RU2401300C1 - Animal mus musculus hybrid cell clone l-producer of monoclonal cholera toxin antibodies - Google Patents

Animal mus musculus hybrid cell clone l-producer of monoclonal cholera toxin antibodies Download PDF

Info

Publication number
RU2401300C1
RU2401300C1 RU2009112516/10A RU2009112516A RU2401300C1 RU 2401300 C1 RU2401300 C1 RU 2401300C1 RU 2009112516/10 A RU2009112516/10 A RU 2009112516/10A RU 2009112516 A RU2009112516 A RU 2009112516A RU 2401300 C1 RU2401300 C1 RU 2401300C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
toxin
cholera toxin
mkat
cells
clone
Prior art date
Application number
RU2009112516/10A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Татьяна Ивановна Валякина (RU)
Татьяна Ивановна Валякина
Евгений Васильевич Гришин (RU)
Евгений Васильевич Гришин
Елена Эдуардовна Петрова (RU)
Елена Эдуардовна Петрова
Равиля Люкмановна Комалева (RU)
Равиля Люкмановна Комалева
Original Assignee
Учреждение Российской академии наук Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Учреждение Российской академии наук Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН filed Critical Учреждение Российской академии наук Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН
Priority to RU2009112516/10A priority Critical patent/RU2401300C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2401300C1 publication Critical patent/RU2401300C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: there is produced a new CT-E6/E10 hybrid cell clone producing monoclonal cholera toxin antibody in the environment of cell culture and abdominal cavity of syngeneic animals. The clone is produced by the fusion of mouse myeloma SP-2/0 cells with popliteal lymph node cells of BALB/c mice immunised with a commercial preparation of cholera toxin (SIGMA) in posterior pads. A fusing agent is polyethylene glycol of molecular weight 4000. Hybridoma selection has been performed on Dulbecco modified Eagle's medium with bovine foetal serum and hypoxantine-aminopterin-thymidine added. Hybridoma synthesises monoclonal antibodies specifically interacting with cholera toxin and not interacting with thermolabile E.coli toxin. The antibody titre reaches 1:10000 in the cultural fluid, 1:1000000 in ascitic.
EFFECT: produced antibodies exceeds the analogues available in sensitivity.
2 dwg, 4 ex

Description

Изобретение относится к области микробиологии и биотехнологии, конкретно - к гибридомной технологии, и представляет собой клон гибридных клеток CT-E6/Е10 животных Mus Musculus L, продуцирующих в клеточных культурах и брюшной полости сингенных животных моноклональные антитела (далее МКАТ) к токсину холерного вибриона (XT). Гибридома может быть использована в диагностических тест-системах для специфической индикации холерного токсина в пищевой промышленности, в охране окружающей среды, в медицине.The invention relates to the field of microbiology and biotechnology, specifically to hybridoma technology, and is a clone of CT-E6 / E10 hybrid cells of Mus Musculus L animals producing monoclonal antibodies (hereinafter, MKAT) to cholera vibrio toxin in cell cultures and the abdominal cavity of syngeneic animals ( XT). Hybridoma can be used in diagnostic test systems for specific indication of cholera toxin in the food industry, in environmental protection, in medicine.

Холерный вибрион (Vibrio cholerae) и продуцируемый им токсин являются причиной острого кишечного заболевания людей, нередко заканчивающегося летальным исходом. Токсин холерного вибриона полностью определяет симптоматику холеры и является одним из центральных объектов мониторинга бактериальных токсинов в окружающей среде и продуктах питания. В настоящее время анализ токсинов приобретает большое значение в связи с угрозой биотерроризма, так как многие природные токсины, в том числе холерный токсин, могут быть использованы в качестве компонентов биологического оружия. Доза токсина, вызывающая заболевание, как правило, чрезвычайно мала [Scarlatos A., Welt В., Cooper В., et al. // J. Food. Sci. 2005. V.70(8). P.121-124], в связи с чем задача лабораторной диагностики токсина заключается в разработке тестов с максимально возможной чувствительностью. XT необходимо тестировать в концентрации, не превышающей 1 нг/мл [Ramamurthy Т., Bhattacharya S.K., Uesaka Y., Horigome К., Paul M., Sen D., Pal S.С., Takeda Т., Takeda Y., Nair GB // J. Clin. Microbiol. 1992. V.30(7). P.1783-1786].Cholera vibrio (Vibrio cholerae) and the toxin produced by it are the cause of acute intestinal disease in people, often fatal. The cholera vibrio toxin fully determines the symptoms of cholera and is one of the central objects for monitoring bacterial toxins in the environment and food. Currently, the analysis of toxins is of great importance due to the threat of bioterrorism, as many natural toxins, including cholera toxin, can be used as components of biological weapons. The dose of the toxin causing the disease is usually extremely small [Scarlatos A., Welt B., Cooper B., et al. // J. Food. Sci. 2005.V.70 (8). P.121-124], in connection with which the task of laboratory diagnosis of toxin is to develop tests with the highest possible sensitivity. XT must be tested at a concentration not exceeding 1 ng / ml [Ramamurthy T., Bhattacharya SK, Uesaka Y., Horigome K., Paul M., Sen D., Pal S.C., Takeda T., Takeda Y., Nair GB // J. Clin. Microbiol. 1992. V.30 (7). P.1783-1786].

В настоящее время для быстрой и чувствительной диагностики токсинов наиболее используемыми и достоверными являются системы на основе иммуноферментного анализа (ИФА) с использованием антител против токсинов [The EFSA Journal. 2007, V.130. P.4-352].Currently, systems based on enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) using antibodies against toxins are the most used and reliable for the rapid and sensitive diagnosis of toxins [The EFSA Journal. 2007, V.130. P.4-352].

Чувствительность и специфичность ИФА определяется в значительной степени качеством антител. Антигенное сходство между представителями холероподобной группы токсинов, в первую очередь это относится к сходству между XT и термолабильным токсином E.coli (LT), диктует целесообразность использования МКАТ, обладающих строгой специфичностью к XT.The sensitivity and specificity of ELISA is determined to a large extent by the quality of the antibodies. Antigenic similarity between the representatives of the cholera-like group of toxins, primarily this refers to the similarity between XT and the heat-labile toxin E. coli (LT), dictates the feasibility of using MKAT, which have strict specificity for XT.

Для определения токсинов МКАТ стандартно используются в конкурентном и сэндвич-вариантах ИФА. В конкурентном варианте МКАТ сорбируют на твердую подложку, затем добавляют раствор высокоочищенного токсина, конъюгированного с пероксидазой, биотином или флуоресцентной меткой, и образец, содержащий токсин. Токсин, содержащийся в образце, конкурирует за места связывания на МКАТ с высокоочищенным, конъюгированным с меткой токсином. Концентрацию тестируемого токсина определяют по калибровочной кривой, полученной в конкурентном ИФА с токсином известной концентрации. Чувствительность определения XT в конкурентном ИФА составляет 26 нг/мл [Rucker V.С., Havenstrite K.L., Herr A.E. Antibody microarray for native toxin detection. // Anal. Biochem. 2005. V.339. P.262-270]. В приведенном тесте использованы МКАТ (фирмы «Biodesign International»).For the determination of toxins, MKAT are standardly used in competitive and sandwich ELISA variants. In a competitive embodiment, MKAT is adsorbed onto a solid support, then a solution of highly purified toxin conjugated with peroxidase, biotin or a fluorescent label and a sample containing the toxin are added. The toxin contained in the sample competes for binding sites on MKAT with a highly purified label conjugated toxin. The concentration of the tested toxin is determined by the calibration curve obtained in a competitive ELISA with a toxin of known concentration. The sensitivity of the determination of XT in competitive ELISA is 26 ng / ml [Rucker V.S., Havenstrite K.L., Herr A.E. Antibody microarray for native toxin detection. // Anal. Biochem. 2005. V.339. P.262-270]. In the test used MKAT (firm "Biodesign International").

В сэндвич-варианте токсин из раствора связывается МКАТ, сорбированные на твердой подложке, затем (вторым слоем) с токсином связываются другие детектирующие МКАТ, конъюгированные с меткой (например, с пероксидазой, биотином или флуоресцеином). Концентрацию тестируемого токсина определяют по калибровочной кривой, полученной в сэндвич-варианте ИФА с токсином известной концентрации. Чувствительность определения XT в сэндвич-варианте ИФА достигает 1 нг/мл [N. Koike, К. Okada, Y. Yabushita, D.Y. Zhang, К. Yamamoto, T. Miwatani, T. Honda. Rapid and differential detection of two analogous enterotoxins of Vibrio cholerae and enterotoxigenic Escherichia coli by a modified enzyme-linked immunosorbent assay. // FEMS Immunol. Med. Microbiol. 1997 17(1):21-25].In the sandwich embodiment, the toxin from the solution is bound by MKAT adsorbed on a solid support, then (the second layer) other detectable MKAT are conjugated to the toxin conjugated with a label (for example, peroxidase, biotin or fluorescein). The concentration of the tested toxin is determined by the calibration curve obtained in the sandwich version of the ELISA with a toxin of known concentration. The sensitivity of the determination of XT in the sandwich ELISA reaches 1 ng / ml [N. Koike, K. Okada, Y. Yabushita, D.Y. Zhang, K. Yamamoto, T. Miwatani, T. Honda. Rapid and differential detection of two analogous enterotoxins of Vibrio cholerae and enterotoxigenic Escherichia coli by a modified enzyme-linked immunosorbent assay. // FEMS Immunol. Med. Microbiol. 1997 17 (1): 21-25].

При использовании МКАТ (фирмы «Biodesign International») в сэндвич-варианте с иммобилизованным на липосомах ганглиозидом GM1 - клеточным рецептором XT и LT, чувствительность определения достигает 10 фг/мл [Ann-Yoon S., DeCory T.R., Baeumner A.J., Durst R./Anal. Chem. Ganglioside-liposome immunoassay for the ultrasensitive detection of cholera toxin. 2003.75.2256-2261]. Использование ганглиозида GM1 ограничивает специфичность анализа, поскольку GM1 связывает как XT, так и LT.When using MKAT (Biodesign International) in a sandwich variant with GM1 ganglioside immobilized on the liposomes, the XT and LT cell receptor, the detection sensitivity reaches 10 fg / ml [Ann-Yoon S., DeCory TR, Baeumner AJ, Durst R. / Anal. Chem. Ganglioside-liposome immunoassay for the ultrasensitive detection of cholera toxin. 2003.75.2256-2261]. The use of GM1 ganglioside limits the specificity of the assay because GM1 binds both XT and LT.

Известен способ количественного обнаружения биологических токсинов на основе ИФА с помощью биологических микрочипов. Биологический микрочип представляет собой упорядоченный массив индивидуальных микроячеек на твердой подложке, в которых иммобилизуют МКАТ к различным биотоксинам бактериального и растительного происхождения. Применение микрочипов позволяет одновременно анализировать образец на наличие нескольких биотоксинов с чувствительностью, не уступающей чувствительности стандартных иммунологических тестов. В микрочипе используют конкурентный вариант и сэндвич-вариант ИФА. ЧувствительностьA known method for the quantitative detection of biological toxins based on ELISA using biological microarrays. A biological microchip is an ordered array of individual microcells on a solid substrate, in which MKAT is immobilized to various biotoxins of bacterial and plant origin. The use of microarrays allows you to simultaneously analyze the sample for the presence of several biotoxins with a sensitivity not inferior to the sensitivity of standard immunological tests. The microchip uses a competitive version and a sandwich variant of ELISA. Sensitivity

определения XT в биологическом чипе достигает 1,6 нг/мл [F.S. Ligler, С. Rowe Taitt, L.C. Shriver-Lake, K.E. Sapsford, Ya Shubin and J.P. Golden. Array biosensor for detection of toxins. 2003. Anal. Bioanal. Chem. 377(3):469-477]. Такая чувствительность достигается при использовании чипа-биосенсора. Одновременно анализировали XT и четыре других токсина, а именно рицин, стафилококковый токсин SeB, ботулинический токсин A и токсин Bacillus globigii. В чипе применяют сэндвич-вариант ИФА, в котором связывающие МКАТ к XT и к четырем другим токсинам (рицину, стафилококковому токсину SeB, ботулиническому токсину А и токсину Bacillus globigii) локально иммобилизуют на поверхности стекла путем образования комплекса авидин-биотинилированные антитела. Для детекции XT и других токсинов используют флуоресцеин-меченые МКАТ. Флуоресцентные сигналы регистрируют с помощью конфокального микроскопа. Для детекции XT используют МКАТ клона гибридомы 3D 11 (фирмы «Biodesign International»), которые не обладают строгой специфичностью и связываются как с XT, так и с LT.XT determination in a biological chip reaches 1.6 ng / ml [F.S. Ligler, C. Rowe Taitt, L.C. Shriver-Lake, K.E. Sapsford, Ya Shubin and J.P. Golden Array biosensor for detection of toxins. 2003. Anal. Bioanal. Chem. 377 (3): 469-477]. This sensitivity is achieved using a biosensor chip. At the same time, XT and four other toxins were analyzed, namely ricin, staphylococcal toxin SeB, botulinum toxin A and toxin Bacillus globigii. An ELISA sandwich is used in the chip, in which MKAT binding to XT and four other toxins (ricin, staphylococcal toxin SeB, botulinum toxin A and toxin Bacillus globigii) are locally immobilized on the glass surface by forming an avidin-biotinylated antibody complex. Fluorescein-labeled MKAT is used to detect XT and other toxins. Fluorescence signals are recorded using a confocal microscope. For the detection of XT, MKAT clone of the hybridoma 3D 11 (Biodesign International) is used, which do not have strict specificity and bind to both XT and LT.

Известен гидрогелевый микрочип, который представляет собой упорядоченный массив трехмерных гидрогелевых ячеек на твердой подложке, полученный методом фото- или химически модифицированной полимеризации и содержащий иммобилизованные МКАТ к различным биотоксинам бактериального и растительного происхождения [патент РФ N 2216547, опубл. 2003]. Гидрогелевый микрочип предназначен для скрининга широкого круга опасных токсинов, которые могут быть использованы в качестве компонентов биологического оружия. Однако в настоящее время чип выявляет ограниченное число токсинов и, в частности, не детектирует XT, который представляет серьезную угрозу здоровью и жизни людей.Known hydrogel microchip, which is an ordered array of three-dimensional hydrogel cells on a solid substrate, obtained by photo- or chemically modified polymerization and containing immobilized MKAT to various biotoxins of bacterial and plant origin [RF patent N 2216547, publ. 2003]. The hydrogel microchip is designed to screen a wide range of dangerous toxins that can be used as components of biological weapons. However, the chip currently detects a limited number of toxins and, in particular, does not detect XT, which poses a serious threat to human health and life.

Известен наиболее близкий к заявляемому клон гибридных культивируемых клеток животных Mus musculus L ВСКК (П) N 469D продуцент моноклональных антител к холерному энтеротоксину [патент РФ N1835848, МКИ C12N 5/00, опубл. 1995], продуцирующий моноклональные антитела (N 469) класса lgM, полученные против хроматографически очищенного холерного токсина, при гибридизации спленоцитов с клетками миеломы X63.Ag8.653. МКАТ N 469 связываются с B-субъединицей холерного токсина. Основным недостатком клона, продуцирующего МКАТ N 469, является то, что при его участии в сэндвич-варианте ИФА выявляют холерный токсин с недостаточно высокой чувствительностью - 1 нг/мл. Кроме того, для клона N 469 характерна довольно низкая продуктивность - титр антител в культуральной жидкости составляет 1:2501:500, а в асцитной 1:1000000. Клон N 469 продуцирует антитела класса lgM, вследствие чего затруднено получение чистых препаратов антител, т.к. для получения препарата чистых lgM антител не пригодна стандартная методика - хроматография на протеин А сефарозе.Known closest to the claimed clone of hybrid cultured animal cells Mus musculus L HSCV (P) N 469D producer of monoclonal antibodies to cholera enterotoxin [RF patent N1835848, MKI C12N 5/00, publ. 1995], producing IgM class monoclonal antibodies (N 469), obtained against chromatographically purified cholera toxin, by hybridization of splenocytes with X63.Ag8.653 myeloma cells. MKAT N 469 binds to the B-subunit of cholera toxin. The main disadvantage of the clone producing MKAT No. 469 is that when it participates in the ELISA sandwich variant, cholera toxin with an insufficiently high sensitivity of 1 ng / ml is detected. In addition, quite low productivity is characteristic of clone N 469 - the antibody titer in the culture fluid is 1: 2501: 500, and in ascites 1: 1,000,000. Clone N 469 produces IgM antibodies, which makes it difficult to obtain pure antibody preparations because to obtain a preparation of pure IgM antibodies, the standard technique is not suitable - protein A Sepharose chromatography.

Задачей изобретения является получение клона гибридных клеток, продуцирующих высокоспецифичные МКАТ против холерного токсина, не обладающих связыванием с термолабильным токсином Е.coli и с другими бактериальными токсинами, с пределом обнаружения токсина в ИФА ниже 1 нг/мл.The objective of the invention is to obtain a clone of hybrid cells that produce highly specific MKAT against cholera toxin, do not have binding to the thermolabile toxin E. coli and other bacterial toxins, with a detection limit of the toxin in ELISA below 1 ng / ml.

Поставленная задача решается за счет клона гибридных культивируемых клеток животных Mus musculus L СТ-Е6/Е10 - продуцента моноклональных антител к холерному токсину.The problem is solved by the clone of hybrid cultured animal cells Mus musculus L CT-E6 / E10 - producer of monoclonal antibodies to cholera toxin.

Указанный клон гибридных культивируемых клеток животных Mus musculus L СТ-E6/E10 получают путем слияния клеток миеломы линии SP-2/0 и клеток лимфоузлов мышей BALB/c, иммунизированных холерным токсином (Sigma), при использовании в качестве сливающего агента полиэтиленгликоля с молекулярной массой 4000 и последующим отбором гибридных клеток на селективной среде: на среде Игла в модификации Дульбекко с 20% сыворотки плода коровы, 4 мМ L-глутамином, 50 мкМ меркаптоэтанолом и ГАТ (0,1 мМ гипоксантином, 4×10-7 M аминоптерином, 1,6×105 M тимидином). Методом предельных разведений отбирают стабильные клоны, продуцирующие антитела, в непрямом ИФА специфически связывающие XT, и не связывающие LT. На следующем этапе из клонов, продуцирующих МКАТ специфичные к XT, отбирают клоны, которые в сэндвич варианте ИФА определяют XT в концентрации ниже 1 нг/мл. Далее отбирают клоны, которые в микрочипе перекрестно не взаимодействуют с другими бактериальными токсинами, а именно с рицином, летальным фактором токсина Bacillus anthracis, протективным антигеном токсина Bacillus anthracis, дифтерийным токсином, стафилококковыми токсинами SeA, SeB, Sel, SeG. Отобранный клон СТ-E6/E10 Продуцирует антитела, которые при детекции XT в сэндвич-варианте ИФА позволяют выявить XT в концентрации, не превышающей 1 нг/мл. В частности, чувствительность сэндвич-варианта ИФА, где в качестве проявляющих антител используются МКАТ СТ-E6/E10, а в качестве связывающих антител используются МКАТ, узнающие другую антигенную детерминанту XT, составляет 0,2 нг/мл. Эта чувствительность сохраняется при определении холерного токсина в воде из открытого водоема, бульоне и молоке.The specified clone of hybrid cultured animal cells of Mus musculus L CT-E6 / E10 animals is obtained by fusion of SP-2/0 line myeloma cells and lymph node cells of BALB / c mice immunized with cholera toxin (Sigma), using molecular weight polyethylene glycol as a merging agent 4000 and subsequent selection of hybrid cells in selective medium: on Eagle’s medium in the Dulbecco modification with 20% fetal serum of a cow, 4 mM L-glutamine, 50 μM mercaptoethanol and GAT (0.1 mM hypoxanthine, 4 × 10 -7 M aminopterin, 1 , 6 × 10 5 M thymidine). Stable antibody-producing clones in the indirect ELISA specifically bind XT and non-bind LT are selected by the limiting dilution method. In the next step, clones are selected from clones producing MKAT specific for XT, which, in the ELISA sandwich variant, determine XT at a concentration below 1 ng / ml. Then, clones are selected that do not cross-interact with other bacterial toxins in the microchip, namely ricin, the lethal factor of the toxin Bacillus anthracis, the protective antigen of the toxin Bacillus anthracis, diphtheria toxin, staphylococcal toxins SeA, SeB, Sel, SeG. Selected clone CT-E6 / E10 Produces antibodies that, upon detection of XT in the ELISA sandwich variant, can detect XT at a concentration not exceeding 1 ng / ml. In particular, the sensitivity of the ELISA sandwich variant, where MKAT CT-E6 / E10 is used as the developing antibody, and MKAT, which recognize the other antigenic determinant of XT, are used as binding antibodies, is 0.2 ng / ml. This sensitivity is maintained when determining cholera toxin in water from an open reservoir, broth and milk.

МКАТ могут быть использованы для количественного обнаружения холерного токсина в одновременном и параллельном анализе с рядом других биологических токсинов в формате биологического микрочипа. Чувствительность определения в формате микрочипа достигает 0,50 нг/мл.MKAT can be used for the quantitative detection of cholera toxin in simultaneous and parallel analysis with a number of other biological toxins in the format of a biological microchip. The sensitivity of the determination in the microchip format reaches 0.50 ng / ml.

Гибридома СТ-Е6/Е10 характеризуется следующими свойствами.The hybridoma ST-E6 / E10 is characterized by the following properties.

1. Кариологическая характеристика1. Karyological characteristic

Кариотип клеток клона СТ-Е6/Е10 по видовой принадлежности мышиный, по модальному числу хромосом 88.The karyotype of clone cells CT-E6 / E10 by species is murine, by the modal number of chromosomes 88.

2. Морфологическая характеристика.2. Morphological characteristics.

Клон гибридомы CT-Е6/E10 представлен крупными округлыми клетками, близкими по морфологии клеткам исходной миеломной линии SP-2/0.The CT-E6 / E10 hybridoma clone is represented by large rounded cells that are similar in morphology to the cells of the original myeloma line SP-2/0.

3. Стандартные условия выращивания in vitro3. Standard in vitro growing conditions

Посевная концентрация при выращивании in vitro - (1,0-2,0)×105 кл/см3. Среда культивирования - среда Игла в модификации Дульбекко с 10% сыворотки плода коровы. Температура культивирования (37°C). Содержание CO2 в атмосфере культивирования - 5%.The inoculum concentration when grown in vitro is (1.0-2.0) × 10 5 cells / cm 3 . The culture medium is Wednesday Needle in the modification of Dulbecco with 10% serum of the fetal cow. Cultivation temperature (37 ° C). The content of CO 2 in the atmosphere of cultivation is 5%.

4. Культуральные свойства клона4. Cultural properties of the clone

Гибридома CT-E6/E10 является суспензионно-монослойным, около 60% клеток находятся в суспензии, не прикрепляясь к поверхности культурального сосуда, частота пассирования при посевной дозе (1,0-2,0)105 кл/см3 - 3-4 суток. Гибридный клон не теряет способности синтезировать антитела при пассировании in vitro в течение 6 месяцев (срок наблюдения). Продуктивность клона по антителам in vitro составляет в величинах титра супернатанта в ИФА 1:10000.Hybridoma CT-E6 / E10 is a suspension-monolayer, about 60% of the cells are in suspension, not attached to the surface of the culture vessel, the frequency of passage at a seeding dose (1.0-2.0) 10 5 cells / cm 3 - 3-4 days. The hybrid clone does not lose its ability to synthesize antibodies when passaged in vitro for 6 months (observation period). The in vitro antibody clone productivity is 1: 10,000 in the titer of the supernatant in ELISA.

5. Культивирование гибридомы в организме животного.5. The cultivation of hybridomas in the body of the animal.

Вид животного - инбредные мыши линии BALB/c. Доза клеток - 1-2×106 на одну мышь. За 10-14 дней до введения гибридомы мышам в брюшную полость вводят 0,5 мл 2,6,10,14-тетраметилпентадекана (пристана). Опухоль растет смешанным асцитно-солидным образом. Асцит образуется на 7-12 сутки в объеме от 3 до 10 мл в мыши. Перевиваемость 100%. Гибридный клон сохраняет способность продуцировать антитела на постоянном уровне (контроль по титру антител) при перевивании клеток животным на протяжении 6 пассажей (срок наблюдения). Титр МКАТ в асцитных жидкостях в ИФА составляет 1:1×106.Animal species - inbred mice of the BALB / c line. The dose of cells is 1-2 × 10 6 per mouse. 10-14 days before the introduction of the hybridoma, 0.5 ml of 2,6,10,14-tetramethylpentadecane (pristan) is injected into the abdominal cavity of mice. The tumor grows in a mixed ascites-solid manner. Ascites is formed on days 7-12 in a volume of 3 to 10 ml in the mouse. Digestibility 100%. The hybrid clone retains the ability to produce antibodies at a constant level (control by antibody titer) when cells are transplanted into animals for 6 passages (observation period). The titer of MKAT in ascites liquids in ELISA is 1: 1 × 10 6 .

6. Контаминация клона.6. Clone contamination.

Контаминации CT-E6/E10 бактериями, дрожжами и грибами не выявлено.No contamination with CT-E6 / E10 by bacteria, yeast and fungi was detected.

7. Биотехнологическая характеристика полезного продукта. Антитела, продуцируемые клетками клона CT-T6/E10, относятся к классу иммуноглобулинов lgGl по данным ИФА с типирующими моноспецифическими антисыворотками против отдельных классов иммуноглобулинов мыши. Легкие цепи МКАТ CT-E6/T10 относятся к «к» типу.7. Biotechnological characteristics of a useful product. Antibodies produced by CT-T6 / E10 clone cells belong to the IgG class of immunoglobulins according to ELISA with typing monospecific antisera against individual classes of mouse immunoglobulins. MKAT light chains CT-E6 / T10 belong to the "to" type.

Иммуноблотингом показано, что МКАТ CT-E6/E10 связываются с B-субъединицей холерного токсина.By immunoblotting, it was shown that MKAT CT-E6 / E10 binds to the B subunit of cholera toxin.

Константы аффинности, рассчитанные по методу Битти [Beatty J.D., Beatty B.G., and Vlahos W.G.: Measurement of monoclonal antibody affinity by non-competitive enzyme immunoassay. J. Immnol. Methods., 1987; 100:173-179], составляет для МКАТ CT-E6/E10 - 0,52×109 M-1.Affinity constants calculated using the Beatty method [Beatty JD, Beatty BG, and Vlahos WG: Measurement of monoclonal antibody affinity by non-competitive enzyme immunoassay. J. Immnol. Methods., 1987; 100: 173-179], for MKAT CT-E6 / E10 is 0.52 × 10 9 M -1 .

8. Способ криоконсервации.8. The method of cryopreservation.

Среда криоконсервирования содержит 90% сыворотки плода коровы и 10% криопротектора - диметилсульфоксида (ДМСО).The cryopreservation medium contains 90% of the fetal serum of the cow and 10% of the cryoprotectant - dimethyl sulfoxide (DMSO).

Режим замораживания и отогрева.The mode of freezing and heating.

Замораживание: осадок клеток, полученный после низкоскоростного центрифугирования, суспендируют в среде для криоконсервирования из расчета 1-3×106 кл в мл среды. Суспензию клеток перемешивают и разливают по 1 мл в криопробирки (Nunc). Промаркированные пробирки помещают в низкотемпературный холодильник (-70°C) на сутки, а затем в сосуд Дьюара с жидким азотом (для долгосрочного хранения). Восстановление клеток после размораживания: быстрое размораживание на водяной бане при 37°C до полного оттаивания. Затем суспензию клеток переносят в стерильную центрифужную пробирку с 10 мл культуральной среды без сыворотки. Клетки осаждают центрифугированием (10 мин при 150 g), затем осадок клеток суспендируют в среде Игла в модификации Дульбекко, содержащей 10% сыворотки плода коровы и переносят в емкость для культивирования. Жизнеспособность клеток после криоконсервирования составляет (80±10)%.Freezing: the cell pellet obtained after low-speed centrifugation is suspended in cryopreservation medium at a rate of 1-3 × 10 6 cells per ml of medium. The cell suspension is mixed and poured into 1 ml cryovials (Nunc). Labeled tubes are placed in a low-temperature refrigerator (-70 ° C) for a day, and then in a Dewar vessel with liquid nitrogen (for long-term storage). Cell recovery after thawing: rapid thawing in a water bath at 37 ° C until completely thawed. Then the cell suspension is transferred to a sterile centrifuge tube with 10 ml of culture medium without serum. Cells are pelleted by centrifugation (10 min at 150 g), then the cell pellet is suspended in the Needle medium in the Dulbecco modification containing 10% of the fetal bovine serum and transferred to a culture vessel. Cell viability after cryopreservation is (80 ± 10)%.

Изобретение иллюстрируют графические материалы.The invention is illustrated by graphic materials.

Фиг.1. Сэндвич-анализ ИФА холерного токсина в PBS, молоке, мясном бульоне и воде на планшете с использованием МКАТ CT-E6/E10 в качестве проявляющих антител. При анализе полученных данных оптическое поглощение (A 492 нм) рассчитывают как медиану оптического поглощения трех одинаковых ячеек микропланшета. Аналитическую чувствительность анализа, т.е. наименьшую тестируемую концентрацию CT, определяют как концентрацию, соответствующую значению оптического поглощения, превышающего не менее чем на два стандартных отклонения оптическое поглощение многократно измеренной нулевой точки. Величину чувствительности определяют экспериментально, по полученным калибровочным кривым и рассчитывают следующим образом:Figure 1. Sandwich analysis of ELISA of cholera toxin in PBS, milk, meat broth and water on a tablet using MKAT CT-E6 / E10 as developing antibodies. When analyzing the obtained data, the optical absorption (A 492 nm) is calculated as the median of the optical absorption of three identical microplate cells. The analytical sensitivity of the analysis, i.e. the lowest test CT concentration is defined as the concentration corresponding to the value of optical absorption exceeding at least two standard deviations the optical absorption of a multiple measured zero point. The sensitivity value is determined experimentally by the obtained calibration curves and calculated as follows:

IFo+2*SD,IF o + 2 * SD,

где IFo - значение интенсивности флуоресценции для каждого измерения нулевой пробы; SD - среднее квадратичное отклонение от среднего арифметического значения IFo.where IF o is the value of the fluorescence intensity for each measurement of the zero sample; SD is the standard deviation from the arithmetic mean value IF o .

SD вычисляют по следующей формулеSD is calculated by the following formula

Figure 00000001
Figure 00000001

где

Figure 00000002
- среднее арифметическое значение интенсивности флуоресценции при измерении нулевой пробы; n - число измерений.Where
Figure 00000002
- the arithmetic mean value of the fluorescence intensity when measuring a zero sample; n is the number of measurements.

Для представленной кривой чувствительность составляет 0,20 нг/мл.For the presented curve, the sensitivity is 0.20 ng / ml.

Фиг.2. Калибровочные кривые для определения концентрации СТ в сэндвич-анализе ИФА на микрочипах с использованием МКАТ CT-E6/E10 в качестве проявляющих антител.Figure 2. Calibration curves for determining the concentration of CT in the ELISA sandwich assay on microarrays using MKAT CT-E6 / E10 as developing antibodies.

Расчет интенсивности флуоресцентного сигнала от каждой ячейки биочипа и определение концентраций токсинов проводят с помощью специального программного обеспечения ImagelAssay (ИМБ, Москва). При анализе полученных данных интенсивность флуоресценции рассчитывают как медианный сигнал от четырех одинаковых гелевых ячеек. Величину чувствительности определяют экспериментально, по полученным калибровочным кривым и рассчитывают, как указано в подписи к фиг.1. Для представленной кривой чувствительность составляет 0,50 нг/мл.Calculation of the intensity of the fluorescent signal from each cell of the biochip and determination of the concentrations of toxins are carried out using special software ImagelAssay (IMB, Moscow). When analyzing the data obtained, the fluorescence intensity is calculated as the median signal from four identical gel cells. The sensitivity value is determined experimentally from the obtained calibration curves and calculated, as indicated in the signature to figure 1. For the presented curve, the sensitivity is 0.50 ng / ml.

Изобретение иллюстрируют примерыThe invention is illustrated by examples.

Пример 1. Получение клона CT-T6/E10Example 1. Obtaining a clone CT-T6 / E10

Гибридому получают при слиянии мышиной миеломы SP-2/0 с клетками лимфоузлов мыши BALB/c конвенциональной категории, иммунизированной цельным холерным токсином (Sigma). В первый день иммунизации токсин вводят в подушечки задних лапок мышей по 2,5 мкг/мышь холерного токсина, разведенного в 0,1 мл физиологического раствора, с добавлением 0,1 мл неполного адъюванта Фрейнда. На 14 и 28 сутки вводят холерный токсин с неполным адъювантом Фрейнда в дозе 5 и 20 мкг/мышь соответственно. Через 6 суток после последней иммунизации извлекают подколенные лимфоузлы и проводят гибридизацию 5×106 лимфоцитов мыши с 1×106 клетками миеломной линии SP-2/0 в 1 мл полиэтиленгликоля 4000 в течение 1 мин совместной инкубации.A hybridoma is obtained by fusion of mouse SP-2/0 mouse myeloma with conventional BALB / c mouse lymph node cells immunized with whole cholera toxin (Sigma). On the first day of immunization, the toxin is introduced into the pads of the hind legs of mice, 2.5 μg / mouse of cholera toxin diluted in 0.1 ml of physiological saline, with the addition of 0.1 ml of incomplete Freund's adjuvant. On days 14 and 28, cholera toxin is administered with incomplete Freund's adjuvant at a dose of 5 and 20 μg / mouse, respectively. 6 days after the last immunization, popliteal lymph nodes are removed and 5 × 10 6 mouse lymphocytes are hybridized with 1 × 10 6 cells of the SP-2/0 myeloma line in 1 ml of polyethylene glycol 4000 for 1 min of joint incubation.

После удаления полиэтиленгликоля центрифугированием клетки высевают на 96-луночные планшеты на слой фидерных клеток - макрофагов, выделенных из перитонеальной полости мыши инбредной линии. Селекцию гибридных клеток проводят на среде Игла в модификации Дульбекко, с 20% сыворотки плода коровы, 4 мМ L-глутамином, 50 мкМ меркаптоэтанолом, и ГАТ. Через 21 сутки - время полной гибели миеломных клеток, клетки гибридомы культивируют на среде без аминоптерина. Дальнейшее культивирование гибридом проводят на среде, не содержащей селективных компонентов ГАТ. 3-кратное клонирование гибридом проводят методом лимитирующих разведений в 96-луночных планшетах на слое фидерных клеток. В двух последних клонированиях процент позитивных клонов составляет 100%.After removal of polyethylene glycol by centrifugation, the cells are plated on 96-well plates on a layer of feeder cells - macrophages isolated from the peritoneal cavity of the mouse inbred line. Selection of hybrid cells is carried out on the Eagle medium in the modification of Dulbecco, with 20% serum of the fetal cow, 4 mM L-glutamine, 50 μM mercaptoethanol, and GAT. After 21 days - the time of complete death of myeloma cells, hybridoma cells are cultured on a medium without aminopterin. Further cultivation of hybridomas is carried out on a medium that does not contain selective components of GAT. 3-fold cloning of hybridomas is carried out by the method of limiting dilutions in 96-well plates on a layer of feeder cells. In the last two clonings, the percentage of positive clones is 100%.

Для скрининга антителопродуцирующих клонов, продуцирующих МКАТ специфически связывающих XT, используют непрямой ИФА с XT. В лунки ИФА-планшета сорбируют холерный токсин при концентрации белка 1 мкг/мл в 0,1 М бикарбонатном буфере pH 9,0. В каждую лунку вносят по 100 мкл раствора антигена и инкубируют в течение ночи при 4°C. После сорбции свободные центры связывания блокируют 1% раствором бычьего сывороточного альбумина при 37°C в течение 1 ч. Лунки планшета отмывают ФСБ с 0,1% твин-20, далее вносят по 100 мкл/лунку анализируемых супернатантов, отобранных из лунок планшета, в которых растут и продуцируют антитела гибридомы. Инкубируют в течение 1 ч при 37°C. Отмывают, как описано выше, вносят по 100 мкл/лунку пероксидазного конъюгата кроличьих антител против иммуноглобулинов мыши, инкубируют 40 мин при 37°C, отмывают и вносят по 100 мкл/лунку субстрата пероксидазы: раствор орто-фенилдиамина в концентрации 1 мг/мл в 50 мМ цитратном буфере pH 4,5, содержащем 0,015% перекиси водорода. После развития окраски реакцию останавливают добавлением 100 мкл/лунку 10% серной кислоты. Интенсивность окраски регистрируют спектрофотометрически, определяя оптическое поглощение при длине волны 492 нм. Отбирают клоны, продуцирующие МКАТ, специфически связывающие XT.Indirect ELISA with XT is used to screen for antibody producing clones producing MKAT specifically binding XT. Cholera toxin is adsorbed into the wells of the ELISA plate at a protein concentration of 1 μg / ml in 0.1 M bicarbonate buffer pH 9.0. 100 μl of antigen solution is added to each well and incubated overnight at 4 ° C. After sorption, free binding sites are blocked with a 1% solution of bovine serum albumin at 37 ° C for 1 h. Wells of the plate are washed with PBS with 0.1% tween-20, then 100 μl / well of the analyzed supernatants taken from the wells of the tablet are added to which hybridoma antibodies grow and produce. Incubated for 1 h at 37 ° C. Wash off as described above, add 100 μl / well of peroxidase conjugate of rabbit antibodies against mouse immunoglobulins, incubate for 40 min at 37 ° C, wash and add 100 μl / well of peroxidase substrate: a solution of orthophenyldiamine at a concentration of 1 mg / ml in 50 mM citrate buffer pH 4.5 containing 0.015% hydrogen peroxide. After color development, the reaction is stopped by adding 100 μl / well of 10% sulfuric acid. The color intensity is recorded spectrophotometrically, determining the optical absorption at a wavelength of 492 nm. Selected clones producing MKAT specifically binding XT.

Для скрининга антителопродуцирующих клонов, продуцирующих МКАТ, не взаимодействующих с термолабильным токсином E.coli, используют непрямой ИФА с термолабильным токсином E.coli. Анализ проводят как с XT, но в лунки ИФА-планшета сорбируют термолабильный токсин E.coli при концентрации белка 1 мкг/мл в 0,1 M бикарбонатном буфере рН 9,0. В каждую лунку вносят по 100 мкл раствора антигена и инкубируют в течение ночи при 4°C. Отбирают клоны, продуцирующие МКАТ, не взаимодействующие с термолабильным токсином Е coli.For screening antibody-producing clones producing MKAT that do not interact with the heat-labile E. coli toxin, indirect ELISA with the heat-labile E. coli toxin is used. The analysis is carried out as with XT, but the thermolabile E. coli toxin is adsorbed into the wells of the ELISA plate at a protein concentration of 1 μg / ml in 0.1 M bicarbonate buffer pH 9.0. 100 μl of antigen solution is added to each well and incubated overnight at 4 ° C. Clones producing MKAT that do not interact with the thermolabile toxin E coli are selected.

Пример 2. Применение МКАТ CT-E6/E10 в сэндвич варианте ИФА на холерный токсинExample 2. The use of MKAT CT-E6 / E10 in the sandwich variant of ELISA for cholera toxin

В сэндвич-варианте ИФА используют МКАТ CT-E6/E10 в качестве детектирующих антител, и в качестве связывающих - МКАТ, направленные против эпитопов молекулы холерного токсина, с которыми не взаимодействует МКАТ CT-E6/E10. Связывающие МКАТ сорбируют первым слоем на дне ИФА-микропланшетов по 100 мкл/лунку в концентрации 10 мкг/мл. Свободные центры связывания пластика блокируют 1%-ным раствором сухого молока в течение 1 часа при 37°C. Отмывают ФСБ с 0,1% твин-20. Затем вносят анализируемые образцы в объеме 100 мкл/лунку, содержащие холерный токсин в различных разведениях, инкубируют 45 мин при 37°C, отмывают ФСБ с 0,1% твин-20. Вносят конъюгат CT-E6/E10 с биотином в объеме 100 мкл/лунку при концентрации антител 10 мкг/мл. Инкубируют 45 мин при 37°C, отмывают, вносят конъюгат стрептавидина с пероксидазой хрена, инкубируют (45 мин при 37°C) и отмывают. Затем вносят субстрат пероксидазы: раствор орто-фенилдиамина в концентрации 1 мг/мл в 50 мМ цитратном буфере pH 4,5, содержащем 0,015% перекиси водорода. Через 15±5 мин реакцию останавливают добавлением 10% серной кислоты. Интенсивность окраски регистрируют спектрофотометрически при длине волны 492 нм. Анализ растворов с известной концентрацией холерного токсина показывает, что чувствительность определения XT достигает 0,2 нг/мл. При инкубации холерного токсина с МКАТ CT-E6/E10 не в ФСБ, а в 10% молоке, бульоне, воде из открытого водоема чувствительность определения XT не меняется и составляет - 0,2 нг/мл.In the ELISA sandwich variant, MKAT CT-E6 / E10 is used as detecting antibodies, and as binding antibodies, MKATs are used against epitopes of the cholera toxin molecule with which MKAT CT-E6 / E10 does not interact. Binding MKAT adsorb the first layer at the bottom of the ELISA microplate at 100 μl / well at a concentration of 10 μg / ml. Free plastic binding sites are blocked with a 1% milk powder solution for 1 hour at 37 ° C. Wash the FSB with 0.1% tween-20. Then, the analyzed samples were introduced in a volume of 100 μl / well containing cholera toxin in various dilutions, incubated for 45 min at 37 ° C, and the FSB was washed with 0.1% tween-20. Contribute CT-E6 / E10 conjugate with biotin in a volume of 100 μl / well at an antibody concentration of 10 μg / ml. Incubated for 45 min at 37 ° C, washed, conjugated streptavidin with horseradish peroxidase, incubated (45 min at 37 ° C) and washed. Then, a peroxidase substrate is added: a solution of orthophenyldiamine at a concentration of 1 mg / ml in 50 mM citrate buffer pH 4.5 containing 0.015% hydrogen peroxide. After 15 ± 5 min, the reaction was stopped by the addition of 10% sulfuric acid. The color intensity is recorded spectrophotometrically at a wavelength of 492 nm. Analysis of solutions with a known concentration of cholera toxin shows that the sensitivity of XT determination reaches 0.2 ng / ml. Upon incubation of cholera toxin with MKAT CT-E6 / E10 not in FSB, but in 10% milk, broth, and water from an open reservoir, the sensitivity of XT determination does not change and amounts to 0.2 ng / ml.

Пример 3. Количественный анализ холерного токсина с использованием биологического микрочипаExample 3. Quantitative analysis of cholera toxin using a biological microchip

На гидрогелевые чипы иммобилизуют связывающие МКАТ (как в примере 2) против холерного токсина и МКАТ против 8 других токсинов (рицина, летального фактора токсина Bacillus anthracis, протективного антигена токсина Bacillus anthracis, дифтерийного токсина, стафилококковых токсинов SeA, SeB, Sel, SeG). Концентрация каждого из антител в полимеризационной смеси составляет 0,8±0,2 мг/мл, объем гелевого элемента 0,1 нл. Каждый гелевый элемент содержит одно из девяти вышеназванных МКАТ, кроме того, в чип входят контрольные гелевые элементы, не содержащие антител. Добавляют 30 мкл анализируемого образца и 30 мкл раствора проявляющих биотинилированных моноклональных антител CT-E6/E10 и инкубируют на биочипе в течение 17 ч при 37°C. После процедуры отмывки (20 мин, ФСБ с 0,1% твин-20) добавляют флуоресцентно меченный стрептавидин, инкубируют 10 мин при 37°C, повторно отмывают и регистрируют флуоресцентные сигналы. Предел обнаружения для XT составляет 0,50 нг/мл.Binding MKAT (as in Example 2) is immobilized onto hydrogel chips against cholera toxin and MKAT against 8 other toxins (ricin, lethal toxin factor Bacillus anthracis, protective antigen of the toxin Bacillus anthracis, diphtheria toxin, staphylococcal toxins SeA, SeB, Sel, SeG). The concentration of each of the antibodies in the polymerization mixture is 0.8 ± 0.2 mg / ml, the volume of the gel element is 0.1 nl. Each gel element contains one of the nine aforementioned MKAT; in addition, control gel elements that do not contain antibodies are included in the chip. Add 30 μl of the analyzed sample and 30 μl of a solution of CT-E6 / E10 developing biotinylated monoclonal antibodies and incubate on a biochip for 17 h at 37 ° C. After the washing procedure (20 min, PBS with 0.1% Tween-20), fluorescently labeled streptavidin is added, incubated for 10 min at 37 ° C, washed again and the fluorescent signals are recorded. The detection limit for XT is 0.50 ng / ml.

Гидрогелевые чипы получают, как описано, например в [патент РФ N 2216547, МКИ C07K 17/08, опубл. 2003]. Стеклянные слайды для изготовления микрочипов обрабатывают растворами 1 н NaOH, H2SO4, промывают водой, затем погружают в раствор 1% 3-метакрилоксипропилтриметоксисилана в этиловом спирте, отмывают в этиловом спирте, воде и высушивают. Полимеризационную смесь, содержащую гелеобразующие мономеры на основе метакриламида и N-замещенных аминосахаров, а также подлежащие иммобилизации МКАТ, наносят с помощью робота QArray (Genetix, Великобритания) в виде микрокапель объемом 0,1 нл на поверхность активированной подложки. Полимеризацию гелевых ячеек проводят под лампой ультрафиолетового света с максимумом излучения 350 нм (Sylvania GTE lamp, F15T 8/350B1, Великобритания) на расстоянии 8 см от лампы, в течение 50 мин при 20°C в токе азота. При нанесении пином 150 мкм получают гелевые элементы полусферической формы диаметром 120 мкм. Биочипы после полимеризации отмывают в течение 40 мин ФСБ с 0,1% твин-20. Для уменьшения неспецифического взаимодействия биочипы обрабатывают блокирующим буфером в течение 1 ч, затем промывают дистиллированной водой.Hydrogel chips are obtained as described, for example, in [RF patent N 2216547, MKI C07K 17/08, publ. 2003]. Glass slides for the manufacture of microchips are treated with solutions of 1 n NaOH, H 2 SO 4 , washed with water, then immersed in a solution of 1% 3-methacryloxypropyltrimethoxysilane in ethanol, washed in ethanol, water and dried. A polymerization mixture containing gelling monomers based on methacrylamide and N-substituted amino sugars, as well as MKAT to be immobilized, is applied using a QArray robot (Genetix, UK) in the form of microdrops with a volume of 0.1 nl onto the surface of the activated substrate. Gel cells are polymerized under an ultraviolet lamp with a maximum radiation of 350 nm (Sylvania GTE lamp, F15T 8 / 350B1, UK) at a distance of 8 cm from the lamp, for 50 min at 20 ° C in a stream of nitrogen. When applied with a pin of 150 microns, gel elements of a hemispherical shape with a diameter of 120 microns are obtained. After polymerization, biochips are washed for 40 minutes with FSB with 0.1% tween-20. To reduce nonspecific interaction, biochips are treated with blocking buffer for 1 h, then washed with distilled water.

Качество полученных биочипов проверяют в проходящем свете с помощью биочип-анализатора (ИМБ РАН), снабженного специальным программным обеспечением TestChip и QualityControl (ИМБ РАН). В результате проверки качества отбраковывают биочипы, для которых отклонения значений радиусов гелевых элементов превышают 5% внутри каждого биочипа и 8% между всеми биочипами данной партии.The quality of the obtained biochips is checked in transmitted light using a biochip analyzer (IMB RAS) equipped with special software TestChip and QualityControl (IMB RAS). As a result of quality control, biochips are rejected for which deviations of the radii of gel elements exceed 5% inside each biochip and 8% between all biochips of a given batch.

Пример 4. Одновременный анализ нескольких биотоксинов, в том числе холерного токсина на одном микрочипе. Процедура анализа, как в примере 3, но биотинилированные МКАТ CT-E6/E10, детектирующие XT, вносят в смеси с биотинилированными антителами к другим токсинам (рицину, летальному фактору токсина Bacillus anthracis, протективному антигену токсина Bacillus anthracis, дифтерийному токсину, стафилококковым токсинам SeA, SeB, Sel, SeG). Пределы обнаружения биотоксинов для параллельного анализа такие же, как и при определении каждого токсина в отдельности. Для XT минимально детектируемая доза составляет 0,50 нг/мл.Example 4. Simultaneous analysis of several biotoxins, including cholera toxin on one microchip. The analysis procedure, as in example 3, but the biotinylated MKAT CT-E6 / E10, detecting XT, is mixed with biotinylated antibodies to other toxins (ricin, lethal toxin factor Bacillus anthracis, protective antigen of the toxin Bacillus anthracis, diphtheria toxin A, staphylococcus aureus , SeB, Sel, SeG). The detection limits for biotoxins for parallel analysis are the same as for each individual toxin. For XT, the minimum detectable dose is 0.50 ng / ml.

Предложенные анализы можно использовать для тестирования на наличие токсина в продуктах питания, в воде и биоматериалах.The proposed analyzes can be used to test for the presence of toxin in food, water and biomaterials.

Claims (1)

Клон гибридных культивируемых клеток животных Mus musculus L СТ-Е6/Е10 - продуцент моноклональных антител к холерному токсину. A clone of hybrid cultured animal cells Mus musculus L CT-E6 / E10 is a producer of monoclonal antibodies to cholera toxin.
RU2009112516/10A 2009-04-06 2009-04-06 Animal mus musculus hybrid cell clone l-producer of monoclonal cholera toxin antibodies RU2401300C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2009112516/10A RU2401300C1 (en) 2009-04-06 2009-04-06 Animal mus musculus hybrid cell clone l-producer of monoclonal cholera toxin antibodies

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2009112516/10A RU2401300C1 (en) 2009-04-06 2009-04-06 Animal mus musculus hybrid cell clone l-producer of monoclonal cholera toxin antibodies

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2401300C1 true RU2401300C1 (en) 2010-10-10

Family

ID=44024858

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2009112516/10A RU2401300C1 (en) 2009-04-06 2009-04-06 Animal mus musculus hybrid cell clone l-producer of monoclonal cholera toxin antibodies

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2401300C1 (en)

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2583306C1 (en) * 2015-03-11 2016-05-10 Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека ("РосНИПЧИ "Микроб") Hybrid strain of cultured cells of animals mus musculus -t 2e5 - producer of monoclonal antibodies isotype g 1 to b subunit of cholera toxin
RU2590587C1 (en) * 2015-03-11 2016-07-10 Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека ("РосНИПЧИ "Микроб") Cultivated hybrid animal cells mus musculus ht 3e5 - producer of monoclonal antibodies isotype g 2a to b- subunit of cholera toxin
RU2616289C2 (en) * 2016-02-12 2017-04-13 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова Российской академии наук (ИБХ РАН) Clone of cultivated hybrid animal cells mus musculus l.h-24-producer of monoclonal antibodies specific to staphylococcal enterotoxin h (seh)

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2583306C1 (en) * 2015-03-11 2016-05-10 Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека ("РосНИПЧИ "Микроб") Hybrid strain of cultured cells of animals mus musculus -t 2e5 - producer of monoclonal antibodies isotype g 1 to b subunit of cholera toxin
RU2590587C1 (en) * 2015-03-11 2016-07-10 Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Российский научно-исследовательский противочумный институт "Микроб" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека ("РосНИПЧИ "Микроб") Cultivated hybrid animal cells mus musculus ht 3e5 - producer of monoclonal antibodies isotype g 2a to b- subunit of cholera toxin
RU2616289C2 (en) * 2016-02-12 2017-04-13 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова Российской академии наук (ИБХ РАН) Clone of cultivated hybrid animal cells mus musculus l.h-24-producer of monoclonal antibodies specific to staphylococcal enterotoxin h (seh)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN108169492A (en) It is a kind of to be used to detect colloidal gold immuno-chromatography test paper strip of bovine rota and its preparation method and application
JPS61500315A (en) How to detect immune complexes in serum
CN102775473B (en) The B cell epitope peptide fragment of human neutrophil gelatinase-associated lipocalin and its application
BRPI0612666B1 (en) monoclonal antibody, solid support, composition, hybridoma cell line, immunoassays and kits for its detection and quantification
CN111004324A (en) Calprotectin monoclonal antibody and application thereof
WO2023036152A1 (en) Detection method and kit for sars-cov-2
CN112760294A (en) Canine type I adenovirus monoclonal antibody/polyclonal antibody, double-antibody sandwich ELISA kit and application
RU2401300C1 (en) Animal mus musculus hybrid cell clone l-producer of monoclonal cholera toxin antibodies
JP5984670B2 (en) Reagent for FDP measurement, reagent kit, and measurement method
RU2401299C1 (en) Animal mus musculus hybrid cell clone l-producer of monoclonal cholera toxin antibodies
RU2401301C1 (en) Animal mus musculus hybrid cell clone l-producer of monoclonal cholera toxin antibodies
CN102439447A (en) Method for detecting substance in biological sample
WO2012014997A1 (en) Anti-fdp monoclonal antibody, fdp measurement reagent and reagent kit using same, and fdp measurement method
CN109112113B (en) Anti-human IgG monoclonal antibody, hybridoma cell strain, kit and application thereof
US9632086B2 (en) Method and kit for determining-antibody sensitivity and clone cell strain
RU2401303C1 (en) Animal mus musculus hybrid cell g10b6 clone l-producer of monoclonal diphtheria toxin antibodies
RU2407795C1 (en) Animal mus musculus hybrid cell f3h10 clone l-producer of monoclonal diphtheria toxin antibodies
US8080242B2 (en) Anti-HPA
CA2093521C (en) Detection of diarrheogenic shellfish toxins
CN109266620B (en) Anti-human IgG monoclonal antibody, hybridoma cell strain and application thereof
JP6481192B2 (en) Rapid detection of quadrature septa
JP2009013175A6 (en) Anti-HPA
JP2016539350A (en) Chip, detection system and method for multiplex Streptococcus pneumoniae serology
RU2769578C1 (en) Method for producing a fluorescent immunoglobulin diagnostic agent for detecting pathogens of rickettsioses and coxielloses, fluorescent immunoglobulin diagnostic agent and application thereof
Boonserm et al. Kinetics of binding interaction between norfloxacin and monoclonal antibody using surface plasmon resonance

Legal Events

Date Code Title Description
PC41 Official registration of the transfer of exclusive right

Effective date: 20120123

MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20150407