RU2346035C1 - Vibrio fischeri BACTERIA STRAIN, USED AS TEST-CULTURE FOR DETERMINING TOXIC LEVEL OF ENVIRONMENTAL MEDIA - Google Patents
Vibrio fischeri BACTERIA STRAIN, USED AS TEST-CULTURE FOR DETERMINING TOXIC LEVEL OF ENVIRONMENTAL MEDIA Download PDFInfo
- Publication number
- RU2346035C1 RU2346035C1 RU2007130940/13A RU2007130940A RU2346035C1 RU 2346035 C1 RU2346035 C1 RU 2346035C1 RU 2007130940/13 A RU2007130940/13 A RU 2007130940/13A RU 2007130940 A RU2007130940 A RU 2007130940A RU 2346035 C1 RU2346035 C1 RU 2346035C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- strain
- vibrio fischeri
- culture
- vkpm
- test
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к биотехнологии, а именно к штаммам бактерий для биотестирования токсичности объектов окружающей среды и может быть использовано при проведении эколого-токсических исследований, при мониторинге водных экосистем.The invention relates to biotechnology, namely, bacterial strains for biotesting the toxicity of environmental objects and can be used in environmental-toxic studies, while monitoring aquatic ecosystems.
Известен штамм бактерий Ph. phosphoreum (Cohn) Ford, который рекомендован для биотестирования воды на территории Украины (1)(2). Недостаток штамма заключается в том, что при проведении тестирования он используется в лиофилизированном виде и требуется восстановление его активной формы. Кроме того, чувствительность данного штамма к токсическим веществам недостаточно высокая, в частности, известный штамм позволяет определить наличие токсических веществ в концентрациях, превышающих ПДК.A known strain of bacteria Ph. phosphoreum (Cohn) Ford, which is recommended for biotesting water in Ukraine (1) (2). The disadvantage of the strain is that during testing it is used in a lyophilized form and restoration of its active form is required. In addition, the sensitivity of this strain to toxic substances is not high enough, in particular, the known strain allows you to determine the presence of toxic substances in concentrations exceeding the MPC.
Известен, выбранный в качестве прототипа, бактериальный тест «Эколюм», разработанный в России (МГУ, Москва) (3). Биосенсор «Эколюм» представляет собой лиофилизированные культуры генно-инженерного штамма люминесцентных бактерий, содержащиеся в среде инертных газов в специальных стеклянных флаконах. Культура получена посредством генно-инженерного внедрения lux-оперона в специально подобранный штамм Е. coli. Производится согласно ТУ 6-09-20-236-93.(3) Используется для определения токсичности воды, почв (4), почв (5), химических соединений, полимеров, материалов и изделий (6).Known, selected as a prototype, the bacterial test "Ekolyum", developed in Russia (Moscow State University, Moscow) (3). The Ekolyum biosensor is a lyophilized culture of a genetically engineered strain of luminescent bacteria contained in an inert gas medium in special glass bottles. The culture was obtained through genetic engineering introduction of a lux operon into a specially selected strain of E. coli. It is produced according to TU 6-09-20-236-93. (3) It is used to determine the toxicity of water, soils (4), soils (5), chemical compounds, polymers, materials and products (6).
Биотестирование основано на определении изменения интенсивности биолюминесценции биосенсора «Эколюм» при воздействии токсических веществ, присутствующих в анализируемой пробе, по сравнению с контролем.Biotesting is based on determining the change in the intensity of the bioluminescence of the Ekolyum biosensor when exposed to toxic substances present in the analyzed sample, compared with the control.
Недостатком известного штамма является недостаточно высокая чувствительность к токсическим веществам, в частности, к их наличию в концентрациях на уровне ПДК и ниже. Для тестирования используется лиофилизированная культура, которая находится в биологически неактивной форме, и для перехода к активному физиологическому состоянию ей требуется время для прохождения нескольких делений клеток. Недостатком следует считать и высокую себестоимость производства биосенсора вследствие использования дорогостоящего процесса лиофилизации. Кроме того, препарат биосенсора поставляется лишь при условии изначального приобретения прибора экологического контроля «Биотоке-10М».A disadvantage of the known strain is not sufficiently high sensitivity to toxic substances, in particular, to their presence in concentrations at the MPC level and below. For testing, a lyophilized culture is used, which is in a biologically inactive form, and it takes time for it to go through several cell divisions to switch to an active physiological state. The disadvantage is the high cost of biosensor production due to the use of the expensive lyophilization process. In addition, the biosensor preparation is supplied only subject to the initial acquisition of the Biotoke-10M environmental monitoring device.
Целью данного изобретения является получение нового, доступного и дешевого штамма бактерий, характеризующегося высокой чувствительностью биолюминесценции к действию токсических веществ самой разнообразной химической природы.The aim of this invention is to obtain a new, affordable and cheap strain of bacteria characterized by high sensitivity of bioluminescence to the action of toxic substances of a wide variety of chemical nature.
Для достижения поставленной цели предложен штамм бактерий Vibrio fischeri ВКПМ В-9580, выделенный из воды Черного моря, отобранной в районе м. Б.Утриш (справка о депонировании прилагается)To achieve this goal, the proposed strain of bacteria Vibrio fischeri VKPM B-9580, isolated from the Black Sea, selected in the area of metro B. Utrish (certificate of deposit attached)
Для выделения штамма биолюминесцентных бактерий из морской воды использовали метод мембранных фильтров. Бактерии концентрировали из анализируемой воды на мембранный фильтр и затем выращивали их на селективных средах для светящихся бактерий. Выделение биолюминесцентных бактерий проводили, визуально анализируя наличие биолюминесценции. При обнаружении люминесценции выделяли чистую культуру бактерий стандартными методами.To isolate a strain of bioluminescent bacteria from seawater, the membrane filter method was used. Bacteria were concentrated from the analyzed water onto a membrane filter and then grown on selective media for luminous bacteria. Bioluminescent bacteria were isolated by visually analyzing the presence of bioluminescence. When luminescence was detected, a pure bacterial culture was isolated by standard methods.
Идентификация штамма была осуществлена на основании изучения его культурально-морфологических и физиолого-биохимических характеристик в соответствии с описанием, данным в определении бактерий Bergey (Определитель бактерий Берджи. Т.1 / Под ред. Дж.Хоулта, Н.Крига, П.Снита, С.Уильямса. - М.: Мир, 1997. - 432 с.; Краткий определитель бактерий Берги. Под ред. Дж.Хоулта. - М.: Мир, 1980. - 496 с.). Для окончательного установления вида штамма выполнена идентификация по генетическим характеристикам во ФГУП «ГосНИИГенетика», ВКПМ. Определение проводили по результатам анализа секвенсов вариабельных участков 16S рДНК. По результатам проведенного анализа тестируемый штамм микроорганизм относится к виду Vibrio fischeri (гомология 99%).The identification of the strain was carried out on the basis of a study of its cultural, morphological and physiological-biochemical characteristics in accordance with the description given in the definition of the Bergey bacteria (Determinant of the Bergey bacteria. T.1 / Edited by J. Holet, N. Krig, P. Snit, S. Williams. - M.: Mir, 1997. - 432 p .; Brief identifier of Bergi bacteria. Edited by J. Hoult. - M .: Mir, 1980. - 496 p.). For the final determination of the strain type, genetic identification was performed at the Federal State Unitary Enterprise “GosNIIGenetika”, VKPM. The determination was carried out according to the analysis of sequencing of variable regions of 16S rDNA. According to the results of the analysis, the test strain of the microorganism belongs to the species Vibrio fischeri (99% homology).
Данный штамм характеризуется следующими культурально-морфологическими признаками: культура представляет собой подвижные, грамотрицательные палочковидные клетки. Размер клеток в пределах (0,5-0,8)×(1,4-2,6) мкм.This strain is characterized by the following cultural and morphological characteristics: the culture is a mobile, gram-negative rod-shaped cells. Cell size in the range of (0.5-0.8) × (1.4-2.6) microns.
Штамм растет на многих натуральных и синтетических средах. На питательном агаре через 1 сутки роста при 20°С культура образует мелкие полупрозрачные колонии округлой формы.The strain grows on many natural and synthetic environments. On nutrient agar, after 1 day of growth at 20 ° C, the culture forms small translucent colonies of a round shape.
На питательном бульоне при 20°С через 1 сутки наблюдается помутнение среды, заметно образование тонкого пристеночного кольца, слабая пленка на поверхности среды. В полужидком агаре наблюдается гомогенный рост культуры.On a nutrient broth at 20 ° C after 1 day, a turbidity of the medium is observed, the formation of a thin wall ring, a weak film on the surface of the medium are noticeable. In semi-liquid agar, a homogeneous culture growth is observed.
Физиолого-биохимические признаки: Факультативный анаэроб. Оксидазный тест положительный. Индол не образует. Катаболизирует глюкозу с образованием кислоты. Сбраживает мальтозу, D-маннозу. Уреазоотрицателен. Аргининдегидролаза отсутствует. Орнитин декарбоксилаза отсутствует. Ацетилметилкарбинол не образует. Сероводород не образует. Цитрат не утилизирует. Оптимум роста 20-25°С, рН 7,2-7,4. Оптимальная концентрация Nad 1,7-3%. Штамм не обладает токсичными и патогенными свойствами. Излучает свет, визуально регистрируемый в темноте.Physiological and biochemical characteristics: Optional anaerobic. The oxidase test is positive. Indole does not form. Catabolizes glucose to form acid. Fermentation of maltose, D-mannose. Urease-negative. Arginine dehydrolase is absent. Ornithine decarboxylase is absent. Acetylmethylcarbinol does not form. Hydrogen sulfide does not form. Citrate does not dispose. The optimum growth is 20-25 ° C, pH 7.2-7.4. The optimal concentration of Nad is 1.7-3%. The strain does not have toxic and pathogenic properties. It emits light visually detected in the dark.
Хранится штамм на питательном агаре с 1,7% NaCl, pH 7.2-7.4.The strain is stored on nutrient agar with 1.7% NaCl, pH 7.2-7.4.
Способ, условия и состав сред для длительного хранения штамма:The method, conditions and composition of the media for long-term storage of the strain:
- хранение бактерий в морозильной камере холодильника-рефрижератора при температуре -18°С в питательном бульоне с 1,7% Nad, содержащем в качестве криопротектора стерильный глицерин;- storage of bacteria in the freezer of the refrigerator-refrigerator at a temperature of -18 ° C in a nutrient broth with 1.7% Nad containing sterile glycerin as a cryoprotectant;
- хранение бактерий в низкотемпературном холодильнике при температуре -60°С в питательном бульоне с 1,7% NaCl, содержащем в качестве криопротектора стерильный глицерин;- storage of bacteria in a low-temperature refrigerator at a temperature of -60 ° C in a nutrient broth with 1.7% NaCl containing sterile glycerin as a cryoprotectant;
- замораживание клеток в жидком азоте в питательном бульоне с 1.7% NaCl, содержащем в качестве криопротектора стерильный глицерин;- freezing cells in liquid nitrogen in a nutrient broth with 1.7% NaCl containing sterile glycerin as a cryoprotectant;
- в герметично запаянных ампулах в лиофильно-высушенном состоянии.- in hermetically sealed ampoules in a freeze-dried state.
Размножение культуры осуществлятся путем пересева на питательный агаре 1,7% NaClCultivation is carried out by reseeding on nutrient agar 1.7% NaCl
Применение на практике данного штамма обусловливается его физиолого-биохимическими особенностями. Штамм предназначен для биотестирования токсичности, так как характеризуется высокой чувствительностью биолюминесценции к действию широкого спектра токсикантов.The practical application of this strain is determined by its physiological and biochemical characteristics. The strain is intended for bioassay of toxicity, as it is characterized by high sensitivity of bioluminescence to the action of a wide range of toxicants.
Пример 1.Example 1
Реализация использования штамма бактерий Vibrio fischeri ВКПМ В-9580 в качестве тест-культуры для определения токсичности факторов среды химического происхождения была проведена на токсикантах ZnSO4, CuSO4, К2Cr2О7, додецилсульфат натрия (ДСН) и фенол.The use of the Vibrio fischeri VKPM B-9580 bacterial strain as a test culture for determining the toxicity of environmental factors of chemical origin was carried out using toxicants ZnSO 4 , CuSO 4 , K 2 Cr 2 O 7 , sodium dodecyl sulfate (SDS) and phenol.
Штамм выращивали на питательном агаре с 1,7% NaCl при температуре 20°С в течение 18 часов. Затем готовили суспензию ночной культуры светящихся бактерий, оптическая плотность которой составляла 0,1 ед. при длине волны 590 нм. Далее полученную суспензию разбавляли в сто раз. Суспензия бактерий готовилась таким образом, чтобы конечная концентрация NaCl составила 1,7%; глюкозы - 0,01% в 0,001 М трис - HCl буфере (рН 7.4).The strain was grown on nutrient agar with 1.7% NaCl at a temperature of 20 ° C for 18 hours. Then a suspension of a night culture of luminous bacteria was prepared, the optical density of which was 0.1 units. at a wavelength of 590 nm. Next, the resulting suspension was diluted a hundred times. A bacterial suspension was prepared so that the final concentration of NaCl was 1.7%; glucose - 0.01% in 0.001 M Tris - HCl buffer (pH 7.4).
Аликвоты этой культуры (900 мкл) переносили в стерильные пробирки и добавляли в них изучаемые вещества в объеме 100 мкл. Содержимое пробирок тщательно перемешивали. Пробирки оставляли при комнатной температуре (20°С) на 30 минут. В процессе инкубации пробирки несколько раз встряхивали. Измерение интенсивности биолюминесценции культур, содержащих анализируемые соединения, а также контрольных культур проводили на люминометре ЛТ-01. Результаты измерений интенсивности биолюминесценции представляли в условных единицах свечения (уес).Aliquots of this culture (900 μl) were transferred to sterile tubes and the studied substances were added in a volume of 100 μl. The contents of the tubes were thoroughly mixed. The tubes were left at room temperature (20 ° C) for 30 minutes. During the incubation, the tubes were shaken several times. The bioluminescence intensity of cultures containing the analyzed compounds, as well as control cultures, was measured using an LT-01 luminometer. The results of measurements of the intensity of bioluminescence were presented in arbitrary units of luminescence (ues).
Оценку токсичности пробы проводили по относительному различию в интенсивности биолюминесценции контрольной и опытной проб. В качестве контроля использовали 1.7% раствор NaCl.Assessment of the toxicity of the sample was carried out by the relative difference in the intensity of bioluminescence of the control and experimental samples. A 1.7% NaCl solution was used as a control.
Для сравнительной оценки чувствительности использовали характеристику ЕС50 (effective concentration) - концентрацию вещества, вызывающую 50%-ое снижение биолюминесценции бактериальной суспензии. Полученные данные по чувствительности штамма светящихся бактерий ко всем исследованным токсикантам представлены в таблице 1. В таблице также приводятся данные по чувствительности к этим же токсикантам lux-штамма E.coli.For a comparative assessment of sensitivity, we used the characteristic EU 50 (effective concentration) - the concentration of the substance, causing a 50% decrease in the bioluminescence of the bacterial suspension. The obtained data on the sensitivity of the strain of luminous bacteria to all the studied toxicants are presented in table 1. The table also provides data on the sensitivity to the same toxicants of the lux strain of E. coli.
Сравнение чувствительности штаммов к исследованным токсическим веществам показало, что штамм Vibrio fischeri ВКПМ В-9580 более чувствителен, чем lux-штамм E.coli (по средним значениям EC50).Comparison of the sensitivity of the strains to the studied toxic substances showed that the Vibrio fischeri VKPM B-9580 strain is more sensitive than the E. coli lux strain (according to average EC 50 values).
Величина ЕС50 для ZnSO4·7Н2О для штамма Vibrio fischeri ВКПМ В-9580 лежит в диапазоне от 4 до 5 мг/л (концентрация цинка составляет от 0,904 до 1,13 мг/ л), а минимальная концентрация ЕС50 для CuSO4·5H2O составляет 2 мг/ л (соответственно, концентрация меди составляет 0.512 мг/л).The EC 50 for ZnSO 4 · 7H 2 O for the Vibrio fischeri strain VKPM B-9580 lies in the range from 4 to 5 mg / L (zinc concentration is from 0.904 to 1.13 mg / L), and the minimum EC 50 for CuSO 4 · 5H 2 O is 2 mg / L (respectively, the copper concentration is 0.512 mg / L).
Для бихромата калия величина ЕС50 у штамма Vibrio fischeri ВКПМ В-9580 находится в диапазоне концентраций от 10 до 50 мг/л.For potassium dichromate, the EC 50 value of the Vibrio fischeri VKPM B-9580 strain is in the concentration range from 10 to 50 mg / L.
Для фенола величина EC50 у штамма Vibrio fischeri ВКПМ В-9580 составила 125-150 мг.For phenol, the EC 50 value of the Vibrio fischeri VKPM B-9580 strain was 125-150 mg.
Сравнение чувствительности биолюминесценции штамма Vibrio fischeri ВКПМ В-9580 к токсическим веществам с чувствительностью lux-штамма E.coli показало, что штамм Vibrio fischeri ВКПМ В-9580 более чувствителен к CuSO4 (примерно в 3 раза), ДСП (в 1,5 раза), К2Cr2О7 (примерно в 5 раз), а также к фенолу (примерно в 2 раза).Comparison of the sensitivity of the bioluminescence of the strain Vibrio fischeri VKPM B-9580 to toxic substances with the sensitivity of the lux strain E.coli showed that the strain Vibrio fischeri VKPM B-9580 is more sensitive to CuSO 4 (about 3 times), chipboard (1.5 times ), K 2 Cr 2 O 7 (approximately 5 times), as well as phenol (approximately 2 times).
Это свидетельствует о перспективности использования штамма Vibrio fischeri ВКПМ В-9580 для определения токсичности водных сред.This indicates the promise of using the strain Vibrio fischeri VKPM B-9580 to determine the toxicity of aqueous media.
Пример 2.Example 2
Большой интерес представляет реакция светящихся бактерий на низкие концентрации загрязнителей, сопоставимые с уровнем ПДК и ниже, что позволяет использовать этот штамм, как тест-культуру при определении очень низких концентраций загрязнителей.Of great interest is the reaction of luminous bacteria to low concentrations of pollutants, comparable with the MPC level and below, which allows the use of this strain as a test culture in determining very low concentrations of pollutants.
Были проведены измерения чувствительности биолюминесценции выделенных штаммов к действию токсических факторов химического происхождения в очень низкой концентрации. Использовались следующие токсиканты: ZnSO4, CuSO4, К2Cr2O7, ДСП и фенол.The bioluminescence sensitivity of the isolated strains to the action of toxic factors of chemical origin in very low concentrations was measured. The following toxicants were used: ZnSO 4 , CuSO 4 , K 2 Cr 2 O 7 , particleboard and phenol.
Тестирование токсичности проводили, как описывается в примере 1.Toxicity testing was performed as described in example 1.
В таблице 2 представлены данные по чувствительности выделенных штаммов светящихся бактерий ко всем исследованным токсикантам в диапазоне концентраций от 0,00001 мг/л до 1,0 мг/л.Table 2 presents data on the sensitivity of the isolated strains of luminous bacteria to all the studied toxicants in the concentration range from 0.00001 mg / L to 1.0 mg / L.
Как видно из таблицы 2, медь в концентрации 0,001-0,005 мг/л (ПДК меди - 0,005 мг/л для морской воды) повышает люминесценцию штамма в пределах 12%. При концентрациях меди, начиная с 1 мг и выше, наблюдается заметное тушение биолюминесценции.As can be seen from table 2, copper in a concentration of 0.001-0.005 mg / l (MAC of copper - 0.005 mg / l for sea water) increases the luminescence of the strain within 12%. At copper concentrations starting from 1 mg and above, a noticeable quenching of bioluminescence is observed.
Цинк в концентрации 0.001-0.01 мг/л (ПДК цинка - 0.05 мг/л для морской воды) повышает интенсивность биолюминесценции штамма Vibrio fischeri ВКПМ В-9580 в пределах 20-24%.Zinc at a concentration of 0.001-0.01 mg / l (maximum concentration of zinc - 0.05 mg / l for sea water) increases the intensity of bioluminescence of the strain Vibrio fischeri VKPM B-9580 within 20-24%.
Интенсивность биолюминесценции штамма Vibrio fischeri ВКПМ В-9580 под влиянием бихромата калия (ПДК 0,05 мг/л), в диапазоне концентраций 0,00001-1,0 мг/л, изменялась незначительно - максимально в пределах 20%.The intensity of the bioluminescence of the strain Vibrio fischeri VKPM B-9580 under the influence of potassium dichromate (MPC 0.05 mg / l), in the concentration range of 0.00001-1.0 mg / l, changed slightly - to the maximum within 20%.
Додецилсульфат натрия (ПДК 0,5 мг/л), в концентрации 0,00001-1,0 мг/л повысил интенсивность люминесценции штамма Vibrio fischeri ВКПМ В-9580 в среднем на 25% (максимум отмечен в концентрации 0.01 мг/л - на 40%).Sodium dodecyl sulfate (MPC 0.5 mg / L), at a concentration of 0.00001-1.0 mg / L, increased the luminescence intensity of the Vibrio fischeri VKPM B-9580 strain by an average of 25% (the maximum was noted at a concentration of 0.01 mg / L - by 40%).
Как следует из таблицы 2, фенол в концентрациях 0,00001-1,0 мг/л в целом оказывал сходное с фенолом и бихроматом калия влияние на интенсивность свечения штамма. При концентрация фенола на уровне 0.001-0.01 мг/л (ПДК фенола 0,001 мг/л) свечение штамма Vibrio fischeri ВКПМ В-9580 индуцировалось на 25%. В концентрации 1 мг/л свечение возрастало на 38%.As follows from table 2, phenol in concentrations of 0.00001-1.0 mg / l in General had a similar effect with phenol and potassium dichromate on the intensity of the glow of the strain. At a phenol concentration of 0.001–0.01 mg / L (MPC of phenol 0.001 mg / L), fluorescence of the Vibrio fischeri VKPM B-9580 strain was induced by 25%. At a concentration of 1 mg / l, the glow increased by 38%.
Таким образом, низкие концентрации токсикантов вызывают у бактерий стабильную индукцию биолюминесценции. Следует отметить, что заметная индукция свечения штамма Vibrio fischeri ВКПМ В-9580 (на 20-40%) наблюдалась на уровне ПДК токсикантов (7), либо значительно ниже ПДК (в 5-10 раз). Более высокие концентрации загрязнителей вызывали ингибирование биолюминесценции.Thus, low concentrations of toxicants cause stable induction of bioluminescence in bacteria. It should be noted that a noticeable induction of the luminescence of the strain Vibrio fischeri VKPM B-9580 (by 20-40%) was observed at the MPC level of toxicants (7), or significantly lower than the MPC (5-10 times). Higher concentrations of pollutants caused inhibition of bioluminescence.
Полученные данные свидетельствует о высокой чувствительности штамма Vibrio fischeri ВКПМ В-9580 и перспективности его использования для определения токсичности компонентов водной среды.The data obtained indicate a high sensitivity of the strain Vibrio fischeri VKPM B-9580 and the prospects of its use for determining the toxicity of components of the aquatic environment.
Пример 3.Example 3
Были проведены эксперименты по использованию штамма бактерий Vibrio fischeri ВКПМ В-9580 в качестве тест-культуры на токсичность нефтепродуктов.Experiments were conducted on the use of the bacterial strain Vibrio fischeri VKPM B-9580 as a test culture for the toxicity of petroleum products.
Для определения чувствительности штамма Vibrio fischeri ВКПМ В-9580 к нефтепродуктам апробированы нефть, дизельное топливо и подсланевая (льяльная) вода из машинного отделения судна в концентрациях от 0,001 мг/л до 1,0 г/л.To determine the sensitivity of the Vibrio fischeri VKPM V-9580 strain to petroleum products, oil, diesel fuel, and sub-bilge (bilge) water from the engine room of the vessel were tested in concentrations from 0.001 mg / l to 1.0 g / l.
Тестирование токсичности проводили, как описывается в примере 1.Toxicity testing was performed as described in example 1.
Полученные данные по чувствительности биолюминесценции штамма Vibrio fischeri ВКПМ В-9580 ко всем исследованным нефтепродуктам представлены в таблице 3. В таблице также приводятся данные по чувствительности биолюминесценции lux-штамма E.coli к тем же токсикантам.The obtained data on the bioluminescence sensitivity of the Vibrio fischeri VKPM B-9580 strain to all studied petroleum products are presented in Table 3. The table also presents data on the bioluminescence sensitivity of the E. coli lux strain to the same toxicants.
Нефть в концентрации 0,01 мг/л, что значительно ниже ПДК нефти (0,05 мг/л) стимулировала свечение Vibrio fischeri ВКПМ В-9580 на 53%.Oil at a concentration of 0.01 mg / L, which is significantly lower than the MPC of oil (0.05 mg / L) stimulated the luminescence of Vibrio fischeri VKPM B-9580 by 53%.
трольCon
troll
трольCon
troll
Льяльные воды, дизельное топливо также увеличивали свечение этого штамма в концентрации 0,01 мг/л (на 30-55%, соответственно). Индукция свечения наблюдалась в диапазоне испытанных концентраций нефтепродуктов от 0,001 до 0,1 мг/л.Bilge water, diesel fuel also increased the glow of this strain at a concentration of 0.01 mg / l (30-55%, respectively). Luminescence induction was observed in the range of tested concentrations of petroleum products from 0.001 to 0.1 mg / L.
Сравнение чувствительности штамма Vibrio fischeri ВКПМ В-9580 и lux-штамма E.coli свидетельствует о более высокой чувствительности штамма Vibrio fischeri ВКПМ В-9580 и перспективности его использования для определения токсичности компонентов среды водоемов.A comparison of the sensitivity of the strain Vibrio fischeri VKPM B-9580 and the lux strain of E. coli indicates a higher sensitivity of the strain Vibrio fischeri VKPM B-9580 and the prospects of its use for determining the toxicity of the components of the environment of water bodies.
Пример 4.Example 4
Для определения токсичности природных проб с помощью штамма Vibrio fischeri ВКПМ В-9580 были взяты образцы донных отложений морских водоемов. Один образец с высоким содержанием нефтепродуктов и тяжелых металлов был отобран в районе с высокой антропогенной нагрузкой на акватории одного из портов Азовского моря. Другой грунт для биотестирования с аналогичным гранулометрическим составом был отобран в условно чистом морском лимане, изолированном от моря естественной галечной косой (в 5 км от м. Б.Утриш).To determine the toxicity of natural samples using the strain Vibrio fischeri VKPM B-9580, samples of bottom sediments of marine water bodies were taken. One sample with a high content of oil products and heavy metals was taken in an area with a high anthropogenic load in the waters of one of the ports of the Sea of Azov. Another soil for biotesting with a similar particle size distribution was selected in a conditionally clean sea estuary isolated from the sea by a natural pebble scythe (5 km from B. Utrish metro station).
Для проведения тестирования экстракты грунтов готовились на воде.For testing, soil extracts were prepared on water.
Тестирование токсичности проводили, как описывается в примере 1.Toxicity testing was performed as described in example 1.
В таблице 4 представлены результаты биотестирования токсичности усредненных проб грунтов, отобранных в морском лимане и на акватории порта.Table 4 presents the results of the toxicity bioassay of averaged soil samples taken in the sea estuary and in the port.
Как видно из данных, представленных в таблице 4, интенсивность свечения водного экстракта донных отложений из лимана практически не отличалась от контроля, а интенсивность биолюминесценции пробы с экстрактом грунта из акватории морского порта превышала контрольный уровень на 57,4%. Полученные данные свидетельствуют о чувствительности биолюминесценции штамма Vibrio fischeri ВКПМ В-9580 к действию токсикантов, присутствующих в донных отложениях морских водоемов.As can be seen from the data presented in table 4, the luminescence intensity of the aqueous extract of bottom sediments from the estuary did not practically differ from the control, and the intensity of bioluminescence of the sample with soil extract from the seaport waters exceeded the control level by 57.4%. The data obtained indicate the sensitivity of the bioluminescence of the strain Vibrio fischeri VKPM B-9580 to the action of toxicants present in the bottom sediments of marine water bodies.
Таким образом, тестирование токсичности одного из основных компонентов среды - донных отложений, продемонстрировало возможность использования предложенного штамма Vibrio fischeri ВКПМ В-9580 в качестве тест-культуры.Thus, testing the toxicity of one of the main components of the medium - bottom sediments, demonstrated the possibility of using the proposed strain of Vibrio fischeri VKPM B-9580 as a test culture.
ЛитератураLiterature
1. И.Ю.Малыгина, А.М.Кацев. Светящиеся бактерии Черного и Азовского морей. Экология моря. 2003. Вып.64.1. I.Yu. Malygina, A.M. Katsev. Luminous bacteria of the Black and Azov Seas. Ecology of the sea. 2003. Issue 64.
2. КНД 211.1.4.060-97. Визначення токсичностi води на бактерiях Photobacterium phosphoreum (Cohn) Ford. - 21.05.97.2. KND 211.1.4.060-97. Recognized toxicity in the bacteria Photobacterium phosphoreum (Cohn) Ford. - 05/21/97.
3. ТУ 6-09-20-236-93 (прототип).3. TU 6-09-20-236-93 (prototype).
4. МР №11-1/134-09. Определение общей токсичности почв по интенсивности биолюминесценции бактерий.4. MP No. 11-1 / 134-09. Determination of total soil toxicity by the intensity of bacterial bioluminescence.
5. МР №11-1/131-09. Определение токсичности химических соединений, полимеров, материалов и изделий с помощью люминесцентного бактериального теста5. MP No. 11-1 / 131-09. Determination of toxicity of chemical compounds, polymers, materials and products using a luminescent bacterial test
6. МР №11-1/133-09. Методика экспрессного определения токсичности воды с помощью люминесцентного бактериального теста «Эколюм».6. MP No. 11-1 / 133-09. Methodology for the rapid determination of water toxicity using the luminescent bacterial test "Ekolyum".
7. Перечень рыбохозяйственных нормативов: предельно допустимых концентраций (ПДК) и ориентировочно безопасных уровней воздействия (ОБУВ) вредных веществ для воды, водных объектов, имеющих рыбохозяйственное значение - М.:ВНИРО, 1999. - 304 С.7. The list of fishery standards: maximum permissible concentrations (MPC) and tentatively safe exposure levels (SEC) of harmful substances for water, water bodies of fishery value - M.: VNIRO, 1999. - 304 C.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2007130940/13A RU2346035C1 (en) | 2007-08-13 | 2007-08-13 | Vibrio fischeri BACTERIA STRAIN, USED AS TEST-CULTURE FOR DETERMINING TOXIC LEVEL OF ENVIRONMENTAL MEDIA |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2007130940/13A RU2346035C1 (en) | 2007-08-13 | 2007-08-13 | Vibrio fischeri BACTERIA STRAIN, USED AS TEST-CULTURE FOR DETERMINING TOXIC LEVEL OF ENVIRONMENTAL MEDIA |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2346035C1 true RU2346035C1 (en) | 2009-02-10 |
Family
ID=40546715
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2007130940/13A RU2346035C1 (en) | 2007-08-13 | 2007-08-13 | Vibrio fischeri BACTERIA STRAIN, USED AS TEST-CULTURE FOR DETERMINING TOXIC LEVEL OF ENVIRONMENTAL MEDIA |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2346035C1 (en) |
Cited By (3)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101915759A (en) * | 2010-07-20 | 2010-12-15 | 同济大学 | Vibrio qinghaiensis Q67 based long-term microplate toxicity analyzing method of environmental pollutant |
RU2519070C1 (en) * | 2013-05-08 | 2014-06-10 | Федеральное Государственное унитарное предприятие Азовский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства | Method of evaluation of toxicity of environmental components of azov and black seas |
RU2688745C1 (en) * | 2018-06-25 | 2019-05-22 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Санкт-Петербургский государственный технологический институт (технический университет)" | Method for determining toxicity of samples |
-
2007
- 2007-08-13 RU RU2007130940/13A patent/RU2346035C1/en not_active IP Right Cessation
Cited By (4)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN101915759A (en) * | 2010-07-20 | 2010-12-15 | 同济大学 | Vibrio qinghaiensis Q67 based long-term microplate toxicity analyzing method of environmental pollutant |
CN101915759B (en) * | 2010-07-20 | 2012-11-07 | 同济大学 | Vibrio qinghaiensis Q67 based long-term microplate toxicity analyzing method of environmental pollutant |
RU2519070C1 (en) * | 2013-05-08 | 2014-06-10 | Федеральное Государственное унитарное предприятие Азовский научно-исследовательский институт рыбного хозяйства | Method of evaluation of toxicity of environmental components of azov and black seas |
RU2688745C1 (en) * | 2018-06-25 | 2019-05-22 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Санкт-Петербургский государственный технологический институт (технический университет)" | Method for determining toxicity of samples |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Korhonen et al. | Survival of Escherichia coli and Campylobacter jejuni in untreated and filtered lake water | |
Rodriguez-Valera et al. | Variation of environmental features and microbial populations with salt concentrations in a multi-pond saltern | |
Chee et al. | Optical fiber biosensor for the determination of low biochemical oxygen demand | |
Ayitso et al. | Isolation and identification by morphological and biochemical methods of antibiotic producing microorganisms from the gut of Macrotermes michaelseni in Maseno, Kenya | |
Burke et al. | The ecology of photosynthetic bacteria in Burton lake, Vestfold Hills, Antarctica | |
Bolelli et al. | The management and exploitation of naturally light-emitting bacteria as a flexible analytical tool: A tutorial | |
Azhar et al. | Isolation and biochemical characterization of Halophiles from Sahastradhara region, Dehradun, India | |
Bera et al. | Screening and identification of newly isolated Pseudomonas sp. for biodegrading the textile azo dye CI Procion Red H‐3B | |
Günther et al. | Fixation procedures for flow cytometric analysis of environmental bacteria | |
RU2346035C1 (en) | Vibrio fischeri BACTERIA STRAIN, USED AS TEST-CULTURE FOR DETERMINING TOXIC LEVEL OF ENVIRONMENTAL MEDIA | |
Yoshida et al. | An improved redox dye-staining method using 5-cyano-2, 3-ditoryl tetrazolium chloride for detection of metabolically active bacteria in activated sludge | |
CN113913326A (en) | Saccharomycopsis oryzae HN05 and application thereof | |
Nybroe | Assessment of metabolic activity of single bacterial cells—new developments in microcolony and dehydrogenase assays | |
CN110684688B (en) | Shewanella ST2 and application thereof in azo dye degradation | |
RU2342434C1 (en) | Vibrio fischeri bacteria strain as test culture for toxicity assessment of environment objects | |
Kisand et al. | Bacterioplankton strategies for leucine and glucose uptake after a cyanobacterial bloom in an eutrophic shallow lake | |
Siddque et al. | Isolation and identification of orange M2R and green GS dye decolourizing Bacteria from textile sludge (soil) samples and determination of their optimum decolourization conditions | |
Shaaban et al. | Distribution of bacteria in Lake Qarun, AL Fayoum, Egypt (2014-2015) in relation to its physical and hydrochemical characterization. | |
Takii et al. | Vertical distribution in and isolation of bacteria from Lake Vanda: an Antarctic lake | |
CN110684687B (en) | Enterococcus faecalis ST5 and application thereof in azo dye degradation | |
CN111187728B (en) | Clostridium bifidum ST12 and application thereof in azo dye degradation | |
Alenina et al. | The poly (vinyl alcohol)-immobilized photobacteria for toxicology monitoring | |
CN113832082A (en) | Method for rapidly separating and purifying photosynthetic bacteria | |
RU2534819C2 (en) | Vibrio aquamarinus strain, method of determining sample toxicity using same and testing culture for determining sample toxicity | |
Ainon et al. | Biological characterization of Rhodomicrobium vannielii isolated from a hot spring at Gadek, Malacca, Malaysia |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20120814 |