RU2317825C1 - Способ лечения злокачественных опухолей у животных - Google Patents

Способ лечения злокачественных опухолей у животных Download PDF

Info

Publication number
RU2317825C1
RU2317825C1 RU2006125236/13A RU2006125236A RU2317825C1 RU 2317825 C1 RU2317825 C1 RU 2317825C1 RU 2006125236/13 A RU2006125236/13 A RU 2006125236/13A RU 2006125236 A RU2006125236 A RU 2006125236A RU 2317825 C1 RU2317825 C1 RU 2317825C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
rnase
animals
ribonuclease
concentration
tumors
Prior art date
Application number
RU2006125236/13A
Other languages
English (en)
Inventor
ева Ольга Александровна Шкл (RU)
Ольга Александровна Шкляева
Надежда Львовна Миронова (RU)
Надежда Львовна Миронова
Марина Аркадьевна Зенкова (RU)
Марина Аркадьевна Зенкова
Валентин Викторович Власов (RU)
Валентин Викторович Власов
Original Assignee
Институт химической биологии и фундаментальной медицины Сибирского отделения Российской академии наук (СО РАН)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт химической биологии и фундаментальной медицины Сибирского отделения Российской академии наук (СО РАН) filed Critical Институт химической биологии и фундаментальной медицины Сибирского отделения Российской академии наук (СО РАН)
Priority to RU2006125236/13A priority Critical patent/RU2317825C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2317825C1 publication Critical patent/RU2317825C1/ru

Links

Images

Abstract

Изобретение относится к экспериментальной онкологии. Способ включает введение рибонуклеазы. При этом в качестве рибонуклеазы используют панкреатическую РНКазу А в концентрации (3,5-7,0)·10-4 мг/кг массы животного. Панкреатическую РНКазу А вводят внутримышечно ежедневно, курсом 8-10 инъекций. Способ позволяет повысить эффективность лечения, существенно снизить дозу рибонуклеазы и исключить побочные осложнения. 2 ил.

Description

Изобретение относится к экспериментальной онкологии и представляет собой новый способ лечения животных со злокачественными метастазирующими опухолями.
Общеизвестно, что клетки злокачественных опухолей отличаются от нормальных очень слабо выраженной дифференцировкой при наличии неограниченной способности к делению. В результате малигнизации в нормальных клетках нарушаются механизмы, регулирующие дифференцировку и клеточный цикл, что приводит к их неконтролируемой пролиферации и отмене апоптоза.
Несмотря на значительные успехи в клинической онкологии поиск новых подходов к терапии злокачественных новообразований остается очень актуальной медико-биологической проблемой.
Обнаружение в 50-е годы токсичности экзогенных рибонуклеаз (РНКаз) по отношению к раковым клеткам послужило толчком к изучению этих ферментов в качестве противоопухолевых препаратов.
Известен способ ингибирования роста опухолевых клеток in vitro с использованием фермента онконазы, получаемого из Rana japonica и Rana pipiens, имеющего очень высокий процент гомологии с РНКазой А и обладающего рибонуклеазной активностью. Онконаза в концентрации 10-100 мкг/мл культуральной среды ингибирует рост опухолевых клеток (Matousek J., Ribonucleases and their antitumor activity. Comp Biochem Physiol С Toxicol PharmacoL, 2001, Vol.129, n.3, p.175-91).
Известен способ ингибирования роста лимфомы Беркета и В-клеточной неходжкинской лимфомы у мышей с помощью внутримышечных инъекций конъюгатов онконазы с моноклональными антителами LL2 в дозе 5 мг на кг веса животного или с моноклональными антителами CD22 в дозе 25 мг/кг соответственно, позволяющий удлинить продолжительность жизни животных в два раза (Newton D.L. et al., Potent and specific antitumor effects of an anti-CD22-targeted cytotoxic ribonuclease: potential for the treatment of non-Hodgkin lymphoma. Blood, 2001, Vol.97, n.2, p.528-535).
Недостатками известного способа являются высокие терапевтические дозы фермента и побочные эффекты при лечении онконазой, такие как протеинурия и отек почек.
Известен способ ингибирования спонтанного роста лимфолейкоза у мышей линии АКР путем использования ДНКазы в концентрации 250 мг/кг каждые 48 часов в течение 4-13 недель. (Salganik R.I. et al., Effect of deoxyribonuclease on the course of lymphatic leukaemia in AKR mice. Nature, 1967, Vol.214, p.100-102.) Способ обеспечивает существенное уменьшение и нормализацию размеров лимфатических узлов и увеличение продолжительности жизни животных, однако характеризуется использованием высоких терапевтических доз фермента и побочными осложнениями.
Ближайшим к заявляемому способу - прототипом - является способ лечения злокачественных опухолей у животных с использованием фермента BS-РНКазы (Soucek J. et al., Antitumor action of bovine seminal ribonuclease. Neoplasma. 1996, Vol.43, n.5, p.335-40.). Противоопухолевый эффект BS-РНКазы т vivo исследовали с использованием карциномы простаты человека, трансплантированной мышам линии nude. Осуществляли ежедневные подкожные инъекции раствора BS-РНКазы в концентрации 12,5 мг/кг в течение трех недель (15 доз). Подкожное введение препарата приводило к существенному уменьшению размера опухолей у животных, однако было показано, что BS-РНКаза оказывает сильный токсический эффект: приводит к деградации тестикулярной ткани у самцов и влияет на эмбриогенные ткани и созревание ооцитов у самок, обладает иммуносупрессивным действием. Поэтому очевидным недостатком способа лечения злокачественных опухолей с использованием BS-РНКазы является высокая токсичность фермента.
Технической задачей предлагаемого изобретения является разработка способа лечения злокачественных опухолей у животных с использованием природного фермента панкреатической рибонуклеазы (РНКазы А) в тысячекратно сниженных дозах, который при высокой эффективности позволяет также исключить возникновение побочных действий лечебного препарата.
Дополнительной технической задачей является расширение ассортимента противоопухолевых средств природного происхождения.
Поставленная техническая задача достигается предлагаемым способом, заключающимся в том, что больному животному внутримышечно вводят раствор РНКазы А в концентрации (3,5-7,0)·10-4 мг/кг веса животного ежедневно, курсом 8-10 дней. В качестве растворителя (наполнителя) РНКазы А используют изотонический раствор хлорида натрия.
РНКазы являются важнейшими природными ферментами метаболизма рибонуклеиновых кислот. РНКазы представляют собой ферменты класса гидролаз, которые катализируют расщепление фосфодиэфирных связей в РНК. Источником РНКазы А является поджелудочная железа крупного рогатого скота. РНКаза А имеет мол. вес 13680, полипептидная цепь этого фермента состоит из 124 аминокислотных остатков и содержит 4 дисульфидных мостика, стабилизирующих ее пространственную конфигурацию. РНКаза А специфически расщепляет РНК по сайтам 5'-Pyr↓А-3'. В каталитический центр фермента РНКазы А входят следующие остатки аминокислот - His12, His119, Lys41, Gin11, в субстрат-связывающий - Thr45, Phe120, Ser123.
РНКазу А получают одним из известных способов, например способом, описанным в патенте РФ № 2180918, опубл. 27.03.2002.
Определяющим отличием предлагаемого способа от прототипа является использование в качестве противоопухолевого препарата природного фермента животного происхождения - панкреатической рибонуклеазы (РНКазы А) в экспериментально подобранном оптимальном режиме, что позволяет повысить эффективность лечения, существенно снизить дозу препарата и исключить побочные осложнения. Ежедневное внутримышечное введение низких доз РНКазы А повышает эффективность лечения в результате постепенного всасывания фермента и поддержания его концентрации на относительно постоянном уровне.
Основные биологические функции РНКаз заключаются в расщеплении мРНК, превращении предшественников РНК в зрелые формы, продукции малых регуляторных РНК, деградации определенных типов РНК. В последние годы пристальное внимание уделяется функциям РНКаз, связанным с регуляцией экспрессии генов, роста и дифференцировки клеток, защитой от патогенов, индукцией апоптоза.
Проведенные исследования показали, что противоопухолевый эффект РНКазы А связан с прямым повреждением структуры и выключением функций нуклеиновых кислот опухолевых клеток. РНКаза А вызывает угнетение роста опухоли, а также деструкцию опухолевых клеток в очагах метастазирования при одновременном отсутствии побочного токсического воздействия на организм животного.
Механизм клеточной гибели, опосредованный РНКазой, состоит из двух основных этапов: проникновение внутрь клетки и разрушение клеточной РНК. Взаимодействие положительно заряженных молекул РНКазы с опухолевыми клетками обеспечивается усиленным отрицательным зарядом опухолей за счет анионного фосфатидилсерина, экспонирующегося на поверхности кровеносных сосудов в опухолях (Ran S., et al., Increased exposure of anionic phospholipids on the surface of tumor blood vessels. Cancer Res., 2002, Vol.62, p.6132-6140). Вслед за связыванием с клеточной мембраной происходит проникновение молекул РНКазы в раковую клетку посредством эндоцитоза (Haigis M.С., Raines R.Т., Secretory ribonucleases are internalized by a dynamin-independent endocytic pathway. J Cell Sci., 2003, Vol.116, n.2, p.313-24). Затем РНКаза высвобождается в цитозоль и вызывает деградацию клеточной РНК. Однако существуют данные, что на этапе выхода в цитозоль природная РНКаза А инактивируется рибонуклеазным ингибитором.
Результаты исследований показали, что природная РНКаза А, будучи в немодифицированном состоянии, способна проявлять противоопухолевый эффект даже при низких дозах. Возможно, проникновение высоких доз РНКазы А в цитозоль может запустить синтез рибонуклеазного ингибитора через активацию механизма обратной связи. Можно предположить, что существует критическая концентрация РНКазы А, при которой активации синтеза рибонуклеазного ингибитора еще не происходит и некоторое количество молекул РНКазы А остаются свободными и активными.
В последние годы появились данные, которые утверждают, что в крови людей, больных раковыми заболеваниями, резко возрастает концентрация свободных внеклеточных нуклеиновых кислот, которые предположительно регулируют процессы опухолевого роста и метастазирования (Laktionov P.P. et al., Cell-surface-bound nucleic acids: Free and cell-surface-bound nucleic acids in blood of healthy donors and breast cancer patients. Ann N Y Acad Sci., 2004, Vol.1022, p.221-7). Таким образом, вероятным альтернативным механизмом действия РНКазы может быть разрушение внеклеточных нуклеиновых кислот и, следовательно, разрыв пути передачи сигнала.
Нижеследующие примеры иллюстрируют влияние ингибирующего эффекта РНКазы А на рост и процессы метастазирования карциномы легких Льюиса и гепатомы А-1 у мышей
Пример 1
Карцинома Льюиса была трансплантирована подкожно в левую лапу мышам линии С57В1 возрастом 10-11 недель. Начиная с 10-ого дня после прививания мышам карциномы легких Льюиса больным животным проводили ежедневные внутримышечные инъекции физиологического раствора РНКазы A (Sigma) в концентрации 3,5·10-4 мг/кг веса животного, курсом 8 дней.
На фиг.1 (А) представлены результаты измерений объемов опухолей в контрольной группе и в группе животных, получавших инъекции раствора РНКазы А. Как видно из фиг.1А, в начальный период лечения скорость роста опухолей между группами различалась слабо. Однако к 16-му дню после трансплантации карциномы Льюиса наблюдали существенную (до 44%) регрессию объема опухолей в опытной группе, Р<0,05.
На 20-ый день после трансплантации опухоли мыши были препарированы, опухоли изъяты и взвешены. Степень регрессии опухолей приведены на фиг.1(Б). Из фиг.1(Б) видно, что лечение РНКазой А при концентрации 3,5·10-4 мг/кг веса животного приводит к существенному (31%) снижению веса опухолей.
Пример 2
Карцинома Льюиса была трансплантирована подкожно в левую лапу мышам линии С57В1 возрастом 10-11 недель. Начиная с 8-го дня после прививания мышам карциномы легких Льюиса больным животным проводили ежедневные внутримышечные инъекции физиологического раствора РНКазы А (Sigma) в концентрации 7·10-4 мг/кг веса животного длительностью 10 дней.
Как видно из фиг.1 (А, Б) РНКаза А в концентрации 7·10-4 мг/кг веса животного способствует достоверному снижению темпа роста опухолей у мышей.
После окончания эксперимента легкие были изъяты, зафиксированы в 4% растворе формалина на среде DMEM. Для оценки воздействия РНКазы А на процессы метастазирования в легких экспериментальных животных было также проведено патоморфологическое исследование с помощью гематоксилин/эозинового окрашивания парафиновых срезов респираторных органов в контрольной и опытной группе.
При сравнении группы контрольных животных и группы животных, получавших лечение РНКазы А, в последней были выявлены признаки индуцированного (лекарственного) патоморфоза метастазов, проявляющееся в выраженных дистрофических изменениях онкоцитов (изменение тинкториальных свойств цитоплазмы, кариорексис) и усилении мононуклеарной инфильтрации, включающей нейтрофилы, лимфоциты и макрофаги. В исследуемых группах было проведено измерение площади среза доли легкого и площади метастазов на данной срезе, высчитывался процент площади метастазов по отношению к площади измеряемой доли легкого. Площадь, занимаемая метастазами в доле легкого, представлена на фиг.1 (В). В группе животных, получавших инъекции РНКазы А в концентрации 7·10-4 мг/кг веса животного, процент торможения роста метастазов составил 59%.
Пример 3
Гепатома А-1 была трансплантирована подкожно (внутримышечно) в левую лапу мышам линии A/Sn возрастом 14-16 недель. Начиная с 5-ого дня после прививания мышам гепатомы А-1 больным животным проводили ежедневные внутримышечные инъекции раствора РНКазы А (Sigma) в концентрации 3.5·10-4 мг/кг веса животного, курсом 10 дней.
На 20-й день после трансплантации опухоли мыши были препарированы, опухоли изъяты и взвешены. Степень регрессии опухолей приведены на фиг.2 (А). Из фиг.2 (А) видно, что лечение РНКазой А при концентрации 3,5·10-4 мг/кг веса животного приводит к 27% снижению веса опухолей.
После окончания эксперимента печень была изъята, взвешена и зафиксирована в 4% растворе формалина на среде DMEM. Печеночный индекс определяли: вес печени/вес животного · 100%. В группе животных, получавших лечение, наблюдали снижение повышенного в результате болезни печеночного индекса на 38,5% относительно контрольной группы.
Для оценки воздействия РНКазы А на процессы метастазирования в печени экспериментальных животных было также проведено патоморфологическое исследование с помощью гематоксилин/эозинового окрашивания парафиновых срезов печеночной доли в контрольной и опытной группе. В опытной группе отмечено уменьшение количества метастазов, в их структуре наблюдали вторичные изменения, выраженные в появлении периферических или чаще всего центральных очагов некрозов. В исследуемых группах было проведено измерение площади среза печеночной доли и площади метастазов на данном срезе и определен процент площади метастазов по отношению к площади измеряемой печеночной доли. В группе, получавшей лечение, отмечено сокращение площади метастазов в печени, отсутствие метастазов в миокарде и почке, наличие которых наблюдали в контрольной группе. Площадь, занимаемая метастазами в печеночной доле, представлена на фиг.2 (Б). Процент торможения роста метастазов у животных, получавших лечение, составил 91.6%.
В целом выявленные структурные изменения метастазов в группе животных, получавших лечение, свидетельствуют о воздействии РНКазы А непосредственно на опухолевые клетки. При этом не выявлено выраженного воздействия на прилегающие участки тканей.
Таким образом, предлагаемый способ обеспечивает эффективное лечение злокачественных опухолей у животных с использованием низких, абсолютно безопасных для организма концентраций природного фермента РНКазы А.
Использование предлагаемого способа позволит, по сравнению с прототипом:
- снизить дозу используемого препарата в (1,5-18,0)·103 раз;
- исключить побочные осложнения;
- расширить функциональные возможности способа, т.к. способ обеспечивает не только ингибирование роста злокачественных опухолей, но и препятствует их метастазированию;
- расширить ассортимент противоопухолевых лекарственных средств природного происхождения.

Claims (1)

  1. Способ лечения злокачественных опухолей у животных путем введения рибонуклеазы, отличающийся тем, что в качестве рибонуклеазы используют панкреатическую РНКазу А в концентрации (3,5-7,0)10-4 мг/кг массы животного, при этом введение последней осуществляют внутримышечно, ежедневно, курсом 8-10 инъекций.
RU2006125236/13A 2006-07-13 2006-07-13 Способ лечения злокачественных опухолей у животных RU2317825C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2006125236/13A RU2317825C1 (ru) 2006-07-13 2006-07-13 Способ лечения злокачественных опухолей у животных

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2006125236/13A RU2317825C1 (ru) 2006-07-13 2006-07-13 Способ лечения злокачественных опухолей у животных

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2317825C1 true RU2317825C1 (ru) 2008-02-27

Family

ID=39278858

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2006125236/13A RU2317825C1 (ru) 2006-07-13 2006-07-13 Способ лечения злокачественных опухолей у животных

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2317825C1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2738165C1 (ru) * 2019-07-11 2020-12-09 Дмитрий Афанасьевич Коршунов Способ лечения злокачественных опухолей

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
MATOUSEK J. Ribonucleases and their antitumor activity. Comp. Biochem. Physiol. & Toxicol. Pharmacol. 2001, v.129, n.3, p.175-191. Newton D.L. et al. Potent. and specific antitumor effects of anti-CD22-targeted cytotoxic ribonuclease: potential for the treatment of non-Hodgkin lymphoma. Blood, 2001, v.97, n.2, p.528-535. *
SOUSEK J. et al. Antitumor action of bovine seminal ribonuclease. Neoplasma. 1996, v.43, n.5, p.335-340. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2738165C1 (ru) * 2019-07-11 2020-12-09 Дмитрий Афанасьевич Коршунов Способ лечения злокачественных опухолей

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Xuan et al. Molecular self-assembly of bioorthogonal aptamer-prodrug conjugate micelles for hydrogen peroxide and pH-independent cancer chemodynamic therapy
Jin et al. Injectable anti-inflammatory hyaluronic acid hydrogel for osteoarthritic cartilage repair
Oršolić Bee venom in cancer therapy
Zhang et al. MicroRNA-21 overexpression promotes the neuroprotective efficacy of mesenchymal stem cells for treatment of intracerebral hemorrhage
Wang et al. Molecular engineering of anti-PD-L1 peptide and photosensitizer for immune checkpoint blockade photodynamic-immunotherapy
US20210254069A1 (en) Combination therapies comprising c/ebp alpha sarna
Korbelik et al. Interaction of acid ceramidase inhibitor LCL521 with tumor response to photodynamic therapy and photodynamic therapy‐generated vaccine
Chen et al. NIR-PTT/ROS-scavenging/oxygen-enriched synergetic therapy for rheumatoid arthritis by a pH-responsive hybrid CeO2-ZIF-8 coated with polydopamine
Li et al. Attenuating metabolic competition of tumor cells for favoring the nutritional demand of immune cells by a branched polymeric drug delivery system
Ou et al. Efficient miRNA inhibitor with GO-PEI nanosheets for osteosarcoma suppression by targeting PTEN
KR20040075270A (ko) Lk8 단백질을 유효성분으로 포함하는 항암제
Liao et al. Fluorofenidone inhibits UUO/IRI-induced renal fibrosis by reducing mitochondrial damage
Lu et al. Short time tripterine treatment enhances endothelial progenitor cell function via heat shock protein 32
Yan et al. Metal-Phenolic Nanomedicines Regulate T-Cell Antitumor Function for Sono-Metabolic Cancer Therapy
Zinovkin et al. Current perspectives of mitochondria-targeted antioxidants in cancer prevention and treatment
RU2317825C1 (ru) Способ лечения злокачественных опухолей у животных
US8740762B2 (en) Specific inhibition of cPLA2 enhances the efficacy of radiotherapy
Li et al. Combination immunotherapy of chlorogenic acid liposomes modified with sialic acid and PD-1 blockers effectively enhances the anti-tumor immune response and therapeutic effects
Rong et al. An Extracellular Vesicle-Cloaked Multifaceted Biocatalyst for Ultrasound-Augmented Tendon Matrix Reconstruction and Immune Microenvironment Regulation
US20060135625A1 (en) Method of administering split doses of a vascular targeting agent
JP2014221752A (ja) ガン幹細胞に対する分化促進薬及び脳腫瘍治療薬
US11065230B2 (en) Methods and pharmaceutical compositions for the treatment of systemic mastocytosis
Allen et al. Gene therapy of prostate xenograft tumors with a p75NTR lipoplex
CN115362253A (zh) 利用维奈托克增强t细胞的方法
Gao et al. Targeting neutrophils potentiates hitchhiking delivery of drugs and agonists for postsurgical chemo-immunotherapy

Legal Events

Date Code Title Description
QB4A Licence on use of patent

Free format text: LICENCE

Effective date: 20141007

MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20180714