RU2395268C2 - Способ получения лекарственного средства - Google Patents
Способ получения лекарственного средства Download PDFInfo
- Publication number
- RU2395268C2 RU2395268C2 RU2008100301/15A RU2008100301A RU2395268C2 RU 2395268 C2 RU2395268 C2 RU 2395268C2 RU 2008100301/15 A RU2008100301/15 A RU 2008100301/15A RU 2008100301 A RU2008100301 A RU 2008100301A RU 2395268 C2 RU2395268 C2 RU 2395268C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- nanoparticles
- bacteriorhodopsin
- molecules
- diaminohexane
- polylysine
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicinal Preparation (AREA)
- Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
Изобретение относится к способу получения лекарственного средства на основе биологически активного вещества, который включает присоединение биологически активного вещества к нейтральному носителю, при этом в качестве нейтрального носителя используют металлические или полупроводниковые наночастицы, а в качестве биологически активного вещества используют бактериородопсин в терапевтически эффективном количестве, молекулы которого пришивают к поверхности наночастиц с образованием лигандной оболочки. Полученные наночастицы обеспечивают эффективную транспортировку бактериородопсина в клетки и ткани.
Description
Изобретение относится к области медицины и может быть использовано в терапевтических целях для получения лекарственного средства на основе биологически активного вещества с повышенным лечебным эффектом, обеспечивающего стимуляцию процессов восстановления структуры и функции органов, поврежденных различными болезнетворными факторами.
Из уровня техники известен способ получения лекарственного средства на основе биологически активного вещества, включающий присоединение биологически активного вещества к нейтральному носителю (RU 2309732 C1, A61K 9/20, 2007). В данном решении биологически активные вещества используют в гомеопатических разведениях, что обуславливает их относительно невысокую терапевтическую эффективность.
Изобретение направлено на создание лекарственного средства для стимуляции регенераторных процессов в различных органах, в том числе и для стимуляции продукции стволовых клеток в костном мозге, в виде нанокомпозиционного материала на основе бактериородопсина.
Решение поставленной задачи обеспечивается тем, что в способе получения лекарственного средства на основе биологически активного вещества, включающем присоединение биологически активного вещества к нейтральному носителю, согласно изобретению, в качестве нейтрального носителя используют металлические или полупроводниковые наночастицы, а в качестве биологически активного вещества используют бактериородопсин в терапевтически эффективном количестве, молекулы которого пришивают к поверхности наночастиц с образованием лигандной оболочки.
Бактериородопсин - биологически активный светочувствительный белок, который встроен в клеточные мембраны (пурпурные мембраны) галобактерий Halobacterium salinarum (H.Salinarum), (см., например, М.В.Гусев, Л.А.Минеева, Микробиология, Издательство Московского Университета, 1992, глава 18), обладает высокой эффективностью воздействия на клетки ткани с проявлением защитных, стимулирующих и восстановительных свойств, и не вызывает отрицательных иммунных реакций организма. При заявленном использовании бактериородопсина в виде лигандной оболочки, образованной на поверхности наночастиц, которые характеризуются наличием сильных локальных полей, влияющих на скорость электронных переходов, т.е., процессов поглощения и спонтанного излучения света, изменяющих спектральные характеристики этих процессов, и приводящих к значительному усилению различных нелинейных оптических эффектов, происходит существенное повышение эффективности воздействия бактериородопсина на клетки ткани, особенно при его дополнительном освещении (облучении). Кроме того, наночастицы обеспечивают эффективную транспортировку бактериородопсина в клетки ткани.
Бактериородопсин получают в составе пурпурных мембран из лизата клеточной массы бактерий Halobacterium salinarum, при этом проводят очистку бактериородопсина от биологических макромолекул и структур, образующихся при лизисе клеток Halobacterium salinarum. Первоначально лизированную суспензию центрифугируют, например, на установке ОПн-8 в течение 10 мин при 3000 об/мин при 22°С и отделяют образовавшийся осадок, а полученный супернатант повторно центрифугируют, например, на установке Jouan KR 25i в течение 15 мин при 35000g при 4°С. Затем супернатант отделяют от осадка пурпурных мембран, осадок ресуспендируют в 30 мл бидистиллированной воды. Для получения бактериородопсина высокой чистоты осаждение и ресуспендирование (40 мин, 50000g) производят 8÷10 раз.
Заявленный способ осуществляют следующим образом.
Пример 1.
Полупроводниковые люминесцентные наночастицы CdSe/ZnS со структурой типа ядро/оболочка диаметром 3,2 нм, полученные известным методом в гексане, осаждают и ресуспендируют в водном растворе 1,6-диаминогексана. Концентрацию 1,6-диаминогексана выбирают таким образом, чтобы на 1 мг наночастиц приходилось 500 мкг диамина. Молекулы 1,6-диаминогексана формируют на поверхности наночастиц лигандную оболочку за счет взаимодействия одной аминогруппы и атома цинка, а другая аминогруппа остается свободной, что обуславливает агрегативную устойчивость наночастиц CdSe/ZnS. Свободные аминогруппы на поверхности наночастицы являются функциональными для пришивки к ним различных белковых молекул, в частности фотохромного белка бактериородопсина. Пришивка бактериородопсина к поверхности наночастиц CdSe/ZnS, стабилизированных молекулами 1,6-диаминогексана, осуществляется за счет процессов самоорганизации, инициируемых взаимодействием положительно заряженных аминогрупп 1,6-диаминогексана и отрицательно заряженных карбоксильных групп остатков аспарагиновой и глютаминовой кислоты, входящих в аминокислотную последовательность полипептидной структуры бактериородопсина. Формирование лекарственного средства в виде нанокомпозиционного материала осуществляют смешиванием суспензии бактериородопсина и наночастиц CdSe/ZnS, стабилизированных молекулами 1,6-диаминогексана, в молярном соотношении 6:1 и экспозицией полученного раствора в течение 2 часов.
Пример 2.
Полупроводниковые люминесцентные наночастицы CdS/ZnO со структурой типа ядро/оболочка диаметром 5,1 нм, полученные известным методом в гексане, осаждают и ресуспендируют в водном растворе 1,6-диаминогексана. Концентрацию 1,6-диаминогексана выбирают таким образом, чтобы на 1 мг наночастиц приходилось 800 мкг диамина. Молекулы 1,6-диаминогексана формируют на поверхности наночастиц лигандную оболочку за счет взаимодействия одной аминогруппы и атома цинка, а другая аминогруппа остается свободной, что обуславливает агрегативную устойчивость наночастиц CdS/ZnO. Свободные аминогруппы на поверхности наночастицы являются функциональными для пришивки к ним различных белковых молекул, в частности фотохромного белка бактериородопсина. Пришивка бактериородопсина к поверхности наночастиц CdS/ZnO, стабилизированных молекулами 1,6-диаминогексана, осуществляется за счет процессов самоорганизации, инициируемых взаимодействием положительно заряженных аминогрупп 1,6-диаминогексана и отрицательно заряженных карбоксильных групп остатков аспарагиновой и глютаминовой кислоты, входящих в аминокислотную последовательность полипептидной структуры бактериородопсина. Формирование нанокомпозиционного материала производят смешиванием суспензии бактериородопсина и наночастиц CdS/ZnO, стабилизированных молекулами 1,6-диаминогексана, в молярном соотношении 6:1 и экспозицией полученного раствора в течение 2 часов.
Пример 3.
Металлические наночастицы серебра (Ag) получают известным методом в дистиллированной воде с использованием в качестве стабилизатора полимер-полилизина, концентрацию которого выбрают из условия, чтобы на 1 мг наночастиц приходилось 800 мкг полилизина. Молекулы полилизина формируют на поверхности наночастиц лигандную оболочку за счет взаимодействия аминогрупп с атомами серебра. При этом половина аминогрупп полимерной молекулы остаются свободными, что обуславливает агрегативную устойчивость наночастиц Ag. Свободные аминогруппы на поверхности наночастицы являются функциональными для пришивки к ним различных белковых молекул, в частности фотохромного белка бактериородопсина. Пришивка бактериородопсина к поверхности наночастиц Ag, стабилизированных молекулами полилизина, осуществляется за счет процессов самоорганизации, инициируемых взаимодействием положительно заряженных аминогрупп полилизина и отрицательно заряженных карбоксильных групп остатков аспарагиновой и глютаминовой кислоты, входящих в аминокислотную последовательность полипептидной структуры бактериородопсина. Формирование нанокомпозиционного материала осуществляют смешиванием суспензии бактериородопсина и наночастиц Ag, стабилизированных молекулами полилизина, в молярном соотношении 6:1 и экспозицией полученного раствора в течение 2 часов.
Пример 4.
Металлические наночастицы золота (Аu) получают известным методом в дистиллированной воде (в качестве стабилизатора использован полимер-полилизин). Концентрация полилизина была выбрана таким образом, чтобы на 1 мг наночастиц приходилось 200 мкг полилизина. Молекулы полилизина формируют на поверхности наночастиц лигандную оболочку за счет взаимодействия аминогрупп с атомами золота. При этом половина аминогрупп полимерной молекулы остаются свободными, что обуславливает агрегативную устойчивость наночастиц Аu. Свободные аминогруппы на поверхности наночастицы являются функциональными для пришивки к ним различных белковых молекул, в частности фотохромного белка бактериородопсина. Пришивка бактериородопсина к поверхности наночастиц Аu, стабилизированных молекулами полилизина, осуществляется за счет процессов самоорганизации, инициируемых взаимодействием положительно заряженных аминогрупп полилизина и отрицательно заряженных карбоксильных групп остатков аспарагиновой и глютаминовой кислоты, входящих в аминокислотную последовательность полипептидной структуры бактериородопсина. Формирование нанокомпозиционного материала осуществляется смешиванием суспензии бактериородопсина и наночастиц Аu, стабилизированных молекулами полилизина, в молярном соотношении 6:1 и экспозицией полученного раствора в течение 2 часов.
Пример 5.
Металлические наночастицы платины (Pt) получают известным методом в дистиллированной воде (в качестве стабилизатора использован полимер-полилизин). Концентрация полилизина была выбрана таким образом, чтобы на 1 мг наночастиц приходилось 750 мкг полилизина. Молекулы полилизина формируют на поверхности наночастиц лигандную оболочку за счет взаимодействия аминогрупп с атомами платины. При этом половина аминогрупп полимерной молекулы остаются свободными, что обуславливает агрегативную устойчивость наночастиц Pt. Свободные аминогруппы на поверхности наночастицы являются функциональными для пришивки к ним различных белковых молекул, в частности фотохромного белка бактериородопсина. Пришивка бактериородопсина к поверхности наночастиц Pt, стабилизированных молекулами полилизина, осуществляется за счет процессов самоорганизации, инициируемых взаимодействием положительно заряженных аминогрупп полилизина и отрицательно заряженных карбоксильных групп остатков аспарагиновой и глютаминовой кислоты, входящих в аминокислотную последовательность полипептидной структуры бактериородопсина. Формирование нанокомпозиционного материала осуществляется смешиванием суспензии бактериородопсина и наночастиц Pt, стабилизированных молекулами полилизина, в молярном соотношении 6:1 и экспозицией полученного раствора в течение 2 часов.
Пример 6.
Металлические наночастицы палладия (Pd) получают известным методом в дистиллированной воде (в качестве стабилизатора использован полимер-полилизин). Концентрация полилизина была выбрана таким образом, чтобы на 1 мг наночастиц приходилось 1 мг полилизина. Молекулы полилизина формируют на поверхности наночастиц лигандную оболочку за счет взаимодействия аминогрупп с атомами палладия. При этом половина аминогрупп полимерной молекулы остаются свободными, что обуславливает агрегативную устойчивость наночастиц Pd. Свободные аминогруппы на поверхности наночастицы являются функциональными для пришивки к ним различных белковых молекул, в частности фотохромного белка бактериородопсина. Пришивка бактериородопсина к поверхности наночастиц Pd, стабилизированных молекулами полилизина, осуществляется за счет процессов самоорганизации, инициируемых взаимодействием положительно заряженных аминогрупп полилизина и отрицательно заряженных карбоксильных групп остатков аспарагиновой и глютаминовой кислоты, входящих в аминокислотную последовательность полипептидной структуры бактериородопсина. Формирование нанокомпозиционного материала осуществляется смешиванием суспензии бактериородопсина и наночастиц Pd, стабилизированных молекулами полилизина, в молярном соотношении 6:1 и экспозицией полученного раствора в течение 2 часов.
Пример 7.
Полупроводниковые люминесцентные наночастицы CdS/CdSe со структурой типа ядро/оболочка диаметром 3,6 нм, полученные известным методом в гексане, осадили и ресуспендировали в водном растворе 1,6-диаминогексана. Концентрация 1,6-диаминогексана была выбрана таким образом, чтобы на 1 мг наночастиц приходилось 800 мкг диамина. Молекулы 1,6-диаминогексана формируют на поверхности наночастиц лигандную оболочку за счет взаимодействия одной аминогруппы и атома кадмия, а другая аминогруппа остается свободной, что обуславливает агрегативную устойчивость наночастиц CdS/CdSe. Свободные аминогруппы на поверхности наночастицы являются функциональными для пришивки к ним различных белковых молекул, в частности фотохромного белка бактериородопсина. Пришивка бактериородопсина к поверхности наночастиц CdS/CdSe, стабилизированных молекулами 1,6-диаминогексана, осуществляется за счет процессов самоорганизации, инициируемых взаимодействием положительно заряженных аминогрупп 1,6-диаминогексана и отрицательно заряженных карбоксильных групп остатков аспарагиновой и глютаминовой кислоты, входящих в аминокислотную последовательность полипептидной структуры бактериородопсина. Формирование нанокомпозиционного материала осуществляется смешиванием суспензии бактериородопсина и наночастиц CdS/CdSe, стабилизированных молекулами 1,6-диаминогексана, в молярном соотношении 6:1 и экспозицией полученного раствора в течение 2 часов.
Пример 8.
Полупроводниковые люминесцентные наночастицы CdS/CdTe со структурой типа ядро/оболочка диаметром 4,5 нм, полученные известным методом в гексане, осадили и ресуспендировали в водном растворе 1,6-диаминогексана. Концентрация 1,6-диаминогексана была выбрана таким образом, чтобы на 1 мг наночастиц приходилось 800 мкг диамина. Молекулы 1,6-диаминогексана формируют на поверхности наночастиц лигандную оболочку за счет взаимодействия одной аминогруппы и атома кадмия, а другая аминогруппа остается свободной, что обуславливает агрегативную устойчивость наночастиц CdS/CdTe. Свободные аминогруппы на поверхности наночастицы являются функциональными для пришивки к ним различных белковых молекул, в частности фотохромного белка бактериородопсина. Пришивка бактериородопсина к поверхности наночастиц CdS/CdTe, стабилизированных молекулами 1,6-диаминогексана, осуществляется за счет процессов самоорганизации, инициируемых взаимодействием положительно заряженных аминогрупп 1,6-диаминогексана и отрицательно заряженных карбоксильных групп остатков аспарагиновой и глютаминовой кислоты, входящих в аминокислотную последовательность полипептидной структуры бактериородопсина. Формирование нанокомпозиционного материала осуществляется смешиванием суспензии бактериородопсина и наночастиц CdS/CdTe, стабилизированных молекулами 1,6-диаминогексана, в молярном соотношении 6:1 и экспозицией полученного раствора в течение 2 часов.
Пример 9.
Полупроводниковые люминесцентные наночастицы CdSe/ZnS со структурой типа ядро/оболочка диаметром 6,2 нм, полученные известным методом в гексане, осадили и ресуспендировали в водном растворе 1,6-диаминогексана. Концентрация 1,6-диаминогексана была выбрана таким образом, чтобы на 1 мг наночастиц приходилось 800 мкг диамина. Молекулы 1,6-диаминогексана формируют на поверхности наночастиц лигандную оболочку за счет взаимодействия одной аминогруппы и атома цинка, а другая аминогруппа остается свободной, что обуславливает агрегативную устойчивость наночастиц CdSe/ZnS. Свободные аминогруппы на поверхности наночастицы являются функциональными для пришивки к ним различных белковых молекул, в частности фотохромного белка бактериородопсина. Пришивка бактериородопсина к поверхности наночастиц CdSe/ZnS, стабилизированных молекулами 1,6-диаминогексана, осуществляется за счет процессов самоорганизации, инициируемых взаимодействием положительно заряженных аминогрупп 1,6-диаминогексана и отрицательно заряженных карбоксильных групп остатков аспарагиновой и глютаминовой кислоты, входящих в аминокислотную последовательность полипептидной структуры бактериородопсина. Формирование нанокомпозиционного материала осуществляется смешиванием суспензии бактериородопсина и наночастиц CdSe/ZnS, стабилизированных молекулами 1,6-диаминогексана, в молярном соотношении 6:1 и экспозицией полученного раствора в течение 2 часов.
Пример 10.
Полупроводниковые люминесцентные наночастицы CdS диаметром 2,5 нм, полученные известным методом в гексане, осадили и ресуспендировали в водном растворе 1,6-диаминогексана. Концентрация 1,6-диаминогексана была выбрана таким образом, чтобы на 1 мг наночастиц приходилось 800 мкг диамина. Молекулы 1,6-диаминогексана формируют на поверхности наночастиц лигандную оболочку за счет взаимодействия одной аминогруппы и атома кадмия, а другая аминогруппа остается свободной, что обуславливает агрегативную устойчивость наночастиц CdS. Свободные аминогруппы на поверхности наночастицы являются функциональными для пришивки к ним различных белковых молекул, в частности фотохромного белка бактериородопсина. Пришивка бактериородопсина к поверхности наночастиц CdS, стабилизированных молекулами 1,6-диаминогексана, осуществляется за счет процессов самоорганизации, инициируемых взаимодействием положительно заряженных аминогрупп 1,6-диаминогексана и отрицательно заряженных карбоксильных групп остатков аспарагиновой и глютаминовой кислоты, входящих в аминокислотную последовательность полипептидной структуры бактериородопсина. Формирование нанокомпозиционного материала осуществляется смешиванием суспензии бактериородопсина и наночастиц CdS, стабилизированных молекулами 1,6-диаминогексана, в молярном соотношении 6:1 и экспозицией полученного раствора в течение 2 часов.
Claims (1)
- Способ получения лекарственного средства на основе биологически активного вещества, включающий присоединение биологически активного вещества к нейтральному носителю, отличающийся тем, что в качестве нейтрального носителя используют металлические или полупроводниковые наночастицы, а в качестве биологически активного вещества используют бактериородопсин в терапевтически эффективном количестве, молекулы которого пришивают к поверхности наночастиц с образованием лигандной оболочки.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2008100301/15A RU2395268C2 (ru) | 2008-01-15 | 2008-01-15 | Способ получения лекарственного средства |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2008100301/15A RU2395268C2 (ru) | 2008-01-15 | 2008-01-15 | Способ получения лекарственного средства |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2008100301A RU2008100301A (ru) | 2009-07-20 |
RU2395268C2 true RU2395268C2 (ru) | 2010-07-27 |
Family
ID=41046560
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2008100301/15A RU2395268C2 (ru) | 2008-01-15 | 2008-01-15 | Способ получения лекарственного средства |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2395268C2 (ru) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2526967C2 (ru) * | 2012-11-29 | 2014-08-27 | Общество с ограниченной ответственностью "Суперматериал" | Способ получения наночастиц серебра с модифицированной лигандной оболочкой в высокоывязкой матрице |
-
2008
- 2008-01-15 RU RU2008100301/15A patent/RU2395268C2/ru active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
ГУСЕВ М.В., МИНЕЕВА Л.А. Микробиология. Кафедра клеточной физиологии и иммунологии биологического факультета МГУ им. М.В.Ломоносова, 1992-2001, глава 18. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2526967C2 (ru) * | 2012-11-29 | 2014-08-27 | Общество с ограниченной ответственностью "Суперматериал" | Способ получения наночастиц серебра с модифицированной лигандной оболочкой в высокоывязкой матрице |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2008100301A (ru) | 2009-07-20 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Chu et al. | Near-infrared carbon dot-based platform for bioimaging and photothermal/photodynamic/quaternary ammonium triple synergistic sterilization triggered by single NIR light source | |
Sironmani et al. | Silver nanoparticles–universal multifunctional nanoparticles for bio sensing, imaging for diagnostics and targeted drug delivery for therapeutic applications | |
JP5008607B2 (ja) | 不規則な表面構造の早期導入により高収率のバイオイメージングナノ粒子を製造する方法 | |
Li et al. | Carbon quantum dots as ROS-generator and-scavenger: A comprehensive review | |
Sviridov et al. | Cytotoxicity control of silicon nanoparticles by biopolymer coating and ultrasound irradiation for cancer theranostic applications | |
Xu et al. | Bio-inspired metal ions regulate the structure evolution of self-assembled peptide-based nanoparticles | |
Li et al. | Biomimetic mineralization based on self-assembling peptides | |
US20110033954A1 (en) | Biofunctionalized quantum dots for biological imaging | |
Qin et al. | Green synthesis of biocompatible trypsin-conjugated Ag nanocomposite with antibacterial activity | |
Wang et al. | Eggshell derived Se-doped HA nanorods for enhanced antitumor effect and curcumin delivery | |
Manne et al. | Pterocarpus marsupium Roxb. heartwood extract synthesized chitosan nanoparticles and its biomedical applications | |
Miao et al. | Recent advances in the biomedical applications of black phosphorus quantum dots | |
Muthulakshmi et al. | Green synthesis of ionic liquid assisted ytterbium oxide nanoparticles by Couroupita guianensis abul leaves extract for biological applications | |
Tao et al. | Optical property modulation of Fmoc group by pH-dependent self-assembly | |
CA2996378A1 (fr) | Particule comprenant au moins une nanoparticule d'oxyde de fer ferrimagnetique ou ferromagnetique associee a au moins un compose pour une utilisation medicale ou cosmetique | |
Isık et al. | Green synthesis of zinc oxide nanostructures | |
Rabiee et al. | Natural resources for sustainable synthesis of nanomaterials with anticancer applications: A move toward green nanomedicine | |
Duong et al. | Singlet oxygen production by fluorescence resonance energy transfer (FRET) from green and orange CdSe/ZnS QDs to protoporphyrin IX (PpIX) | |
Ehsani et al. | Green fabrication of ZnO/magnetite-based nanocomposite-using Salvia officinalis extract with antibacterial properties enhanced infected full-thickness wound | |
Thakkar et al. | Antisolvent precipitative immobilization of micro and nanostructured griseofulvin on laboratory cultured diatom frustules for enhanced aqueous dissolution | |
Zhang et al. | Water induced protonation of amine-terminated micelles for direct syntheses of ZnO quantum dots and their cytotoxicity towards cancer | |
RU2395268C2 (ru) | Способ получения лекарственного средства | |
Aminzare et al. | Biomolecules incorporated in halide perovskite nanocrystals: synthesis, optical properties, and applications | |
Sulaiman et al. | Synthesis, Characterization, and Biomedical Applications of Zinc Oxide Nanoparticles | |
CN111166882B (zh) | 酞菁-rgd多肽-氧化石墨烯复合纳米材料及其制备方法与应用 |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
FZ9A | Application not withdrawn (correction of the notice of withdrawal) |
Effective date: 20100201 |