RU2342956C1 - Method of gingival liquid recover - Google Patents
Method of gingival liquid recover Download PDFInfo
- Publication number
- RU2342956C1 RU2342956C1 RU2007124283/14A RU2007124283A RU2342956C1 RU 2342956 C1 RU2342956 C1 RU 2342956C1 RU 2007124283/14 A RU2007124283/14 A RU 2007124283/14A RU 2007124283 A RU2007124283 A RU 2007124283A RU 2342956 C1 RU2342956 C1 RU 2342956C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- gingival
- cells
- fluid
- sulcus
- target
- Prior art date
Links
Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к медицине, а именно к стоматологии, и может быть использовано для оценки реакции тканей пародонта на микробный фактор.The invention relates to medicine, namely to dentistry, and can be used to assess the response of periodontal tissues to a microbial factor.
Диагностика и лечение заболеваний тканей пародонта остается одной из ведущих проблем в стоматологии, что определяется высокой распространенностью данной патологии среди населения. В современной пародонтологии существует ряд клинико-лабораторных методов, позволяющих диагностировать ранние проявления заболевания, осуществлять контроль эффективности лечения и мониторинг пародонтологического статуса. Одним из таких методов является цитологический метод [1, 2, 3].Diagnosis and treatment of periodontal tissue diseases remains one of the leading problems in dentistry, which is determined by the high prevalence of this pathology among the population. In modern periodontology, there are a number of clinical and laboratory methods that allow you to diagnose early manifestations of the disease, monitor the effectiveness of treatment and monitor periodontal status. One of such methods is the cytological method [1, 2, 3].
Известен способ забора цитологического материала для оценки состояния пародонта [4]. Отпечатки с десны получают с помощью мишени: клиновидного фрагмента резинки-ластика с размером рабочей части не более 1 мм. Мишени хранят в чашках Петри, залитых 50% раствором этилового спирта. Перед изготовлением отпечатков с десны мишень извлекают из чашки Петри, высушивают струей воздуха из воздушного пистолета и затем легко прижимают к десне в области зубодесневого соединения или пародонтального кармана с язычной поверхности обследуемого зуба через 4±1 часа после чистки зубов.A known method of sampling cytological material to assess the status of periodontal [4]. Imprints from the gums are obtained using the target: a wedge-shaped fragment of an eraser gum with a working part size of not more than 1 mm. Targets are stored in Petri dishes filled with a 50% solution of ethyl alcohol. Before making prints from the gum, the target is removed from the Petri dish, dried with a stream of air from an air gun and then easily pressed to the gum in the area of the gingival junction or periodontal pocket from the lingual surface of the examined tooth 4 ± 1 hour after brushing.
Отпечатки наносят на заранее подготовленное посредством обезжиривания предметное стекло, отмаркированное номером протокола цитологического исследования и разметкой в соответствии с областью забора материала. На каждом стекле помещают по 3-4 отпечатка в каждом квадранте (область 4-6 зубов). Стекло высушивают и окрашивают по методике Романовского-Гимзе.The prints are applied to a slide prepared in advance by degreasing, marked with the protocol number of the cytological examination and marking in accordance with the area of the material intake. On each glass, 3-4 prints are placed in each quadrant (area of 4-6 teeth). The glass is dried and stained according to the method of Romanovsky-Giemsa.
Цитологические препараты изучают под микроскопом с помощью окуляров ×10 (или ×20) и объектива ×40. Подсчет клеток проводят в 3-5 полях в эпителиальной и соединительнотканной клеточных популяциях. При подсчете эпителиальных клеток учитывают их общее число и клетки с признаками цитопатологии: базофилия цитоплазмы, дистрофические изменения (вакуолизация цитоплазмы, деструкция ядра и т.д.), «фагирующие» клетки, X-клетки и выводят относительные показатели. Затем их относительные средние значения используют для вычисления индекса деструкции (ИД). Соединительнотканные клетки: лейкоциты, моноциты - порознь сохранившие свою цитоплазму и голоядерные элементы, фибробласты (эндотелиоподобные клетки) подсчитывают в абсолютных цифрах, выводят средние показатели, по которым вычисляют воспалительно-деструктивный индекс (ВДИ).Cytological preparations are examined under a microscope using eyepieces × 10 (or × 20) and a lens × 40. Cell counting is carried out in 3-5 fields in the epithelial and connective tissue cell populations. When counting epithelial cells, their total number and cells with signs of cytopathology are taken into account: cytoplasm basophilia, dystrophic changes (cytoplasm vacuolization, nuclear destruction, etc.), “phage” cells, X-cells, and relative indicators are derived. Then their relative average values are used to calculate the destruction index (ID). Connective tissue cells: leukocytes, monocytes - separately preserving their cytoplasm and holonuclear elements, fibroblasts (endothelial-like cells) are counted in absolute numbers, average values are derived by which the inflammatory destructive index (VDI) is calculated.
Зубодесневая бороздка представляет собой щелевидное пространство, и использование фрагмента резинки-ластика с размером рабочей части до 1 мм обусловливает травматический эффект. При этом осуществляют забор не столько десневой жидкости, сколько соединительнотканных клеток стенок зубодесневой борозды.The gingival groove is a slit-like space, and the use of a fragment of an eraser gum with a working part size of up to 1 mm causes a traumatic effect. At the same time, not so much gingival fluid is taken as connective tissue cells of the walls of the gingival sulcus.
Известен «внутрижелобковый» способ забора десневой жидкости с помощью полосок фильтровальной бумаги (N.Brill, В.Krasse, 1958) [5].Known "intragastric" method of collecting gingival fluid using strips of filter paper (N.Brill, B. Krasse, 1958) [5].
Подлежащую исследованию область осторожно очищают от зубного налета, изолируют ватными валиками от слюны и высушивают ватными тампонами или струей воздуха, после этого полоски фильтровальной бумаги шириной 1-4 мм и длиной 10-15 мм вводят в десневой желобок на различную глубину. Концы полосок для более удобного введения в желобок рекомендуют делать заостренными, округлыми или срезать под углом 45°.The area to be examined is carefully cleaned of plaque, insulated with cotton rolls from saliva and dried with cotton swabs or a stream of air, after which strips of filter paper 1-4 mm wide and 10-15 mm long are inserted into the gingival groove to various depths. The ends of the strips for more convenient insertion into the groove are recommended to be pointed, rounded or cut at an angle of 45 °.
По данной методике полоску вводят на всю глубину десневого желобка, чтобы исключить механическое раздражение тканей желобка и предупредить увеличение тока жидкости, рекомендуют помещать конец бумажной полоски на устье желобка или не доводить его до дна.According to this technique, a strip is introduced to the entire depth of the gingival groove to prevent mechanical irritation of the groove tissue and to prevent an increase in fluid flow; it is recommended to place the end of the paper strip on the mouth of the groove or not to bring it to the bottom.
Количество десневой жидкости определяют путем взвешивания бумажных полосок или измерения площади пропитывания. Для выявления зоны пропитывания используют 0,2% спиртовой раствор нингидрина, который окрашивает десневую жидкость в голубой или пурпурный цвет. Данный способ используют как для определения количества, так и свойств десневой жидкости. Полоска фильтровальной бумаги обладает адсорбцией за счет пористости, что обусловливает потерю некоторой части материала (клеточных элементов десневой жидкости) при изготовлении препаратов, кроме того, при завешивании полосок иногда наблюдается испарение десневой жидкости.The amount of gingival fluid is determined by weighing paper strips or by measuring the area of impregnation. To identify the impregnation zone using a 0.2% alcohol solution of ninhydrin, which stains the gingival fluid in blue or purple. This method is used both to determine the quantity and properties of the gingival fluid. A strip of filter paper has adsorption due to porosity, which causes the loss of some part of the material (cellular elements of the gingival fluid) in the manufacture of preparations, in addition, when hanging the strips, gum fluid evaporation is sometimes observed.
Известен способ забора десневой жидкости для оценки компонентов местного иммунитета (полости рта) [6].A known method of sampling gingival fluid to assess the components of local immunity (oral cavity) [6].
Десневую жидкость забирают из 2-3 участков зубодесневой борозды одного зуба при помощи шприц-тюбика с иглой, у которой острие зашлифовано так, что представляет собой закругленный конец. Для взятия десневой жидкости закругленную иглу шприца-тюбика с небольшим количеством раствора Хенкса осторожно вводят в десневую борозду и выпускают в нее каплю раствора. На следующем этапе иглу шприц-тюбика прижимают к десневой стенке борозды и с небольшим усилием проводят вдоль него, осторожно всасывают содержимое в иглу. Полученную жидкость и материал соскоба вносят в лунки планшета, содержащие 0,2 мл раствора Хенкса, интенсивно ресуспендируют. Клетки десневой жидкости осаждают на дно лунки центрифугированием при 200 об/мин в течение 5 мин. Надосадочную жидкость осторожно отсасывают пипеткой, а к осадку приливают 0,1 мл раствора Хенкса и вновь ресуспендируют. Приготовление препаратов: в лунки приливают 0,025 мл фиксатора, выдерживают 10 мин, затем надосадочную жидкость удаляют встряхиванием. В каждую лунку планшета заливают по 0,05 мл краски, после чего сверху накладывают Тацпленку, покрытую дубленым слоем желатина, затем к планшету прикладывают лист поролона толщиной 0,5 см и крышку, которую плотно прижимают к планшету при помощи винтовых зажимов. Осадки клеток ресуспендируют, затем планшет центрифугируют вверх дном лунок при 200-250 об/мин в течение 5-10 мин для осаждения клеток на пленку. Планшет вынимают из центрифуги, переворачивают и оставляют на 5-10 мин для стекания жидкости из лунки. После этого пленку высушивают, затем немедленно промывают водопроводной водой, промокают фильтровальной бумагой и вновь сушат воздухом. На высушенную пленку с препаратами наносят слой канадского бальзама в ксилоле и прижимают ее к предметному стеклу. На одном стекле помещается до 24 препаратов.Gingival fluid is taken from 2-3 parts of the gingival sulcus of one tooth with a syringe tube with a needle, in which the point is polished so that it is a rounded end. To take the gingival fluid, the rounded needle of the syringe tube with a small amount of Hanks solution is carefully inserted into the gingival sulcus and a drop of solution is released into it. At the next stage, the needle of the syringe tube is pressed against the gingival wall of the sulcus and, with little effort, is carried along it, the contents are carefully sucked into the needle. The resulting liquid and scraping material are introduced into the wells of the tablet containing 0.2 ml of Hanks solution, intensively resuspended. Gingival fluid cells are sedimented to the bottom of the well by centrifugation at 200 rpm for 5 minutes. The supernatant is carefully aspirated with a pipette, and 0.1 ml of Hanks solution is added to the precipitate and resuspended. Preparation of preparations: 0.025 ml of fixative is poured into the wells, incubated for 10 minutes, then the supernatant is removed by shaking. 0.05 ml of paint is poured into each well of the tablet, after which a Tatple film coated with a tanned layer of gelatin is placed on top, then a foam sheet of 0.5 cm thickness and a cover are applied to the tablet, which is tightly pressed to the tablet using screw clamps. Cell pellets are resuspended, then the plate is centrifuged upside down at 200-250 rpm for 5-10 minutes to pellet the cells onto the film. The tablet is removed from the centrifuge, turned over and left for 5-10 minutes to drain the liquid from the well. After that, the film is dried, then immediately washed with tap water, blotted with filter paper and air dried again. A layer of Canadian balsam in xylene is applied to the dried film with the preparations and pressed to a glass slide. On one glass, up to 24 drugs are placed.
В препаратах подсчитывают формулу смыва (процентное соотношение эпителиальных клеток:нейтрофилов:лимфоцитов, э:н:л).In the preparations, the washout formula is calculated (percentage of epithelial cells: neutrophils: lymphocytes, e: n: l).
Получают не столько десневую жидкость, сколько смыв из десневого желобка и материал соскоба, взвесь клеток десневой жидкости и соединительнотканные клетки стенок или дна зубодесневой борозды. Данный способ может приводить к раздражению или травме зубодесневой борозды. Метод трудоемкий, требующий временных затрат.They receive not so much gingival fluid as flushing from the gingival groove and scraping material, a suspension of gingival fluid cells and connective tissue cells of the walls or the bottom of the gingival sulcus. This method can lead to irritation or trauma to the gingival sulcus. The method is laborious, time consuming.
Известен способ забора десневой жидкости для определения защитных факторов десневой жидкости, взятый в качестве прототипа.A known method of sampling gingival fluid to determine the protective factors of gingival fluid, taken as a prototype.
Десневую жидкость получают при помощи стерильных нитей (длина 81 мм), приготовленных из марли. Предварительно тщательно высушивают окружающие ткани стерильными тампонами, затем при помощи зонда с тупым концом помещают марлевые нити на дно десневого желобка либо клинического кармана в области зубов 11, 13, 26, 24, 31, 36, 44, 46 с контактных поверхностей на 5-8 мин, изолируя исследуемый участок от слюны марлевыми тампонами. Нити извлекают пинцетом и вращательными движениями по стеклу готовят мазки-отпечатки. После высушивания и фиксации мазки окрашивают по Романовскому-Гимзе. Под микроскопом изучают состав экссудата, оценка которого позволяет получить представление о защитной реакции тканей пародонта (наличие или отсутствие фагоцитоза, незавершенный фагоцитоз). Определяют качественное состояние и количество нейтрофилов, стадию их дистрофии, состояние других клеточных элементов: лимфоцитов, полибластов, эпителиальных и плазматических клеток [7].Gingival fluid is obtained using sterile threads (length 81 mm) made from gauze. The surrounding tissues are preliminarily thoroughly dried with sterile swabs, then gauze threads are placed on the bottom of the gingival groove or in the clinical pocket in the tooth area 11, 13, 26, 24, 31, 36, 44, 46 with contact surfaces 5-8 using a probe with a blunt end min, isolating the study area from saliva with gauze swabs. The filaments are removed with tweezers and rotary motions along the glass prepare smears-prints. After drying and fixing, smears are stained according to Romanovsky-Giemsa. The composition of the exudate is studied under a microscope, the assessment of which allows you to get an idea about the protective reaction of periodontal tissues (the presence or absence of phagocytosis, incomplete phagocytosis). The qualitative state and number of neutrophils, the stage of their dystrophy, the state of other cellular elements: lymphocytes, polyblasts, epithelial and plasma cells are determined [7].
Способ травматичен, так как марлевая нить находится в зубодесневой борозде 5-8 мин, это может приводить к раздражению стенок и дна зубодесневой борозды и увеличению продукции десневой жидкости. Марлевая нить обладает адсорбцией за счет гидрофильности, что обусловливает потерю материала (клеток десневой жидкости) при изготовлении препаратов. Способ требует временных затрат врача и пациента.The method is traumatic, since the gauze thread is in the gingival sulcus for 5-8 minutes, this can lead to irritation of the walls and the bottom of the gingival sulcus and increase the production of gingival fluid. The gauze thread has adsorption due to hydrophilicity, which leads to the loss of material (gingival fluid cells) in the manufacture of preparations. The method requires time-consuming doctor and patient.
Для повышения эффективности, снижения травматичности и экономии времени при проведении способа забор десневой жидкости осуществляют с помощью полоски из лавсановой пластинки клиновидной формы. Рабочая часть округлая, ширина - 1,0-1,5 мм, высота - 0,8-1,0 мм, толщина - 50-70 мкм, свободный конец: ширина - 10 мм, высота до 25 мм.To increase efficiency, reduce trauma and save time when carrying out the method, the gingival fluid is taken using a strip of wedge-shaped dacron plate. The working part is rounded, width - 1.0-1.5 mm, height - 0.8-1.0 mm, thickness - 50-70 microns, free end: width - 10 mm, height up to 25 mm.
Способ осуществляют следующим образом.The method is as follows.
Полоски готовят из лавсановой пластинки и хранят в банках с притертыми крышками в 70% растворе этилового спирта. Непосредственно перед забором десневой жидкости обследуемую область (16, 11, 26 - с вестибулярной поверхности, а 36, 31, 46 - с язычной) изолируют от слюны стерильными ватными валиками. На следующем этапе - полоски из лавсановой пластинки извлекают из банки и высушивают ватным тампоном, а затем осторожно, с помощью стоматологического пинцета вводят на 3-5 с в зубодесневую борозду без усилий и касания ее стенок и дна (чтобы избежать травмы и соскоба клеток). Забор материала проводят из трех разных участков зубодесневой борозды (среднего, медиального и латерального) в области обследуемого зуба через 3-5 часов после чистки зубов (при условии, что обследуемый не употреблял пищу в данный временной промежуток), каждый раз используя новую полоску из лавсановой пластинки. Мазки готовят из полученных капелек десневой жидкости на заранее подготовленном обезжиренном предметном стекле с разметкой в виде сегментов, с указанием области забора материала (16, 11, 26, 36, 31, 46), а также кода пациента, произведенных с помощью стеклографа. В каждом сегменте предметного стекла удается поместить по 6 мазков десневой жидкости. Препараты высушивают при комнатной температуре и окрашивают по методике Романовского-Гимзе.The strips are prepared from a dacron plate and stored in jars with ground lids in a 70% solution of ethyl alcohol. Immediately before the gingival fluid intake, the examined area (16, 11, 26 from the vestibular surface, and 36, 31, 46 from the lingual) is isolated from saliva with sterile cotton rolls. At the next stage, strips from the dacron plate are removed from the can and dried with a cotton swab, and then carefully, using dental tweezers, are inserted for 3-5 seconds into the gingival sulcus without effort and touching its walls and bottom (to avoid injury and scraping of the cells). Material sampling is carried out from three different sections of the gingival sulcus (middle, medial and lateral) in the area of the examined tooth 3-5 hours after brushing (provided that the subject did not eat food in this time period), each time using a new strip of dacron records. Smears are prepared from the obtained droplets of gingival fluid on a pre-prepared defatted glass slide with markings in the form of segments, indicating the area of material intake (16, 11, 26, 36, 31, 46), as well as the patient code made using a glass scanner. In each segment of the glass slide, 6 smears of gingival fluid can be placed. The preparations are dried at room temperature and stained according to the method of Romanovsky-Giemsa.
Исследования нативных цитологических препаратов проводят с помощью микроскопа «Olympus СХ 31» (Япония), окуляр ×10, объектив ×40.Studies of native cytological preparations are carried out using an Olympus CX 31 microscope (Japan), eyepiece × 10, lens × 40.
Лавсан - химическое название полиэтилентерефталата, который получают путем реакции поликонденсации этиленгликоля и терефталевой кислоты. Материал обладает уникальными свойствами: высокая глянцевость и гидрофобность, на поверхности несет положительный электронный заряд, за счет которого притягивается десневая жидкость зубодесневой бороздки, содержащая ионы с отрицательным зарядом. Лавсан - экологически чистый материал и прост в утилизации [8, 9, 10, 11].Lavsan is the chemical name for polyethylene terephthalate, which is obtained by the polycondensation reaction of ethylene glycol and terephthalic acid. The material has unique properties: high gloss and hydrophobicity, it carries a positive electronic charge on the surface, due to which the gingival fluid of the gingival groove containing ions with a negative charge is attracted. Lavsan is an environmentally friendly material and easy to dispose of [8, 9, 10, 11].
Округлая форма рабочей части полоски из лавсановой пластинки позволяет осуществлять забор десневой жидкости, не травмируя зубодесневую борозду и не вызывая ее раздражение. Вышеописанные размеры рабочей части продиктованы анатомическими особенностями строения зубодесневой борозды и с целью получения одинакового количества материала.The rounded shape of the working part of the strips of the mylar plate allows you to take the gingival fluid without injuring the gingival sulcus and without causing irritation. The dimensions of the working part described above are dictated by the anatomical features of the structure of the gingival sulcus and in order to obtain the same amount of material.
Положительные стороны описанного способа в сравнении с прототипом и аналогами представлены в таблице.The positive aspects of the described method in comparison with the prototype and analogues are presented in the table.
С помощью данного способа проведен забор десневой жидкости у 74 пациентов молодого возраста (18-21 года).Using this method, the gingival fluid was collected in 74 patients of a young age (18-21 years).
Результаты. В нативных препаратах десневой жидкости обнаружены клетки лейкоцитарного ряда: лимфоциты (Л), моноциты (М), нормальные сегментоядерные нейтрофилы (Н.Н), нейтрофилы со вспененной цитоплазмой (В.Н - клетки с признаками фагоцитоза), фагоциты, лишенные цитоплазмы, с размытыми границами и слабо окрашенным ядром - так называемые «голоядерные» клетки (Г); эпителиальные клетки: нормальные эпителиоциты (Н.Э); эпителиоциты с вакуолизированной цитоплазмой (В.Э - дистрофически измененные клетки); пластинки (Пл. - эпителиоциты без ядра). Ни в одном препарате не обнаружены соединительнотканные клетки - фибробласты и фиброциты, а также форменные элементы крови - эритроциты.Results. Leukocyte cells were found in native gingival fluid preparations: lymphocytes (L), monocytes (M), normal segmented neutrophils (N.H), neutrophils with foamed cytoplasm (B.N - cells with signs of phagocytosis), phagocytes lacking cytoplasm, s blurred borders and weakly stained nucleus - the so-called “holonuclear” cells (G); epithelial cells: normal epithelial cells (N.E.); epithelial cells with vacuolated cytoplasm (B.E. - dystrophically altered cells); plates (Pl. - epithelial cells without a nucleus). Connective tissue cells — fibroblasts and fibrocytes, as well as blood cells — red blood cells — have not been found in any drug.
Пример 1. Проведен забор десневой жидкости у больного простым маргинальным гингивитом легкой степени тяжести в стадии обострения, код препарата 11 (А).Example 1. A gingival fluid was collected from a patient with mild simple marginal gingivitis in the acute stage, drug code 11 (A).
Непосредственно перед забором десневой жидкости обследуемую область (16, 11, 26 - с вестибулярной поверхности, а 36, 31, 46 - с язычной) изолировали от слюны стерильными ватными валиками. Полоску из лавсановой пластинки извлекали из раствора 70% этилового спирта и высушивали ватным тампоном, а затем осторожно, с помощью стоматологического пинцета вводили на 3 с в зубодесневую борозду без усилий и касания ее стенок и дна (чтобы избежать травмы и соскоба клеток). Забор материала проводили из трех разных участков зубодесневой борозды (среднего, медиального и латерального) в области обследуемого зуба через 5 часов после чистки зубов (пациент не принимал пищу в данный временной промежуток), каждый раз используя новую полоску из лавсановой пластинки. Мазки готовили из полученных капелек десневой жидкости на заранее подготовленном обезжиренном предметном стекле с разметкой в виде сегментов, с указанием области забора материала (16, 11, 26, 36, 31, 46), а также кода пациента - 11 (А). В каждом сегменте предметного стекла удалось поместить по 6 мазков десневой жидкости. Препарат высушивали при комнатной температуре и окрашивали по методике Романовского-Гимзе.Immediately before the gingival fluid intake, the examined area (16, 11, 26 from the vestibular surface, and 36, 31, 46 from the lingual) was isolated from saliva with sterile cotton rolls. A strip of dacron plate was removed from a solution of 70% ethyl alcohol and dried with a cotton swab, and then carefully, using dental tweezers, was inserted for 3 s into the gingival sulcus without effort and touching its walls and bottom (to avoid injury and scraping of cells). Material was taken from three different sections of the gingival sulcus (middle, medial and lateral) in the area of the examined tooth 5 hours after brushing the teeth (the patient did not eat at this time interval), each time using a new strip of dacron plate. Smears were prepared from the obtained droplets of gingival fluid on a pre-prepared defatted slide with markings in the form of segments, indicating the area of material intake (16, 11, 26, 36, 31, 46), as well as the patient code - 11 (A). In each segment of the glass slide, 6 smears of gingival fluid were placed. The preparation was dried at room temperature and stained according to the Romanovsky-Giemsa technique.
Исследование препарата проводили с помощью микроскопа «Olympus СХ 31» (Япония), окуляр ×10, объектив ×40. В препарате десневой жидкости обнаружили клетки лейкоцитарного ряда: Л - 18,49%, М - 0,86%, Н.Н - 68,92%, В.Н - 2,04%, Г - 9,67%; эпителиальные клетки: Н.Э - 95,02%, В.Э - 4,45%, Пл. - 0,52%, при этом соотношение эпителиоцитов:лейкоцитов составило - 0,41.The study of the drug was carried out using an Olympus CX 31 microscope (Japan), eyepiece × 10, lens × 40. Leukocyte cells were found in the gingival fluid preparation: L - 18.49%, M - 0.86%, N.N - 68.92%, V.N - 2.04%, G - 9.67%; epithelial cells: N.E. - 95.02%, B.E. - 4.45%, Pl. - 0.52%, while the ratio of epithelial cells: leukocytes was 0.41.
Пример 2. Проведен забор десневой жидкости у больного простым маргинальным гингивитом легкой степени тяжести в стадии обострения, код препарата 37 (А).Example 2. A gingival fluid was collected from a patient with simple marginal gingivitis of mild severity in the acute stage, drug code 37 (A).
Непосредственно перед забором десневой жидкости обследуемую область (16, 11, 26 - с вестибулярной поверхности, а 36, 31, 46 - с язычной) изолировали от слюны стерильными ватными валиками. Полоску из лавсановой пластинки извлекали из раствора 70% этилового спирта и высушивали ватным тампоном, а затем осторожно, с помощью стоматологического пинцета вводили на 3 с в зубодесневую борозду без усилий и касания ее стенок и дна (чтобы избежать травмы и соскоба клеток). Забор материала проводили из трех разных участков зубодесневой борозды (среднего, медиального и латерального) в области обследуемого зуба через 4 часа после чистки зубов (пациент не принимал пищу в данный временной промежуток), каждый раз используя новую полоску из лавсановой пластинки. Мазки готовили из полученных капелек десневой жидкости на заранее подготовленном обезжиренном предметном стекле с разметкой в виде сегментов, с указанием области забора материала (16, 11, 26, 36, 31, 46), а также кода пациента - 37 (А). В каждом сегменте предметного стекла удалось поместить по 6 мазков десневой жидкости. Препарат высушивали при комнатной температуре и окрашивали по методике Романовского-Гимзе.Immediately before the gingival fluid intake, the examined area (16, 11, 26 from the vestibular surface, and 36, 31, 46 from the lingual) was isolated from saliva with sterile cotton rolls. A strip of dacron plate was removed from a solution of 70% ethyl alcohol and dried with a cotton swab, and then carefully, using dental tweezers, was inserted for 3 s into the gingival sulcus without effort and touching its walls and bottom (to avoid injury and scraping of cells). The material was taken from three different sections of the gingival sulcus (middle, medial and lateral) in the area of the examined tooth 4 hours after brushing the teeth (the patient did not eat food at this time interval), each time using a new strip of dacron plate. Smears were prepared from the obtained droplets of gingival fluid on a pre-prepared defatted glass slide with markings in the form of segments, indicating the area of material intake (16, 11, 26, 36, 31, 46), as well as the patient code - 37 (A). In each segment of the glass slide, 6 smears of gingival fluid were placed. The preparation was dried at room temperature and stained according to the Romanovsky-Giemsa technique.
Исследование препарата проводили с помощью микроскопа «Olympus СХ 31» (Япония), окуляр ×10, объектив ×40. В препарате десневой жидкости обнаружили клетки лейкоцитарного ряда: Л - 14,91%, М - 10,51%, Н.Н - 55,92%, В.Н - 14,46%, Г - 4,17%; эпителиальные клетки: Н.Э - 94,42%, В.Э - 0,87%, Пл. - 4,63%, при этом соотношение эпителиоцитов:лейкоцитов составило - 0,25.The study of the drug was carried out using an Olympus CX 31 microscope (Japan), eyepiece × 10, lens × 40. Leukocyte cells were found in the gingival fluid preparation: L - 14.91%, M - 10.51%, N.N - 55.92%, V.N - 14.46%, G - 4.17%; epithelial cells: N.E. - 94.42%, B.E. - 0.87%, Pl. - 4.63%, while the ratio of epithelial cells: leukocytes was 0.25.
Источники информацииInformation sources
1. Григорьян А.С. Роль и место феномена повреждения в патогенезе заболеваний пародонта / А.С.Григорьян // Стоматология. - 1999. - №1. - С.16-20.1. Grigoryan A.S. The role and place of the damage phenomenon in the pathogenesis of periodontal diseases / A.S. Grigoryan // Dentistry. - 1999. - No. 1. - S.16-20.
2. Иванов B.C. Заболевания пародонта / B.C.Иванов. - 2-ое изд. доп. и перераб. - М.: МИА, 2001. - С.13-21.2. Ivanov B.C. Periodontal disease / B.C. Ivanov. - 2nd ed. add. and reslave. - M.: MIA, 2001 .-- S.13-21.
3. Михалева Л.М. Хронический пародонтит - клиническая морфология и иммунология / Л.М.Михалева, В.Д.Шаповалов, Т.Г.Бархина. - М.: Триада - фарм, 2004. - С.16-57.3. Mikhaleva L.M. Chronic periodontitis - clinical morphology and immunology / L.M. Mikhaleva, V.D. Shapovalov, T.G. Barkhina. - M.: Triad - Farm, 2004 .-- P.16-57.
4. Григорьян А.С.Новый диагностический метод оценки состояния пародонта по данным цитоморфометрии отпечатков с десны / А.С.Григорьян, А.И.Грудянов // Стоматология. - 2000. - №5. - С.4-9.4. Grigoryan A. S. A new diagnostic method for assessing the periodontal condition according to the cytomorphometry of fingerprints from the gums / A. S. Grigoryan, A. I. Grudyanov // Dentistry. - 2000. - No. 5. - S. 4-9.
5. Барер Г.М. Десневая жидкость: состав и свойства (обзор литературы) / Г.М.Барер, В.В.Кочержинский, Э.С.Халитова // Стоматология. - 1986. - №4. - С.86-90.5. Barer G.M. Gingival fluid: composition and properties (literature review) / G.M.Barer, V.V. Kocherzhinsky, E.S. Khalitova // Dentistry. - 1986. - No. 4. - S.86-90.
6. Лебедев К.А. Иммунограмма в клинической практике / К.А.Лебедев, И.Д.Понякина. - М.: Наука, 1990. - С.21-53.6. Lebedev K.A. Immunogram in clinical practice / K.A. Lebedev, I.D. Ponyakina. - M .: Nauka, 1990 .-- S.21-53.
7. Максимовский Ю.М. Терапевтическая стоматология / Ю.М.Максимовский, Л.Н.Максимовская, Л.Ю.Орехова. - М.: Медицина, 2002. - С.360.7. Maksimovsky Yu.M. Therapeutic dentistry / Yu.M. Maksimovsky, L.N. Maksimovskaya, L.Yu. Orekhova. - M .: Medicine, 2002. - P.360.
8. Органическая химия / С.Э.Зурабян, Ю.А.Колесник, А.А.Кост и др. - М.: Медицина, 1989. - С.291.8. Organic chemistry / S.E. Zurabyan, Yu.A. Kolesnik, A.A. Kost et al. - M .: Medicine, 1989. - P.291.
9. Чучелок А.С. Автореферат магистерской диссертации http://masters.donntu.edu.ua/2005/fgtu/chuchelok/diss/index.htm [17 мая 2007).9. Scarecrow A.S. Abstract of the master's thesis http://masters.donntu.edu.ua/2005/fgtu/chuchelok/diss/index.htm [May 17, 2007).
10. УпакГруп лавсановые пленки - http://www.uhackgrop.ru20.01.2006 (17 мая 2007).10. UpakGroup mylar films - http: //www.uhackgrop.ru20.01.2006 (May 17, 2007).
11. Предприятие ООО «Лавсан Индустрия» - http://www.rcc.ru./Rus/ Chemicals/?/D=41957 от 10.06.2003 (17 мая 2007).11. The company LLC “Lavsan Industry” - http://www.rcc.ru./Rus/ Chemicals /? / D = 41957 dated 06/10/2003 (May 17, 2007).
Claims (1)
Priority Applications (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2007124283/14A RU2342956C1 (en) | 2007-06-27 | 2007-06-27 | Method of gingival liquid recover |
Applications Claiming Priority (1)
| Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
|---|---|---|---|
| RU2007124283/14A RU2342956C1 (en) | 2007-06-27 | 2007-06-27 | Method of gingival liquid recover |
Publications (1)
| Publication Number | Publication Date |
|---|---|
| RU2342956C1 true RU2342956C1 (en) | 2009-01-10 |
Family
ID=40374102
Family Applications (1)
| Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
|---|---|---|---|
| RU2007124283/14A RU2342956C1 (en) | 2007-06-27 | 2007-06-27 | Method of gingival liquid recover |
Country Status (1)
| Country | Link |
|---|---|
| RU (1) | RU2342956C1 (en) |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU190173U1 (en) * | 2019-04-24 | 2019-06-21 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Рязанский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Device for the collection of gingival fluid |
-
2007
- 2007-06-27 RU RU2007124283/14A patent/RU2342956C1/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (1)
| Title |
|---|
| МАКСИМОВСКИЙ Ю.М. ТЕРАПЕВТИЧЕСКАЯ СТОМАТОЛОГИЯ / Ю.М. МАКСИМОВСКИЙ, Л.Н. МАКСИМОВСКАЯ, Л.Ю. ОРЕХОВА. - М.: МЕДИЦИНА, 2002, с.360. * |
Cited By (1)
| Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
|---|---|---|---|---|
| RU190173U1 (en) * | 2019-04-24 | 2019-06-21 | Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Рязанский государственный медицинский университет имени академика И.П. Павлова" Министерства здравоохранения Российской Федерации | Device for the collection of gingival fluid |
Similar Documents
| Publication | Publication Date | Title |
|---|---|---|
| Stephen et al. | Methods for collecting individual components of mixed saliva: the relevance to clinical pharmacology. | |
| Albuquerque et al. | Antibacterial TAP-mimic electrospun polymer scaffold: effects on P. gingivalis-infected dentin biofilm | |
| de Meneses et al. | In vivo biocompatibility, mechanical, and antibacterial properties of cements modified with propolis in different concentrations | |
| RU2397781C1 (en) | Nonwoven material of medicinal purpose which possesses wound-healing, antibacterial and antiviral activity and based on it bandaging means | |
| RU2342956C1 (en) | Method of gingival liquid recover | |
| Eldien et al. | Clinical and cytological assessment of platelet-rich fibrin versus topical ozonated oil in palatal wound healing after free gingival graft harvesting: Randomized controlled trial | |
| Sanz et al. | Are endodontic solvents cytotoxic? An in vitro study on human periodontal ligament stem cells | |
| Trieger et al. | Gingival biopsy as a diagnostic aid in amyloid disease | |
| RU2549989C2 (en) | Method for microscopic examination of native smear from tongue root | |
| Polson et al. | Cell and fiber responses to cementum from periodontitis‐affected root surfaces after citric acid treatment | |
| Chaudhary et al. | Age estimation by exfoliative cytology: New era of noninvasive forensic science | |
| Dwyer | How to obtain and interpret corneal cytology samples. | |
| Oates et al. | Polyester sponge swabs to facilitate examination for genital infection in women. | |
| RU2708241C1 (en) | Oral fluid examination method | |
| Shakir et al. | Preparation and characterization of periodontal chips from egg shell membrane | |
| Mustikasari et al. | Toxic effects of 2.5% sodium hypochlorite, 17% ethylenediaminetetraacetic acid, and 2% chlorhexidine solutions on the viability of dental pulp mesenchymal stem cells | |
| Bain | Report | |
| RU2808738C1 (en) | Method for evaluating process of formation of vascular network on chorioallantoic membrane of chicken embryo | |
| RU2299437C1 (en) | Method for examining periodontium state | |
| AV et al. | USEING THE CYTOLOGIC METHOD FOR CURING DISEASES OF THE ORAL CAVITY MUCOUS MEMBRANE AFTER PROSTHETICS. | |
| Sundaragiri et al. | Methods of collection and transport of materials to laboratory from oral and dental tissue lesions | |
| CHINHEYA et al. | In vitro investigation of the cytotoxic, apoptotic and genotoxic effects of pulp capping materials on L929 mouse fibroblast cells. | |
| CN215541100U (en) | Multifunctional experiment platform for clinical examination | |
| Vinodkumar et al. | Assessment Of Cytotoxicity Of Chlorhexidine Containing Mouthrinses By Micronucleus Test In Exfoliated Buccal Epithelial Cells. | |
| JP5547914B2 (en) | Infectious inflammatory immune response measurement and diagnosis device |
Legal Events
| Date | Code | Title | Description |
|---|---|---|---|
| MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20090628 |