RU2380115C1 - Method of blood sampling for making antigens of haemosporidia - Google Patents
Method of blood sampling for making antigens of haemosporidia Download PDFInfo
- Publication number
- RU2380115C1 RU2380115C1 RU2008126821/13A RU2008126821A RU2380115C1 RU 2380115 C1 RU2380115 C1 RU 2380115C1 RU 2008126821/13 A RU2008126821/13 A RU 2008126821/13A RU 2008126821 A RU2008126821 A RU 2008126821A RU 2380115 C1 RU2380115 C1 RU 2380115C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- blood
- animal
- peak
- days
- antigens
- Prior art date
Links
Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
Description
Предлагаемое изобретение относится к области ветеринарной протозоологии, в частности к получению крови для изготовления антигенов из гемоспоридий.The present invention relates to the field of veterinary protozoology, in particular the production of blood for the manufacture of antigens from hemosporidia.
Бабезиоз (пироплазмоз) собак - природно-очаговое протозойное трансмиссивное неконтагиозное кровепаразитарное заболевание, вызываемое простейшим паразитом Babesia canis. Болезнь протекает сверхостро (молниеносно), остро и хронически. Поражение организма собаки Babesia canis вызывает лихорадку, резкое повышение температуры тела до 41-42°С, удерживающееся в течение 2-3 суток, с последующим быстрым падением ее до и ниже нормы. В некоторых очень редких случаях температурная кривая менее правильная; температура подвергается большим колебаниям, сохраняется на высоком уровне, после чего идет медленное и постепенное ее снижение. У совсем молодых собак, у которых смерть наступает очень быстро, повышение температуры в начале заболевания может отсутствовать.Dog babesiosis (pyroplasmosis) is a natural focal protozoal transmissible non-contagious blood-parasitic disease caused by the simplest parasite Babesia canis. The disease proceeds super-construction (lightning fast), acutely and chronically. The defeat of the body of the dog Babesia canis causes fever, a sharp increase in body temperature to 41-42 ° C, held for 2-3 days, followed by a rapid drop to and below normal. In some very rare cases, the temperature curve is less regular; the temperature undergoes large fluctuations, remains at a high level, after which there is a slow and gradual decrease. In very young dogs, in which death occurs very quickly, there may be no increase in temperature at the onset of the disease.
У собак отмечаются отсутствие аппетита, депрессия, угнетенное состояние, слабый нитевидный пульс (до 120-160 ударов в минуту), в дальнейшем становится аритмичным. Сердечный толчок усилен. Дыхание учащенное (до 36-48 в минуту) и затрудненное, у молодых собак часто со стоном. При пальпации левой брюшной стенки (за реберной дугой) обнаруживают увеличенную селезенку. Слизистые оболочки ротовой полости и конъюнктива анемичны, желтушны. Интенсивное разрушение эритроцитов сопровождается нефритом. Походка становится затрудненной, появляется гемоглобинурия. Болезнь продолжается от 2 до 5 суток, реже 10-11 суток, часто со смертельным исходом.In dogs, there is a lack of appetite, depression, depression, a weak filiform pulse (up to 120-160 beats per minute), later it becomes arrhythmic. Heart beat boosted. Breathing is rapid (up to 36-48 per minute) and difficult, in young dogs often with a moan. On palpation of the left abdominal wall (behind the costal arch), an enlarged spleen is detected. The mucous membranes of the oral cavity and conjunctiva are anemic, icteric. Intensive destruction of red blood cells is accompanied by jade. The gait becomes difficult, hemoglobinuria appears. The disease lasts from 2 to 5 days, less often 10-11 days, often fatal.
По данным многих авторов, на долю данного заболевания приходится от 14 до 25% от общего количества собак, которым были оказаны ветеринарные услуги. Согласно статистическим данным в течение последних 10 лет заболеваемость собак бабезиозом возросла в несколько раз [3].According to many authors, this disease accounts for 14 to 25% of the total number of dogs that were provided with veterinary services. According to statistics over the past 10 years, the incidence of dogs with babesiosis has increased several times [3].
Для диагностики бабезиоза собак широко применяют серологические реакции: реакцию длительного связывания комплемента (РДСК), реакцию непрямой гемагглютинации (РИГА), иммуноферментный анализ (ИФА) и др., постановка этих реакций предполагает использование антигенов Babesia canis, получаемых из крови зараженных животных.Serological reactions are widely used for the diagnosis of dogs babesiosis: the long-term complement binding reaction (RDSK), the indirect hemagglutination reaction (RIGA), enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), etc. The formulation of these reactions involves the use of Babesia canis antigens obtained from the blood of infected animals.
Существует способ, согласно которому больное животное спленэктомируют для обострения патологического процесса. На пике паразитемии животное тотально обескровливают. Полученную кровь консервируют и используют для изготовления антигенов. В качестве консерванта крови используют глюгицир [1].There is a method according to which a sick animal is splenectomized to exacerbate the pathological process. At the peak of parasitemia, the animal is totally bled. The resulting blood is canned and used for the manufacture of antigens. As a blood preservative, glugicir is used [1].
Известен также способ, согласно которому для получения крови для изготовления антигена животное спленэктомируют, затем заражают и на пике паразитемии, при поражении до 50% эритроцитов, тотально обескровливают. Полученную кровь консервируют цитратом натрия и используют для получения антигена. Этот способ является прототипом предложенного [2].There is also a method according to which an animal is splenectomized to obtain blood for the production of antigen, then it is infected and at the peak of parasitemia, with damage to up to 50% of red blood cells, they completely bleed. The resulting blood is preserved with sodium citrate and used to produce antigen. This method is a prototype of the proposed [2].
В задачи исследований входило - получить больший объем полноценной крови, пригодной для получения высокоактивных бабезийных антигенов, от одного животного.The research objectives were to obtain a larger volume of full blood suitable for receiving highly active babesian antigens from one animal.
Предложенный способ заключается в следующем. У собаки массой 15-20 кг объем крови составляет примерно 2-2,5 л. Животное спленэктомируют. Через несколько дней после операции у животного берут 150 мл венозной крови, которую консервируют глюгициром в соотношении 1:4. Потерю крови возмещают введением изотонических растворов.The proposed method is as follows. In a dog weighing 15-20 kg, the blood volume is approximately 2-2.5 liters. The animal is splenectomized. A few days after the operation, 150 ml of venous blood is taken from the animal, which is preserved with a glugicir in a ratio of 1: 4. Loss of blood is compensated by the introduction of isotonic solutions.
Через 3-4 дня у животного берут 300 мл крови, вместо которой вводят 150 мл полученной ранее крови и 150 мл изотонического раствора. Далее через 3-4 дня берут 500 мл крови, которые заменяют 300 мл аутокрови и 200 мл изотонического раствора. Затем через 3-4 дня берут 700 мл крови, которые заменяют 500 мл аутокрови и 200 мл изотонического раствора. И через 3-4 дня берут 1000 мл крови, которые заменяют 700 мл аутокрови и 300 мл изотонического раствора. Полученную кровь делят на две равные части.After 3-4 days, 300 ml of blood is taken from the animal, instead of which 150 ml of previously obtained blood and 150 ml of isotonic solution are administered. Then, after 3-4 days, 500 ml of blood is taken, which replace 300 ml of autologous blood and 200 ml of isotonic solution. Then after 3-4 days, 700 ml of blood is taken, which replace 500 ml of autologous blood and 200 ml of isotonic solution. And after 3-4 days they take 1000 ml of blood, which replace 700 ml of autologous blood and 300 ml of isotonic solution. The resulting blood is divided into two equal parts.
Затем животное заражают возбудителем Babesia canis, подсчет паразитемии проводят путем микроскопии мазков крови, окрашенных по Романовскому-Гимза. При паразитемии более 50% у животного берут 800-900 мл крови, которую восполняют 500 мл заготовленной раннее крови (или половину от заготовленной крови) и 300-400 мл изотонического раствора. Отмечается снижение паразитемии. При повторном ее нарастании процедуру повторяют аналогично первому взятию крови. На третьем пике паразитемии животное обескровливают. Полученную на всех трех этапах кровь консервируют глюгициром и используют для получения антигена.Then the animal is infected with the pathogen Babesia canis, the count of parasitemia is carried out by microscopy of blood smears stained according to Romanovsky-Giemsa. When parasitemia is more than 50%, 800-900 ml of blood is taken from the animal, which is filled up with 500 ml of prepared early blood (or half of the prepared blood) and 300-400 ml of isotonic solution. A decrease in parasitemia is noted. With its repeated growth, the procedure is repeated similarly to the first blood sampling. At the third peak of parasitemia, the animal is bled. Obtained at all three stages, the blood is canned with glucicir and used to produce antigen.
Длительность взятия и объем крови может изменяться в зависимости от размеров животного. Конкретные примеры отражены в таблице.Duration of collection and blood volume may vary depending on the size of the animal. Specific examples are shown in the table.
Технико-экономические обоснования. Предложенный способ позволяет получить больший объем крови от одного животного, несмотря на более длительные сроки выполнения по сравнению с прежним. Вливание неинвазированной крови и изотонических растворов оказывает положительное действие на организм больной собаки.Feasibility studies. The proposed method allows to obtain a larger volume of blood from one animal, despite longer lead times compared to the previous one. Infusion of non-invasive blood and isotonic solutions has a positive effect on the body of a sick dog.
Предложенный способ может быть использован при получении крови для приготовления антигенов и из других видов бабезий, поражающих других животных.The proposed method can be used to obtain blood for the preparation of antigens and from other types of babesias affecting other animals.
Предложенный способ апробирован с положительным результатом в ветеринарных клиниках «Animal Park» и «Зоосфера» в 2007-2008 гг.The proposed method was tested with a positive result in the veterinary clinics "Animal Park" and "Zoosphere" in 2007-2008.
Данный способ найдет применение при изготовлении бабезийных антигенов в научно-исследовательских институтах и ветеринарных производственных лабораториях и позволит усилить меры борьбы с кровепаразитарными заболеваниями.This method will find application in the manufacture of babesian antigens in research institutes and veterinary production laboratories and will strengthen measures to combat blood parasitic diseases.
Источники информацииInformation sources
1. Автореферат дисс.… кандидата ветеринарных наук: Семенко О.В. Удосконалення Meroia зажитевоi дiагностики бабезioзу собак, Киiв, 2007 - 21 с.1. Abstract of diss. ... candidate of veterinary sciences: Semenko OV The Meroia lively diagnosis of dog babies diagnosis, Kyiv, 2007 - 21 p.
2. Методические рекомендации по изучению и разработке мер борьбы с протозойными болезнями животных, Москва, ВАСХНИЛ, 1984 - с.7. (Прототип)2. Guidelines for the study and development of measures to combat animal protozoal diseases, Moscow, VASKHNIL, 1984 - p.7. (Prototype)
3. Автореферат дисс.… кандидата ветеринарных наук: Кошелева М.И. Бабезиоз собак в условиях Московской области, Москва, 2006 - 3 с.3. Abstract of diss. ... candidate of veterinary science: Kosheleva MI Babesiosis of dogs in the conditions of the Moscow region, Moscow, 2006 - 3 p.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2008126821/13A RU2380115C1 (en) | 2008-07-03 | 2008-07-03 | Method of blood sampling for making antigens of haemosporidia |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2008126821/13A RU2380115C1 (en) | 2008-07-03 | 2008-07-03 | Method of blood sampling for making antigens of haemosporidia |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2380115C1 true RU2380115C1 (en) | 2010-01-27 |
Family
ID=42121997
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2008126821/13A RU2380115C1 (en) | 2008-07-03 | 2008-07-03 | Method of blood sampling for making antigens of haemosporidia |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2380115C1 (en) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2464247C1 (en) * | 2011-05-27 | 2012-10-20 | Юлия Алексеевна Щепочкина | Concrete mixture |
RU2599544C2 (en) * | 2010-12-29 | 2016-10-10 | Интервет Интернэшнл Б.В. | Canine babesiosis vaccine antigen |
-
2008
- 2008-07-03 RU RU2008126821/13A patent/RU2380115C1/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Методические рекомендации по изучению и разработке мер борьбы с протозойными болезнями животных. - М.: ВАСХНИЛ, 1984, с.7. * |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2599544C2 (en) * | 2010-12-29 | 2016-10-10 | Интервет Интернэшнл Б.В. | Canine babesiosis vaccine antigen |
RU2464247C1 (en) * | 2011-05-27 | 2012-10-20 | Юлия Алексеевна Щепочкина | Concrete mixture |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
KR100382224B1 (en) | Method of producing active immunity with vaccine conjugate | |
Logambal et al. | Immunostimulatory effect of azadirachtin in Oreochromis mossambicus (Peters) | |
Ross | A laboratory technique for studying the insect transmission of animal viruses, employing a bat-wing membrane, demonstrated with two African viruses | |
CN103710265A (en) | Application of chloramine B solution in chicken coccidiosis oocyst culture and preservation | |
Barbour et al. | A review of approaches targeting the replacement of coccidiostat application in poultry production | |
RU2380115C1 (en) | Method of blood sampling for making antigens of haemosporidia | |
Yang et al. | The Taishan Robinia pseudoacacia polysaccharides enhance immune effects of rabbit haemorrhagic disease virus inactivated vaccines | |
CN1686185A (en) | Traditional Chinese medicina preparation for treating oral cavity, throat disease and its preparation method | |
Mahasri | Development of spore protein of Myxobolus koi as an immunostimulant for prevent of Myxobolusis on Gold Fish (Cyprinus carpio Linn) by oral immunisation | |
McHardy | Recent advances in the chemotherapy of theileriosis | |
CN102048686B (en) | Application of yeast dextran injection for improving immune efficiency of foot-and-mouth disease vaccine of dairy cow | |
CN104857511B (en) | Thinner for vaccine containing panaxoside | |
Morzaria et al. | Babesia bigemina in Kenya: Experimental transmission by Boophilus decoloratus and the production of tick-dervied stabilates | |
Akhtar et al. | Immunomodulatory and protective effects of sugar cane juice in chickens against Eimeria infection | |
IQBAL et al. | Immune response of rabbits to hemorrhagic septicemia vaccine formulations adjuvanted with montanide ISA-206, paraffin oil and alum | |
JP2011026241A (en) | Vaccine and method for producing the same | |
Castro et al. | Parasitic resistance of gastrointestinal nematodes in goats from the semiarid region of Pernambuco, Northeastern Brazil | |
RU2410421C1 (en) | Strain l-2-15 of eimeria acervulina (coccidiosis agent) for producing vaccines, diagnostic preparations and conducting scientific research | |
Singh et al. | Anti-malarial treatment: herbal medicine a ray of hope | |
RU2410420C1 (en) | Strain l-4-18 of eimeria necatrix (coccidiosis agent) for producing vaccines, diagnostic preparations and conducting scientific research | |
RU2312890C1 (en) | STRAIN Eimeria tenella L-1-23 (COCCIDIOSIS PATHOGEN) FOR PRODUCING VACCINE, DIAGNOSTICUM AND CARRYING OUT SCIENTIFIC INVESTIGATION | |
SU1509403A1 (en) | Method of producing saliva of ticks | |
RU2450812C1 (en) | Drug for respiratory infectious diseases glucaferon® | |
El-Ghany et al. | A trial for treatment of ichthyophonosis in cultured Oreochromis niloticus using fucus and neem plants. | |
RU2583886C2 (en) | Multipotent vaccine for prevention and treatment of primarily invasive and infectious diseases, method of use |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20110704 |