RU2303603C2 - Способ получения гептапептида и промежуточные соединения для его получения - Google Patents

Способ получения гептапептида и промежуточные соединения для его получения Download PDF

Info

Publication number
RU2303603C2
RU2303603C2 RU2006104891/04A RU2006104891A RU2303603C2 RU 2303603 C2 RU2303603 C2 RU 2303603C2 RU 2006104891/04 A RU2006104891/04 A RU 2006104891/04A RU 2006104891 A RU2006104891 A RU 2006104891A RU 2303603 C2 RU2303603 C2 RU 2303603C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
pro
thr
lys
arg
gly
Prior art date
Application number
RU2006104891/04A
Other languages
English (en)
Other versions
RU2006104891A (ru
Inventor
Жанна Дмитриевна Беспалова (RU)
Жанна Дмитриевна Беспалова
Александр Сергеевич Молокоедов (RU)
Александр Сергеевич Молокоедов
Михаил Владимирович Овчинников (RU)
Михаил Владимирович Овчинников
Марина Евгеньевна Палькеева (RU)
Марина Евгеньевна Палькеева
Мари Владимировна Сидорова (RU)
Мария Владимировна Сидорова
Original Assignee
Закрытое акционерное общество "Синтез пептидов"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Закрытое акционерное общество "Синтез пептидов" filed Critical Закрытое акционерное общество "Синтез пептидов"
Priority to RU2006104891/04A priority Critical patent/RU2303603C2/ru
Publication of RU2006104891A publication Critical patent/RU2006104891A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2303603C2 publication Critical patent/RU2303603C2/ru

Links

Classifications

    • YGENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
    • Y02TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
    • Y02PCLIMATE CHANGE MITIGATION TECHNOLOGIES IN THE PRODUCTION OR PROCESSING OF GOODS
    • Y02P20/00Technologies relating to chemical industry
    • Y02P20/50Improvements relating to the production of bulk chemicals
    • Y02P20/55Design of synthesis routes, e.g. reducing the use of auxiliary or protecting groups

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Abstract

Изобретение относится к способу получения гептапептида формулы: Н-Thr-Lys-Pro-Arg-Pro-Gly-Pro-OH, обладающего психостимулирующей активностью, и имеет своей целью упростить процесс, а также повысить выход целевого продукта. Сущность изобретения заключается в том, что синтез осуществляют путем конденсации С-концевого защищенного трипептида формулы: HCl·H-Pro-Gly-Pro-ОХ, где Х - защитная группа с N-концевым защищенным тетрапептидом формулы: Y-Thr-Lys(Y1)-Pro-Arg-ОН, где Y и Y1 - защитные группы, и полученный защищенный гептапептид формулы: Y-Thr-Lys(Y1)-Pro-Arg-Pro-Gly-Pro-OX обрабатывают деблокирующими агентами для удаления защитных групп и выделяют конечный продукт с помощью хроматографии. Также описываются трипептид формулы HCl·H-Pro-Gly-Pro-OBzl и тетрапептид формулы Вос-Thr-Lys-(Boc)-Pro-Arg-OH в качестве промежуточных соединений для синтеза гептапептида формулы: H-Thr-Lys-Pro-Arg-Pro-Gly-Pro-OH. 3 н. и 1 з.п. ф-лы.

Description

Изобретение относится к области фармацевтической химии, конкретно к новому способу получения гептапептида формулы:
H-Thr-Lys-Pro-Arg-Pro-Gly-Pro-OH
и промежуточным соединениям для его получения.
Этот гептапептид, обладающий психостимулирующей активностью, известен под названием селанк [1].
Известен способ получения селанка путем ступенчатого наращивания пептидной цепи, начиная с С-концевого защищенного трипептида-трифторацетата Н-Pro-Gly-Pro-OBzl с использованием N,N'-дициклогексилкарбодиимида с добавкой 1-оксибензотриазола, а также соответствующих пентафторфениловых эфиров защищенных аминокислот [2].
Недостатком известного способа получения селанка является низкий выход целевого продукта и необходимость защиты боковой гуанидиновой группы аргинина в процессе синтеза нитрогруппой, которая удаляется с большими трудностями и процесс ее удаления является весьма длительным.
Целью заявленного способа является упрощение процесса и повышение выхода конечного продукта
Поставленная цель достигается описываемым способом, согласно которому синтез гептапептида селанка осуществляют путем блочного наращивания пептидной цепи, начиная с С-концевого трипептида.
Список сокращений
АсОН - уксусная кислота
Boc - трет.-бутилоксикарбонил
Bzl - бензил
DCC - N,N'-дициклогексилкарбодиимид
DCHU - N,N'-дициклогексилмочевина
DMF - N,N-диметилформамид
EtOH - этанол
HOBt - 1-гидроксибензотриазол
HONp - пара-нитрофенол
HONSu - N-гидроксисукцинимид
HOPfp - пентафторфенол
MeOH - метанол
TFA - трифторуксусная кислота
Z - бензилоксикарбонил
ВЭЖХ - высокоэффективная жидкостная хроматография
ТСХ - тонкослойная хроматография
Экспериментальная часть
В синтезе используют производные L-аминокислот фирмы Bachem (Швейцария), DCC, TFA, HOBt, HONSu, HONp и HOPfp фирмы Fluka (Швейцария). DMF очищают перегонкой над нингидрином и окисью бария. Аналитическую ВЭЖХ проводят на хроматографе фирмы Gilson (Франция).
ТСХ проводят на стеклянных хроматографических пластинках Merck-Kiselgel (ФРГ) в следующих системах растворителей:
А - хлороформ:метанол:АсОН 9:1:0.5
Б - хлороформ:метанол:32% АсОН 15:4:1
В - хлороформ:метанол:32% АсОН 5:3:1
Г - хлороформ:метанол:этилацетат 6:3:1
1Н-ЯМР - спектры снимают на спектрометре WH-500 Bruker 500 МГц (ФРГ) в DMSO-d6 при 300 К. Химические сдвиги (δ, м.д.) измеряют относительно тетраметилсилана. Масс-спектры регистрировали на масс-спектрометре Analytical Compact MALDI 4 фирмы Kratos (Великобритания).
Изобретение иллюстрируется следующими примерами.
Пример 1. Гидрохлорид бензилового эфира пролил-глицил-пролина
Figure 00000001
1.
Figure 00000002
4.1 г (55 ммоль) глицина растворяют в 55 мл 1 н. раствора NaOH, добавляют при охлаждении раствор 15.6 г (50 ммоль) Boc-Pro-ONSu в 100 мл DMF и перемешивают в течение 24 ч, контролируя протекание реакции с помощью ТСХ в системе Б. Раствор упаривают, остаток растворяют в воде, водный раствор экстрагируют эфиром (2×20 мл), подкисляют до рН 2-3 12 н. раствором HCl и экстрагируют смесью этилацетата с бутанолом в соотношении 2:1 (2×150 мл). Объединенные органические вытяжки промывают насыщенным раствором NaCl и водой до нейтральной реакции и упаривают. Остаток кристаллизуют из смеси эфир-гексан 1:1, отфильтровывают, сушат в вакууме. В итоге получают 11.6 г (85%) Ia с Rf 0.57 (A), 0.71 (Б), 0.86 (В).
2.
Figure 00000003
К раствору 9.0 г (44 ммоль) H-Pro-OBzl в 100 мл DMF, охлажденному до -10°С, прибавляют при интенсивном перемешивании охлажденный до той же температуры раствор 10.9 г (40 ммоль) Ia, 6.7 г (44 ммоль) HOBt и 9.2 г (44 ммоль) DCC в DMF. Реакционную смесь перемешивают 10 мин при -10°С и оставляют при комнатной температуре на 24 ч. Полноту конденсации контролируют с помощью ТСХ в системах (А) и (Г). По окончании реакции выпавший осадок DCHU отфильтровывают, фильтрат упаривают, остаток растворяют в этилацетате и промывают последовательно 2% H2SO4 (3×20 мл), водой, 2% раствором NaHCO3, водой до нейтральной реакции. Раствор упаривают, остаток растирают с гексаном, отфильтровывают, сушат в вакууме. В итоге получают 17.1 г (93%) Iб с Rf 0.80 (A), 0.88 (Б), 0.50 (Г).
3.
Figure 00000001
6 г (13.1 ммоль) трипептида Iб растворяют в 3 н. растворе HCl в АсОН в течение 1 ч. Полноту деблокирования контролируют с помощью ТСХ в системе Б. Через 1 ч реакционную смесь упаривают в вакууме. Остаток растирают с сухим холодным эфиром, отфильтровывают, сушат в вакууме. В итоге получают 5.0 г (97%) I. Гомогенность полученного продукта подтверждают с помощью аналитической ВЭЖХ в условиях градиентного элюирования буфером Б в буфере А (А - 0.1% TFA, Б - 80% ацетонитрила в буфере А) от 10 до 70% буфера Б за 30 мин на колонке Ultrasphere ODS 4.6×250 мм, размер зерна 5 мкм, детекция при 220 нм. Чистота по данным ВЭЖХ 95%, Rt 17.5 мин (в указанных условиях). Rf 0.19 (А), 0.52 (Б), 0.76 (В). 1Н-ЯМР-спектр (DMSO-d6), δ, м.д.: 7.36 (аром. 5Н), 5.11 (CH2-Ph, 2H);
Pro: 4.24 (α-CH, 1H); 2.32, 1.88 (β-СН2, 2Н); 1.92 (γ-СН2, 2Н); 3.58, 3.54 (δ-СН2, 2Н);
Gly: 8.72 (NH, 1H); 4.11, 3.98 (α-СН2, 2Н);
Pro: 4.39 (α-СН, 1H); 2.20, 1.86 (β-СН2, 2Н); 1.92, 1.86 (γ-CH2, 2H); 3.41, 3.25 (δ-СН2, 2Н).
Пример 2. Nα-трет.-Бутилоксикарбонил-треонил-Nε-трет.бутилоксикарбонил)-лизил-пролил-аргинин
Figure 00000004
Figure 00000005
К суспензии 8.1 г (46.4 ммоль) аргинина в 150 мл DMF приливают раствор 15.8 г (45.5 ммоль) Z-Pro-ONp в 100 мл DMF, перемешивают в течение 24 ч до полного растворения, контролируя ход реакции с помощью ТСХ в системе В. DMF упаривают, остаток растворяют в 100 мл хлороформа и хроматографируют на колонке (2.5×30 см) с силикагелем в хлороформе. Элюцию осуществляют ступенчато хлороформом (500 мл) и затем смесями хлороформа с EtOH в соотношениях 8:2, 1:1 и 2:8 (по 500 мл каждой). Фракции, содержащие целевой продукт, упаривают досуха, остаток растирают с эфиром, отфильтровывают и сушат. В итоге получают 18.2 г (99%) соединения IIa с Rf 0.05 (А), 0.20 (Б), 0.55 (В).
Figure 00000006
18.2 г (45.0 ммоль) IIa растворяют в 400 мл EtOH и гидрируют над 5% Pd/C до исчезновения исходного соединения по ТСХ в системе В. Затем катализатор отфильтровывают, фильтрат упаривают досуха, остаток растворяют в 200 мл DMF и добавляют раствор 22.6 г (45.0 ммоль) Z-Lys(Boc)-ONp в 200 мл DMF. Ход реакции контролируют с помощью ТСХ в системе В. Обработку реакционной смеси проводят так же, как и при получении соединения (IIa). В итоге получают 26.8 г (94%) IIб с Rf 0.15 (А), 0.30 (Б), 0.75 (В).
Figure 00000007
26.8 г (42.3 ммоль) IIб растворяют в 400 мл EtOH и гидрируют над 5% Pd/C до исчезновения исходного соединения по ТСХ в системе В. Затем катализатор отфильтровывают, фильтрат упаривают досуха, остаток растворяют в 200 мл DMF и добавляют 16.2 г (42.3 ммоль) Boc-Thr-OPfp в 200 мл DMF. Ход реакции контролируют с помощью ТСХ в системе В. Обработку реакционной смеси проводят так же, как и при получении соединения IIa. В итоге получают 25.6 г (86%) II с Rf 0.10 (А), 0.22 (Б), 0.62(В). Аминокислотный анализ: Thr 0.92 (1), Lys 1.00 (1), Arg 0.98 (1), Pro не определяли. 1Н-ЯМР-спектр (DMSO-d6, δ, м.д.): 1.38 (Boc, 9Н); 1.36 (Boc, 9Н);
Thr - 6.40 (NH, 1H); 3.87 (α-СН, 1Н); 3.87 (β-CH, 1H); 1.02 (γ-СН3, 3Н);
Lys - 7.82 (NαH, 1H); 6.71 (NεH, 1H); 4.49 (α-СН, 1H); 1.62, 1.47 (β-СН2, 2Н); 1.64, 1.49 (γ-CH2, 2H); 1.30 (δ-СН2, 2Н); 2.88 (ε-СН2, 2Н);
Pro - 4.35 (α-СН, 1H); 2.04, 1.81 (β-CH2, 2H); 1.82 (γ-СН2, 2H); 3.53, 3.64 (δ-СН2, 2H);
Arg - 8.12 (NαН, 1H); 7.53 (NGH, 1H); 4.17 (α-СН, 1Н); 1.61, 1.74 (β-СН2, 2H); 1.52 (γ-CH2, 2H); 3.11 (δ-СН2, 2Н).
Пример 3. Треонил-лизил-пролил-аргинил-пролил-глицил-пролин (селанк)
Figure 00000008
Figure 00000009
8.5 г (12 ммоль) тетрапептида II и 4.8 г (12 ммоль) трипептида I смешивают в 50 мл DMF, добавляют 2.8 г (18 ммоль) HOBt, охлаждают до -10°С, при интенсивном перемешивании добавляют 3.8 г (18 ммоль) DCC и оставляют при -10°С на 1 ч, а затем перемешивают 24 ч при комнатной температуре. Ход конденсации контролируют с помощью ТСХ в системе Б. Выпавший осадок DCHU отфильтровывают, фильтрат концентрируют в вакууме до вязкого раствора, пептид осаждают сухим эфиром, отфильтровывают, сушат в вакуум-эксикаторе. В итоге получают 11.8 г (91%) IIIa с Rf 0.42 (А), 0.84 (Б), 0.92 (В).
Figure 00000010
.
11.8 г IIIa растворяют в TFA и выдерживают в течение 1 ч, затем реакционную массу упаривают, остаток растирают с холодным сухим эфиром, отфильтровывают и сушат в вакууме. В итоге получают 10.6 г (97%) IIIб с Rf 0.25 (Б), 0.57 (В).
Figure 00000011
(селанк).
10.6 г (9.8 ммоль) IIIб растворяют в 100 мл EtOH и гидрируют над 5% Pd/C до исчезновения исходного соединения по ТСХ в системе В. Катализатор отфильтровывают, фильтрат упаривают досуха, остаток осаждают сухим эфиром, отфильтровывают, сушат, растворяют в 70 мл 0.05 М пиридинацетатного буфера с рН 4.5 и наносят на колонку (2.6×45 см) с SP-сефадексом, уравновешенную этим же буфером. Пептиды элюируют линейным градиентом ионной силы от 0.05 до 1 М того же буфера. Фракции, содержащие целевой продукт (по данным ТСХ и ВЭЖХ), объединяют, упаривают досуха, затем еще дважды упаривают с добавленим воды. Остаток растворяют в 20-30 мл воды и прибавляют 200-300 мл изопропилового спирта. Выпавший осадок отфильтровывают, промывают изопропиловым спиртом, эфиром, сушат, затем растворяют в деионизованной воде и лиофилизуют. В итоге получают 6.0 г (81%) III. Чистота продукта, определенная с помощью аналитической ВЭЖХ, составляет 98%, время удерживания Rt 10.9 мин. Колонка 4.6×250 мм Ultropac TSK ODS-120T, 5 мкм, детекция при 220 нм. Буфер А - 0.05 М КН2PO4, рН 3, буфер Б - 70% ацетонитрил в буфере А. Элюция градиентом концентрации буфера Б от 0 до 60% за 30 мин со скоростью потока 1 мл/мин.
Аминокислотный анализ: Thr 0.92 (1), Gly 1.00 (1), Lys 1.02 (1), Arg 0.98 (1), Pro не определяли. Rf 0.14 (B).
1Н-ЯМР (DMSO-d6, δ, м.д.):
Thr - 8.10 (NH, 1H); 3.57 (α-CH, 1H); 3.79 (β-СН, 1Н); 1.14 (γ-СН3, 3Н);
Lys - 8.65 (NαH, 1Н); 7.73 (NH+3); 4.5 (α-CH, 1H); 1.67, 1.54 (β-CH2, 2Н); 1.39 (γ-СН2, 2Н); 1.56 (δ-СН2, 2Н); 2.38 (ε-CH2, 2H);
Pro - 4.36 (α-СН, 1H); 2.05, 1.78 (β-CH2, 2H); 1.87 (γ-СН2, 2H); 3.56, 3.65 (δ-СН2, 2H);
Arg - 8.05 (NαH, 1H); 7.58 (NGH, 1H); 4.48 (α-CH, 1H); 1.72, 1.54 (β-СН2, 2H); 1.56 (γ-CH2, 2H); 3.10 (δ-СН2, 2Н);
Pro: 4.40 (α-CH, 1H); 2.05, 1.89 (β-СН2, 2H); 1.86 (γ-СН2, 2H); 3.61, 3.54 (δ-СН2, 2H);
Gly: 8.0 (NH, 1H); 4.02, 3.82 (СН2, 2H);
Pro: 4.26 (α-CH, 1H); 2.14, 2.12 (β-СН2, 2H); 1.90 (γ-СН2, 2H); 3.48, 3.50 (δ-СН2, 2H).
Масс-спектр, m/z: 751.9 (вычислено 751.89 для С33Н57N11O9).
Пример 4. Гидрохлорид трет.-бутилового эфира пролил-глицил-пролина
Figure 00000012
1.
Figure 00000013
19,5 г (260 ммоль) глицина растворяют в 260 мл 1 н. NaOH, полученный раствор добавляют к охлажденному до 0°С раствору 96,0 г (260 ммоль) Z-Pro-ONp в 600 мл DMF. Реакционную смесь перемешивают при комнатной температуре в течение 16 часов, упаривают, остаток растворяют в 300 мл воды и трижды экстрагируют эфиром. Эфирный слой отделяют, к водному слою добавляют 150 мл 2 н. раствора HCl, выпавшее масло экстрагируют 600 мл этилацетатата. Органический слой отделяют и промывают водой до нейтральной реакции, сушат над Na2SO4, упаривают, остаток перекристаллизовывают из эфира. В итоге получают: 67,5 г (85%) продукта с Т. пл. 122-123°С; Rf 0,81 (Б), Rf 0,65 (Г).
2.
Figure 00000014
К раствору 45.7 г (220 ммоль) H-Pro-Obut HCl в 500 мл DMF, охлажденному до -10°С, прибавляют при интенсивном перемешивании охлажденный до той же температуры раствор 67.5 г (220 ммоль) IVa, 33.4 г (220 ммоль) HOBt и 45.3 г (220 ммоль) DCC в 100 мл DMF. Реакционную смесь перемешивают 10 мин при -10°С и оставляют при комнатной температуре на 24 ч. Полноту конденсации контролируют с помощью ТСХ в системах (А) и (Г). По окончании реакции выпавший осадок DCHU отфильтровывают, фильтрат упаривают, остаток растворяют в этилацетате (800 мл) и промывают последовательно 2% H2SO4 (3×250 мл), водой (3×250 мл), 2% раствором NaHCO3 (3×250 мл), водой до нейтральной реакции. Раствор упаривают, остаток растирают с гексаном, отфильтровывают, сушат в вакууме. В итоге получают 90.9 г (90%) IVб, с Rf 0.82 (A), 0.91 (Б), 0.6 (Г).
3.
Figure 00000012
90.9 г (198 ммоль) IVб растворяют в 1000 мл EtOH и гидрируют над 5% Pd/C до исчезновения исходного соединения по ТСХ в системе Б. Затем катализатор отфильтровывают, к фильтрату добавляют 198 мл 1 н. водного раствора соляной кислоты и упаривают досуха, маслообразный остаток упаривают с изопропиловым спиртом, остаток обрабатывают эфиром. Выпавший осадок отфильтровывают, промывают на фильтре эфиром и сушат. В итоге получают 68.1 г (95%) IV с Rf 0.15 (А), 0.45 (Б), 0.70 (В). Гомогенность полученного продукта также подтверждают с помощью аналитической ВЭЖХ в условиях градиентного элюирования буфером Б в буфере А (А - 0.1% TFA, Б - 80% ацетонитрила в буфере А) от 10 до 70% буфера Б за 30 мин на колонке Ultrasphere ODS 4.6×250 мм, размер зерна 5 мкм, детекция при 220 нм. Чистота по данным ВЭЖХ 96%, Rt 15.9 мин (в указанных условиях). 1Н-ЯМР-спектр (DMSO-d6). δ, м.д.:
Pro: 4.23 (α-CH, 1H); 2.32, 1.87 (β-СН2, 2Н); 1.91 (γ-СН2, 2Н); 3.58, 3.54 (δ-СН2, 2Н);
Gly: 8.72 (NH, 1H); 4.11, 3.97 (α-CH2, 2H);
Pro: 4.37 (α-CH, 1H); 2.22, 1.86 (β-CH2, 2H); 1.92, 1.86 (γ-CH2, 2H); 3.40, 3.25 (δ-СН2, 2H).
Пример 5. Nα-трет.-Бензилоксикарбонил-треонил-Nε-(трет.-бутилоксикарбонил)-лизил-пролил-аргинин
Figure 00000015
23.4 г (21.15 ммоль) IIб растворяют 400 мл EtOH и гидрируют над 5% Pd/C до исчезновения исходного соединения по ТСХ в системе В. Затем катализатор отфильтровывают, фильтрат упаривают досуха, остаток растворяют в 100 мл DMF и добавляют раствор 7.4 (21.15 ммоль) Z-Thr-ONSu в 100 мл DMF. Ход реакции контролируют с помощью ТСХ в системе В. Обработку реакционной смеси проводят так же, как и при получении соединения IIa. В итоге получают 13.1 г (84%) V с Rf 0.12 (А), 0.28 (Б), 0.67 (В). Аминокислотный анализ: Thr 0.90 (1), Lys 1.00 (1), Arg 1.00 (1), Pro не определяли. 1Н-ЯМР-спектр (DMSO-d6, δ, м.д.): 7.4-7.2 (аром.); 4.2 (-СН2Ph, 2H); 1.38 (Boc, 9Н),
Thr - 6.41 (NH, 1H); 3.87 (α-CH, 1H); 3.87 (β-СН, 1H); 1.02 (γ-СН3, 3Н),
Lys - 7.82 (NαН, 1H); 6.71 (NεH, 1H); 4.49 (α-CH, 1H); 1.62, 1.47 (β-CH2, 2H); 1.64, 1.49 (γ-CH2, 2H); 1.30 (δ-СН2, 2H); 2.88 (ε-СН2, 2Н),
Pro - 4.35 (α-CH, 1H); 2.04, 1.81 (β-СН2, 2H); 1.82 (γ-CH2, 2H); 3.53, 3.64 (δ-СН2, 2H),
Arg - 8.12 (NαН, 1H); 7.53 (NGH, 1H); 4.17 (α-CH, 1H); 1.61, 1.74 (β-СН2, 2Н); 1.52 (γ-СН2, 2Н); 3.11 (δ-СН2, 2Н).
Пример 6. Треонил-лизил-пролил-аргинил-пролил-глицил-пролин (селанк)
Figure 00000016
Figure 00000017
8.5 г (12 ммоль) тетрапептида II и 4.3 г (12 ммоль) трипептида IV смешивают в 50 мл DMF, добавляют 2.8 г (18 ммоль) HOBt, охлаждают до -10°С, при интенсивном перемешивании добавляют 3.8 г (18 ммоль) DCC и оставляют при -10°С на 1 ч, а затем перемешивают 24 ч при комнатной температуре. Ход конденсации контролируют с помощью ТСХ в системе Б. Выпавший осадок DCHU отфильтровывают, фильтрат концентрируют в вакууме до вязкого раствора, пептид осаждают сухим эфиром, отфильтровывают, сушат в вакуум-эксикаторе. В итоге получают 10.9 г (90%) VI с Rf 0.43 (А), 0.80 (Б), 0.94 (В).
Figure 00000018
(селанк).
10.9 г VI растворяют в TFA и выдерживают в течение 1 ч, затем реакционную массу упаривают, остаток растирают с холодным сухим эфиром, отфильтровывают и сушат в вакууме над щелочью. Полученный осадок растворяют в 50 мл 0.05 М пиридинацетатного буфера с рН 4.5 и хроматографируют на колонке (2.6×45 см) с SP-сефадексом, элюируя пептиды линейным градиентом ионной силы от 0.05 до 1 М того же буфера, как описано в примере 3. В итоге получают 6.3 г (85%) III. Чистота продукта, определенная с помощью аналитической ВЭЖХ, составляет 97.7%, время удерживания Rt 10.9 мин. Колонка 4.6×250 мм Ultropac TSK ODS-120T, 5 мкм, детекция при 220 нм. Буфер А - 0.05 М КН2PO4, рН 3, буфер Б - 70% ацетонитрил в буфере А. Элюция градиентом концентрации буфера Б от 0 до 60% за 30 мин со скоростью потока 1 мл/мин. Аминокислотный анализ: Thr 0.93 (1), Gly 1.00 (1), Lys 1.02 (1), Arg 0.99 (1), Pro не определяли. Rf 0.14 (B).
1Н-ЯМР (DMSO-d6, δ, м.д.):
Thr - 8.10 (NH, 1H); 3.57 (α-CH, 1H); 3.79 (β-СН, 1Н); 1.14 (γ-СН3, 3Н),
Lys - 8.65 (NαН, 1H); 7.73 (NH+3); 4.5 (α-СН, 1H); 1.67, 1.54 (β-СН2, 2Н); 1.39 (γ-СН2, 2Н); 1.56 (δ-СН2, 2Н); 2.38 (ε-CH2, 2Н),
Pro - 4.36 (α-СН, 1H); 2.05, 1.78 (β-CH2, 2Н); 1.87 (γ-СН2, 2Н); 3.56, 3.65 (δ-СН2, 2Н),
Arg - 8.05 (NαН, 1H); 7.58 (NGH, 1H); 4.48 (α-СН, 1H); 1.72, 1.54 (β-СН2, 2Н); 1.56 (γ-СН2, 2Н); 3.10 (δ-CH2, 2H),
Pro: 4.40 (α-СН, 1H); 2.05, 1.89 (β-СН2, 2H); 1.86 (γ-СН2, 2H); 3.61, 3.54 (δ-СН2, 2H);
Gly: 8.0 (NH, 1H); 4.02, 3.82 (СН2, 2H);
Pro: 4.26 (α-СН, 1H); 2.14, 2.12 (β-СН2, 2H); 1.90 (γ-СН2, 2H); 3.48, 3.50 (δ-СН2, 2H).
Масс-спектр, m/z: 751.9 (вычислено 751.89 для С33Н57N11O9).
Пример 7. Треонил-лизил-пролил-аргинил-пролил-глицил-пролин (селанк)
Figure 00000019
Figure 00000020
7.4 г (10 ммоль) тетрапептида V и 3.6 г (10 ммоль) трипептида IV смешивают в 50 мл DMF, добавляют 2.28 г (15 ммоль) HOBt, охлаждают до -10°С, при интенсивном перемешивании добавляют 3.1 г (15 ммоль) DCC и оставляют при -10°С на 1 ч, а затем перемешивают 24 ч при комнатной температуре. Ход конденсации контролируют с помощью ТСХ в системе Б. Выпавший осадок DCHU отфильтровывают, фильтрат концентрируют в вакууме до вязкого раствора, пептид осаждают сухим эфиром, отфильтровывают, сушат в вакуум-эксикаторе. В итоге получают 9.5 г (92%) VIIa с Rf 0.45 (А), 0.81 (Б), 0.95 (В).
Figure 00000021
9.5 г VIIa растворяют в TFA и выдерживают в течение 1 ч, затем реакционную массу упаривают, остаток растирают с холодным сухим эфиром, отфильтровывают и сушат в вакууме над щелочью. В итоге получают 10.0 г (97%) VIIб с Rf 0.45 (Б), 0.7 (В).
Figure 00000022
10.0 г соединения VIIб растворяют в 100 мл EtOH и гидрируют над 5% Pd/C до исчезновения исходного соединения по ТСХ в системе В. Катализатор отфильтровывают, фильтрат упаривают досуха, остаток осаждают сухим эфиром, отфильтровывают, сушат.
Полученный осадок растворяют в 50 мл 0.05 М пиридинацетатного буфера с рН 4,5 и хроматографируют на колонке (2.6×45 см) с SP-сефадексом, элюируя пептиды линейным градиентом ионной силы от 0.05 до 1 М того же буфера, как описано в примере 3. В итоге получают 6.1 г (82%) III. Чистота продукта, определенная с помощью аналитической ВЭЖХ, составляет 97.9%, время удерживания Rt 10.9 мин. Колонка 4.6×250 мм Ultropac TSK ODS-120T, 5 мкм, детекция при 220 нм. Буфер А - 0.05 М КН2PO4, рН 3, буфер Б - 70% ацетонитрил в буфере А. Элюция градиентом концентрации буфера Б от 0 до 60% за 30 мин со скоростью потока 1 мл/мин. Аминокислотный анализ: Thr 0.93 (1), Gly 1.00 (1), Lys 1.02 (1), Arg 1.00 (1), Pro не определяли. Rf 0.14 (B).
1Н-ЯМР (DMSO-d6, δ, м.д.):
Thr - 8.10 (NH, 1H); 3.57 (α-СН, 1Н); 3.79 (β-СН, 1Н); 1.14 (γ-СН3, 3Н);
Lys - 8.65 (NαH, 1H); 7.73 (NH+3); 4.5 (α-СН, 1H); 1.67, 1.54 (β-СН2, 2Н); 1.39 (γ-CH2, 2H); 1.56 (δ-CH2, 2H); 2.38 (ε-СН2, 2H),
Pro - 4.36 (α-СН, 1H); 2.05, 1.78 (β-CH2, 2H); 1.87 (γ-СН2, 2H); 3.56, 3.65 (δ-CH2, 2H),
Arg - 8.05 (NαН, 1H); 7.58 (NGН, 1H); 4.48 (α-СН, 1H); 1.72, 1.54 (β-СН2, 2H); 1.56 (γ-CH2, 2H); 3.10 (δ-СН2, 2Н),
Pro: 4.40 (α-СН, 1Н); 2.05, 1.89 (β-СН2, 2Н); 1.86 (γ-CH2, 2Н); 3.61, 3.54 (δ-CH2,2Н);
Gly: 8.0 (NH, 1H); 4.02, 3.82 (СН2, 2Н);
Pro: 4.26 (α-СН, 1H); 2.14, 2.12 (β-CH2, 2Н); 1.90 (γ-CH2, 2Н); 3.48, 3.50 (δ-СН2, 2Н).
Масс-спектр, m/z: 752.5 (вычислено 751.89 для С33H57N11O9).
Как видно из приведенных примеров, заявленный способ позволяет упростить процесс и повысить выход конечного гектапептида.
Литература
1. М.М.Kozlovskaya, I.I.Kozlovskii, E.A.Val'dman, S.B.Sebedinin, «Selank and short peptides of the tuftsin family in the regulation of adaptive behavior in stress», Neurosci. and Behavioral Physiology. 33, p.853-860 (2003).
2. Патент РФ 1124544, кл. С07К 7/06, 1995.
3. Э.Шредер, К.Любке. Пептиды. T.1. M.: «Мир», 1967.

Claims (4)

1. Способ получения гептапептида формулы
H-Thr-Lys-Pro-Arg-Pro-Gly-Pro-OH,
отличающийся тем, что синтез осуществляют путем конденсации С-концевого защищенного трипептида формулы
HCl·Н-Pro-Gly-Pro-OX,
где Х - защитная группа, с N-концевым защищенным тетрапептидом формулы
Y-Thr-Lys(Y1)-Pro-Arg-OH,
где Y и Y1 - защитные группы,
и полученный защищенный гептапептид формулы
Y-Thr-Lys(Y1)-Pro-Arg-Pro-Gly-Pro-OX
обрабатывают деблокирующими агентами для удаления защитных групп и выделяют конечный продукт с помощью хроматографии.
2. Способ по п.1, отличающийся тем, что Х представляет собой бензил (Bzl), Y и Y1 - трет.-бутилоксикарбонил (Boc), а деблокирование защищенного гептапептида проводят последовательно обработкой трифторуксусной кислотой и каталитическим гидрированием в присутствии 5% Pd/C.
3. Трипептид формулы
HCl·H-Pro-Gly-Pro-OBzl,
в качестве промежуточного соединения для синтеза гептапептида формулы
H-Thr-Lys-Pro-Arg-Pro-Gly-Pro-OH.
4. Тетрапептид формулы
Boc-Thr-Lys-(Boc)-Pro-Arg-OH,
в качестве промежуточного соединения для синтеза гептапептида формулы
H-Thr-Lys-Pro-Arg-Pro-Gly-Pro-OH.
RU2006104891/04A 2006-02-17 2006-02-17 Способ получения гептапептида и промежуточные соединения для его получения RU2303603C2 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2006104891/04A RU2303603C2 (ru) 2006-02-17 2006-02-17 Способ получения гептапептида и промежуточные соединения для его получения

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2006104891/04A RU2303603C2 (ru) 2006-02-17 2006-02-17 Способ получения гептапептида и промежуточные соединения для его получения

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2006104891A RU2006104891A (ru) 2006-06-27
RU2303603C2 true RU2303603C2 (ru) 2007-07-27

Family

ID=36714582

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2006104891/04A RU2303603C2 (ru) 2006-02-17 2006-02-17 Способ получения гептапептида и промежуточные соединения для его получения

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2303603C2 (ru)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Kozlovskaya M.V. et al. "Selank and short peptides of the family in the regulation of adaptive behavior in stress." Neurosci Behav Physiol. 2003 Nov; 33 (9):853-60 (реферат). Rao D.N. et al. "A novel synthetic route to a phagocytosis stimulating tetrapeptide "tuftsin". Medical Science Research, 1987, 15(19), 1199-201. *

Also Published As

Publication number Publication date
RU2006104891A (ru) 2006-06-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5977302A (en) Liquid phase process for the preparation of GnRH peptides
Chorev et al. Synthesis of partially modified retro-inverso substance P analogs and their biological activity
Moreira et al. A high-yielding solid-phase total synthesis of daptomycin using a Fmoc SPPS stable kynurenine synthon
CN106188231B (zh) 帕西瑞肽五肽中间体的合成与应用
US5013723A (en) New thymopentin retro-inverso analogs and fragments thereof, a process of preparation of the new compounds and the intermediates obtained therein
US20170158735A1 (en) Method for producing a recombinant peptide and resultant peptide
RU2303603C2 (ru) Способ получения гептапептида и промежуточные соединения для его получения
EP0723552B1 (en) Oligopeptides derived from c-reactive protein fragments
EP3625243B1 (en) Tailored cyclodepsipeptides as potent non-covalent serine protease inhibitors
Shaheen et al. The First Solid-phase Synthesis and Structural Studies on Phakellistatin 15.
RU2442791C1 (ru) Способ получения бусерелина и промежуточные соединения для его получения
Kolodziejczyk et al. New convenient synthesis of immunostimulating peptides containingmeso‐diaminopimelic acid Syntheses of FK‐565 and FK‐156
JP2015515855A (ja) 組換えペプチドを生産するための方法および得られるペプチド
RU2303602C2 (ru) Способ получения трипептидов
Stewart Peptide synthesis with 1-Aminocyclopropane-1-carboxylic acid
Lange et al. Efficient Synthesis of Differentially Protected (S, S)‐2, 7‐Diaminooctanedioic Acid, the Dicarba Analogue of Cystine
Kojima et al. Total synthesis of malformin C, an inhibitor of bleomycin-induced G2 arrest
RU2086561C1 (ru) Способ получения нонапептидэтиламида
RU2444525C2 (ru) Способ получения нонапептидэтиламида и промежуточные соединения для его получения
WO2010113042A1 (en) Antimicrobial cyclic peptides
RU2315057C2 (ru) Способ получения аналогов аденокортикотропного гормона (актг), последовательности (4-10), обладающих нейротропной активностью, и тетрапептид для его получения
RU2340626C1 (ru) Способ получения додекапептида и трипептид для его осуществления
Poojary et al. Synthesis, characterization and biological evaluation of cyclic peptides: viscumamide, yunnanin A and evolidine
JP6858227B2 (ja) 組換えペプチドを生産するための方法および得られるペプチド
Jastrzabek et al. Bis (4, 6‐dimethoxy‐1, 3, 5‐triazin‐2‐yl) Ether as Coupling Reagent for Peptide Synthesis

Legal Events

Date Code Title Description
NF4A Reinstatement of patent

Effective date: 20110810

MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20140218