RU2309983C2 - Method for initial isolation of influenza virus a strain, strain virus a/duck/novosibirsk/56/05 h5n1 for preparation for diagnosis, prophylaxis and therapeutical agents, and for evaluation of antiviral activity of various compounds - Google Patents
Method for initial isolation of influenza virus a strain, strain virus a/duck/novosibirsk/56/05 h5n1 for preparation for diagnosis, prophylaxis and therapeutical agents, and for evaluation of antiviral activity of various compounds Download PDFInfo
- Publication number
- RU2309983C2 RU2309983C2 RU2005136690/13A RU2005136690A RU2309983C2 RU 2309983 C2 RU2309983 C2 RU 2309983C2 RU 2005136690/13 A RU2005136690/13 A RU 2005136690/13A RU 2005136690 A RU2005136690 A RU 2005136690A RU 2309983 C2 RU2309983 C2 RU 2309983C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- virus
- strain
- influenza
- duck
- novosibirsk
- Prior art date
Links
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к медицинской вирусологии, в частности к проблеме диагностики, лечения и профилактики гриппа А, и предназначено для разработки средств и методов биологической защиты.The invention relates to medical virology, in particular to the problem of diagnosis, treatment and prevention of influenza A, and is intended to develop means and methods of biological protection.
Известно относительно немного чувствительных клеточных культур для первичной изоляции вирусов гриппа А. Традиционно для выделения вирусов гриппа из зараженного биологического материала применяют куриные эмбрионы. В настоящее время для первичной изоляции вируса гриппа предложены культуры тканей млекопитающих (MDCK). По методу Davis H.W. е.a. (Bull. Wid. Htlh. Org., 1978, v.14, p.1445-1448) первичную изоляцию вирусов гриппа человека проводят в культуре клеток почки собаки спаниель (MDCK) с добавлением в поддерживающую среду TPCK-treated tripsin, XIII fraction, Sigma, в конечной концентрации 2 мкг/мл. В литературе нет данных изоляции вируса гриппа А с использованием культур клеток СПЭВ. В литературе нет данных о первичной изоляции вируса гриппа А с помощью культур клеток СПЭВ, также нет до сих пор рекомендаций ВОЗ по культивированию вируса гриппа А в культурах клеток СПЭВ для производства диагностических и профилактических препаратов.Relatively few sensitive cell cultures are known for the primary isolation of influenza A viruses. Traditionally, chicken embryos are used to isolate influenza viruses from infected biological material. Currently, mammalian tissue cultures (MDCK) have been proposed for primary isolation of influenza virus. According to the Davis H.W. method e.a. (Bull. Wid. Htlh. Org., 1978, v.14, p.1445-1448) primary isolation of human influenza viruses is carried out in a spaniel dog kidney cell culture (MDCK) supplemented with TPCK-treated tripsin, XIII fraction, Sigma, at a final concentration of 2 μg / ml. In the literature, there is no evidence of isolation of influenza A virus using SPEV cell cultures. There is no data in the literature on the primary isolation of influenza A virus using SPEV cell cultures, and there are still no WHO recommendations for cultivating influenza A virus in SPEV cell cultures for the production of diagnostic and prophylactic drugs.
Г.А.Данлыбаева и др. (Вопросы вирусологии 1991, 1, с.10-13), изучая чувствительность клеток культур тканей человека и животных, обнаружили, что вирус гриппа штамм А/морской голубок/Астрахань/31/76(H5N3) активно репродуцировался не только в клетках MDCK, но и в перевиваемой культуре клеток почки эмбриона свиньи (СПЭВ). Классической системой для производства диагностических и профилактических препаратов являются развивающиеся куриные эмбрионы. Известен способ культивирования вируса гриппа в клетках Vero (SU 614873, 15.10.1997, 849716).G.A.Danlybaeva et al. (Questions of Virology 1991, 1, p.10-13), studying the sensitivity of cells of tissue cultures of humans and animals, found that the influenza virus strain A / dove / Astrakhan / 31/76 (H5N3) actively reproduced not only in MDCK cells, but also in the transplanted culture of pig embryonic kidney cells (SPEV). The classic system for the production of diagnostic and prophylactic drugs is developing chicken embryos. A known method of culturing influenza virus in Vero cells (SU 614873, 10/15/1997, 849716).
В настоящее время для производственных целей по рекомендации Всемирной Организации Здравоохранения (ВОЗ) используют штаммы вируса гриппа А, культивируемые в куриных эмбрионах или в культурах клеток почки собак МДСК.Currently, for production purposes, on the recommendation of the World Health Organization (WHO), influenza A virus strains cultured in chicken embryos or in kidney cell cultures of dogs of MDSK are used.
Однако получение антигенов для диагностики гриппа А птиц или сывороток к нему требует сложной дополнительной очистки вируссодержащей аллантоисной жидкости, а в культурах клеток МДСК продукция вируса идет на низком уровне, требует дополнительной концентрации вируссодержащего материала.However, the production of antigens for the diagnosis of avian influenza A or serum to it requires complex additional purification of the virus-containing allantoic fluid, and in MDSC cell cultures, the virus production is low, requires an additional concentration of the virus-containing material.
Сущность изобретения: первичная изоляция путем заражения культуры СПЭВ биологическим материалом, зараженным или подозрительным на заражение вирусом гриппа А, позволившая выделить инфекционный вирус гриппа А, а именно: штамм вируса гриппа A/duck/Novosibirsk/56/05 H5N1, характеризующийся высокой способностью продуцироваться в культурах клеток почек эмбриона свиньи (СПЭВ). Полученный штамм вируса гриппа А птиц H5N1 характеризуется высокой антигенной активностью, способностью индуцировать вируснейтрализующие, протективные антитела и может быть использован для приготовления тест-систем и других диагностических препаратов, для оценки противовирусной активности различных соединений, для получения вакцины, высокоиммуногенных иммуноглобулинов против вируса гриппа А H5N1, пригодных для создания диагностических, лечебных и профилактических препаратов.The inventive primary isolation by infection of the SPEV culture with biological material infected or suspicious of infection with the influenza A virus, which allowed to isolate the infectious influenza A virus, namely: the influenza virus strain A / duck / Novosibirsk / 56/05 H5N1, characterized by high ability to be produced in pig embryonic kidney cell cultures (SPEV). The resulting strain of avian influenza A virus H5N1 is characterized by high antigenic activity, the ability to induce neutralizing, protective antibodies and can be used to prepare test systems and other diagnostic drugs, to evaluate the antiviral activity of various compounds, to obtain a vaccine, highly immunogenic immunoglobulins against H5N1 influenza A virus suitable for the creation of diagnostic, therapeutic and prophylactic drugs.
Получение оригинального штамма вируса гриппа A/duck/Novosibirsk/56/05 H5N1.Obtaining the original strain of influenza virus A / duck / Novosibirsk / 56/05 H5N1.
Штамм вируса гриппа A/duck/Novosibirsk/56/05 H5N1 выделен в период эпизоотии среди домашних птиц (утки и куры) в Новосибирской области (Здвинский район). Из пула внутренних органов больной домашней утки, положительного на РНК Н5 вируса гриппа А, по данным полимеразной цепной реакции (ОТ ПЦР).The strain of the influenza virus A / duck / Novosibirsk / 56/05 H5N1 was isolated during epizootics among poultry (ducks and chickens) in the Novosibirsk region (Zdvinsky district). From a pool of internal organs of a sick domestic duck positive for H5 RNA of influenza A virus, according to the polymerase chain reaction (RT PCR).
Материал от больной утки был использован для первичной изоляции вируса гриппа А методом заражения культур клеток СПЭВ.Material from a sick duck was used for primary isolation of influenza A virus by infection of cell cultures of SPEV.
Для изоляции вируса использовали свежеприготовленную суспензию культур клеток СПЭВ, полученную из коллекции клеточных культур ГУ НИИ вирусологии им. Д.И.Ивановского РАМН. Суспензия содержала 5×106 клеток в 1 мл питательной среды 199 с добавлением антибиотиков и ферментов, трипсин. Подготовленную суспензию клеток СПЭВ разливали в 24 луночные панели по 200 мкл на лунку и по 25 мкл каждой из подготовленных проб смывов или органов от птиц вносили непосредственно в клетки. На каждую пробу использовали по 2 лунки с суспензией клеток. Для заражения культур клеток СПЭВ использовали неразведенные и разведенные в 10 раз пробы из пула органов больной домашней утки. Часть лунок с суспензией клеток оставляли в качестве контролей. Панели в течение 20 мин оставляли при комнатной температуре, периодически слегка встряхивая.To isolate the virus, a freshly prepared suspension of cell cultures of SPEV obtained from the collection of cell cultures of the Research Institute of Virology named after D.I. Ivanovo RAMS. The suspension contained 5 × 10 6 cells in 1 ml of culture medium 199 with the addition of antibiotics and enzymes, trypsin. The prepared suspension of SPEV cells was poured into 24 well panels of 200 μl per well and 25 μl of each of the prepared samples of swabs or organs from birds was introduced directly into the cells. For each sample, 2 wells with a cell suspension were used. For infection of SPEV cell cultures, undiluted and diluted 10-fold samples from a pool of organs of a sick domestic duck were used. A portion of the cell suspension wells were left as controls. The panels were left at room temperature for 20 minutes, periodically shaking slightly.
По истечении этого времени в лунки с суспензией клеток панелей добавляли по 0,4 мл среды 199 и панели инкубировали при 37°С в атмосфере CO2. Через 24 часа после заражения проводили учет по цитопатогенному действию агента.At the end of this time, 0.4 ml of 199 medium was added to the wells with a suspension of panel cells and the panels were incubated at 37 ° C in a CO 2 atmosphere. 24 hours after infection, a cytopathogenic effect of the agent was recorded.
Инфекционные титры вируса гриппа A (H5N1) учитывали, используя метод Рида и Менча.Infectious titers of influenza A virus (H5N1) were recorded using the Reed and Mench method.
Полимеразную цепную реакцию (ОТ-ПЦР) использовали для определения генома вируса гриппа А (Н5) в образцах проб, отобранных из зараженных культур клеток СПЭВ на стадии максимального проявления цитопатогенной активности вируса.Polymerase chain reaction (RT-PCR) was used to determine the genome of the influenza A virus (H5) in samples taken from infected cultures of SPEV cells at the stage of maximum manifestation of the cytopathogenic activity of the virus.
Дальнейшее определение типа гемагглютинина и нейраминидазы осуществляли методом микрочипов.Further determination of the type of hemagglutinin and neuraminidase was carried out using the microarray method.
Таким образом, использование культур клеток СПЭВ для первичной изоляции вируса позволило выделить инфекционный вирус гриппа A/duck/Novosibirsk/56/05 H5N1Thus, the use of SPEV cell cultures for primary isolation of the virus made it possible to isolate the infectious influenza virus A / duck / Novosibirsk / 56/05 H5N1
Идентификация штамма A/duck/Novosibirsk/56/05 H5N1.Identification of strain A / duck / Novosibirsk / 56/05 H5N1.
Идентификация штамма была проведена методами реакции торможения гемагглютинации, ОТ-ПЦР с использованием праймеров к геному вируса гриппа А, методом секвенирования амплифицированных участков генома вируса гриппа, достоверно показавшего наличие гена, кодирующего гемагглютинин Н5 вируса гриппа. Методом микрочипов было установлено, что изолированный вариант относится к H5N1 вируса гриппа птиц. Методом анализа последовательностей нуклеиновых кислот показано также, что ген, кодирующий гемагглютинин 5, содержит сайт нарезания, характерный для патогенных штаммов вируса гриппа А H5N1.The strain was identified by hemagglutination inhibition reaction, RT-PCR using primers for the influenza A virus genome, and sequencing of amplified sections of the influenza virus genome that reliably showed the presence of the gene encoding the influenza hemagglutinin H5. Using the microarray method, it was found that the isolated variant belongs to the H5N1 avian influenza virus. By the method of analysis of nucleic acid sequences, it was also shown that the gene encoding hemagglutinin 5 contains a cutting site characteristic of pathogenic strains of influenza A virus H5N1.
Штамм A/duck/Novosibirsk/56/05 H5N1 депонирован в Государственную коллекцию вирусов, регистрационный номер 2371.Strain A / duck / Novosibirsk / 56/05 H5N1 was deposited with the State Virus Collection, registration number 2371.
Физико-химические признаки.Physico-chemical signs.
Индекс инактивации дезоксихолатом натрия - 5,2. Индекс термоинактивации - 5,5 (при прогревании в течение 20 мин при 50°С). При фильтрации вируссодержащей суспензии через миллипоровые фильтры размером 100 нм снижение инфекционного титра не наблюдали. Это свидетельствует о том, что штамм вируса имеет размеры до 100 нм и содержит в своем составе липопротеидную оболочку.The inactivation index of sodium deoxycholate is 5.2. The thermal inactivation index is 5.5 (when heated for 20 minutes at 50 ° C). When filtering a virus-containing suspension through millipore filters with a size of 100 nm, a decrease in the infectious titer was not observed. This indicates that the strain of the virus has sizes up to 100 nm and contains a lipoprotein membrane.
На основании анализа первичной структуры РНК, антигенных признаков выделенный штамм вируса отнесен к семейству Orthomyxoviridae.Based on the analysis of the primary structure of RNA, antigenic traits, the isolated strain of the virus is assigned to the Orthomyxoviridae family.
Культуральные свойства.Cultural properties.
Взаимодействие штамма вируса гриппа А птиц с культурами клеток различного происхождения (СПЭВ, Vero, МДСК) происходит в форме острой инфекции, сопровождается деструкцией клеток, наступающей, как правило, через 24-48 часов после заражения с накоплением вируса в культуральной среде в титрах до 10,0 lg ТЦД50/МЛ. В культуральной жидкости инфицированных штаммом A/duck/Novosibirsk/56/05 H5N1 культур клеток накапливается РНК ВГС, выявляемая с помощью праймеров к области генов, кодирующих гемагглютинин Н5, а также гемагглютинины в титрах до 1:256. При роллерном культивировании инфицированных штаммом ВГС фибробластов куриного эмбриона в культуральной жидкости на 4-5-е сутки после инфекции накапливаются гемагглютинины, агглютинирующие эритроциты гуся в титре до 1:128.The interaction of the avian influenza A virus strain with cell cultures of various origins (SPEV, Vero, MDSK) occurs in the form of an acute infection, accompanied by cell destruction, usually occurring 24-48 hours after infection, with the virus accumulating in the culture medium in titers of up to 10 , 0 lg TCD50 / ML. In the culture fluid infected with the A / duck / Novosibirsk / 56/05 H5N1 strain, cell cultures accumulate HCV RNA, detected using primers to the region of genes encoding hemagglutinin H5, as well as hemagglutinins in titers up to 1: 256. During roller cultivation of chicken embryo fibroblasts infected with the HCV strain in the culture fluid, hemagglutinins accumulate agglutinating goose erythrocytes in titer up to 1: 128 on the 4-5th day after infection.
Антигенные свойства.Antigenic properties.
Антигенные свойства штамма A/duck/Novosibirsk/56/05 H5N1 изучены в РГА и РТГА, в реакции биологической нейтрализации, методом иммуноферментного анализа. В реакциях использовали поликлональные сыворотки, полученные к вирусу гриппа А H5N1. Реакцию биологической нейтрализации ставили с разведениями сывороток 1:10 и с десятикратными разведениями вируссодержащего материала. Реакцию нейтрализации учитывали по индексу нейтрализации.The antigenic properties of strain A / duck / Novosibirsk / 56/05 H5N1 were studied in the RSA and RTGA, in the reaction of biological neutralization, by enzyme immunoassay. The reactions used polyclonal sera obtained for the H5N1 influenza A virus. The biological neutralization reaction was performed with 1:10 dilutions of the serum and ten-fold dilutions of the virus-containing material. The neutralization reaction was taken into account by the neutralization index.
Иммуногенные свойства.Immunogenic properties.
Высокие антигенные свойства штамма A/duck/Novosibirsk/56/05 H5N1 позволяют использовать его для получения высокоиммуногенных сывороток) или иммунных асцитических жидкостей. Показано, что однократное заражение мышей инактивированным ультрафиолетом вируссодержащим материалом позволяет выявлять на 14-16 сутки антитела к вирусу гриппа А в сыворотке крови, активно реагирующие в РТГА и в ELISA (титры антител 1:40, 1:80 соответственно).The high antigenic properties of strain A / duck / Novosibirsk / 56/05 H5N1 allow it to be used to obtain highly immunogenic sera) or immune ascitic fluids. It was shown that a single infection of mice with inactivated ultraviolet virus-containing material allows the detection of antibodies to influenza A virus in blood serum that are actively reacting in RTGA and ELISA on days 14-16 (antibody titers 1:40, 1:80, respectively).
Диагностический препарат - антиген из штамма A/duck/Novosibirsk/56/05 H5N1 получают путем роллерного культивирования вируса в культурах клеток СПЭВ с последующим осветлением культуральной жидкости, а при необходимости осаждением путем ультрацетрифугирования вируса в бляшку на пике проявления его гемагглютинирующей активности (24 часа после заражения). В этом случае гемагглютинирующая активность вируса из бляшки достигает титра 1:5120.The diagnostic drug, the antigen from strain A / duck / Novosibirsk / 56/05 H5N1, is obtained by roller cultivation of the virus in SPEV cell cultures followed by clarification of the culture fluid, and, if necessary, precipitation by ultracetrifugation of the virus into a plaque at the peak of its hemagglutinating activity (24 hours after infection). In this case, the hemagglutinating activity of the virus from the plaque reaches a titer of 1: 5120.
Профилактический препарат (культуральную инактивированную вакцину) готовят из культуральной жидкости, собранной из инфицированных штаммом вируса гриппа А культур клеток СПЭВ на 2-3 сутки после заражения при роллерном выращивании урожая вируса. Сбор культуральной жидкости инактивируют формальдегидом в концентрации 1:2000 в течение 60 суток при +4°С или ультрафиолетовыми лучами в установке в течение 1,5 минут, проверяя остаточную инфекционность и сохранение антигенной активности.A prophylactic preparation (culture inactivated vaccine) is prepared from the culture fluid collected from the SPEV cell cultures infected with the influenza A virus strain 2-3 days after infection by roller growth of the virus crop. The collection of culture fluid is inactivated with formaldehyde at a concentration of 1: 2000 for 60 days at + 4 ° C or with ultraviolet rays in the apparatus for 1.5 minutes, checking residual infectivity and maintaining antigenic activity.
Скрининг противовирусных препаратов основан на использовании инфицированных штаммом A/duck/Novosibirsk/56/05 H5N1 культур клеток СПЭВ, которые обрабатывают препаратами до, после или в момент заражения штаммом вируса гриппа А. Результаты учитывают по способности тех или иных соединений в разных условиях использования подавлять репликацию вируса гриппа А в культурах клеток СПЭВ.Antiviral screening is based on the use of SPEV cell cultures infected with strain A / duck / Novosibirsk / 56/05 H5N1, which are treated with preparations before, after or at the time of infection with influenza A strain. The results are taken into account by the ability to suppress various compounds under different conditions of use Influenza A virus replication in SPEV cell cultures.
Пример 1.Example 1
Метод изоляции вируса птичьего гриппа А. С этой целью используют суспензию перевиваемой линии клеток почки эмбриона свиньи (СПЭВ), приготовленную на среде 199 с добавлением 100 ЕД пенициллина и стрептомицина, для выделения вируса гриппа проводят инфицирование суспензии клеток в объеме 1-2 мл пробами полевого материала в объеме до 0,2-0,4 мл в 25 см3 флаконах с последующей 30-минутной инкубацией смеси вирус-клетка при комнатной температуре для оптимальной адсорбции вируса. По окончании периода адсорбции вируса на клетки объем вируссодержащей суспензии во флаконе доводят средой 199 с добавлением антибиотиков и трипсина (TPCK-treated tripsin, XIII fraction, Sigma до 10 мл), инкубируют в термостате с подачей CO2 при 37°С до проявления цитодеструкции. Использование для изоляции вируса гриппа А серии десятикратных разведений проб полевого материала для заражения культур клеток позволяет повысить эффективность выделения вируса гриппа А.The method of isolation of avian influenza virus A. For this purpose, a suspension of an inoculated pig cell line of a kidney of a pig embryo (SPEV) prepared on medium 199 with the addition of 100 PIECES of penicillin and streptomycin is used. To isolate the influenza virus, a suspension of cells is infected in a volume of 1-2 ml with field samples material in a volume of up to 0.2-0.4 ml in 25 cm 3 bottles followed by a 30-minute incubation of the virus-cell mixture at room temperature for optimal adsorption of the virus. At the end of the period of adsorption of the virus to the cells, the volume of the virus-containing suspension in the vial was adjusted with medium 199 with the addition of antibiotics and trypsin (TPCK-treated tripsin, XIII fraction, Sigma to 10 ml), incubated in a thermostat with a supply of CO 2 at 37 ° C until cytodestruction manifested. The use of a series of ten-fold dilutions of samples of field material for infection of cell cultures for isolation of influenza A virus allows to increase the efficiency of isolation of influenza A virus.
Пример 2Example 2
Получение вируссодержащей культуральной жидкости, необходимой для производства диагностических препаратов на основе предлагаемого высокопродуктивного штамма вируса A/duck/Novosibirsk/56/05 H5N1. В качестве материала для исследований за отсутствием аналога предлагаем штамм A/duck/Novosibirsk/56/05 H5N1, которым заражали монослой культур клеток СПЭВ, выращенный роллерным способом. Для заражения используют 10 ТЦД50/ на клетку и после часового контакта клетки трижды отмывают от неадсорбированного вируса, после чего вносят ростовую среду 199 с 1% сыворотки эмбриона телят и инкубируют на роллерной установке при 37°С в течение 24-48 часов, когда в культурах будут отмечены отчетливые явления цитодеструктивного действия вируса. Полученные данные, характеризующие слив культуральной жидкости, пригодной для получения антигенов вируса гриппа, приведены в таблице.Obtaining a virus-containing culture fluid necessary for the production of diagnostic products based on the proposed highly productive strain of the virus A / duck / Novosibirsk / 56/05 H5N1. As a material for research, in the absence of an analogue, we offer strain A / duck / Novosibirsk / 56/05 H5N1, which infected a monolayer of cell cultures of SPEV grown by the roller method. For infection, use 10 TCD 50 / per cell and after an hour of contact, the cells are washed three times from the non-adsorbed virus, after which they add 199 growth medium with 1% calf embryo serum and incubate on a roller machine at 37 ° C for 24-48 hours, when cultures, distinct phenomena of the cyto-destructive effect of the virus will be noted. The data obtained characterizing the discharge of culture fluid suitable for the production of influenza antigens are shown in the table.
Таким образом, высокопродуктивный штамм ВГС может быть использован для производства диагностических препаратов.Thus, a highly productive HCV strain can be used to produce diagnostic products.
Пример 3.Example 3
Получение вируссодержащей культуральной жидкости, необходимой для производства профилактических препаратов (культуральной инактивированной вакцины) на основе предлагаемого высокопродуктивного штамма вируса A/duck/Novosibirsk/56/05 H5N1. В качестве материала для исследований за отсутствием аналога предлагаем высокопродуктивный для культур клеток СПЭВ и Vero-Е6 (перевиваемые культуры клеток почки зеленой мартышки) штамм A/duck/Novosibirsk/56/05 H5N1, которым заражали монослой культур клеток Vero-Е6, выращенный роллерным способом. Для заражения используют 10,0 ТЦД50/на клетку и после часового контакта клетки трижды отмывают от неадсорбированного вируса, после чего вносят ростовую среду 199 с 0,1% альбумина человека телят и инкубируют на роллерной установке при 37°С в течение 24-48 часов, когда в культурах будут отмечены отчетливые явления цитодеструктивного действия вируса. Полученные данные, характеризующие слив культуральной жидкости, пригодной для получения культуральной инактивированной вакцины против гриппа H5N1, приведены в таблице.Obtaining a virus-containing culture fluid necessary for the production of prophylactic drugs (culture inactivated vaccine) based on the proposed highly productive strain of the virus A / duck / Novosibirsk / 56/05 H5N1. As a material for studies, in the absence of an analogue, we offer a strain A / duck / Novosibirsk / 56/05 H5N1 that is highly productive for cell cultures of SPEV and Vero-E6 (transplantable cultures of green monkey kidney cells), which infected a monolayer of cell culture Vero-E6 grown by roller method . For infection, 10.0 TCD 50 / per cell is used and after an hour-long contact the cells are washed three times from the non-adsorbed virus, after which 199 growth medium is introduced with 0.1% human calf albumin and incubated on a roller machine at 37 ° C for 24-48 hours when in the cultures distinct phenomena of the cyto-destructive action of the virus will be noted. The data obtained characterizing the discharge of culture fluid suitable for obtaining a culture inactivated vaccine against H5N1 influenza are shown in the table.
Таким образом, высокопродуктивный штамм ВГС может быть использован для производства профилактических препаратов.Thus, a highly productive HCV strain can be used to produce prophylactic drugs.
Пример 4.Example 4
Получение экспериментальной модели: вирус птичьего гриппа А (H5N1) и чувствительные для его репликации культуры клеток СПЭВ, пригодной для скрининга противовирусных препаратов.Obtaining an experimental model: avian influenza A virus (H5N1) and SPEV cell cultures sensitive to its replication suitable for screening antiviral drugs.
Культуры клеток СПЭВ обрабатывают нетоксическими для клеток дозами препаратов до, после или в момент заражения штаммом вируса гриппа А. Результаты учитывают по способности тех или соединений в разных условиях подавлять репликацию вируса гриппа А в культурах клеток СПЭВ. В качестве контроля служат: инфицированные вирусом гриппа А (штамм A/duck/Novosibirsk/56/05 H5N1) культуры клеток без внесения противовирусных препаратов, незараженные культуры клеток СПЭВ, обработанные препаратами в те же сроки и в тех же дозах.SPEV cell cultures are treated with non-toxic doses of drugs before, after, or at the time of infection with influenza A strain. Results are taken into account by the ability of certain compounds to suppress the replication of influenza A virus in SPEV cell cultures under different conditions. As control are: influenza A virus infected (strain A / duck / Novosibirsk / 56/05 H5N1) cell cultures without antiviral drugs, uninfected cultures of SPEV cells treated with the drugs at the same time and in the same doses.
Таким образом, предлагаемый метод первичной изоляции позволяет выделять вирусы гриппа А. Штамм вируса гриппа A/duck/Novosibirsk/56/05 H5N1, (ГКВ №2371), первичную изоляцию которого провели с помощью этого метода путем заражения культуры клеток почки эмбриона свиньи (СПЭВ), характеризуется высокой способностью репродуцироваться в культуре СПЭВ, способностью индуцировать вируснейтрализующие, протективные антитела. Высокая антигенная активность этого штамма позволяет его использовать для получения высокоиммуногенных сывороток. Штамм вируса гриппа A/duck/Novosibirsk/56/05 H5N1, (ГКВ №2371) пригоден для получения диагностических, профилактических препаратов и для оценки противовирусной активности различных соединений.Thus, the proposed method of primary isolation allows the isolation of influenza A viruses. The strain of influenza virus A / duck / Novosibirsk / 56/05 H5N1, (Bills No. 2371), the primary isolation of which was carried out using this method by infection of a kidney cell culture of a pig embryo (SPEV) ), is characterized by a high ability to reproduce in the SPEV culture, the ability to induce neutralizing, protective antibodies. The high antigenic activity of this strain allows it to be used to obtain highly immunogenic serums. The strain of the influenza virus A / duck / Novosibirsk / 56/05 H5N1, (Bills No. 2371) is suitable for the preparation of diagnostic, prophylactic drugs and for evaluating the antiviral activity of various compounds.
Инфекционная и антигенная A/duck/Novosibirsk/56/05 H5N1 при роллерном культивировании инфицированных культур клетокTable
Infectious and antigenic A / duck / Novosibirsk / 56/05 H5N1 by roller culture of infected cell cultures
Claims (4)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2005136690/13A RU2309983C2 (en) | 2005-11-25 | 2005-11-25 | Method for initial isolation of influenza virus a strain, strain virus a/duck/novosibirsk/56/05 h5n1 for preparation for diagnosis, prophylaxis and therapeutical agents, and for evaluation of antiviral activity of various compounds |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2005136690/13A RU2309983C2 (en) | 2005-11-25 | 2005-11-25 | Method for initial isolation of influenza virus a strain, strain virus a/duck/novosibirsk/56/05 h5n1 for preparation for diagnosis, prophylaxis and therapeutical agents, and for evaluation of antiviral activity of various compounds |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2005136690A RU2005136690A (en) | 2007-05-27 |
RU2309983C2 true RU2309983C2 (en) | 2007-11-10 |
Family
ID=38310485
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2005136690/13A RU2309983C2 (en) | 2005-11-25 | 2005-11-25 | Method for initial isolation of influenza virus a strain, strain virus a/duck/novosibirsk/56/05 h5n1 for preparation for diagnosis, prophylaxis and therapeutical agents, and for evaluation of antiviral activity of various compounds |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2309983C2 (en) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2703024C1 (en) * | 2019-03-15 | 2019-10-15 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный исследовательский центр фундаментальной и трансляционной медицины" (ФИЦ ФТМ) | Strain of influenza virus b/novosibirsk/40/2017-ma for studying therapeutic and preventive efficacy of antiviral preparations in vitro and in vivo |
RU2796987C1 (en) * | 2022-08-03 | 2023-05-30 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ") | Yamal strain of avian influenza virus of alphainfluenzavirus genus of influenza a virus subtype h5n1 species for the manufacture of biological products for the specific prevention of avian influenza type a subtype h5 |
-
2005
- 2005-11-25 RU RU2005136690/13A patent/RU2309983C2/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
DAVIS H.W, et al. 1978, v.14, p.1445-1448. * |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2703024C1 (en) * | 2019-03-15 | 2019-10-15 | Федеральное государственное бюджетное научное учреждение "Федеральный исследовательский центр фундаментальной и трансляционной медицины" (ФИЦ ФТМ) | Strain of influenza virus b/novosibirsk/40/2017-ma for studying therapeutic and preventive efficacy of antiviral preparations in vitro and in vivo |
RU2796987C1 (en) * | 2022-08-03 | 2023-05-30 | Федеральное государственное бюджетное учреждение "Федеральный центр охраны здоровья животных" (ФГБУ "ВНИИЗЖ") | Yamal strain of avian influenza virus of alphainfluenzavirus genus of influenza a virus subtype h5n1 species for the manufacture of biological products for the specific prevention of avian influenza type a subtype h5 |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2005136690A (en) | 2007-05-27 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CA2250078C (en) | Processes for the replication of influenza viruses in cell culture, and the influenza viruses obtainable by the process | |
Hinshaw et al. | Swine influenza-like viruses in turkeys: potential source of virus for humans? | |
Minamoto et al. | Isolation and characterization of rotavirus from feral pigeon in mammalian cell cultures | |
WO2007132763A1 (en) | Method for proliferation of influenza virus | |
JP2525734B2 (en) | Influenza vaccine | |
Aamir et al. | Zoonotic potential of highly pathogenic avian H7N3 influenza viruses from Pakistan | |
CN103328629A (en) | Novel vaccines against the a/H1N1 pandemic flu virus | |
Hooks et al. | Characterization and distribution of two new foamy viruses isolated from chimpanzees | |
Zhang et al. | Isolation of swine influenza A virus in cell cultures and embryonated chicken eggs | |
RU2309983C2 (en) | Method for initial isolation of influenza virus a strain, strain virus a/duck/novosibirsk/56/05 h5n1 for preparation for diagnosis, prophylaxis and therapeutical agents, and for evaluation of antiviral activity of various compounds | |
CN104073470A (en) | Spinner-flask culture method for H9N2 subtype of avian influenza virus | |
RU2428476C1 (en) | Reassortant rn a9-swine a(h7n1) influenza virus strain for neuraminidase antibody assay in influenza infection and vaccination | |
Bahrami | The effectiveness of Scrophularia striata on Newcastle disease | |
RU2563351C2 (en) | INFLUENZA VIRUS STRAIN A/17/Anui/2013/61 (H7N9) FOR PRODUCTION OF LIVE INTRANASAL INFLUENZA VACCINE | |
JP6174857B2 (en) | Foreign substance test | |
RU2821028C1 (en) | Newcastle disease virus "vniizzh g7" strain for production of biopreparations for diagnosis and specific prevention of newcastle disease of birds | |
RU2340671C1 (en) | Strain of virus of flu a/17/wisconsin/05/84 (h3n2) for manufacture of live influenzal intranasal vaccine for adults and children | |
RU2815532C1 (en) | Diagnostic kit for detecting antibodies to avian influenza virus and identifying subtype of hemagglutinating viral agent in hemagglutination inhibition reaction | |
RU2738900C1 (en) | Diagnostic set for detecting antibodies to avian influenza virus subtype h9 in hemagglutination inhibition reaction | |
RU2307162C1 (en) | Influenza virus strain for influenza intranasal vaccine for infants and adults | |
RU2685121C1 (en) | Vaccine strain of influenza virus a/17/hongkong/2017/75108 (h7n9) for producing potentially pandemic live intranasal influenza vaccine | |
RU2366709C1 (en) | AVIAN INFLUENZA STRAIN A/Goose/Krasnoozerskoye/627/05 SUBTYPE H5N1 FOR STUDY OF STRENGTH OF THERAPEUTIC AND PREVENTIVE INFLUENZA AGENTS | |
RU2300564C1 (en) | Avian influenza virus strain a/bak/russia/o5, subtype h5nq designated for development of agents and methods of biological protection | |
CN116790513A (en) | H3N8 subtype avian influenza virus, use and vaccine | |
US20090098143A1 (en) | Vaccine production for pathogenic bird viral diseases |