RU2293115C1 - Strain of fungus penicillium canescens as producer of secreted endo-(1-4)-beta-xylanase - Google Patents

Strain of fungus penicillium canescens as producer of secreted endo-(1-4)-beta-xylanase Download PDF

Info

Publication number
RU2293115C1
RU2293115C1 RU2006105760/13A RU2006105760A RU2293115C1 RU 2293115 C1 RU2293115 C1 RU 2293115C1 RU 2006105760/13 A RU2006105760/13 A RU 2006105760/13A RU 2006105760 A RU2006105760 A RU 2006105760A RU 2293115 C1 RU2293115 C1 RU 2293115C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
strain
xylanase
beta
endo
producer
Prior art date
Application number
RU2006105760/13A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Сергей Владимирович Беневоленский (RU)
Сергей Владимирович Беневоленский
Екатерина Александровна Вавилова (RU)
Екатерина Александровна Вавилова
Юрий Павлович Винецкий (RU)
Юрий Павлович Винецкий
Сергей Сергеевич Зацепин (RU)
Сергей Сергеевич Зацепин
Алексей Николаевич Марченко (RU)
Алексей Николаевич Марченко
ный Всеволод Александрович Серебр (RU)
Всеволод Александрович Серебряный
Андрей Михайлович Чулкин (RU)
Андрей Михайлович Чулкин
Original Assignee
Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов" (ФГУП ГосНИИгенетика)
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов" (ФГУП ГосНИИгенетика) filed Critical Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов" (ФГУП ГосНИИгенетика)
Priority to RU2006105760/13A priority Critical patent/RU2293115C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2293115C1 publication Critical patent/RU2293115C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnology, genetic engineering, microbiology, biochemistry, enzymes.
SUBSTANCE: invention proposes the fungus strain Penicillium canescens VKPM F-912 no containing genes encoding endoglucanases that is a producer of endo-(1-4)-beta-xylanase. On media with beet pulp this strain is able to accumulate up to 88 U of activity of secreted endo-(1-4)-beta-xylanase and 0.13 U of cellulase activity, not above, in 1 ml of cultural fluid for 120-144 h of the fermentation process.
EFFECT: valuable biochemical properties of strain.
1 tbl, 2 dwg, 2 ex

Description

Изобретение относится к области микробиологической промышленности и представляет собой штамм-продуцент секретируемого фермента эндо-(1-4)-бета-ксиланазы Penicillium canescens (далее Р.canescens), сконструированный методами трансформации и генетической инженерии.The invention relates to the field of microbiological industry and is a producer strain of the secreted enzyme endo (1-4) beta-xylanase Penicillium canescens (hereinafter P.canescens), constructed by transformation and genetic engineering methods.

Эндоксиланазы расщепляют ксилан - основной компонент гемицеллюлез. В этой связи эндоксиланазы представляют большой интерес как в промышленном, так и прикладном биотехнологическом аспекте. Эндоксиланазы находят промышленное применение в бумажной индустрии в процессах отбеливания, в пищевой и кормовой промышленности и других сферах (FEMS Microbiology Reviews, 1999, v.23, p.411). Известны различные грибные продуценты эндоксиланаз: Trichoderma reesi, Trichoderma harzianum, (J Biotechnol, 1997, 57 (1-3):137.), Thermoascus auranticus, (патент США 4966850); Aspergillus tubigensis (патент США 5358864), Humicola insolens (патент США 5610048).Endoxylanases break down xylan, the main component of hemicelluloses. In this regard, endoxylanases are of great interest in both industrial and applied biotechnological aspects. Endoxylanases find industrial application in the paper industry in bleaching processes, in the food and feed industry, and other fields (FEMS Microbiology Reviews, 1999, v.23, p.411). Various fungal producers of endoxylanases are known: Trichoderma reesi, Trichoderma harzianum, (J Biotechnol, 1997, 57 (1-3): 137.), Thermoascus auranticus, (US Pat. No. 4,966,850); Aspergillus tubigensis (U.S. Patent 5,358,864), Humicola insolens (U.S. Patent 5,610,048).

В качестве ближайшего аналога заявляемого изобретения рассмотрим штамм гриба Р.canescens ВКПМ F-832, являющийся продуцентом секретируемой эндо-(1-4)-бета-ксиланазы (патент РФ № 2197526).As the closest analogue of the claimed invention, consider a strain of the fungus P.canescens VKPM F-832, which is the producer of secreted endo (1-4) beta-xylanase (RF patent No. 2197526).

Этот штамм накапливает до 770 единиц активности секретируемой эндо-(1-4)-бета-ксиланазы в 1 мл культуральной жидкости.This strain accumulates up to 770 activity units of secreted endo (1-4) beta-xylanase in 1 ml of culture fluid.

Недостатком штамма ВКПМ F-832 является наличие у него сателлитной целлюлолитической активности (1.4 ед/мл), которая сдерживает использование ферментного препарата ксиланазы на основе этого штамма.The disadvantage of the VKPM F-832 strain is its presence of satellite cellulolytic activity (1.4 u / ml), which inhibits the use of the xylanase enzyme preparation based on this strain.

Задача настоящего изобретения - получить штамм гриба Р.canescens - продуцент секретируемой эндо-(1-4)-бета-ксиланазы с пониженным уровнем целлюлолитической активности.The objective of the present invention is to obtain a strain of fungus P.canescens - producer of secreted endo (1-4) beta-xylanase with a reduced level of cellulolytic activity.

Для решения задачи сконструирован штамм гриба Р.canescens XYL-dEGL - продуцирующий секретируемую эндо-(1-4)-бета-ксиланазу, который имеет делеции по структурным генам egl2 (ген эндоглюканазы семейства А целлюлаз, семейства 5 гликозил гидролаз) и egl3 (ген эндоглюканазы семейства Н целлюлаз, семейства 12 гликозил гидролаз) эндоглюканаз - фермента, проявляющего целлюлолитическую активность. Штамм депонирован во Всероссийской коллекции промышленных микроорганизмов (ВКПМ) под номером ВКПМ F-912.To solve the problem, a strain of P.canescens XYL-dEGL fungus was constructed - producing secreted endo (1-4) beta-xylanase, which has deletions for the structural genes egl2 (endoglucanase gene of family A cellulases, family 5 glycosyl hydrolases) and egl3 (gene endoglucanases of the family N of cellulases, family of 12 glycosyl hydrolases) endoglucanases - an enzyme that exhibits cellulolytic activity. The strain is deposited in the All-Russian collection of industrial microorganisms (VKPM) under the number VKPM F-912.

Заявляемый штамм Р.canescens ВКПМ F-912 имеет следующие характеристики.The inventive strain of P.canescens VKPM F-912 has the following characteristics.

Культурально-морфологические признаки на различных питательных средах после 10 суток роста при 30°С.Cultural and morphological characters on various nutrient media after 10 days of growth at 30 ° C.

На сусло-агаре, имеющем состав (в мас.%): сусло - 40, агар - 2, вода - остальное, штамм образует колонии диаметром 6.5-7.5 см, обратная сторона которых оранжево-темно-коричневая; конидиеносцы размером 430-450×3.0-3.2 мкм, конидии 2.0-2.2 мкм, шаровидные, в молодом возрасте гладкие, в старом - шероховатые, образуются в цепочках, соединяются в колонки, со временем распадающиеся.On wort agar having the composition (in wt.%): Wort - 40, agar - 2, water - the rest, the strain forms colonies with a diameter of 6.5-7.5 cm, the reverse side of which is orange-dark brown; conidiophores 430-450 × 3.0-3.2 microns in size, conidia 2.0-2.2 microns, spherical, smooth at a young age, rough in the old, formed in chains, connected into columns, decaying over time.

На агаризованной среде Роулена-Тома с сахарозой, имеющей состав (в мас.%): сахароза - 2, кукурузный экстракт - 1, KH2РО4 - 0.2, K2SO4 - 0.02, MgSO4×7H2O - 0.02, агар - 2, смесь микроэлементов: MnSO4×5H2O - 0.008, CuSO4×5H2O - 0.04, ZnSO4×7H2O - 0.0088, Со(NO3)2×6Н2O - 0.01, FeSO4×7H2O - 0.1, Н3ВО3 - 0.006, (NH4)2MoO×4H2O - 0.03, CaCl - 0.1, вода - остальное, диаметр колоний 3.8-4.8 см, колонии войлочные или слабопушистые в центре, слабовыпуклые, с радиальными бороздками, белого цвета, по краям окрашены в серо-голубоватый тон, края неровные, лопастные, обратная сторона серо-бежевого тона.On a Rowlen-Tom agar medium with sucrose having the composition (in wt.%): Sucrose - 2, corn extract - 1, KH 2 PO 4 - 0.2, K 2 SO 4 - 0.02, MgSO 4 × 7H 2 O - 0.02, agar - 2, a mixture of trace elements: MnSO 4 × 5H 2 O - 0.008, CuSO 4 × 5H 2 O - 0.04, ZnSO 4 × 7H 2 O - 0.0088, Co (NO 3 ) 2 × 6H 2 O - 0.01, FeSO 4 × 7H 2 O - 0.1, H 3 BO 3 - 0.006, (NH 4 ) 2 MoO × 4H 2 O - 0.03, CaCl - 0.1, water - the rest, colony diameter 3.8-4.8 cm, colony felt or slightly fluffy in the center, slightly convex, with radial grooves, white, painted at the edges in a gray-blue tone, the edges are uneven, lobed, the reverse side of a gray-beige tone.

На агаризованной среде Чапека с глюкозой, имеющей состав (в мас.%): NaNO3 - 0.2, KH2PO4 - 0.1, MgSO4×7H2O - 0.05, KCl - 0.05, FeSO4 - 0.001, глюкоза - 2, агар - 2, вода - остальное, диаметр колоний 2.8-4.0 см, колонии серые, складчатые, с ровным краем, конидиеобразование интенсивное, цвет конидий светло-серый. Обратная сторона колоний с радиальными складками слабо-кремового тона.On an agarized Chapek medium with glucose having the composition (in wt.%): NaNO 3 - 0.2, KH 2 PO 4 - 0.1, MgSO 4 × 7H 2 O - 0.05, KCl - 0.05, FeSO 4 - 0.001, glucose - 2, agar - 2, water - the rest, the diameter of the colonies is 2.8-4.0 cm, the colonies are gray, folded, with a smooth edge, conid formation is intense, the color of conidia is light gray. The reverse side of colonies with radial folds of a weak cream tone.

Физиолого-биохимические признаки.Physiological and biochemical characteristics.

Мезофил, растет при 25-37°С, оптимальная температура роста 29°С. Оптимум роста при значениях рН среды 4.1-5.8. Желатину разжижает слабо.Mesophile, grows at 25-37 ° С, optimal growth temperature is 29 ° С. Growth optimum at pH values of 4.1-5.8. It weakens gelatin slightly.

Отношение к источникам углерода. Хорошо усваивает моно-, ди- и полисахариды, за исключением арабинозы, которую утилизирует слабо.Relation to carbon sources. It is well absorbed by mono-, di- and polysaccharides, with the exception of arabinose, which is poorly utilized.

Отношение к источникам азота. Хорошо усваивает аммонийный и нитратный азот, пептон, мочевину.Attitude to nitrogen sources. It is well absorbed by ammonium and nitrate nitrogen, peptone, urea.

Ферментативная активность. Заявляемый штамм накапливает до 800 единиц активности секретируемой эндо-(1-4)-бета-ксиланазы и не более 0,13 единиц целлюлазной активности в 1 мл культуральной жидкости.Enzymatic activity. The inventive strain accumulates up to 800 units of activity of secreted endo (1-4) beta-xylanase and not more than 0.13 units of cellulase activity in 1 ml of culture fluid.

Изобретение проиллюстрировано следующими фигурами графического изображения:The invention is illustrated by the following figures of a graphic image:

Фиг.1. Карта плазмиды pPCdelEG3niaDFigure 1. Map of plasmid pPCdelEG3niaD

Фиг.2. Карта плазмиды pPCEG2NMFigure 2. PPCEG2NM plasmid map

Пример 1. Конструирование заявляемого штамма.Example 1. Construction of the inventive strain.

Штамм-реципиент Р.canescens PCA10 (Current Genetics, 1995, v.28, p.474) трансформируют (Биотехнология, 1999, N3, стр. 3-13) 1 мкг ДНК сконструированной нами плазмиды pPCdelEG3niaD (Фиг.1), содержащей 5'-нетранслируемую область гена egl3 P.canescens (5' UTP egl3), неполную кодурующую 5' область гена egl3 (CDS 1 egl3), ген нитратредуктазы (niaD) Aspergillus niger (Gene, 1992, v.111, p.149-155) в качестве селективного маркера, неполную кодурующую 3' область гена egl3 (CDS 2 egl3) и 3'-нетранслируемую область гена egl3 (3' UTP egl3) в плазмидном векторе pUC57 (Gene, 1985, v.33, p.103-119), линеаризованной по сайту рестрикции SmaI, и 10 мкг ДНК ПЦР-фрагмента сконструированной нами плазмиды pPCEG2NM (Фиг.2), включающей 5'-нетранслируемую область гена egl2 P.canescens (5' UTP egl2), неполную кодурующую 5' область гена egl2 (CDS I egl2), неполную кодирующую 3' область гена egl2 (CDS 2 egl2) и 3'-нетранслируемую область гена egl2 (3' UTP egl2) в плазмидном векторе pBluescript II KS(+) (Nucleic Acids Res., 1989, v.17, 9494), полученной с использованием пары праймеров:Recipient strain P.canescens PCA10 (Current Genetics, 1995, v. 28, p. 474) transforms (Biotechnology, 1999, N3, p. 3-13) 1 μg of DNA of the plasmid pPCdelEG3niaD that we constructed (Fig. 1) containing 5 'non-translated region of the egl3 gene of P.canescens (5' UTP egl3), incomplete coding 5 'region of the egl3 gene (CDS 1 egl3), Aspergillus niger nitrate reductase gene (niaD) (Gene, 1992, v.111, p.149-155 ) as a selective marker, the incomplete coding region of the 3 'region of the egl3 gene (CDS 2 egl3) and the 3'-untranslated region of the egl3 gene (3' UTP egl3) in the pUC57 plasmid vector (Gene, 1985, v. 33, p.103-119 ) linearized at the SmaI restriction site and 10 μg of the DNA of the PCR construct fragment of the plasmid pPCEG2NM (Fig. 2) that we described, including the 5'-untranslated region of the egl2 P.canescens gene (5 'UTP egl2), the incomplete coding 5' region of the egl2 gene (CDS I egl2), the incomplete coding 3 'region of the egl2 gene (CDS 2 egl2) and the 3'-untranslated region of the egl2 gene (3 'UTP egl2) in the plasmid vector pBluescript II KS (+) (Nucleic Acids Res., 1989, v.17, 9494) obtained using a pair of primers:

EG2-5: 5'-TCATTTAAGCAGGGGTTGTCGGGTTTGTTAGATTC-3'EG2-5: 5'-TCATTTAAGCAGGGGTTGTCGGGTTTGTTAGATTC-3 '

EG2-3: 5'-TCGGATTTCGAAATGCTTCCGTATGTATCATCAC-3'EG2-3: 5'-TCGGATTTCGAAATGCTTCCGTATGTATCATCAC-3 '

Через 4-5 суток инкубации при 30°С проводят скрининг полученных котрансформантов на наличие делеций, используя ПЦР с конидий отдельных трансформантов.After 4-5 days of incubation at 30 ° C, the resulting cotransformants are screened for deletions using PCR from conidia of individual transformants.

Для идентификации штаммов с генотипом Δegl2 (делеция в гене egl2) проводят ПЦР с использованием пары праймеров:To identify strains with the Δegl2 genotype (deletion in the egl2 gene), PCR is performed using a pair of primers:

EG2ID: 5'-ACCCTGAAAACCACTACAACTG-3';EG2ID: 5'-ACCCTGAAAACCACTACAACTG-3 ';

EG2IR: 5'-GCTCTTGTATTTGGTCGCAA-3'.EG2IR: 5'-GCTCTTGTATTTGGTCGCAA-3 '.

Для идентификации штаммов с генотипом Δegl3 (делеция в гене egl3) проводят ПЦР с использованием пары праймеров:To identify strains with the Δegl3 genotype (deletion in the egl3 gene), PCR is performed using a pair of primers:

EG3ID: 5'-TGGTCAAGGACAAAAGTCGA-3';EG3ID: 5'-TGGTCAAGGACAAAAAGTCGA-3 ';

EG3IR: 5'-GGCGTACCAATCAAATACTGAG-3'EG3IR: 5'-GGCGTACCAATCAAATACTGAG-3 '

Анализ котрансформантов EG23-1 и EG23-5 с генотипом Δegl2, Δegl3 проводят, измеряя уровень ксиланазной и целлюлазной активности в культуральной жидкости при глубинном культивировании на среде со свекловичным жомом (как в примере 2). Результаты измерений представлены в Таблице 1.Analysis of cotransformants EG23-1 and EG23-5 with the genotype Δegl2, Δegl3 is carried out by measuring the level of xylanase and cellulase activity in the culture fluid during deep cultivation on a medium with beet pulp (as in example 2). The measurement results are presented in Table 1.

Таблица 1.Table 1. Активности ксиланазы и целлюлаз при ферментации в колбах.Xylanase and cellulase activities during fermentation in flasks. ШтаммStrain ГенотипGenotype Ксиланазная активность, ед/млXylanase activity, units / ml Целлюлазная активность, ед/млCellulase activity, units / ml EG23-1EG23-1 Δegl2, Δegl3Δegl2, Δegl3 145145 1.021.02 EG23-5EG23-5 Δegl2, Δegl3Δegl2, Δegl3 143143 1.051.05 РСА10RSA10 niaD- niaD - 143143 1.401.40

Штамм EG23-1 выбран для дальнейших манипуляций, как имеющий меньшую целлюлазную активность при сохранении высокого уровня ксиланазной активности.Strain EG23-1 was selected for further manipulations as having lower cellulase activity while maintaining a high level of xylanase activity.

Для получения мутантов по гену нитратредуктазы (niaD), которые необходимы для амплификации структурного гена, кодирующего ксиланазу, 106 конидий штамма P.canescens EG23-1 обрабатывают нитрозогуанидином (0.4 мг/мл) 30 мин при 30°С и высевают на чашку с агаризованной минимальной средой (Биотехнология. 1999. N3. C.3-13), содержащей 0.45М хлората и в качестве единственного источника азота 10 мМ NH4Cl. Чашки инкубируют 4-5 суток при 30°С и выросшие колонии тестируют на чашках с агаризованной минимальной средой, с добавками в качестве единственного источника азота: а) - 10 мМ NaNO3; б) - 0.45М хлората, 10 мМ NH4Cl; в) - 5 мМ гипоксантина; г) - 10 мМ NH4Cl. У штаммов, отобранных по способности к росту на средах с хлоридом аммония, хлоратом и гипоксантином и отсутствию способности к росту на средах с NaNO3 определяют их ксиланазные и целлюлазные активности методом, приведенным в примере 2. Среди них селектируют штаммы с продуктивностью ксиланаз и целлюлаз, близкой к штамму EG23-1. В результате получают штамм EG23-1/niaD.To obtain mutants of the nitrate reductase gene (niaD), which are necessary for the amplification of the structural gene encoding xylanase, 10 6 conidia of P. canescens strain EG23-1 are treated with nitrosoguanidine (0.4 mg / ml) for 30 min at 30 ° C and plated on an agar plate minimal medium (Biotechnology. 1999. N3. C.3-13) containing 0.45 M chlorate and as the sole nitrogen source 10 mM NH 4 Cl. The plates are incubated for 4-5 days at 30 ° C and the grown colonies are tested on plates with agarized minimal medium, with additives as the sole source of nitrogen: a) 10 mM NaNO 3 ; b) 0.45 M chlorate, 10 mM NH 4 Cl; c) 5 mM hypoxanthine; g) - 10 mm NH 4 Cl. The strains selected by their ability to grow on media with ammonium chloride, chlorate and hypoxanthine and the lack of growth ability on media with NaNO 3 determine their xylanase and cellulase activities by the method described in example 2. Among them, strains with productivity of xylanases and cellulases are selected, close to strain EG23-1. The result is a strain of EG23-1 / niaD.

Заявляемый штаммм P.canescens ВКПМ F-912 - продуцент эндо-(1-4)-β-ксиланазы, содержащий делеции Δegl2, Δegl3, получают путем введения дополнительных копий гена xylA. эндо-(1-4)-β-ксиланазы P.canescens (Appl. Biochem. MicrobioL, 2002, v.38(5), p.495-501) в штамм EG23-1/niaD с помощью котрансформации плазмидой pPCXYLA (Патент РФ № 21197526), несущей ген xylA P.canescens, с трансформирующей плазмидой pSTA-10 (Gene, 1989, v.78, p.157), содержащей селективный ген нитратредуктазы niaD Aspergillus niger.The inventive strain P.canescens VKPM F-912 - producer of endo (1-4) -β-xylanase containing deletions Δegl2, Δegl3, obtained by introducing additional copies of the xylA gene. endo (1-4) -β-xylanase P.canescens (Appl. Biochem. MicrobioL, 2002, v. 38 (5), p. 495-501) to strain EG23-1 / niaD using cotransformation with plasmid pPCXYLA (Patent RF No. 21197526), carrying the P. canescens xylA gene, with the transforming plasmid pSTA-10 (Gene, 1989, v. 78, p. 157) containing the Aspergillus niger niaD selective nitrate reductase gene.

Пример 2. Оценка ферментативной активности заявляемого штамма.Example 2. Evaluation of the enzymatic activity of the claimed strain.

Посевной материал получают путем культивирования штамма P.canescens ВКПМ F-912 на агаризованной среде Роулен-Тома (см. Пример 1) при 30°С в течение 5-7 суток. Затем водной суспензией полученных таким образом конидий (107 конидий/мл) инокулируют 100 мл пектинсодержащей среды следующего состава (мас.%): свекловичный жом - 3, пептон - 5, КН2PO4 - 2.5, вода - остальное.Inoculum is obtained by culturing a strain of P.canescens VKPM F-912 on Rowlen-Tom agar medium (see Example 1) at 30 ° C for 5-7 days. Then, an aqueous suspension of conidia thus obtained (10 7 conidia / ml) was inoculated with 100 ml of a pectin-containing medium of the following composition (wt.%): Beet pulp - 3, peptone - 5, KH 2 PO 4 - 2.5, water - the rest.

Культивирование проводят на круговой качалке при 240-250 об/мин в качалочных колбах на 750 мл при 30°С в течение 120 часов. По окончании ферментации культуральную жидкость отделяют от мицелия и твердых остатков среды центрифугированием (10000 g, 15 мин) и в супернатанте определяют ксиланазную и целлюлазную активности.Cultivation is carried out on a circular rocking chair at 240-250 rpm in 750 ml rocking flasks at 30 ° C for 120 hours. At the end of the fermentation, the culture fluid is separated from the mycelium and solid residues by centrifugation (10,000 g, 15 min) and xylanase and cellulase activities are determined in the supernatant.

Активность ксиланазы определяют по количеству восстанавливающих сахаров, выделяемых при гидролизе ксилана из лиственницы. Инкубацию субстрата и фермента проводят при 50°С в течение 10 мин. Проба включает 0.45 мл 1% раствора ксилана в 0.1 М ацетатном буферном растворе (рН 5.0) и 0.05 мл фермента в соответствующем разведении. За единицу активности принимают количество фермента, высвобождающее 1 мкмоль/мин восстанавливающих сахаров при указанных выше условиях. Восстанавливающие сахара определяют методом Шомоди-Нельсона (J.Biol.Chem. 1952. V.195. N1. P.19-28, J. Biol. Chem. 1944. V.153. P.375-380).Xylanase activity is determined by the amount of reducing sugars released during the hydrolysis of xylan from larch. Incubation of the substrate and the enzyme is carried out at 50 ° C for 10 minutes The sample includes 0.45 ml of a 1% solution of xylan in 0.1 M acetate buffer solution (pH 5.0) and 0.05 ml of the enzyme in an appropriate dilution. The unit of activity is the amount of enzyme releasing 1 μmol / min of reducing sugars under the above conditions. Reducing sugars are determined by the Shomody-Nelson method (J. Biol. Chem. 1952. V.195. N1. P.19-28, J. Biol. Chem. 1944. V.153. P.375-380).

Для определения активности целлюлаз используют окрашенную карбоксиметилцеллюлозу (CMC ОС-41). Приготовляют 1% раствор CMC ОС-41 в 0.1 М ацетатном буфере, рН 4.5. К 0.25 мл этого раствора добавляют 0.15 мл 0.1М ацетатного буфера (рН 4.5), и прогрвают 5 мин при 40°С. Добавляют 0.1 мл прогретого 5 мин при 40°С, разведенного в том же буфере, образца. Инкубируют 10 мин при 40°С, затем добавляют 1 мл 1 М раствора CaCl в 80% этаноле. Суспензию центрифугируют (3000 g, 5 мин) и измеряют оптическую плотность надосадочной жидкости при 490 нм против "слепой" пробы. Приготовление "слепой" пробы осуществляют так же, как испытуемого образца, но пропускают инкубирование в течение 10 мин при 40°С.To determine the activity of cellulases using colored carboxymethyl cellulose (CMC OS-41). Prepare a 1% solution of CMC OS-41 in 0.1 M acetate buffer, pH 4.5. 0.15 ml of 0.1 M acetate buffer (pH 4.5) was added to 0.25 ml of this solution, and it was heated for 5 min at 40 ° С. Add 0.1 ml of sample warmed up for 5 min at 40 ° С diluted in the same buffer. Incubated for 10 min at 40 ° C, then add 1 ml of a 1 M solution of CaCl in 80% ethanol. The suspension is centrifuged (3000 g, 5 min) and the absorbance of the supernatant is measured at 490 nm against a “blind” sample. The preparation of a “blind” sample is carried out in the same way as the test sample, but incubation is passed for 10 min at 40 ° C.

Активность (ед/мл) = 0.611×OD490×5×R/t;Activity (u / ml) = 0.611 × OD 490 × 5 × R / t;

где:Where:

0.611 - корреляционный коэффициент;0.611 - correlation coefficient;

5 - разведение образца в реакционной смеси;5 - dilution of the sample in the reaction mixture;

OD490 - оптическая плотность при 490 нм;OD 490 — optical density at 490 nm;

t - время инкубации;t is the incubation time;

R - первоначальное разведение образца.R is the initial dilution of the sample.

Заявляемый штамм гриба P.canescens ВКПМ F-912 в описанных выше условиях проявляет ксиланазную активность 800 ед/мл и целлюлазную активность 0.13 ед/мл.The inventive strain of the fungus P.canescens VKPM F-912 under the conditions described above exhibits xylanase activity of 800 units / ml and cellulase activity of 0.13 units / ml.

Claims (1)

Штамм гриба Penicillium canescens ВКПМ F-912 - продуцент секретируемой эндо-(1-4)-бета-ксиланазы.The strain of the fungus Penicillium canescens VKPM F-912 is a producer of secreted endo (1-4) beta-xylanase.
RU2006105760/13A 2006-02-27 2006-02-27 Strain of fungus penicillium canescens as producer of secreted endo-(1-4)-beta-xylanase RU2293115C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2006105760/13A RU2293115C1 (en) 2006-02-27 2006-02-27 Strain of fungus penicillium canescens as producer of secreted endo-(1-4)-beta-xylanase

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2006105760/13A RU2293115C1 (en) 2006-02-27 2006-02-27 Strain of fungus penicillium canescens as producer of secreted endo-(1-4)-beta-xylanase

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2293115C1 true RU2293115C1 (en) 2007-02-10

Family

ID=37862563

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2006105760/13A RU2293115C1 (en) 2006-02-27 2006-02-27 Strain of fungus penicillium canescens as producer of secreted endo-(1-4)-beta-xylanase

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2293115C1 (en)

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101717728B (en) * 2009-12-28 2013-04-10 华东理工大学 Penicillium and application thereof in catalyzing and hydrolyzing lignocellulose
RU2538149C2 (en) * 2012-10-05 2015-01-10 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт биохимии им. А.Н. Баха Российской академии наук CELL OF MYCELIAL FUNGUS Penicillium canescens - XYLANASE AND LACCASE PRODUCENT, METHOD OF OBTAINING COMBINED EXYME XYLANASE AND LACCASE PREPARATION
RU2542486C1 (en) * 2013-09-23 2015-02-20 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук (ИЦиг СО РАН) STRAIN OF Esherichia coli EX pQE30 BACTERIUM, PRODUCER OF ENDOXYLANASE OF Geobacillus stearothermophillus 22 BACTERIUM
RU2711578C1 (en) * 2018-08-22 2020-01-17 Федеральное государственное учреждение "Федеральный исследовательский центр "Фундаментальные основы биотехнологии" Российской академии наук (ФИЦ Биотехнологии РАН) Penicillium verruculosum mx-73 fungus strain producer of modified xylanase e with high heat stability, enzyme preparation based thereon for use in food and feed industry and method for production thereof
RU2796447C1 (en) * 2022-09-12 2023-05-23 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение Федеральный исследовательский центр "Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук" (ИЦиГ СО РАН) Komagataella phaffii t07/ppzl-4x-oa-xyl-asor strain capable of producing xylanase from aspergillus oryzae fungi

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN101717728B (en) * 2009-12-28 2013-04-10 华东理工大学 Penicillium and application thereof in catalyzing and hydrolyzing lignocellulose
RU2538149C2 (en) * 2012-10-05 2015-01-10 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт биохимии им. А.Н. Баха Российской академии наук CELL OF MYCELIAL FUNGUS Penicillium canescens - XYLANASE AND LACCASE PRODUCENT, METHOD OF OBTAINING COMBINED EXYME XYLANASE AND LACCASE PREPARATION
RU2542486C1 (en) * 2013-09-23 2015-02-20 Федеральное государственное бюджетное учреждение науки Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук (ИЦиг СО РАН) STRAIN OF Esherichia coli EX pQE30 BACTERIUM, PRODUCER OF ENDOXYLANASE OF Geobacillus stearothermophillus 22 BACTERIUM
RU2711578C1 (en) * 2018-08-22 2020-01-17 Федеральное государственное учреждение "Федеральный исследовательский центр "Фундаментальные основы биотехнологии" Российской академии наук (ФИЦ Биотехнологии РАН) Penicillium verruculosum mx-73 fungus strain producer of modified xylanase e with high heat stability, enzyme preparation based thereon for use in food and feed industry and method for production thereof
RU2796447C1 (en) * 2022-09-12 2023-05-23 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение Федеральный исследовательский центр "Институт цитологии и генетики Сибирского отделения Российской академии наук" (ИЦиГ СО РАН) Komagataella phaffii t07/ppzl-4x-oa-xyl-asor strain capable of producing xylanase from aspergillus oryzae fungi

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Mihajlovski et al. From agricultural waste to biofuel: enzymatic potential of a bacterial isolate Streptomyces fulvissimus CKS7 for bioethanol production
Yang et al. High-level of xylanase production by the thermophilic Paecilomyces themophila J18 on wheat straw in solid-state fermentation
Li et al. Purification and characterization of a thermostable cellulase-free xylanase from the newly isolated Paecilomyces themophila
RU2361918C1 (en) Strain of mycelial mushroom penicillium verruculosum - producer of complex of cellulase, xylanase and xyloglucanase and way of reception of fermental preparation of complex of cellulase, xylanase and xyloglucanase for hydrolysis of cellulose and hemicellulose
Kavya et al. Optimization of growth conditions for xylanase production by Aspergillus niger in solid state fermentation
Fujimoto et al. Bearing a high cellulose-degrading activity, which was isolated as a heat-resistant and micro-aerophilic microorganism from bovine rumen
Singh et al. Improved cellulase production by Penicillium janthinellum mutant
US20140363846A1 (en) Process for producing cellulase mixtures from myceliophthora and related organisms
Giese et al. Cellulase production by Trichosporon laibachii
RU2293115C1 (en) Strain of fungus penicillium canescens as producer of secreted endo-(1-4)-beta-xylanase
EP0133035B1 (en) Process for the preparation of cellulase
US10053680B2 (en) Strain and a method to produce cellulase and its use
JP2007319040A (en) Acidic cellulase-producing bacterium
Anwar et al. Isolation of mutants of Penicillium purpurogenum resistant to catabolite repression
Kamble et al. Xylanase production under solid state and submerged fermentation conditions by bacterial strains
WO2007114729A1 (en) Method of lignocellulose materials saccharification using enzymes produced by penicillium fimiculosum
Szczodrak et al. Penicillium notatum 1 a new source of dextranase
RU2323973C1 (en) STAM OF MITSELIAL MUSHROOM Aspergillus foetidus BKM F 3890D - PRODUCER OF ACID PROTEASE AND COMPEX OF CARBOHYDRASE, CONTAINS PECTINASE (POLYGALACTURONASE), CELANESE, β-GLUCANESE, ARABINASE, GALACTANSE, CELOGLUKANASE, SACCHARASE, α-L-ARABINEOFURANOZIDASE, β-GLUKOZIDASE AND AMPILASE
Sajith et al. Production and partial purification of cellulase from a new isolate, Penicillium verruculosum BS3
Basaran et al. Isolation and characterization of Pichia stipitis mutants with enhanced xylanase activity
US6569646B2 (en) Process for the production of an enzyme preparation containing xylanase and carboxymethyl cellulase from termitomyces clypeatus having accession no 11CB-411
RU2532840C2 (en) FUNGAL STRAIN Penicillium verruculosum B10 EGII PRODUCER OF ENDO-1,3/1,4-β-GLUCANASE, CELLULASE, β-GLUCOSIDASE AND XYLANASE AND METHOD OF PRODUCTION OF FODDER COMPLEX ENZYME PREPARATION
RU2323254C2 (en) MYCELIAL FUNGUS PENICILLIUM FUNICULOSUM STRAIN AS PRODUCER OF CARBOHYDRASES COMPLEX CONTAINING CELLULASES, β-GLUCANASES, β-GLUCOSIDASES, XYLANASES AND XYLOGLUCANASES AND METHOD FOR PREPARING ENZYME PREPARATION OF CARBOHYDRASES COMPLEX FOR SACCHARIFICATION OF LIGNOCELULOSE MATERIALS
Haq et al. Optimization of cultural conditions for the production of xylanase by chemically mutated strain of Aspergillus niger GCBCX-20
Farkaš et al. Preparation of mutants of Trichoderma viride with increased production of cellulase

Legal Events

Date Code Title Description
PC43 Official registration of the transfer of the exclusive right without contract for inventions

Effective date: 20170327

PD4A Correction of name of patent owner
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20190228