RU2352357C1 - Method of producing universal inactivated blutang virus antigen for serodiagnosis - Google Patents
Method of producing universal inactivated blutang virus antigen for serodiagnosis Download PDFInfo
- Publication number
- RU2352357C1 RU2352357C1 RU2007132285/13A RU2007132285A RU2352357C1 RU 2352357 C1 RU2352357 C1 RU 2352357C1 RU 2007132285/13 A RU2007132285/13 A RU 2007132285/13A RU 2007132285 A RU2007132285 A RU 2007132285A RU 2352357 C1 RU2352357 C1 RU 2352357C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- antigen
- propiolactone
- inactivated
- cell
- centrifugation
- Prior art date
Links
Landscapes
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к области ветеринарии, а именно к серодиагностике блютанга. По определению МЭБ, вирус блютанга отнесен к особо опасным болезням животных списка А. Согласно классификации Государственного Комитета по эпидемиологическому надзору, возбудитель блютанга относится ко 2-й группе патогенности для человека.The invention relates to the field of veterinary medicine, namely to serodiagnosis of bluetong. According to the OIE, the bluetongue virus is classified as a particularly dangerous animal disease of List A. According to the classification of the State Committee for Epidemiological Surveillance, the bluetongue pathogen belongs to the 2nd group of pathogenicity for humans.
В XX столетии блютанг нанес овцеводству многих стран мира огромный экономический ущерб, больше, чем все другие инфекционные заболевания овец вместе взятые. Особенно проблема блютанга стала актуальной для России после эпизоотии болезни в Республике Бурятия в 1993 году. Учитывая, что в последние годы в странах, имеющих тесные экономические контакты с Россией (Турция, Болгария, Югославия, Голландия и др.) отмечали обширные эпизоотии, вызванные вирусом блютанга, одним из наиболее достоверных способов прижизненного выявления этого возбудителя является серодиагностика, основывающаяся на определении наличия специфических антител в сыворотках крови при их взаимодействии с антигеном вируса блютанга в реакциях связывания комплемента (РСК), реакции диффузионной приципитации (РДП) и при постановке иммуноферментного анализа (ИФА).In the 20th century, bluetong caused a huge economic damage to sheep breeding in many countries of the world, more than all other infectious diseases of sheep combined. Especially the problem of bluetong became relevant for Russia after the epizootic of the disease in the Republic of Buryatia in 1993. Considering that in recent years, in countries with close economic contacts with Russia (Turkey, Bulgaria, Yugoslavia, Holland, etc.), extensive epizootics caused by the bluetongue virus have been noted, one of the most reliable ways of intravital detection of this pathogen is serodiagnosis, based on the determination the presence of specific antibodies in blood serum during their interaction with the bluetongue antigen in complement binding reactions (CSCs), diffusion precipitation reactions (RDPs), and immuno-enzyme production analysis (ELISA).
Ранее для постановки РСК антиген готовили из ткани мозга хомячков и мышей (Clark D. and Casals J.,1958, B.H.Сюрин, 1966 г.). Впоследствии был разработан способ получения культурального антигена (А.А.Стрижаков, 1997 г.). Культуру клеток ПСГК заражали вирусом блютанга и культивировали в течение 60-62 ч. Затем культуральную жидкость сливали, а инфицированные клетки дважды замораживали-оттаивали, центрифугировали при 3000 об/мин 30 мин и надосадочную жидкость использовали в качестве антигена.Previously, antigen was prepared from the brain tissue of hamsters and mice for the production of CSCs (Clark D. and Casals J., 1958, B.H. Syurin, 1966). Subsequently, a method was developed for the production of cultural antigen (A.A. Strizhakov, 1997). The PSHA cell culture was infected with bluetongue virus and cultured for 60-62 h. Then, the culture fluid was drained, and the infected cells were frozen, thawed twice, centrifuged at 3000 rpm for 30 min, and the supernatant was used as antigen.
Главным недостатком такого антигена является то, что он содержит инфекционный вирус и использовать его можно только при получении разрешения на работу с микроорганизмами 2 группы патогенности и требует наличия специальных средств защиты, оборудования и соблюдения особой осторожности.The main disadvantage of such an antigen is that it contains an infectious virus and it can be used only when obtaining permission to work with microorganisms of the 2nd group of pathogenicity and requires special protective equipment, equipment and special care.
Поэтому целью изобретения является получение инактивированного универсального антигена для серодиагностики, не уступающего по антигенной активности и пригодного к использованию в любых диагностических лабораториях.Therefore, the aim of the invention is to obtain an inactivated universal antigen for serodiagnosis, not inferior in antigenic activity and suitable for use in any diagnostic laboratory.
Указанная цель достигается тем, что способ получения универсального инактивированного антигена вируса блютанга включает заражение перевиваемой культуры клеток, культивирование инфицированной культуры, осаждение клеток и клеточного дебриса центрифугированием, приготовление лизата клеток, замораживание-оттаивание, при этом лизат клеток обрабатывают 2 раза ультразвуком по 12 мкм в течение 1 мин с интервалом 1 мин, а оставшиеся после центрифугирования осадок дебриса повторно заливают дистиллированной водой, обрабатывают ультразвуком в том же режиме, надосадочные жидкости с антигеном объединяют, затем антиген дважды инактивируют β-пропиолактоном в соотношении 1:1000, при этом сначала при 37° при постоянном перемешивании, затем снова вносят β-пропиолактон в том же соотношении при экспозиции 18 часов +4°С.This goal is achieved by the fact that the method of obtaining a universal inactivated antigen of the bluetong virus includes infection of a transplanted cell culture, cultivation of an infected culture, sedimentation of cells and cell debris by centrifugation, preparation of a cell lysate, freezing-thawing, while the cell lysate is treated 2 times with ultrasound at 12 μm per for 1 min with an interval of 1 min, and the debris residue remaining after centrifugation is re-poured with distilled water, treated with ultrasound in t In the same mode, the supernatants are combined with the antigen, then the antigen is twice inactivated with β-propiolactone in a ratio of 1: 1000, while at first at 37 ° with constant stirring, then β-propiolactone is again added in the same ratio at an exposure of 18 hours + 4 ° FROM.
Предлагаемый способ приготовления антигена отличается тем, что:The proposed method for the preparation of antigen is characterized in that:
1) для большей деструкции клеток используют ультразвуковую обработку, позволяющую увеличить выход вирусного антигена, связанного с дебрисом клеток;1) for greater destruction of cells using ultrasound treatment, which allows to increase the yield of viral antigen associated with debris of cells;
2) повторная обработка клеточного дебриса, оставшегося в осадке после центрифугирования, позволяет увеличить в 2 раза выход получаемого антигена при использовании того же количества вирусного сырья;2) re-processing of cell debris remaining in the sediment after centrifugation, allows to increase by 2 times the yield of the resulting antigen using the same amount of viral raw material;
3) применение инактиванта β-пропиолактона позволяет получить инактивированный экологически безопасный антиген, который может широко использоваться в ветеринарной практике для серодиагностики блютанга.3) the use of the inactivant β-propiolactone allows you to get inactivated environmentally friendly antigen, which can be widely used in veterinary practice for serodiagnosis of bluetongue.
Примеры конкретного выполнения.Examples of specific performance.
Пример 1. Суспензионную культуру клеток ПСГК-60 в количестве 10 л с концентрацией клеток 0,7-1,0 млн кл/мл заражали вирусом блютанга с множественностью заражения 0, 01 ТЦД50/кл. Поддерживающая среда - 0,25% ФГМ с 2% сыворотки крупного рогатого скота (КРС). Вирус культивировали при 37°С, поддерживая рН среды в пределах 7,0-7,4 в течение 40-60 часов до появления в суспензии 30% мертвых клеток. После этого клетки осаждали центрифугированием при 4000 об/мин 30 мин и готовили лизат инфицированных клеток. С этой целью к осадку добавляли дистиллированную воду до 100 мл, ресуспендировали и замораживали при минус 20°С. После оттаивания обрабатывали ультразвуком 2 раза по 12 мкм в течение 1 минуты с интервалом 1 мин и снова суспензию с клеточным дебрисом замораживали и оттаивали, затем центрифугировали при 4000 об/мин 30 мин. Надосадочную жидкость, содержащую антиген блютанга, отбирали, а к осадку добавляли такое же количество дистиллированной воды, ресуспедировали его и с ним проводили те же операции. Полученный вторичный осветленный лизат объединяли с первым и инактивировали β-пропиолактоном. С этой целью к 200 мл объединенного надосадка лизированных клеток, содержащего антиген вируса блютанга, прогретого до 37°С, вносили 0,2 мл β-пропиолактона и выдерживали при этой температуре 2 ч при постоянном перемешивании. Затем снова вносили β-пропиолактон в том же количестве и выдерживали 18 часов при +4°С. Полноту инактивации антигена проверяли в 3-х последовательных пассажах в чувствительной культуре клеток ПСГК. Полученный антиген не содержал остаточной инфекционности, обладал высокой специфичностью и активностью в реакциях РСК (1:32-1:64), РДП (1:2-1:4), ИФА (1:729-1:2187, табл.).Example 1. A suspension culture of PSGK-60 cells in an amount of 10 l with a cell concentration of 0.7-1.0 million cells / ml was infected with bluetongue virus with a multiplicity of infection of 0,01 TCD 50 / cell. Supporting medium - 0.25% FGM with 2% serum of cattle (cattle). The virus was cultured at 37 ° C, maintaining the pH of the medium in the range of 7.0-7.4 for 40-60 hours until 30% dead cells appeared in the suspension. After this, the cells were besieged by centrifugation at 4000 rpm for 30 minutes and a lysate of infected cells was prepared. For this purpose, distilled water up to 100 ml was added to the precipitate, resuspended and frozen at minus 20 ° С. After thawing, they were sonicated 2 times in 12 μm for 1 minute at intervals of 1 min and again the suspension with cell debris was frozen and thawed, then centrifuged at 4000 rpm for 30 min. The supernatant containing bluetongue antigen was removed, and the same amount of distilled water was added to the precipitate, resuspended, and the same operations were carried out with it. The resulting secondary clarified lysate was combined with the first and inactivated with β-propiolactone. To this end, 0.2 ml of β-propiolactone was added to 200 ml of the combined supernatant of lysed cells containing bluetongue virus antigen heated to 37 ° C and kept at this temperature for 2 hours with constant stirring. Then again introduced β-propiolactone in the same amount and kept for 18 hours at + 4 ° C. The completeness of antigen inactivation was checked in 3 consecutive passages in a sensitive PSGK cell culture. The resulting antigen did not contain residual infectivity, had high specificity and activity in the reactions of CSC (1: 32-1: 64), RDP (1: 2-1: 4), ELISA (1: 729-1: 2187, table).
Пример 2. Суспензионную культуру клеток ВНК-21/13 в количестве 12 л с концентрацией клеток 0,7-1,0 млн кл/мл заражали вирусом блютанга с множественностью заражения 0, 001 ТЦД50/кл. Поддерживающая среда - 0,25% ФГМ с 2% сыворотки КРС. Вирус культивировали в биореакторе емкостью 30 л при 37°С, поддерживая рН среды в пределах 7,0-7,4 в течение 45-55 часов до появления в суспензии 40% мертвых клеток. После чего клетки осаждали центрифугированием при 4000 об/мин 30 мин и готовили лизат инфицированных клеток. С этой целью к осадку добавляли дистиллированную воду до 120 мл, ресуспендировали и замораживали при минус 20°С. После оттаивания обрабатывали ультразвуком 2 раза по 12 мкм в течение 1 минуты с интервалом 1 мин и снова суспензию с клеточным дебрисом замораживали и оттаивали, затем центрифугировали при 4000 об/ мин 30 мин. Надосадочную жидкость, содержащую антиген блютанга, отбирали, а к осадку добавляли такое же количество дистиллированной воды, ресуспедировали его и с ним проводили те же операции. Полученный вторичный осветленный лизат объединяли с первым и инактивировали β-пропиолактоном. С этой целью к 240 мл объединенного надосадка лизированных клеток, содержащего антиген вируса блютанга, прогретого до 37°С, вносили 0,24 мл р-пропиолактона и выдерживали при этой температуре 2 ч при постоянном перемешивании. Затем снова вносили β-пропиолактон в том же количестве и выдерживали 18 часов при +4°С. Полноту инактивации антигена проверяли в 3-х последовательных пассажах в элективной культуре клеток ПСГК. Полученный антиген не содержал остаточной инфекционности, обладал высокой специфичностью и активностью в реакциях РСК (1:64-1:128), РДП (1:2-1:4), ИФА (1:2187-1:6561, табл.).Example 2. A suspension culture of BHK-21/13 cells in an amount of 12 L with a cell concentration of 0.7-1.0 million cells / ml was infected with bluetongue virus with a multiplicity of infection of 0, 001 TCD 50 / cell. Maintenance medium - 0.25% FGM with 2% cattle serum. The virus was cultured in a 30 L bioreactor at 37 ° C, maintaining the pH of the medium in the range of 7.0-7.4 for 45-55 hours until 40% dead cells appeared in the suspension. Then the cells were besieged by centrifugation at 4000 rpm for 30 minutes and a lysate of infected cells was prepared. For this purpose, distilled water up to 120 ml was added to the precipitate, resuspended and frozen at minus 20 ° С. After thawing, they were sonicated 2 times in 12 μm for 1 minute at intervals of 1 min and again the suspension with cell debris was frozen and thawed, then centrifuged at 4000 rpm for 30 min. The supernatant containing bluetongue antigen was removed, and the same amount of distilled water was added to the precipitate, resuspended, and the same operations were carried out with it. The resulting secondary clarified lysate was combined with the first and inactivated with β-propiolactone. For this purpose, 0.24 ml of p-propiolactone was added to 240 ml of the combined supernatant of lysed cells containing bluetongue virus antigen heated to 37 ° C and kept at this temperature for 2 hours with constant stirring. Then again introduced β-propiolactone in the same amount and kept for 18 hours at + 4 ° C. The completeness of antigen inactivation was checked in 3 consecutive passages in an selective PSGK cell culture. The resulting antigen did not contain residual infectivity, had high specificity and activity in the reactions of CSC (1: 64-1: 128), RDP (1: 2-1: 4), ELISA (1: 2187-1: 6561, table).
Пример 3. Монослойную культуру клеток CV-1, выращенную в круговом монослое в 20 культуральных сосудах емкостью 3 л, объем заполнения 0,5 л заражали вирусом блютанга с множественностью заражения 0,004 ТЦД50/кл. Поддерживающая среда - Игла (MEM) с 2% КРС. Вирус культивировали при 37°С и 8-12 об/час, поддерживая рН среды в пределах 7,0-7,4 в течение 60 часов до развития 30-35% ЦПД вируса. Затем культуральную среду сливали, монослой клеток замораживали с последующим оттаиванием и после этого из всех бутылей собирали лизат с разрушенными инфицированными клетками. Затем добавляли дистиллированную воду до 100 мл, ресуспендировали и обрабатывали ультразвуком 2 раза по 12 мкм в течение 1 минуты с интервалом 1 мин и снова суспензию с клеточным дебрисом замораживали и оттаивали, затем центрифугировали при 4000 об/мин 30 мин. Надосадочную жидкость, содержащую антиген блютанга, отбирали, а к осадку добавляли такое же количество дистиллированной воды, ресуспендировали его и с ним проводили те же операции. Полученный вторичный осветленный лизат объединяли с первым и инактивировали β-пропиолактоном. С этой целью к 200 мл объединенного надосадка лизированных клеток, содержащего антиген вируса блютанга, прогретого до 37°С, вносили 0,2 мл β-пропиолактона и выдерживали при этой температуре 2 ч при постоянном перемешивании. Затем снова вносили β-пропиолактон в том же количестве и выдерживали 18 ч при +4°С. Полноту инактивации антигена проверяли в 3-х последовательных пассажах в элективной культуре клеток ПСГК. Полученный антиген не содержал остаточной инфекционности, обладал высокой специфичностью и активностью в реакциях РСК (1:64-1:128), РДП (1:2-1:4), ИФА (1:2187-1:6561, табл.).Example 3. A monolayer cell culture CV-1, grown in a circular monolayer in 20 culture vessels with a capacity of 3 l, a filling volume of 0.5 l was infected with bluetongue virus with a multiplicity of infection of 0.004 TCD 50 / cl. Supporting medium - Needle (MEM) with 2% cattle. The virus was cultured at 37 ° C and 8-12 rpm, maintaining the pH of the medium in the range of 7.0-7.4 for 60 hours until the development of 30-35% of the virus's CPD. Then the culture medium was drained, the monolayer of cells was frozen, followed by thawing, and after that, a lysate with destroyed infected cells was collected from all the bottles. Then distilled water up to 100 ml was added, resuspended and sonicated 2 times in 12 μm for 1 minute at intervals of 1 minute and again the suspension with cell debris was frozen and thawed, then centrifuged at 4000 rpm for 30 minutes. The supernatant containing bluetongue antigen was removed, and the same amount of distilled water was added to the precipitate, resuspended, and the same operations were carried out with it. The resulting secondary clarified lysate was combined with the first and inactivated with β-propiolactone. To this end, 0.2 ml of β-propiolactone was added to 200 ml of the combined supernatant of lysed cells containing bluetongue virus antigen heated to 37 ° C and kept at this temperature for 2 hours with constant stirring. Then, β-propiolactone was again added in the same amount and held for 18 h at + 4 ° C. The completeness of antigen inactivation was checked in 3 consecutive passages in an selective PSGK cell culture. The resulting antigen did not contain residual infectivity, had high specificity and activity in the reactions of CSC (1: 64-1: 128), RDP (1: 2-1: 4), ELISA (1: 2187-1: 6561, table).
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2007132285/13A RU2352357C1 (en) | 2007-08-28 | 2007-08-28 | Method of producing universal inactivated blutang virus antigen for serodiagnosis |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2007132285/13A RU2352357C1 (en) | 2007-08-28 | 2007-08-28 | Method of producing universal inactivated blutang virus antigen for serodiagnosis |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2352357C1 true RU2352357C1 (en) | 2009-04-20 |
Family
ID=41017627
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2007132285/13A RU2352357C1 (en) | 2007-08-28 | 2007-08-28 | Method of producing universal inactivated blutang virus antigen for serodiagnosis |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2352357C1 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2528057C1 (en) * | 2013-07-25 | 2014-09-10 | Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии Россельхозакадемии | Strain "g 244/11" of bluetongue virus of serotype 14 for virology studies, production of vaccines and diagnostic preparations |
-
2007
- 2007-08-28 RU RU2007132285/13A patent/RU2352357C1/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
STOTT J.L. et al. Simple procedure for preparation of bluetongue virus and epizootic haemorrhagic disease virus antigens for agar gel immunodiffusion. - J. Clinical Vicrobibl, 1983, 18, 6, 1310-1313. СТРИЖАКОВ A.A. и др. Сэндвич-метод твердофазного иммуноферментного анализа на основе моноклональных антител для обнаружения антигенов вируса блютанга. - Сельскохозяйственная биология, сер. Биология животных, 2003, 4, 114-120. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2528057C1 (en) * | 2013-07-25 | 2014-09-10 | Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии Россельхозакадемии | Strain "g 244/11" of bluetongue virus of serotype 14 for virology studies, production of vaccines and diagnostic preparations |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN102994458B (en) | Porcine pseudorabies virus virulent strain, and gene deletion vaccine strain thereof and applications thereof | |
CN101665781B (en) | High-titer Porcine circovirus 2-type cultured cell, preparation method and use thereof | |
CN103525771B (en) | Goose parvovirus and applications thereof | |
CN101716341B (en) | Human diploid cell inactivated rabies vaccine and preparation method thereof | |
CN108567974A (en) | A kind of inactivated vaccine and preparation method thereof of the novel goose astrovirus of prevention | |
CN110551689B (en) | Channa argus brain cell line and construction method and application thereof | |
CN115141812B (en) | Acremonium carbonum vaccine strain and application thereof | |
CN109182282A (en) | The dual-gene deletion of vaccine strain of porcine pseudorabies virus gE/gI and its construction method and application | |
Shibata et al. | In vitro characteristics of cyprinid herpesvirus 2: effect of kidney extract supplementation on growth | |
CN104353070B (en) | Genetic engineering subunit vaccine of chicken infectious bronchitis virus and preparation method thereof | |
Mu et al. | FV3-like ranavirus infection outbreak in black-spotted pond frogs (Rana nigromaculata) in China | |
Salmakov et al. | Comparative study of the immunobiological properties of live brucellosis vaccines | |
CN105969739B (en) | One plant of Akabane Disease virus vaccine strain and application thereof for being adapted to Vero cell culture | |
RU2352357C1 (en) | Method of producing universal inactivated blutang virus antigen for serodiagnosis | |
CN102732486A (en) | Porcine circovirus type2 strain and application thereof | |
CN106190988B (en) | Inactivated vaccine of feline calicivirus CH-JL5 strain | |
RU2606254C1 (en) | Strain of nodular dermatitis virus of cattle dermatitis nodularis bovum, genus capripoxvirus to produce biopreparations for diagnosis and specific prevention of nodular dermatitis of cattle | |
CN107893056B (en) | I type vaccine strain of bovid herpesvirus 5 and its application | |
CN101906403B (en) | Enterovirus and application thereof | |
CN102961742A (en) | Bivalent inactivated vaccine of porcine circovirus type 2 and porcine parvovirus and preparation method thereof | |
CN103122336B (en) | Goose parvovirus H-strain and application thereof in preventing and treating gosling plague | |
RU2560569C2 (en) | Alekseevskiy strain of swinepox virus for virological, molecular-genetic, monitoring studies, production of vaccines and diagnostic preparations | |
CN103160475B (en) | Enterovirus 71 type viral strain, its application, vaccine and preparation method | |
CN102764432A (en) | Chinese giant salamander viral hemorrhagic disease cell culture-based inactivated vaccine, its preparation method and application thereof | |
RU2647757C1 (en) | Volgogradsky strain of cattle nodular dermatitis virus for virological, molecular-genetic, monitoring studies, production of vaccines and diagnostic preparations |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20150829 |