RU2366715C1 - Method of immunoelectrophoretic differentiation of melioidosis and fap agents - Google Patents
Method of immunoelectrophoretic differentiation of melioidosis and fap agents Download PDFInfo
- Publication number
- RU2366715C1 RU2366715C1 RU2008111417/13A RU2008111417A RU2366715C1 RU 2366715 C1 RU2366715 C1 RU 2366715C1 RU 2008111417/13 A RU2008111417/13 A RU 2008111417/13A RU 2008111417 A RU2008111417 A RU 2008111417A RU 2366715 C1 RU2366715 C1 RU 2366715C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- eca
- pseudomallei
- melioidosis
- antigens
- immune serum
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к медицине и касается дифференциальной диагностики возбудителей особо опасных инфекций мелиоидоза (Burkholderia pseudomallei) и сапа (Burkholderia mallei).The invention relates to medicine and relates to the differential diagnosis of pathogens of especially dangerous infections of melioidosis (Burkholderia pseudomallei) and glanders (Burkholderia mallei).
Среди более 20 видов рода Burkholderia микроорганизмы В.pseudomallei и В.mallei имеют важное медицинское значение, так как являются возбудителями тяжелых заболеваний человека и животных - мелиоидоза и сапа. Эти бактерии относятся ко второй группе бактериологической опасности. Несмотря на различия в инфекционном процессе, вызванном этими микробами, по многим фенотипическим признакам, в том числе по антигенному составу, - это очень близкие микроорганизмы. Неоднократно высказывалось предложение считать возбудителя сапа биоваром возбудителя мелиоидоза. Поэтому эти бактерии диагностируются одинаково до установления факта, что исследуемый микроорганизм относится к группе pseudomallei (в неё входят возбудители сапа и мелиоидоза). Затем, для определения вида, применяют тесты, основанные на следующих фенотипических различиях B.pseudomallei и B.mallei: возбудитель сапа не способен расти на твердых питательных средах при температуре 42°С и при концентрации в питательной среде антибиотика гентамицина более 4 мкг/мл, B.pseudomallei при этих условиях растёт; возбудитель сапа неподвижен, так как не имеет жгутиков, возбудитель мелиоидоза подвижен, так как имеет на поверхности клетки жгутик (лофотрих). (Илюхин В.И., Поповцева Л.Д., Пивень Н.Н. Идентификация Pseudomonas pseudomallei // Лаб. дело. - 1983. - №7. - С.61-62).Among more than 20 species of the genus Burkholderia, the microorganisms B. pseudomallei and B. mallei have important medical significance, as they are the causative agents of serious diseases of humans and animals - melioidosis and glanders. These bacteria belong to the second group of bacteriological hazards. Despite the differences in the infectious process caused by these microbes, according to many phenotypic characteristics, including antigenic composition, these are very close microorganisms. The proposal has repeatedly been made to consider the glanders pathogen as the biovar of the melioidosis causative agent. Therefore, these bacteria are diagnosed identically until the fact is established that the studied microorganism belongs to the pseudomallei group (it includes pathogens of glanders and melioidosis). Then, to determine the species, tests based on the following phenotypic differences between B. pseudomallei and B.mallei are used: the glancer pathogen is not able to grow on solid nutrient media at a temperature of 42 ° C and when the gentamicin antibiotic concentration in the nutrient medium is more than 4 μg / ml, B. pseudomallei grows under these conditions; the glanders pathogen is motionless, since it does not have flagella, the melioidosis pathogen is mobile, since it has a flagellum (lofotrich) on the cell surface. (Ilyukhin V.I., Popovtseva L.D., Piven N.N. Identification of Pseudomonas pseudomallei // Lab. Business. - 1983. - No. 7. - P.61-62).
В диагностике инфекций мелиоидоза и сапа применялись и применяются серологические реакции (агглютинация, реакция связывания комплемента, реакция непрямой гемагглютинации), с использованием иммунных сывороток к клеточным антигенам B.pseudomallei и B.mallei. При этом дифференцировать возбудители мелиоидоза и сапа не удалось. Использование иммунолюминесцентного метода на основе полученных моноклональных антител против клеточного антигена B.mallei позволило дифференцировать возбудителей мелиоидоза и сапа (Мелиоидоз // Сборник научных трудов под редакцией Н.Г.Тихонова./ Волгоград: Нижневолжское кн. изд-во, 1995 г. - 8-26 с.).Serological reactions (agglutination, complement fixation reaction, indirect hemagglutination reaction), using immune sera to B.pseudomallei and B.mallei cell antigens, have been and are being used in the diagnosis of melioidosis and glanders infections. At the same time, it was not possible to differentiate the causative agents of melioidosis and glanders. The use of the immunoluminescent method based on the obtained monoclonal antibodies against the B.mallei cell antigen made it possible to differentiate the causative agents of melioidosis and glanders (Melioidosis // Collection of scientific works edited by N.G. Tikhonov. / Volgograd: Lower Volga Publishing House, 1995 - 8 -26 p.).
Наиболее близким аналогом предлагаемого способа является применение мелиоидозной антижгутиковой сывороткой в реакции агглютинации для дифференциации B.pseudomallei и B.mallei. Этот способ описан в ряде статей Алексеева В.В, Бондарева И.Н., Зыкина Л.Ф., которые были опубликованы в сборнике «Вопросы противоэпидемической защиты» (НИИЭМ им. Н.Ф.Гамалеи. - 1977 г., вып.27. - С.54-71) под названием «Индикация возбудителя мелиоидоза на основе антител к жгутиковому антигену». Для постановки реакции агглютинации авторами была применена кроличья антисыворотка к жгутиковому антигену B.pseudomallei, который был получен с большими трудовыми затратами. Специфичность антижгутиковой сыворотки повышали адсорбцией высушенными клетками гомологичного штамма и B.mallei. Процесс производства диагностического препарата и сам способ при этом значительно усложняются. Однако описаны штаммы B.pseudomallei, не имеющие на поверхности клеток жгутиков. Вероятно дифференцирование безжгутиковых вариантов B.pseudomallei и штаммов B.mallei вышеописанной антижгутиковой сывороткой будет затруднено.The closest analogue of the proposed method is the use of melioidous antiglutant serum in the agglutination reaction for the differentiation of B. pseudomallei and B.mallei. This method is described in a number of articles by Alekseev V.V., Bondarev I.N., Zykina L.F., which were published in the collection "Issues of anti-epidemic protection" (NIIEM named after N.F. Gamalei. - 1977, vol. 27. - P.54-71) under the title "Indication of the causative agent of melioidosis based on antibodies to the flagellum antigen." To set up the agglutination reaction, the authors applied a rabbit antiserum to the flagellate antigen B. pseudomallei, which was obtained with great labor costs. The specificity of anti-flagellate serum was increased by adsorption of the dried cells of the homologous strain and B.mallei. The production process of the diagnostic drug and the method itself are greatly complicated. However, B. pseudomallei strains without flagella on the cell surface have been described. It is likely that differentiation of the flagella-free B.pseudomallei and B.mallei strains with the above-described anti-flagellate serum will be difficult.
Целью изобретения является разработка способа дифференциации возбудителей мелиоидоза (B.pseudomallei) и сапа (B.mallei) на основе иммуноэлектрофореза их антигенов с иммунной кроличьей сывороткой к антигенам B.pseudomallei.The aim of the invention is to develop a method for differentiating pathogens of melioidosis (B. pseudomallei) and glanders (B.mallei) based on immunoelectrophoresis of their antigens with rabbit immune serum to B.pseudomallei antigens.
Поставленная цель достигается постановкой иммуноэлектрофореза с внеклеточными антигенами анализируемых штаммов B.pseudomallei и B.mallei и использованием в качестве иммунной сыворотки полученную кроличью антисыворотку против внеклеточных антигенов типичного штамма B.pseudomallei С141.This goal is achieved by staging immunoelectrophoresis with extracellular antigens of the analyzed strains of B. pseudomallei and B.mallei and using rabbit antiserum obtained against rabbits against extracellular antigens of a typical B.pseudomallei C141 strain as immune serum.
Для получения иммунной сыворотки используются внеклеточные (экстрацеллюлярные) антигены (ЭЦА), штамма B.pseudomalei С141, содержащие полный состав антигенов с молекулярными массами 18, 24, 28 и 34 кDа. ЭЦА выделяют из смыва бактериальной массы 0,9 М раствором NaCl, выращенной в течение 18 ч при 37°С после высева на F - агар "Difco", США, покрытый целлофаном, суточной культуры этого штамма. Смыв очищают от микробных клеток центрифугированием при 8000 g и фильтрацией через фильтр с размером пор 0,45 мкм. Стерилизацию ЭЦА проводят фильтрацией через фильтр с размером пор 0,22 мкм и заливкой охлажденным до -40°С ацетоном (до концентрации ацетона 75% от общего объёма). Ацетон из осажденных ЭЦА удаляют центрифугированием при 8000 g и высушиванием под тягой. Полученные внеклеточные антигены подвергают бактериологическому и биологическому контролю на стерильность. Сухие ЭЦА хранят в холодильнике и используют для иммунизации кроликов. Животных иммунизируют в два цикла, которые включают четырехкратное в течение месяца введение антигена, каждое из которых имеет в сумме 2 мл смеси, состоящей из 1 мл раствора ЭЦА (1 мг/мл) и 1 мл неполного адъюванта Фрейнда, и состоит из инъекций по 0,2 мл внутрикожно паравертебрально в 10 точек каждому животному с интервалами между введениями - 7 суток, между циклами - 30 суток. Кровь забирают из сердца при титре в реакции иммунодиффузии 1:32 и выше. В качестве антигенов анализируемого штамма используются ЭЦА, которые получают путем посева суточной культуры анализируемого штамма на агар (F - агар "Difco", США), покрытый целлофаном, выращивания в течение 18 ч при 37°С, смывания 0,9 М раствором NaCl бактериальной массы, удаления из смыва клеток центрифугированием при 8000 g и фильтрацией через фильтр с размером пор 0,45 мкм, осаждением из смыва с одновременной стерилизацией ЭЦА охлажденным до -40°С ацетоном (концентрация ацетона 75%), удаления ацетона центрифугированием при 8000 g в течение 25 мин. Полученные ЭЦА растворяют в 0,9 М растворе NaCl, добавляют мертиолят натрия в соотношении 1:10000 и используют для анализа. Иммуноэлектрофорез (ИЭФ) проводят в пластинах 1% агарозы с использованим веронал-мединалового буфера с pH 8,6. В лунки вносят внеклеточные антигены анализируемых штаммов B.mallei и B.pseudomallei. ИЭФ проводят с охлаждением пластин в течение 2,5 ч при напряжении 4 в/см. Затем в траншеи вносят антисыворотку против ЭЦА B.pseudomallei С141. Наличие линий преципитации в анодной и катодной областях геля указывает на наличие в геле антигенов возбудителей мелиоидоза. Отсутствие линий преципитации в аналогичных зонах геля указывает на внесение в лунку ЭЦА возбудителей сапа.To obtain immune serum, extracellular (extracellular) antigens (ECAs) of the B. pseudomalei C141 strain are used, which contain the complete composition of antigens with molecular weights of 18, 24, 28 and 34 kDa. ECA is isolated from bacterial washout with a 0.9 M NaCl solution grown for 18 h at 37 ° C after plating on F - agar "Difco", USA, coated with cellophane, daily culture of this strain. Wash off the microbial cells by centrifugation at 8000 g and filtering through a filter with a pore size of 0.45 μm. ECA sterilization is carried out by filtration through a filter with a pore size of 0.22 μm and pouring acetone cooled to -40 ° C (to an acetone concentration of 75% of the total volume). Acetone from the precipitated ECA is removed by centrifugation at 8000 g and drying under traction. The obtained extracellular antigens are subjected to bacteriological and biological control for sterility. Dry ECAs are stored in the refrigerator and used to immunize rabbits. Animals are immunized in two cycles, which include antigen administration four times a month, each of which has a total of 2 ml of a mixture consisting of 1 ml of ECA solution (1 mg / ml) and 1 ml of incomplete Freund's adjuvant, and consists of injections of 0 , 2 ml intradermally paravertebrally at 10 points for each animal with intervals between administrations - 7 days, between cycles - 30 days. Blood is taken from the heart at titer in an immunodiffusion reaction of 1:32 and higher. ECA are used as antigens of the analyzed strain, which are obtained by plating the daily culture of the analyzed strain on agar (F - Difco agar, USA) coated with cellophane, grown for 18 h at 37 ° С, washed with 0.9 M bacterial NaCl solution mass removal from cell washout by centrifugation at 8000 g and filtration through a filter with a pore size of 0.45 μm, precipitation from the washout with simultaneous sterilization of ECA with acetone cooled to -40 ° C (acetone concentration of 75%), removal of acetone by centrifugation at 8000 g for 25 minutes The resulting ECA was dissolved in a 0.9 M NaCl solution, sodium merthiolate was added in a ratio of 1: 10000 and used for analysis. Immunoelectrophoresis (IEF) is carried out in plates of 1% agarose using a veronal-medial buffer with a pH of 8.6. Extracellular antigens of the analyzed B.mallei and B.pseudomallei strains are added to the wells. The IEF is carried out with cooling of the plates for 2.5 hours at a voltage of 4 V / cm. Then, antiserum against ECA B. pseudomallei C141 is added to the trenches. The presence of precipitation lines in the anodic and cathodic regions of the gel indicates the presence of antigens of melioidosis pathogens in the gel. The absence of precipitation lines in similar zones of the gel indicates the introduction of glanders in the ECA well.
Примеры конкретного выполнения, подтверждающие осуществление предлагаемого способа.Examples of specific performance, confirming the implementation of the proposed method.
Пример 1. Получение ЭЦА штамма B.pseudomallei С141Example 1. Obtaining ECA strain B.pseudomallei C141
Для получения внеклеточных антигенов культуру B.pseudomallei С141 выращивают на твердой питательной среде (F - агар "Difco", США) при 37°С в течение 18 часов и приготавливают из неё взвесь 109 микробных клеток в 1 мл 0,9% раствора NaCl pH 7,2. F - агар "Difco", США стерильно заливают в стерилизатор, покрывают стерильным целлофаном и наносят на целлофан 8 мл ранее полученной взвеси бактерий B.pseudomallei С141. Стерилизатор помещают на 18 часов в термостат с температурой 37°С. Выросшую на целлофане бактериальную массу смывают 32 мл 0,9% раствора NaCl pH 7,2, осторожно перемешивают до получения гомогенной смеси и центрифугируют 25 мин при 8000 g. Затем супернатант отбирают и фильтруют через фильтр с размером пор 0,45 мкм для удаления оставшихся бактериальных клеток. Окончательную стерилизацию проводят на фильтре с размером пор 0,22 мкм и осаждением охлажденным до -40°С ацетоном при конечной концентрации растворителя 75%. Контроль стерильности проводят бактериологическим и биологическим методами. Осадок, представленный внеклеточными антигенами, освобождают от ацетона центрифугированием 25 мин при 8000 g и высушиванием под тягой. Высушенные фильтраты до применения хранят в холодильнике при +4°С.To obtain extracellular antigens, B. pseudomallei C141 culture was grown on solid nutrient medium (F - Difco agar, USA) at 37 ° C for 18 hours and a suspension of 10 9 microbial cells in 1 ml of a 0.9% NaCl solution was prepared from it pH 7.2. F - agar "Difco", USA sterilely poured into a sterilizer, covered with sterile cellophane and applied to cellophane 8 ml of the previously obtained suspension of bacteria B. pseudomallei C141. The sterilizer is placed for 18 hours in a thermostat with a temperature of 37 ° C. The bacterial mass grown on cellophane is washed off with 32 ml of a 0.9% NaCl solution of pH 7.2, carefully mixed until a homogeneous mixture is obtained and centrifuged for 25 min at 8000 g. Then the supernatant is collected and filtered through a 0.45 μm filter to remove the remaining bacterial cells. The final sterilization is carried out on a filter with a pore size of 0.22 μm and precipitation with acetone cooled to -40 ° C at a final solvent concentration of 75%. Sterility control is carried out by bacteriological and biological methods. The precipitate, represented by extracellular antigens, is freed from acetone by centrifugation for 25 min at 8000 g and drying under traction. The dried filtrates are stored in a refrigerator at + 4 ° C until use.
Пример 2. Получение иммунной кроличьей сыворотки к внеклеточным антигенам штамма B.pseudomallei С141.Example 2. Obtaining immune rabbit serum to extracellular antigens of B. pseudomallei C141 strain.
Для получения гипериммунной сыворотки используют кроликов массой 2-3 кг в возрасте до двух лет. Животных иммунизируют за два цикла введений ЭЦА. Для одного введения используют смесь 1 мл раствора внеклеточных антигенов B.pseudomallei С141 в 0,9% NaCl, рН 7,2 (концентрация - 1,0 мг/мл) и 1 мл неполного адъюванта Фрейнда ("Difco" США). Иммунизирующую смесь вводят путём инъекций паравертебрально внутрикожно в 10 точек по 0,2 мл. Интервалы между введениями составляют 7 суток, между циклами - 30 суток. Активность сывороток определяют после каждого цикла в РИД в геле с ЭЦА. Кровь забирают при титре сыворотки >=1:32. Для подавления роста микрофлоры в сыворотку добавляют мертиолят натрия в соотношении 1:10000 и ампулируют по 0,2-0,5 мл. Затем часть сыворотки сублимационно высушивают, часть хранят в холодильнике при +4°С.To obtain hyperimmune serum, rabbits weighing 2-3 kg are used under the age of two years. Animals are immunized over two cycles of ECA administration. For one administration, a mixture of 1 ml of a solution of extracellular B. pseudomallei C141 antigens in 0.9% NaCl, pH 7.2 (concentration 1.0 mg / ml) and 1 ml of Freund's incomplete adjuvant (Difco USA) is used. The immunizing mixture is administered by injection paravertebrally intradermally in 10 points of 0.2 ml. Intervals between administrations are 7 days, between cycles - 30 days. The activity of the sera is determined after each cycle in the RID gel with ECA. Blood is taken at a serum titer> = 1: 32. To suppress the growth of microflora, sodium merthiolate is added to the serum in a ratio of 1: 10000 and 0.2-0.5 ml are ampouled. Then part of the whey is freeze-dried, part is stored in the refrigerator at + 4 ° C.
Пример 3. Дифференциация B.pseudomallei и B.mallei в иммуноэлектрофорезе с использованием антисыворотки против ЭЦА штамма B.pseudomallei С141.Example 3. Differentiation of B. pseudomallei and B.mallei in immunoelectrophoresis using antisera against ECA of B. pseudomallei C141 strain.
Иммуноэлектрофорез (ИЭФ) проводят на стеклянных пластинах размером 8×8 см, предварительно покрытых пленкой агарозы, что облегчает заливку геля 1% агарозы на веронал-мединаловом буфере. В лунки, вырезанные в геле, вносят антигены. В качестве основного буфера для электрофореза используют веронал-мединалового буфер pH 8,6 с ацетатом кальция. Стекла с гелем укладывают в прибор для электрофореза на охлаждаемый до 4°С столик, к краям геля прикладывают мостики из фильтровальной бумаги (6 слоев). Мостики обильно смачивают буфером. Электрофорез проводят при стабилизированном токе при градиенте напряжения в геле 4 В/см. Рядом с лункой вводят лидирующий свидетель (бромфеноловый синий). Электрофорез проводят до тех пор, пока свидетель не отходит на 2 см от центра стекла. После остановки электрофореза в агарозном геле вдоль направления электрофореза вырезают траншеи, в которые заливают цельные сыворотки. Через 12 часов стекла анализируют «под косым» светом. Наличие линий преципитации в анодной и катодной областях геля указывает на наличие в геле антигенов возбудителей мелиоидоза. Отсутствие аналогичных антигенов в аналогичных зонах геля указывает на факт внесения в лунку возбудителя сапа. Иммуноэлектрофореграммы представлены на фиг.1.Immunoelectrophoresis (IEF) is carried out on 8 × 8 cm glass plates pre-coated with an agarose film, which facilitates the pouring of 1% agarose gel on a vertical-medial buffer. Antigens are added to the wells cut in the gel. The main buffer for electrophoresis is Veronal-medinal pH 8.6 buffer with calcium acetate. Glasses with gel are placed in an electrophoresis device on a table cooled to 4 ° C, and bridges of filter paper (6 layers) are applied to the edges of the gel. Bridges are abundantly wetted with buffer. Electrophoresis is carried out at a stabilized current with a voltage gradient in the gel of 4 V / cm. A leading witness (bromphenol blue) is introduced next to the well. Electrophoresis is carried out until the witness moves 2 cm from the center of the glass. After electrophoresis is stopped on an agarose gel, trenches are cut along the direction of electrophoresis into which whole serums are poured. After 12 hours, the glasses are analyzed “under oblique” light. The presence of precipitation lines in the anodic and cathodic regions of the gel indicates the presence of antigens of melioidosis pathogens in the gel. The absence of similar antigens in similar areas of the gel indicates the fact that glanders were added to the well. Immunoelectrophoregrams are presented in figure 1.
Пример 4. Характеристика внеклеточных антигенов штамма B.pseudomallei С141 методом электрофоретического анализа в ПААГ с ДСН.Example 4. Characterization of extracellular antigens of B. pseudomallei C141 strain by electrophoretic analysis in SDS page with SDS.
Для анализа состава внеклеточных белков штамма B.pseudomallei С141 проводят разделение их на фракции электрофорезом в 10% ПААГ с ДСН по Laemmli (1970 г.) в пластинах размером 6x8 см, толщиной 0,75 мм, используя прибор для вертикального электрофореза. При подготовке проб сухие фильтраты растворяют в лизирующем растворе рН 6,8 (0,0625 М трисаминометан-Сl, 2% ДСН, 10% глицерин, 5% 2-меркаптоэтанол) в концентрации 8 мг/мл, кипятят 10 мин, центрифугируют 25 мин при 8000 g. Супернатант используют в опытах. В качестве эталонов молекулярной массы используют набор маркерных белков фирмы «Amersham», США (мол.м. от 14 до 94 KDa). Белки окрашивают кумасси G-250 и серебром (метод Oakley et al., 1980). Электрофореграммы фотографируют и денситометрируют. Анализ полученных электрофореграмм позволяет установить, что в составе белкового спектра внеклеточного фильтрата имеются 2 белковые фракции, окрашиваемые Кумасси G-250 с мол.м. 28 и 34 Ша. При применении метода окраски серебром выявляются две фракции с мол.м. 28 и 34 Ша, как и при окраске Кумасси G-250 и две дополнительные фракции с мол. м 18 и 24 Ша (фиг.2).To analyze the composition of extracellular proteins of B. pseudomallei C141 strain, they are separated into fractions by electrophoresis in 10% SDS page with SDS according to Laemmli (1970) in plates measuring 6x8 cm, 0.75 mm thick, using an apparatus for vertical electrophoresis. When preparing samples, dry filtrates were dissolved in a lysing solution of pH 6.8 (0.0625 M Trisaminomethane-Cl, 2% SDS, 10% glycerol, 5% 2-mercaptoethanol) at a concentration of 8 mg / ml, boiled for 10 minutes, centrifuged for 25 minutes at 8000 g. The supernatant is used in experiments. A set of marker proteins from Amersham, USA (molecular weight from 14 to 94 KDa) is used as molecular weight standards. Proteins are stained with Coomassie G-250 and silver (method Oakley et al., 1980). Electrophoregrams are photographed and densitometric. Analysis of the obtained electrophoregrams allows us to establish that the protein spectrum of the extracellular filtrate contains 2 protein fractions stained with Coomassie G-250 with a mol.m. 28 and 34 Sha. When applying the silver staining method, two fractions with a mol.m are detected. 28 and 34 Sha, as in the painting of Coomassie G-250 and two additional fractions with mol. m 18 and 24 Sha (figure 2).
Таким образом, разработан способ дифференциации B.pseudomallei и В.mallei, возбудителей мелиоидоза и сапа, относящихся к особо опасным инфекциям, за счет применения в иммуноэлектрофорезе нового диагностического препарата - преципитирующей антисыворотки против внеклеточных антигенов B.pseudomallei С141 и применения в качестве анализируемых антигенов ЭЦА, который отличает простота исполнения, наглядность, отсутствие потребности в сложном оборудовании. Может применяться как дополнительное средство диагностики в комплексе мер по выявлению возбудителей мелиоидоза и сапа.Thus, a method has been developed for differentiating B. pseudomallei and B. mallei, melioidosis and glanders pathogens belonging to especially dangerous infections, by using a new diagnostic drug in immunoelectrophoresis - precipitating antisera against extracellular B. pseudomallei C141 antigens and using ECA as analyzed antigens , which is distinguished by ease of execution, visibility, lack of need for sophisticated equipment. It can be used as an additional diagnostic tool in a set of measures to identify the causative agents of melioidosis and glanders.
Полученная сыворотка дает более четкие линии преципитации только с возбудителем мелиоидоза как при электрофорезе, так и при реакции иммунодиффузии.The obtained serum gives clearer precipitation lines only with the causative agent of melioidosis both in electrophoresis and in the immunodiffusion reaction.
Claims (3)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2008111417/13A RU2366715C1 (en) | 2008-03-24 | 2008-03-24 | Method of immunoelectrophoretic differentiation of melioidosis and fap agents |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2008111417/13A RU2366715C1 (en) | 2008-03-24 | 2008-03-24 | Method of immunoelectrophoretic differentiation of melioidosis and fap agents |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2366715C1 true RU2366715C1 (en) | 2009-09-10 |
Family
ID=41166567
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2008111417/13A RU2366715C1 (en) | 2008-03-24 | 2008-03-24 | Method of immunoelectrophoretic differentiation of melioidosis and fap agents |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2366715C1 (en) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2474620C1 (en) * | 2012-01-26 | 2013-02-10 | Федеральное казенное учреждение здравоохранения Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт Роспотребнадзора | OLIGONUCLEOTIDE PRIMERS BmVAT5-Ch2s/BmVAT5-Ch2as FOR DETECTING BMAA0107 DIFFERENTIATION FRAGMENT OF EQUINIA AGENT STRAINS |
RU2496112C1 (en) * | 2012-04-24 | 2013-10-20 | Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Method for accelerated line immunoelectrophoresis for burkholderia differentiation |
-
2008
- 2008-03-24 RU RU2008111417/13A patent/RU2366715C1/en not_active IP Right Cessation
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2474620C1 (en) * | 2012-01-26 | 2013-02-10 | Федеральное казенное учреждение здравоохранения Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт Роспотребнадзора | OLIGONUCLEOTIDE PRIMERS BmVAT5-Ch2s/BmVAT5-Ch2as FOR DETECTING BMAA0107 DIFFERENTIATION FRAGMENT OF EQUINIA AGENT STRAINS |
RU2496112C1 (en) * | 2012-04-24 | 2013-10-20 | Федеральное казенное учреждение здравоохранения "Волгоградский научно-исследовательский противочумный институт" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека | Method for accelerated line immunoelectrophoresis for burkholderia differentiation |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Avery et al. | Studies on the chemical nature of the substance inducing transformation of pneumococcal types: induction of transformation by a desoxyribonucleic acid fraction isolated from pneumococcus type III | |
Stoenner et al. | Antigenic variation of Borrelia hermsii. | |
Watson et al. | Virus specific antigens in mammalian cells infected with herpes simplex virus | |
JP2773816B2 (en) | Methods for analyzing the presence of Chlamydia infection and species-specific antigens of Chlamydia trachomatis | |
Babudieri | Laboratory diagnosis of leptospirosis | |
Hellstrom et al. | Survival of Leptospira interrogans serovar pomona in an acidic soil under simulated New Zealand field conditions | |
White et al. | Detection of Leptospira pomona in guinea pig and bovine urine with fluorescein-labeled antibody | |
RU2366715C1 (en) | Method of immunoelectrophoretic differentiation of melioidosis and fap agents | |
CN109776661B (en) | Cocktail stimulating antigen for bovine tuberculosis gamma-interferon ELISA detection | |
RU2305557C1 (en) | Method for differentiation of malleus and melioidosis exitants with precipitating antiserum | |
Pier et al. | Extracellular antigens of Nocardia asteroides: I. Production and immunologic characterization | |
Barahona et al. | Experimental horizontal transmission of Herpesvirus saimiri from squirrel monkeys to an owl monkey | |
RU2378360C1 (en) | Method for differentiation pathogenic and nonpathogenic burkholderia | |
Roberts | Immunological response in cows to Mycoplasma bovigenitalium, strain 1836 | |
RU2540902C1 (en) | Method for preparing erythrocytic diagnostic antigen for detecting actinobacillus mallei and melioidosis antigen antibodies | |
CN116790451B (en) | Antigen and kit for detecting duck-origin salmonella enteritidis antibody and preparation method thereof | |
Kurup et al. | Antigenic relationships among thermophilic actinomycetes | |
CN109776662B (en) | Cocktail antigen for detecting bovine tuberculosis allergy | |
JPS6384484A (en) | Special microplasma membrane antigen and antibody, and clinical application thereof | |
RU2802251C1 (en) | Vaccine composition for the prevention of enzootic abortion in sheep | |
Fraser et al. | Mycoplasmas in cell cultures from rheumatoid synovial membranes | |
KR101341994B1 (en) | A method of manufacturing antigen slide for indirect immunofluorescence antibody assay against Legionella species and a micro-multivalent antigen slide for simultaneous detection of antibodies manufactured by using the same | |
CN100497592C (en) | Mycobactrium tuberculosis protein for diagnosing rifampicin dependent mycobacterium tuberculosis | |
Labzoffsky et al. | New complement fixing antigen for serodiagnosis of gonorrhoea | |
Avery et al. | Studies on the chemical nature of the substance inducing transformation of pneumococcal types |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20100325 |