RU2317543C1 - Method for blood sampling in laboratory mice - Google Patents

Method for blood sampling in laboratory mice Download PDF

Info

Publication number
RU2317543C1
RU2317543C1 RU2006120240/15A RU2006120240A RU2317543C1 RU 2317543 C1 RU2317543 C1 RU 2317543C1 RU 2006120240/15 A RU2006120240/15 A RU 2006120240/15A RU 2006120240 A RU2006120240 A RU 2006120240A RU 2317543 C1 RU2317543 C1 RU 2317543C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
blood
animals
blood sampling
mice
serum
Prior art date
Application number
RU2006120240/15A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Виктория Викторовна Зарицкая
Андрей Александрович Зарицкий
Николай Михайлович Мандро
Original Assignee
Федеральное государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Дальневосточный государственный аграрный университет
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Дальневосточный государственный аграрный университет filed Critical Федеральное государственное образовательное учреждение высшего профессионального образования Дальневосточный государственный аграрный университет
Priority to RU2006120240/15A priority Critical patent/RU2317543C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2317543C1 publication Critical patent/RU2317543C1/en

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: physiology.
SUBSTANCE: the present innovation deals with blood sampling while studying the influence of protein preparations upon the values of natural resistance. Murine blood should be sampled with the help of decapitation of murine heads pre-placed into a thermostat for about 2-5 min at 40-42°C. The innovation enables to simplify blood sampling in white mice and increase quantitative values of blood and serum under collection.
EFFECT: higher efficiency.
2 ex, 4 tbl

Description

Изобретение относится к физиологии, а именно к взятию крови с последующим отделением сыворотки при изучении влияния белковых препаратов на показатели естественной резистентности.The invention relates to physiology, namely to taking blood with subsequent separation of serum in the study of the effect of protein preparations on indicators of natural resistance.

Известен способ получения крови лабораторных животных с помощью декапитации, описанный в SU №1296117 А1 «Устройство для забора крови у мелких лабораторных животных», опубликованный 15.03.1987.A known method of obtaining blood of laboratory animals using decapitation, described in SU No. 1296117 A1 "Device for blood sampling in small laboratory animals", published 03/15/1987.

Недостатки данного способа заключаются в малых количествах собираемой крови, недостаточных для исследования физиологических показателях крови при влиянии белковых препаратов на организм животного.The disadvantages of this method are the small amounts of collected blood, insufficient to study the physiological parameters of blood when protein preparations affect the animal’s body.

Упрощение способа взятия крови у белых мышей и увеличение количественных и качественных показателей собираемой крови и сыворотки достигается тем, что кровь берут у белых мышей: контрольных и опытных (иммунизированных препаратом из костного мозга, белковой природы). Для этого отбирают здоровых животных, находящихся в одной весовой и возрастной категориях и в одном физиологическом состоянии. Формируют группы из контрольных и опытных животных. Животных помещают в одинаковые условия после иммунизации опытных и следят за их физиологическим состоянием до появления первого иммунного ответа на введенный антиген. Препарат для введения в заднюю подушечку мыши получают из костного мозга трубчатых костей диких и сельскохозяйственных животных путем осаждения белков из клеток костного мозга с помощью 10% раствора трихлоруксусной кислоты и последующего диализа белкового раствора.A simplification of the method of taking blood from white mice and an increase in the quantitative and qualitative indicators of the collected blood and serum is achieved by taking blood from white mice: control and experimental (immunized with a bone marrow preparation, protein nature). For this, healthy animals are selected that are in the same weight and age categories and in one physiological state. Groups of control and experimental animals are formed. Animals are placed in the same conditions after immunization of the experimental and monitor their physiological condition until the first immune response to the introduced antigen. A preparation for insertion into the hind pit of a mouse is obtained from the bone marrow of the tubular bones of wild and farm animals by precipitation of proteins from bone marrow cells using a 10% trichloroacetic acid solution and subsequent dialysis of the protein solution.

Взятие крови у мышей обеих групп проводят декапитацией головы животного. Животных предварительно выдерживают в термостате в течение 2-5 минут при температуре 40-42°С (происходит повышение обмена веществ и разжижение крови мышей). Затем животное с помощью пинцета хватают за складку кожи на загривке, фиксируют и отсекают голову стерильными ножницами. Кровь собирают с помощью воронки в тонкие пробирки Уленгута до тех пор, пока происходят предсмертные судорожные конвульсии тела животных, и кровь порциями выбрасывается в воронку.Blood sampling in mice of both groups is carried out by decapitation of the animal's head. The animals are preliminarily kept in a thermostat for 2-5 minutes at a temperature of 40-42 ° C (there is an increase in metabolism and blood thinning of mice). Then the animal with tweezers is grabbed by the fold of skin on the nape, fixed and cut off the head with sterile scissors. Blood is collected using a funnel into thin Ulengut tubes until dying convulsive convulsions of the animal’s body occur and the blood is ejected in portions into the funnel.

Кровь после взятия 25-30 мин выдерживают в термостате (35...37°С), затем сгусток ее обводят тонкой металлической палочкой (отделение сгустка от стенок сосуда) и ставят на 16-18 часов в холодильник. Сыворотку отсасывают пипеткой с помощью груши, переносят в стерильный сосуд, закрывают крышкой и хранят в холодильнике. Таким образом, можно получить до 1,5...2 мл крови и ≈0,5 мл сыворотки.After taking 25-30 minutes, the blood is kept in an thermostat (35 ... 37 ° C), then the clot is surrounded by a thin metal stick (separation of the clot from the walls of the vessel) and put in the refrigerator for 16-18 hours. The serum is pipetted with a pear, transferred to a sterile vessel, closed with a lid and stored in the refrigerator. Thus, you can get up to 1.5 ... 2 ml of blood and ≈0.5 ml of serum.

Пример 1.Example 1

Беспородных белых мышей, самцов в одной возрастной категории (4-6 месяцев) массой 18,8±0,3 г иммунизируют препаратом из костного мозга лисиц, содержащим 50,3 г/л общего белка в своем составе (таблица 1), в подушечку задней левой лапки в дозе 0,025 мл на мышь. Через 7-8 дней от животных опытных и контрольных групп собирают кровь для исследования сыворотки на общий белок и его фракции. Проводят декапитацию головы животных, не помещая их предварительно в термостат. Собирают кровь и отделяют сыворотку как описано выше. Таким образом, получают до 0,5±0,04 мл крови.Outbred white mice, males in the same age category (4-6 months) weighing 18.8 ± 0.3 g are immunized with a bone marrow preparation of foxes containing 50.3 g / l of total protein in their composition (table 1), in a small pad hind paw at a dose of 0.025 ml per mouse. After 7-8 days from the animals of the experimental and control groups, blood is collected for the study of serum for total protein and its fractions. Decapitate the heads of animals without first placing them in a thermostat. Blood is collected and serum is separated as described above. Thus, up to 0.5 ± 0.04 ml of blood is obtained.

Таблица 1
Электрофорез костного мозга лисиц в геле агарозы по методике Чекишева В.М. (1977)
Table 1
Electrophoresis of bone marrow of foxes in agarose gel according to the method of Chekishev V.M. (1977)
ПробаTry Общий белок (г/л)Total protein (g / l) Альбумины (г/л)Albumin (g / l) Глобулины (г/л)Globulins (g / l) γ12 γ 1 + γ 2 %∑γ12 % ∑γ 1 + γ 2 α1 α 1 α2 α 2 ββ γ1 γ 1 γ2 γ 2 1one 50,350.3 6,186.18 7,067.06 10,5910.59 11,4711.47 11,4711.47 3,533.53 15,0015.00 29,8229.82 22 50,350.3 6,296.29 7,197.19 10,7810.78 10,7810.78 10,7810.78 4,484.48 15,2615.26 30,3330.33 33 50,350.3 7,067.06 8,838.83 11,4711.47 8,838.83 10,5910.59 3,523.52 14,1114.11 28,0528.05 4four 50,350.3 6,406.40 9,159.15 10,9710.97 9,159.15 11,8911.89 2,742.74 14,6314.63 29,0929.09 Средние данныеAverage data 50,350.3 6,48±0,26.48 ± 0.2 8,06±0,78.06 ± 0.7 10,95±0,410.95 ± 0.4 10,23±0,710.23 ± 0.7 11,18±0,411.18 ± 0.4 3,57±0,33.57 ± 0.3 14,75±0,314.75 ± 0.3 28,32±0,528.32 ± 0.5

Пример 2.Example 2

Иммунизируют лабораторных мышей белковым препаратом из костного мозга лисиц по примеру 1, но перед забором крови методом декапитации животных помещают в термостат на 2-5 минут при температуре 40-42°С. Таким образом, получают 1,7±0,07 мл крови и 0,48±0,01 мл сыворотки. В таблицах 2 и 3 показаны данные исследования крови мышей, полученной заявленным способом, разделенных на две группы: с нормальной температурой тела (контроль) и нагреваемые в термостате, а в таблице 4 - разность средних показателей электрофореза, отобранной сыворотки крови мышей.Immunize laboratory mice with a protein preparation from the bone marrow of foxes according to example 1, but before blood sampling by decapitation, animals are placed in a thermostat for 2-5 minutes at a temperature of 40-42 ° C. Thus, 1.7 ± 0.07 ml of blood and 0.48 ± 0.01 ml of serum are obtained. Tables 2 and 3 show the blood test data of mice obtained by the claimed method, divided into two groups: with normal body temperature (control) and heated in a thermostat, and in table 4 - the difference between the average electrophoresis values of the selected blood serum of mice.

Таблица 2
Лейкограмма крови мышей до и после нагревания
table 2
Blood leukogram of mice before and after heating
ГруппыGroups Палочкоядерные нейтроф.Band neutrophy. Сегментоядерные нейтроф.Segmented neutrophy. МоноцитыMonocytes ЭозинофилыEosinophils ЛимфоцитыLymphocytes КонтрольThe control М±mM ± m 8,3±0,518.3 ± 0.51 47,9±1,047.9 ± 1.0 2,1±0,042.1 ± 0.04 3,2±0,303.2 ± 0.30 38,2±0,3838.2 ± 0.38 %% 100,0100.0 100,0100.0 100,0100.0 100,0100.0 100,0100.0 Нагреваемые животныеHeated animals М±mM ± m 8,3±0,118.3 ± 0.11 48,1±0,1648.1 ± 0.16 2,1±0,172.1 ± 0.17 3,3±0,183.3 ± 0.18 38,2±0,2038.2 ± 0.20 %% 100,0100.0 100,4100,4 100,0100.0 103,1103.1 100,0100.0

При увеличении температуры тела животных количество и видовой состав лейкоцитов изменились незначительно в сравнении с контрольной группой животных.With an increase in the body temperature of animals, the number and species composition of leukocytes did not change significantly in comparison with the control group of animals.

Таблица 3
Динамика изменения показателей иммунной защиты мышей, подвергаемых нагреванию
Table 3
The dynamics of the indicators of the immune defense of mice subjected to heat
ПоказателиIndicators Температура тела мышей, °СThe body temperature of mice, ° C 37,537.5 38,338.3 1one 22 33

Продолжение таблицы 3Continuation of table 3 ЛейкоцитыWhite blood cells 6,09±0,0706.09 ± 0.070 6,15±0,076.15 ± 0.07 Общий белокTotal protein 83,7±0,4583.7 ± 0.45 85,4±1,3285.4 ± 1.32 Фагоцитарная активностьPhagocytic activity 25,8±1,5725.8 ± 1.57 29,6±1,1129.6 ± 1.11

По данным таблицы 3 видно, что показатели клеточной и гуморальной защиты животных с температурой тела 38,3°С изменились незначительно в сторону увеличения. Показатели ФА - на 14,7%, общего белка - на 2,03% в сравнении с контролем.According to table 3 shows that the indicators of cellular and humoral protection of animals with a body temperature of 38.3 ° C changed slightly upward. FA indicators - by 14.7%, total protein - by 2.03% in comparison with the control.

Таблица 4
Оценка разности средних показателей, двух выборок электрофореза сыворотки крови мышей (контроль-опыт) n=10
Table 4
Evaluation of the difference in average values of two samples of mouse serum electrophoresis (control experiment) n = 10
Показатели электрофореза г/лIndicators of electrophoresis g / l Лабораторные мышиLaboratory mice Разница показателейDifference of indicators РR контрольthe control опытexperience Общий белокTotal protein 49,5±0,9149.5 ± 0.91 85,4±1,3285.4 ± 1.32 +25,90+25.90 <0,001<0.001 АльбуминыAlbumin 12,0±0,6412.0 ± 0.64 25,0±1,4125.0 ± 1.41 +12,93+ 12.93 <0,001<0.001 ГлобулиныGlobulins α1 α 1 7,0±0,407.0 ± 0.40 11,4±0,4311.4 ± 0.43 +4,42+ 4.42 <0,001<0.001 α2 α 2 7,3±0,287.3 ± 0.28 11,7±0,8511.7 ± 0.85 +4,44+4.44 <0,001<0.001 ββ 9,1±0,339.1 ± 0.33 10,3±0,7210.3 ± 0.72 +1,21+1.21 >0,05> 0.05 γ1 γ 1 10,3±0,2610.3 ± 0.26 20,3±0,7320.3 ± 0.73 +10,05+ 10.05 <0,001<0.001 γ2 γ 2 3,2±0,133.2 ± 0.13 6,4±0,426.4 ± 0.42 +3,28+3.28 <0,001<0.001 γ12 γ 1 + γ 2 13,6±0,1813.6 ± 0.18 26,8±0,4126.8 ± 0.41 +13,2+13.2 <0,001<0.001 %∑ γ12 % ∑ γ 1 + γ 2 27,6±0,4327.6 ± 0.43 31,4±0,5931.4 ± 0.59 +4,4+4.4 <0,001<0.001

Отличительным преимуществом предлагаемого способа взятия крови у мышей является доступность предложенного способа, что позволяет повысить выход собираемой крови и сыворотки, не изменяя при этом ее качественные показатели, и изучить влияние иммуностимулирующих препаратов на организм животного. Так, например, у опытных животных, иммунизированных костномозговым препаратом, в 1,7 раз увеличилось содержание общего белка и в 1,9 раз γ12 глобулинов в сыворотке крови по сравнению с контролем.A distinctive advantage of the proposed method of taking blood from mice is the availability of the proposed method, which allows to increase the yield of collected blood and serum without changing its quality indicators, and to study the effect of immunostimulating drugs on the animal's body. So, for example, in experimental animals immunized with a bone marrow preparation, the total protein content increased by 1.7 times and the γ 1 + γ 2 globulins in blood serum increased by 1.9 times compared to the control.

Claims (1)

Способ взятия крови у лабораторных мышей для определения концентрации общего белка, включающий забор крови при помощи декапитации животных, пробы которой помещают в микропробирки, пригодные для центрифугирования, отличающийся тем, что кровь собирают от животных, предварительно помещенных в термостат на 2-5 мин при температуре 40-42°С.A method of taking blood from laboratory mice to determine the concentration of total protein, including blood sampling by decapitation of animals, the samples of which are placed in microtubes suitable for centrifugation, characterized in that the blood is collected from animals previously placed in a thermostat for 2-5 minutes at a temperature 40-42 ° C.
RU2006120240/15A 2006-06-08 2006-06-08 Method for blood sampling in laboratory mice RU2317543C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2006120240/15A RU2317543C1 (en) 2006-06-08 2006-06-08 Method for blood sampling in laboratory mice

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2006120240/15A RU2317543C1 (en) 2006-06-08 2006-06-08 Method for blood sampling in laboratory mice

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2317543C1 true RU2317543C1 (en) 2008-02-20

Family

ID=39267299

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2006120240/15A RU2317543C1 (en) 2006-06-08 2006-06-08 Method for blood sampling in laboratory mice

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2317543C1 (en)

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2593811C1 (en) * 2015-08-03 2016-08-10 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования Новосибирский государственный аграрный университет Method for blood sampling from chinchillas
RU2719912C1 (en) * 2019-07-03 2020-04-23 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Амурская государственная медицинская академия" Министерства здравоохранения Российской Федерации Blood sampling method in rats from peripheral tail veins
RU2837339C1 (en) * 2024-03-07 2025-03-31 Федеральное бюджетное учреждение науки "Научно-исследовательский институт системной биологии и медицины" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Method for preparing rat venous blood for biochemical and proteomic analysis

Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SU1296117A1 (en) * 1985-10-28 1987-03-15 Войсковая часть 51105 Apparatus for taking blood of small laboratory animals

Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
SU1296117A1 (en) * 1985-10-28 1987-03-15 Войсковая часть 51105 Apparatus for taking blood of small laboratory animals

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ЛАБИНСКАЯ А.С. Микробиология с техникой микробиологических исследований. - М.: Медицина, 1978, 394 с., с.103. CURRIE R.W. et al. "Induction of the heat shock response in rats modulates heart rate, creatine kinase and protein synthesis after a subsequent hyperthermic treatment": Cardiovasc. Res. 1990 Feb; - Vol.24, №2 - pp.87-93. (реферат) [найдено 26.12.2006] Найдено из базы данных Entrez PabMed, PMID: 2328523. ЕФРЕМОВ А.В. и др. Изменение гормонально-метаболических показателей плазмы крови крыс в остром периоде после общей управляемой гипертермии. Бюллетень сибирской медицины, 2006, №2 (он-лайн) [найдено 26.12.2006]. *

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2593811C1 (en) * 2015-08-03 2016-08-10 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования Новосибирский государственный аграрный университет Method for blood sampling from chinchillas
RU2719912C1 (en) * 2019-07-03 2020-04-23 Федеральное государственное бюджетное образовательное учреждение высшего образования "Амурская государственная медицинская академия" Министерства здравоохранения Российской Федерации Blood sampling method in rats from peripheral tail veins
RU2837339C1 (en) * 2024-03-07 2025-03-31 Федеральное бюджетное учреждение науки "Научно-исследовательский институт системной биологии и медицины" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Method for preparing rat venous blood for biochemical and proteomic analysis

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN114828872A (en) Hair growth promoter
CN110241071A (en) A kind of normal renal tubule primary cell of people and its Isolation and culture and application
RU2317543C1 (en) Method for blood sampling in laboratory mice
Joshua et al. Haematological and serum biochemical parameters of broilers slaughtered at Bukuru live bird market of Jos South Local Government Plateau State Nigeria
Olaifa et al. Haematological and biochemical parameters of West African Dwarf (WAD) bucks castrated by the Burdizzo method
de Souza et al. Dynamics of hematological parameters in female lambs during the first four months of life
Webster et al. Nectar and the Nectary of Phaseolus vulgaris L. 1
Autukaitė et al. The impact of temperature-humidity index on blood morphology and β-hydroxybutyrate in different sheep breeds
Santos et al. Serum biochemical profile of Pêga breed donkeys in the state of Minas Gerais
Hu et al. Potential role of hypoxia in maintaining lactation persistency of dairy cows
Rukavina et al. The influence of age and gender on hematological and some biochemical parameters in Bosnian mountain horse.
Matsuda et al. Nerve growth factor‐like activity detected in equine peripheral blood after running exercise
Xue et al. Manual platelet-rich plasma production in donkeys by double centrifugation results in leukocyte-rich platelet-rich plasma compared to single centrifugation
Mohammed et al. Metabolic changes in blood and ovarian follicular fluid in baladi goats as affected by storage time duration
VoÈlk et al. Wide tissue distribution of axolotl class II molecules occurs independently of thyroxin
Penninks et al. Juvenile immunodevelopment in minipigs
Awang et al. Evaluation of the serum biochemistry and haematology of rabbits fed straws and haulms diets
Rumokoy et al. Application of thoracic immunogen of musca domestica on immunoglobulin-g level of goats detected through a single radial immuno-diffusion test
Kohama et al. Muscle trophic factor: II. Ontogenic development of activity of a muscle trophic factor in chicken serum
CN120446455B (en) Method for screening high oviposition donor ewes and application thereof
Rukavina et al. Serum biochemical parameters in clinically healthy adult Bosnian mountain horse
Macêdo et al. Assessment of coconut water added to Numida meleagris egg yolk as cryoprotectant for goat semen
Okunlola et al. Blood Profile and Selected Organ Histopathology of Balami Sheep Fed Shea Cake (Vitellaria paradoxa) Meal
BREEDS et al. BERKELEY PUBLICATION
RU2280867C1 (en) Method for preparing erythrocytic diagnostic kit for detecting antibodies to hepatic tissues

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20080609