intensity for this parameter. The vertical axis is the number of events.
Таблица - Особенности фенотипа ИЛ-2/ЦД-МНЛ в сравнении с ЦД-МНЛ; интактными МНЛ; МНЛ, активированными ИЛ-2 в дозе 50 ME на 1 мл среды и ЦД при последовательном введении; ЛАК, активированными ИЛ-2 в оптимальной (500 МЕ/мл) и субоптимальной (50 МЕ/мл) концентрациях.Table - Features of the IL-2 / CD-MNL phenotype in comparison with CD-MNL; intact cnl; MNL, activated IL-2 at a dose of 50 ME per 1 ml of medium and CD with sequential administration; LAC activated by IL-2 in optimal (500 IU / ml) and suboptimal (50 IU / ml) concentrations.
Технический результатTechnical result
По сравнению со способом получения ЛАК, представленных только лимфоцитами, предлагаемый способ получения ИЛ-2/ЦД-МНЛ обеспечивает активацию и пролиферацию не только лимфоидных, но и антигенпрезентирующих клеток. ЦД позволяет также на порядок снизить эффективную концентрацию ИЛ-2, что может иметь клиническое значение при проведении иммунотерапии. Уменьшение дозы ИЛ-2 при сохранении клинической эффективности активированных клеток может снизить выраженность системных побочных эффектов препарата и позволит использовать иммунотерапию у ослабленных онкологических больных, в том числе у пациентов с гиперреактивным ответом на введение ИЛ-2. Использование невысоких доз дорогостоящих препаратов позволит расширить область применения ИЛ-2.Compared with the method of obtaining LAK, represented only by lymphocytes, the proposed method for producing IL-2 / CD-MNL provides activation and proliferation of not only lymphoid, but also antigen-presenting cells. CD also allows you to reduce the effective concentration of IL-2 by an order of magnitude, which may have clinical significance when conducting immunotherapy. Reducing the dose of IL-2 while maintaining the clinical effectiveness of activated cells can reduce the severity of systemic side effects of the drug and will allow the use of immunotherapy in weakened cancer patients, including patients with a hyperreactive response to the introduction of IL-2. The use of low doses of expensive drugs will expand the scope of IL-2.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2009110095/15A RU2402338C1 (en) | 2009-03-20 | 2009-03-20 | Method for preparing activated mononuclear leukocytes |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2009110095/15A RU2402338C1 (en) | 2009-03-20 | 2009-03-20 | Method for preparing activated mononuclear leukocytes |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2402338C1 true RU2402338C1 (en) | 2010-10-27 |
Family
ID=44042161
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2009110095/15A RU2402338C1 (en) | 2009-03-20 | 2009-03-20 | Method for preparing activated mononuclear leukocytes |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2402338C1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2613884C1 (en) * | 2016-02-08 | 2017-03-21 | Андрей Николаевич Николаенко | Method for cancer adoptive immunotherapy |
-
2009
- 2009-03-20 RU RU2009110095/15A patent/RU2402338C1/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (2)
Title |
---|
KUROKI Y et al. Augmentation of murine lymphokine-activated killer cell cytotoxicity by beta-cyclodextrin-benzaldehyde. J.Cancer Research and Clinical Oncology. 1991, v.117(2), p.109-114. * |
ЧЕРЕШНЕВ В.А. и др. Получение активированных лимфоцитов из мононуклеарных лейкоцитов периферической крови человека под воздействием альфа-фетопротеина. Сибирский онкологический журнал, 2005, №1(13), с.40-46. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2613884C1 (en) * | 2016-02-08 | 2017-03-21 | Андрей Николаевич Николаенко | Method for cancer adoptive immunotherapy |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JP3201610B2 (en) | How to treat a tumor | |
US7659119B2 (en) | Method and compositions for obtaining mature dendritic cells | |
CN110846281B (en) | Anti-tumor vaccine based on exosomes | |
Fujii et al. | Presentation of tumor antigens by phagocytic dendritic cell clusters generated from human CD34+ hematopoietic progenitor cells: induction of autologous cytotoxic T lymphocytes against leukemic cells in acute myelogenous leukemia patients | |
Bai et al. | Generation of dendritic cells from human bone marrow mononuclear cells: advantages for clinical application in comparison to peripheral blood monocyte derived cells | |
CN108676775B (en) | Method for amplifying cord blood NK in vitro | |
US20190269731A1 (en) | Natural killer cell containing exogenous mitochondrium and pharmaceutical composition comprising same | |
US20010006631A1 (en) | Treating tumors using implants comprising combinations of allogeneic cells | |
EP1021197B1 (en) | Implants comprising combinations of allogeneic cells for use in cancer treatment | |
Fujii et al. | Treatment of post-transplanted, relapsed patients with hematological malignancies by infusion of HLA-matched, allogeneic-dendritic cells (DCs) pulsed with irradiated tumor cells and primed T cells | |
CN107532146A (en) | The method that BMDC is prepared by using IFN non-adherent culture | |
KR100363587B1 (en) | Dendritic cell-cancer fusion hybrid for anti-cancer cellular vaccine | |
CN103372204A (en) | External xenoliths vaccine combined dendritic cell cytokine induced killer (DC-CIK) new technology for cancer therapy | |
Khavinson et al. | Thymalin: activation of differentiation of human hematopoietic stem cells | |
RU2402338C1 (en) | Method for preparing activated mononuclear leukocytes | |
KR102032384B1 (en) | Method for generation of natural killer cell from cord blood mononuclear cells | |
Gel’m et al. | Functional activity of lymphocytes of healthy donors and cancer patients after culturing with IL-2 and IL-15 | |
US20220184122A1 (en) | A method for providing immune cells | |
JP2023540827A (en) | Method for producing highly pure and highly efficient naturally killed cells and their uses | |
CN109642214A (en) | Technology for effective activation NKT cell | |
CN110747167B (en) | Preparation method and application of hemizygous BAK cell | |
Clark et al. | Ultrastructural basis of enhanced antitumor cytotoxicity of cord blood-derived CTLs: a comparative analysis with peripheral blood and bone marrow | |
TW202206591A (en) | Method for ex vivo expanding natural killer cells and natural killer t cells | |
RU2603079C2 (en) | Method of cytogenetic activation of human lymphocytes | |
Bulgarelli et al. | Skewing effect of sulprostone on dendritic cell maturation compared with dinoprostone |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20120321 |