RU2293335C1 - Method for evaluating autoimmunity to human hepatic antigen - Google Patents

Method for evaluating autoimmunity to human hepatic antigen Download PDF

Info

Publication number
RU2293335C1
RU2293335C1 RU2005117328/15A RU2005117328A RU2293335C1 RU 2293335 C1 RU2293335 C1 RU 2293335C1 RU 2005117328/15 A RU2005117328/15 A RU 2005117328/15A RU 2005117328 A RU2005117328 A RU 2005117328A RU 2293335 C1 RU2293335 C1 RU 2293335C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
autoantibodies
serum
content
ganglioside
autoimmune
Prior art date
Application number
RU2005117328/15A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Виктор Васильевич Немов (RU)
Виктор Васильевич Немов
Светлана Георгиевна Ивашкина (RU)
Светлана Георгиевна Ивашкина
Original Assignee
Федеральное государственное учреждение науки "Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. акад. И.Н. Блохиной" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное учреждение науки "Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. акад. И.Н. Блохиной" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека filed Critical Федеральное государственное учреждение науки "Нижегородский научно-исследовательский институт эпидемиологии и микробиологии им. акад. И.Н. Блохиной" Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека
Priority to RU2005117328/15A priority Critical patent/RU2293335C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2293335C1 publication Critical patent/RU2293335C1/en

Links

Landscapes

  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Abstract

FIELD: medicine, laboratory diagnostics.
SUBSTANCE: the present innovation deals with evaluating autoimmunity to ganglioside of human hepatocytes. In blood serum due to immunoenzymatic assay one should detect the content of autoantibodies IgM and IgG to ganglioside of hepatic tissue, calculate the ratio of the content of autoantibodies in tested serum against their content in negative control, and at its value being above 1 it is possible to detect the presence of autoimmune process in human liver. The innovation enables to fulfill diagnostics of autoimmune process in hepatic tissue at higher accuracy and specificity.
EFFECT: increased accuracy and efficiency of evaluation.

Description

Изобретение относится к области медицины, а именно к иммунологическим и биохимическим методам исследования параметров биологических субстратов с целью оценки аутоиммунного процесса в печени человека.The invention relates to medicine, namely to immunological and biochemical methods for studying the parameters of biological substrates in order to evaluate the autoimmune process in the human liver.

Известен способ определения в сыворотке крови LKM-1 (аутоантител к микросомам печени и почек) (Yamamoto A.M. et al., 1993; Choudhuri К. et al., 1998). В результате определяют LKM-1 аутоантитела к микросомам печени и почек методом иммуноферментного анализа, но этим способом LKM-1 аутоантитела выявляются лишь при аутоиммунном гепатите II типа. Кроме того выработка анти-LKM-1-аутоантител индуцируется не только при аутоиммунной патологии, но и при отравлении рядом химических и лекарственных веществ (фенобарбитал, карбамазепин и др.) и также отмечается при вирусных гепатитах С и D.A known method for the determination of serum LKM-1 (autoantibodies to liver and kidney microsomes) (Yamamoto A.M. et al., 1993; K. Choudhuri et al., 1998). As a result, LKM-1 autoantibodies to liver and kidney microsomes are determined by enzyme-linked immunosorbent assay, but by this method, LKM-1 autoantibodies are detected only with type II autoimmune hepatitis. In addition, the production of anti-LKM-1 autoantibodies is induced not only in autoimmune pathology, but also in case of poisoning by a number of chemical and medicinal substances (phenobarbital, carbamazepine, etc.) and is also noted in viral hepatitis C and D.

Известен также способ определения антинуклеарных аутоантител (ANA) (Feltkamp Т.Е.W. 1996, Alvarez F. et al., 1999). По этому способу при диагностике аутоиммунного гепатита I типа в сыворотке крови определяют аутоантитела к антигенам структур ядра клетки (ANA) методом иммуноферментного анализа. Недостатком этого способа является то, что при аутоиммунном гепатите I типа, для дифференциальной диагностики которого преимущественно используется определение антинуклеарных аутоантител, они выявляются лишь в 70-80% случаев. Кроме того, ANA не являются специфическими аутоантителами лишь при аутоиммунном гепатите I типа и встречаются при широком спектре аутоиммунных заболеваний различной локализации, прежде всего при ревматологической патологии (системной красной волчанке, синдроме Шегрена, системной склеродермии, синдроме Шарпа), а также при ряде других нарушений аутоиммунной природы.There is also a method of determining antinuclear autoantibodies (ANA) (Feltkamp T.E. W. 1996, Alvarez F. et al., 1999). According to this method, in the diagnosis of autoimmune type I hepatitis in blood serum, autoantibodies to antigens of cell nucleus structures (ANA) are determined by enzyme-linked immunosorbent assay. The disadvantage of this method is that with type I autoimmune hepatitis, for the differential diagnosis of which the definition of antinuclear autoantibodies is mainly used, they are detected only in 70-80% of cases. In addition, ANA are not specific autoantibodies only for type I autoimmune hepatitis and are found in a wide range of autoimmune diseases of various localization, especially rheumatological pathology (systemic lupus erythematosus, Sjogren's syndrome, systemic scleroderma, Sharpe syndrome), as well as a number of other disorders autoimmune nature.

Наиболее близким по достижению цели является способ по Заявке № 2003115886/15, G 01 N 33/564 от 27.05.2003 г. «Способ диагностики аутоиммунных поражений печени у больных хроническими гепатитами». Этим способом определяются антимитохондриальные антитела (АМА), иммуноглобулины А, М, G и γ-глобулины. Также дополнительно определяются антиглиадиновые антитела (AGA), циркулирующие иммунные комплексы (ЦИК), антимитохондриальные антитела (с индексом значений - J>1,1), антиглиадиновые антитела (более 25 ед/мл), циркулирующие иммунные комплексы (более 120 ед), диагностирующие аутоиммунные поражения. Таким образом, недостатком такого метода диагностики аутоиммунного поражения печени является необходимость использования 5-ти и более тестов, которые также не являются гепатоспецифическими.The closest to achieve the goal is the method according to Application No. 2003115886/15, G 01 N 33/564 dated 05/27/2003, "Method for the diagnosis of autoimmune liver lesions in patients with chronic hepatitis." This method determines antimitochondrial antibodies (AMA), immunoglobulins A, M, G and γ-globulins. Antigliadin antibodies (AGA), circulating immune complexes (CICs), antimitochondrial antibodies (with a value index of J> 1.1), antigliadin antibodies (more than 25 units / ml), circulating immune complexes (more than 120 units) are diagnosed, which also diagnose autoimmune lesions. Thus, the disadvantage of this method of diagnosing autoimmune liver damage is the need to use 5 or more tests, which are also not hepatospecific.

Целью предлагаемого способа является повышение эффективности, специфичности и надежности диагностики аутоиммунного поражения печени.The aim of the proposed method is to increase the efficiency, specificity and reliability of the diagnosis of autoimmune liver damage.

Нами предлагается выявление наличия аутоантител различных классов к ганглиозиду гепатоцитов человека, которые являются объектом агрессии при аутоиммунных поражениях печени. Для достижения этой цели проводят иммуноферментный анализ сывороток крови лиц, подлежащих обследованию.We propose the identification of the presence of autoantibodies of various classes to the ganglioside of human hepatocytes, which are the object of aggression in autoimmune liver lesions. To achieve this goal, an enzyme-linked immunosorbent assay is performed on the blood serum of individuals to be examined.

Используют иммунологические планшеты, сорбированные спиртовым раствором высокоочищенного ганглиозида, полученного in situ из ткани печени человека. Определяют содержание аутоантител классов IgM и IgG к ганглиозиду ткани печени, рассчитывают отношение содержания аутоантител в исследуемой сыворотке по отношению к их содержанию в отрицательном контроле и при его значении больше единицы определяют наличие аутоиммунного процесса в печени человека.Immunological plates are used, sorbed with an alcohol solution of highly purified ganglioside obtained in situ from human liver tissue. The content of autoantibodies of IgM and IgG classes to ganglioside of liver tissue is determined, the ratio of the content of autoantibodies in the test serum is calculated in relation to their content in the negative control, and if it is greater than unity, the presence of an autoimmune process in the human liver is determined.

Способ осуществляется следующим образом:The method is as follows:

Раствор высокоочищенного ганглиозида ткани печени с концентрацией 1-10 мкг/мл в этаноле вносят в лунки иммунологического планшета по 0,02-0,05 мл и оставляют до высыхания.A solution of highly purified ganglioside of liver tissue with a concentration of 1-10 μg / ml in ethanol is added to the wells of the immunological tablet of 0.02-0.05 ml and left to dry.

В лунки 2-х планшетов (или стрипов), сорбированных раствором высокоочищенного ганглиозида гепатоцитов человека, вносят 0,1 мл исследуемой сыворотки, разведенной в 100 раз фосфатно-солевым буферным раствором (ФСБ, рН 7,2), содержащим 0,05% БСА (или иного раствора с аналогичными свойствами).0.1 ml of test serum diluted 100 times diluted with phosphate-buffered saline (FSB, pH 7.2) containing 0.05% BSA is added to the wells of 2 tablets (or strips) sorbed with a solution of highly purified human hepatocyte ganglioside (or other solution with similar properties).

В первую лунку планшетов (стрипов) вносят 0,1 мл ФСБ-БСА (контроль фона). Во вторую лунку планшетов (стрипов) вносят 0,1 мл, разведенной в 100 раз ФСБ-БСА, сыворотки крови здорового донора (отрицательный контроль). В третью лунку планшетов (стрипов) вносят 0,1 мл, разведенной в 100 раз, сыворотки крови с высоким уровнем специфических аутоантител (возможно использование сыворотки больных аутоиммунным гепатитом).0.1 ml of FSB-BSA (background control) is added to the first well of the plates (strips). 0.1 ml diluted 100 times FSB-BSA, healthy donor blood serum (negative control) is added to the second well of plates (strips). In the third well of plates (strips), 0.1 ml diluted 100 times of blood serum with a high level of specific autoantibodies is added (it is possible to use the serum of patients with autoimmune hepatitis).

Планшеты закрывают крышками и выдерживают в течение 1 ч при температуре (37±0,5)°С, после чего промывают 3 раза ФСБ-БСА.The tablets are closed with lids and incubated for 1 h at a temperature of (37 ± 0.5) ° C, after which they are washed 3 times with FSB-BSA.

Затем в каждую лунку первого планшета (стрипа) вносят по 0,1 мл, разведенного в рабочей концентрации ФСБ-БСА, конъюгата к IgM, а в каждую лунку второго планшета (стрипа) - 0,1 мл конъюгата к IgG. Планшеты закрывают крышками и инкубируют в течение 1 ч при температуре (37±0,5)°С. После чего промывают 3 раза ФСБ-БСА. Затем во все лунки планшетов (стрипов) вносят 0,1 мл субстратно-индикаторного раствора, выдерживают в течение 30 минут в защищенном от света месте при температуре от 18 до 20°С, после чего во все лунки добавляют по 0,05 мл стоп-реагента (2N серная кислота) и немедленно производят учет результатов исследования с помощью фотометрического устройства.Then, 0.1 ml diluted in the working concentration of FSB-BSA, IgM conjugate is added to each well of the first tablet (strip), and 0.1 ml of IgG conjugate is added to each well of the second tablet (strip). The tablets are closed with lids and incubated for 1 h at a temperature of (37 ± 0.5) ° C. Then washed 3 times with FSB-BSA. Then, 0.1 ml of substrate-indicator solution is added to all wells of the plates (strips), kept for 30 minutes in a dark place at a temperature of 18 to 20 ° C, after which 0.05 ml of stop solution is added to all wells reagent (2N sulfuric acid) and immediately record the results of the study using a photometric device.

На основании полученных данных оптической плотности (ОП) определяют наличие специфических аутоантител IgM и IgG к ганглиозиду печени в условных единицах. Для этого ОП исследуемой сыворотки делят на ОП отрицательной контрольной сыворотки и сравнивают с аналогичными показателями, полученными для положительной контрольной сыворотки.Based on the obtained optical density (OD) data, the presence of specific autoantibodies of IgM and IgG to liver ganglioside is determined in arbitrary units. For this, the OD of the test serum is divided into the OD of the negative control serum and compared with the same indicators obtained for the positive control serum.

Пример конкретного осуществления способаAn example of a specific implementation of the method

У пациентов «А» и «Б» в чистую сухую пробирку без добавления антикоагулянта производят забор венозной или капиллярной крови, из которой впоследствии получают сыворотку общепринятым методом. Полученную сыворотку используют для исследования.In patients “A” and “B”, a venous or capillary blood is taken into a clean, dry tube without adding an anticoagulant, from which serum is subsequently obtained by the generally accepted method. The resulting serum is used for research.

В первые две лунки каждого из двух планшетов (или стрипов), сорбированных раствором высокоочищенного ганглиозида клеток печени, вносят по 0,1 мл, разведенной в 100 раз ФСБ-БСА, сыворотки крови пациентов «А» и «Б». В другие лунки вносят по 0,1 мл ФСБ-БСА (контроль фона), в следующие лунки вносят по 0,1 мл, разведенной в 100 раз, сыворотки крови здорового донора (отрицательный контроль), в остальные лунки вносят 0,1 мл, разведенной в 100 раз, сыворотки крови больного с аутоиммунным гепатитом (положительный контроль).In the first two wells of each of the two tablets (or strips), sorbed with a solution of highly purified ganglioside of liver cells, 0.1 ml diluted 100 times FSB-BSA, the blood serum of patients "A" and "B". 0.1 ml of FSB-BSA (background control) is added to other wells, 0.1 ml diluted 100 times in the following wells, healthy donor blood serum (negative control), 0.1 ml are added to the remaining wells, 100 times diluted blood serum of a patient with autoimmune hepatitis (positive control).

Планшеты (стрипы) закрывают крышками и выдерживают в течение 1 ч при температуре (37±0,5)°С. После чего промывают 3 раза ФСБ-БСА. Затем в каждую лунку первого планшета (стрипа) вносят по 0,1 мл, разведенного ФСБ-БСА, конъюгата к IgM в рабочей концентрации, а в каждую лунку второго планшета (стрипа) - по 0,1 мл конъюгата к IgG в рабочей концентрации. Закрытые крышками планшеты инкубируют в течение 1 ч при температуре (37±0,5)°С. После чего промывают 3 раза ФСБ-БСА. Затем во все лунки планшетов (стрипов) вносят по 0,1 мл субстратно-индикаторного раствора, выдерживают в течение 30 минут, в защищенном от света месте, при температуре от 18 до 20°С, после чего во все лунки добавляют по 0,05 мл стоп-реагента (2N серная кислота) и немедленно производят учет результатов исследования с помощью фотометрического устройства.Tablets (strips) are closed with lids and incubated for 1 h at a temperature of (37 ± 0.5) ° С. Then washed 3 times with FSB-BSA. Then, 0.1 ml of diluted FSB-BSA, the IgM conjugate at a working concentration is added to each well of the first tablet (strip), and 0.1 ml of the IgG conjugate at a working concentration is added to each well of the second tablet (strip). The plates covered with covers are incubated for 1 h at a temperature of (37 ± 0.5) ° С. Then washed 3 times with FSB-BSA. Then, 0.1 ml of substrate-indicator solution is added to all wells of the plates (strips), kept for 30 minutes, in a dark place at a temperature of 18 to 20 ° C, after which 0.05 is added to all wells ml stop reagent (2N sulfuric acid) and immediately record the results of the study using a photometric device.

Были получены следующие значения оптической плотности (ОП)The following values of optical density (OD) were obtained

Аутоантитела класса IgM:IgM autoantibodies:

- Контроль фона (ФСБ-БСА) - 0,05- Background control (FSB-BSA) - 0.05

- Отрицательный контроль (сыворотка здорового донора) - 0,15- Negative control (healthy donor serum) - 0.15

- Положительный контроль (сыворотка больного аутоиммунным гепатитом) - 1,78- Positive control (serum of a patient with autoimmune hepatitis) - 1.78

- Сыворотка пациента «А» - 0,36- Serum of the patient "A" - 0.36

- Сыворотка пациента «Б» - 1,54- Serum of the patient "B" - 1.54

Уровень (индекс) аутоантител IgM к ганглиозиду гепатоцитов для положительной контрольной сыворотки (отношение величины ОП положительной контрольной сыворотки к ОП отрицательной контрольной сыворотки) составляет 1,78:0,15=11,9.The level (index) of hepatocyte ganglioside IgM autoantibodies for a positive control serum (the ratio of the OD value of the positive control serum to the OD of the negative control serum) is 1.78: 0.15 = 11.9.

Затем определяют индекс уровня аутоантител в сыворотке крови пациента «А»: 0,36:0,15=2,4.Then determine the index of the level of autoantibodies in the blood serum of the patient "A": 0.36: 0.15 = 2.4.

Аналогичным образом определяют индекс антител в сыворотке крови пациента «Б»: 1,54:0,15=10,3.Similarly, determine the index of antibodies in the blood serum of the patient "B": 1.54: 0.15 = 10.3.

Аутоантитела класса IgG:IgG autoantibodies:

- Контроль фона (ФСБ-БСА) - 0,06- Background control (FSB-BSA) - 0.06

- Отрицательный контроль (сыворотка здорового донора) - 0,12- Negative control (healthy donor serum) - 0.12

- Положительный контроль (сыворотка больного аутоиммунным гепатитом) - 1,92- Positive control (serum of a patient with autoimmune hepatitis) - 1.92

- Сыворотка пациента «А» - 0,28- Serum of the patient "A" - 0.28

- Сыворотка пациента «Б» - 1,99- Serum of the patient "B" - 1.99

Уровень (индекс) аутоантител IgG к ганглиозиду гепатоцитов для положительной контрольной сыворотки (отношение величины ОП положительной контрольной сыворотки к ОП отрицательной контрольной сыворотки) составляет 1,92:0,12=16,0.The level (index) of hepatocyte ganglioside autoantibodies IgG for a positive control serum (the ratio of the OD value of the positive control serum to the OD of the negative control serum) is 1.92: 0.12 = 16.0.

Затем определяют индекс уровня аутоантител в сыворотке крови пациента «А»: 0,28:0,12=2,33.Then determine the index of the level of autoantibodies in the blood serum of the patient "A": 0.28: 0.12 = 2.33.

Аналогичным образом определяют индекс антител в сыворотке крови пациента «Б»: 1,99:0,12=16,6.Similarly, determine the antibody index in the blood serum of patient "B": 1.99: 0.12 = 16.6.

Таким образом, в сыворотке крови пациента «Б» содержание аутоантител к ганглиозиду гепатоцитов человека оказалось высоким как по классу IgM, так и по классу IgG, сопоставимым с их концентрацией в положительной контрольной сыворотке. Более высокое содержание аутоантител класса IgG обусловлено хронизацией процесса у больного «Б». В сыворотке крови пациента «А» содержание аутоантител к ганглиозиду гепатоцитов человека оказалось низким.Thus, the content of autoantibodies to human hepatocyte ganglioside in the blood serum of patient “B” turned out to be high both in the IgM class and in the IgG class, comparable with their concentration in the positive control serum. A higher content of IgG class autoantibodies is due to the chronicity of the process in patient “B”. In the blood serum of patient “A”, the content of autoantibodies to the human hepatocyte ganglioside was low.

Таким образом, предлагаемый способ позволяет осуществлять более объективную оценку специфического аутоиммунного компонента при гепатитах, так как основан на определении аутоантител к ганглиозиду гепатоцитов человека. Предлагаемый ганглиозид локализуется на внешней стороне мембран гепатоцитов, является биохимической основой структур ряда рецепторных образований и доступен для аутоагрессии без цитолиза гепатоцитов, что может определять первичность аутоиммунного поражения ткани печени.Thus, the proposed method allows a more objective assessment of the specific autoimmune component in hepatitis, as it is based on the determination of autoantibodies to ganglioside of human hepatocytes. The proposed ganglioside is localized on the outer side of the hepatocyte membranes, is the biochemical basis of the structures of a number of receptor formations and is available for autoaggression without cytolysis of hepatocytes, which can determine the primacy of autoimmune damage to liver tissue.

Исследование уровня аутоантител к специфическому ганглиозиду гепатоцитов человека обеспечивает высокую точность, надежность и специфичность диагностики аутоиммунного процесса в ткани печени.The study of the level of autoantibodies to a specific ganglioside of human hepatocytes provides high accuracy, reliability and specificity of the diagnosis of autoimmune process in the liver tissue.

Использование с этой целью иммуноферментного анализа обеспечивает высокую методическую чувствительность, точность, воспроизводимость и быстродействие диагностики.The use of an enzyme immunoassay for this purpose provides high methodological sensitivity, accuracy, reproducibility and speed of diagnosis.

Возможность широкого практического применения обеспечивается использованием широко распространенного в учреждениях практического здравоохранения типового оборудования для иммуноферментного анализа. Высокое быстродействие при достаточной точности, наряду с комплексной автоматизацией, дает возможность эффективно использовать предлагаемый способ при массовых клинических обследованиях лиц, инфицированных вирусами гепатитов А, В, С, D, особенно с подозрением на развитие аутоиммунного процесса в печени.The possibility of wide practical application is provided by the use of standard equipment for enzyme immunoassay, which is widely used in practical healthcare institutions. High performance with sufficient accuracy, along with complex automation, makes it possible to effectively use the proposed method in mass clinical examinations of individuals infected with hepatitis A, B, C, D viruses, especially with suspected development of an autoimmune process in the liver.

Метод разработан и апробирован в лаборатории иммунохимии Нижегородского НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Академика И.Н.Блохиной.The method was developed and tested in the laboratory of immunochemistry of the Nizhny Novgorod Research Institute of Epidemiology and Microbiology. Academician I.N. Blokhina.

Список литературыBibliography

1. Yamamoto A.M., Crestiel D., Hotberg J.C et al, «Characterization of anty-liver-kidney microsome antibody (anti-LKM-1) from hepatitis С virus-positive and negative sera//Gastroenterol., 104:1762-1767, 1993.1. Yamamoto AM, Crestiel D., Hotberg JC et al, “Characterization of anty-liver-kidney microsome antibody (anti-LKM-1) from hepatitis C virus-positive and negative sera // Gastroenterol., 104: 1762-1767 , 1993.

2. Choudhuri К., Gregorio G.V., Mieli-Vergani G. et al Immunjlogical cross-reactivity to multiple autoantigens in patients with liver kidney microsomal type 1 autoimmune hepatitis//Hepatology, 28:1177-1181, 1998.2. Choudhuri K., Gregorio G.V., Mieli-Vergani G. et al Immunjlogical cross-reactivity to multiple autoantigens in patients with liver kidney microsomal type 1 autoimmune hepatitis // Hepatology, 28: 1177-1181, 1998.

3. Barland P., Lipstein E., Selection and use of laboratory tests in the rheumatic diseases//Am. J.Med., V.100 (suppl. 2A), 16s-23s.3. Barland P., Lipstein E., Selection and use of laboratory tests in the rheumatic diseases // Am. J. Med., V. 100 (suppl. 2A), 16s-23s.

4. Feltkamp T.E.W. Antinuclear antibody determination in a routine laboratory//Ann.Rheum. Dis., V.55, 723-727, 1996.4. Feltkamp T.E.W. Antinuclear antibody determination in a routine laboratory // Ann.Rheum. Dis., V.55, 723-727, 1996.

5. Alvarez F., Berg P.A., Bianchi F.B. et al., International autoimmune hepatitis group reports review of criteria for diagnosis//Hepatology, 1999, V.31, p.929-938.5. Alvarez F., Berg P.A., Bianchi F.B. et al., International autoimmune hepatitis group reports review of criteria for diagnosis // Hepatology, 1999, V.31, p.929-938.

6. Заявка RU 2003115886/15, G 01 N 33/564 от 27.05.2003 - «Способ диагностики аутоиммунных поражений печени у больных хроническими гепатитами».6. Application RU 2003115886/15, G 01 N 33/564 dated 05/27/2003 - "A method for the diagnosis of autoimmune liver damage in patients with chronic hepatitis."

Claims (1)

Способ определения наличия аутоиммунного процесса в печени человека путем исследования сыворотки крови методом иммуноферментного анализа, отличающийся тем, что определяют содержание аутоантител IgM и IgG к ганглиозиду ткани печени, рассчитывают отношение содержания аутоантител в исследуемой сыворотке по отношению к их содержанию в отрицательном контроле и при его значении больше единицы определяют наличие аутоиммунного процесса в печени человека.A method for determining the presence of an autoimmune process in a human liver by examining blood serum by an enzyme-linked immunosorbent assay, characterized in that the content of autoantibodies IgM and IgG to ganglioside of liver tissue is determined, the ratio of the content of autoantibodies in the test serum is calculated in relation to their content in the negative control and its value more than one determines the presence of an autoimmune process in the human liver.
RU2005117328/15A 2005-06-06 2005-06-06 Method for evaluating autoimmunity to human hepatic antigen RU2293335C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2005117328/15A RU2293335C1 (en) 2005-06-06 2005-06-06 Method for evaluating autoimmunity to human hepatic antigen

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2005117328/15A RU2293335C1 (en) 2005-06-06 2005-06-06 Method for evaluating autoimmunity to human hepatic antigen

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2293335C1 true RU2293335C1 (en) 2007-02-10

Family

ID=37862642

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2005117328/15A RU2293335C1 (en) 2005-06-06 2005-06-06 Method for evaluating autoimmunity to human hepatic antigen

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2293335C1 (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
OHTANI Y. et al. Autoantibodies against liver cell membrane antigens detected by enzyme-linked immunosorbent assay in acute and chronic liver disease. Clin. Immunol. Immunopathol. 1987 Apr; 43(1):9-22. MAHHC M. Диагностика и лечение аутоиммунных заболеваний печени. Российский журнал гастроэнтерологии, гепатологии и колопроктологии. 2001, 11, №4, с.49-51. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Seth et al. Comparison of five blood-typing methods for the feline AB blood group system
Johnson et al. HIV surveillance by testing saliva
US7785818B2 (en) Inflammatory bowel disease and irritable bowel syndrome IBD-first chek diagnostic panel
Leung et al. InfectCheck CRP barcode-style lateral flow assay for semi-quantitative detection of C-reactive protein in distinguishing between bacterial and viral infections
Felman et al. Syphilis serology today
Li et al. Multiplexed anti-toxoplasma IgG, IgM, and IgA assay on plasmonic gold chips: Towards making mass screening possible with dye test precision
Kubo et al. Development of an automated chemiluminescence assay system for quantitative measurement of multiple anti-SARS-CoV-2 antibodies
CN110726846B (en) Application of HBP protein as diagnostic marker of Kawasaki disease
WO2003036262A2 (en) Method and apparatus for distinguishing crohn's disease from ulcerative colitis by detecting fecal antibodies to saccharomyces cerevisiae
Fontaine et al. Analysis of SARS-CoV-2 antibodies from dried blood spot samples with the Roche Elecsys Immunochemistry method
Ong et al. Validation of a phospholipase A2 receptor antibody ELISA in an Australian cohort with membranous glomerulonephritis
CN206038688U (en) Immunity chromatography detection test strip's fluorescent quantitation spectral detection system
CN103713121A (en) Human vasculitis diagnostic kit and preparation method thereof
RU2293335C1 (en) Method for evaluating autoimmunity to human hepatic antigen
CN103698531B (en) The purposes of Rv1860, Rv0173 and/or Rv1812c albumen in the phthisical product of preparation diagnostic activities
CN103293301A (en) Diagnostic kit for autoimmune disease ulcerative colitis and preparation method thereof
Vijaylakshmi et al. Evaluation of a commercial rubella IgM assay for use on oral fluid samples for diagnosis and surveillance of congenital rubella syndrome and postnatal rubella
CN103675293B (en) The purposes of Rv3872, Rv0164 and/or Rv1926c albumen in the phthisical product of preparation diagnostic activities
Maya et al. Evaluation of diagnostic accuracy of developed rapid SARS-COV-2 IgG antibody test kit using novel diluent system
CN103698530B (en) The purposes of Mycobacterium tuberculosis albumen in the phthisical product of preparation diagnostic activities
Abd el-Atty et al. The value of serum lipoarabinomannan in the diagnosis of pulmonary tuberculosis
RU2415430C1 (en) Method for detecting circulating immune complexes
Huang et al. Evaluation of a fully automated and completely quantitative allergen-specific IgE and total IgE detection assay
Black et al. Characterization of antibody responses in legionellosis with an immunofluorometric assay
Hidayati Sensitivity and specificity of atypical lymphocyte for diagnosis of Dengue virus infection at Mataram Hospital, West Nusa Tenggara.

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20090607