RU2292551C1 - Early stage diagnosis method for determining prenatal infection in newborns - Google Patents

Early stage diagnosis method for determining prenatal infection in newborns Download PDF

Info

Publication number
RU2292551C1
RU2292551C1 RU2005129856/15A RU2005129856A RU2292551C1 RU 2292551 C1 RU2292551 C1 RU 2292551C1 RU 2005129856/15 A RU2005129856/15 A RU 2005129856/15A RU 2005129856 A RU2005129856 A RU 2005129856A RU 2292551 C1 RU2292551 C1 RU 2292551C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
samples
placenta
suspension
carried out
newborns
Prior art date
Application number
RU2005129856/15A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Ольга Васильевна Островска (RU)
Ольга Васильевна Островская
Наталь Михайловна Ивахнишина (RU)
Наталья Михайловна Ивахнишина
Елена Борисовна Наговицына (RU)
Елена Борисовна Наговицына
Наталь Михайловна Пуховска (RU)
Наталья Михайловна Пуховская
Тать на Михайловна Бутко (RU)
Татьяна Михайловна Бутко
Ольга Валерьевна Кожарска (RU)
Ольга Валерьевна Кожарская
Original Assignee
Государственное учреждение Дальневосточный научный центр физиологии и патологии дыхания Сибирского отделения Российской академии медицинских наук
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственное учреждение Дальневосточный научный центр физиологии и патологии дыхания Сибирского отделения Российской академии медицинских наук filed Critical Государственное учреждение Дальневосточный научный центр физиологии и патологии дыхания Сибирского отделения Российской академии медицинских наук
Priority to RU2005129856/15A priority Critical patent/RU2292551C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2292551C1 publication Critical patent/RU2292551C1/en

Links

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: method involves applying polymerase chain reaction diagnostic methods for detecting perinatal infection pathogenic agents in afterbirth. Preparation for detecting DNA- and RNA-containing pathogenic agents, is obtained as follows. 1.0x1.0 cm large placenta samples are taken from fetal membrane rupture places and in intervillous lacuna in the afterbirth center. The samples are placed into reservoir filled with sterile physiologic saline to be kept in storage not longer than 4 h at+4°C temperature. Then the samples are grinded and alkaline extraction is carried out with 200 mcl adding 200 mcl of solution containing 1.5 M NaCl, 0.3 M NaOH, 0.1% Sacrosyl solution and 0.5% sodium dodecylsulfate. The sample is left for 16-18 h at temperature of +4°C. Then the suspension is shaken, centrifuged at 5000 rpm during 5 min. The so produced suspension is transferred into test-tube having volume of 1.5 ml and extraction with chloroform and phenol and denaturation with ethanol is carried out.
EFFECT: high accuracy of measurements.

Description

Изобретение относится к медицине, точнее к лабораторной диагностике внутриутробных инфекций у новорожденных.The invention relates to medicine, more specifically to laboratory diagnosis of intrauterine infections in newborns.

В настоящее время известен способ прогнозирования риска развития внутриутробной инфекции у новорожденного, включающий определение воспалительно-дистрофических изменений гистологическими методами во всех частях последа: в различных участках плаценты, ворсинках и межворсинчатом пространстве, в оболочках последа, в плаценте и ее сосудах, в центре плаценты, на периферии, на материнской и плодной поверхностях (RU №2168946). По сочетанию выявленных воспалительно-дистрофических изменений в различных структурных частях последа прогнозируют степень риска развития внутриутробной инфекции у новорожденных (В.А.Цинзерлинг, В.Ф.Мельникова, 2002),Currently, there is a method for predicting the risk of intrauterine infection in a newborn, including the determination of inflammatory and dystrophic changes by histological methods in all parts of the placenta: in different parts of the placenta, villi and intervillous space, in the membranes of the placenta, in the placenta and its vessels, in the center of the placenta, on the periphery, on the maternal and fetal surfaces (RU No. 2168946). By the combination of revealed inflammatory-dystrophic changes in various structural parts of the placenta, the degree of risk of intrauterine infection in newborns is predicted (V.A. Tsinserling, V.F. Melnikova, 2002),

Известный способ обладает рядом недостатков:The known method has several disadvantages:

- исследуется большое количество проб из различных участков плаценты;- investigated a large number of samples from different parts of the placenta;

- выявляются непатогномоничные, неспецифические воспалительно-дистрофические изменения, которые могут вызываться не только различными возбудителями, но и другими причинами, например родовое травматическое повреждение, метаболические расстройства и т.д.;- non-pathognomonic, nonspecific inflammatory-dystrophic changes are revealed, which can be caused not only by various pathogens, but also by other causes, for example, birth traumatic injury, metabolic disorders, etc .;

- оценка воспалительно-дистрофических изменений субъективна;- assessment of inflammatory-dystrophic changes is subjective;

- гистологическое исследование плаценты занимает 2 от 10 до дней.- histological examination of the placenta takes 2 from 10 to days.

Наиболее близким аналогом-прототипом является способ выявления возбудителей инфекций в аутопсийном материале путем постановки полимеразной цепной реакции (ПЦР), при котором кусочки тканей взвешивают, 100 мг растирают в ступке в жидком азоте до порошка. Затем для выделения РНК порошок переносят в гомогенизатор и следуют инструкции по выделению РНК. Для выделения ДНК к полученному порошку добавляют равный объем (0,1 мл) стерильного физиологического раствора, тщательно перемешивают и отбирают необходимый объем материала согласно инструкции по выделению ДНК (Инструкция фирмы "Интерлабсервис" по забору, транспортировке и предобработке биопсийного и аутопсийного материала, Инструкции к комплектам реагентов по выделению нуклеиновых кислот, Москва, 2004).The closest analogue prototype is a method for identifying pathogens of infections in autopsy material by setting up a polymerase chain reaction (PCR), in which pieces of tissue are weighed, 100 mg is ground in a mortar in liquid nitrogen to a powder. Then, to isolate RNA, the powder is transferred to a homogenizer and instructions for the isolation of RNA are followed. To isolate DNA, an equal volume (0.1 ml) of sterile physiological saline is added to the obtained powder, mix thoroughly and the required volume of material is selected according to the instructions for DNA extraction (Interlabservice Instructions for the collection, transportation and pretreatment of biopsy and autopsy material, Instructions for sets of reagents for the selection of nucleic acids, Moscow, 2004).

Недостатками прототипа являются:The disadvantages of the prototype are:

- необходимость разных видов пробоподготовки для выделения ДНК-содержащих и РНК-содержащих вирусов;- the need for different types of sample preparation to isolate DNA-containing and RNA-containing viruses;

- повышенные меры безопасности при работе с жидким азотом;- increased safety measures when working with liquid nitrogen;

- взятие определенного количества аутопсийного материала, а именно 100 мг;- taking a certain amount of autopsy material, namely 100 mg;

- повышение затрат на дополнительное оборудование, связанное с работой с жидким азотом.- increased costs for additional equipment associated with working with liquid nitrogen.

Задача изобретения - предложить объективный и быстрый способ прогнозирования риска реализации внутриутробной инфекции у новорожденных.The objective of the invention is to offer an objective and quick way to predict the risk of intrauterine infection in newborns.

Техническим результатом является выявление конкретных возбудителей внутриутробных инфекций методом ПЦР в пробах плаценты, взятых в оболочке в месте разрыва и в межворсинчатом пространстве в центре плаценты.The technical result is the identification of specific causative agents of intrauterine infections by PCR in placenta samples taken in the membrane at the site of rupture and in the intervillous space in the center of the placenta.

Технический результат достигается следующим образом. Для исследования берут 2 кусочка плаценты размером 1,0×1,0 см в двух местах. Первый - в месте разрыва плодных оболочек, так как это наиболее вероятное место присутствия и размножения возбудителя при восходящем пути проникновения инфекционных агентов в плаценту и плод из нижних отделов генитального тракта. Вторую пробу берут в межворсинчатом пространстве в центре плаценты, где наиболее активный кровоток и наиболее вероятно присутствие возбудителя, попавшего в плаценту и плод гематогенным путем. Затем оба кусочка помещают в емкость со стерильным физиологическим раствором, который покрывает их поверхность. Образцы доставляют в лабораторию в течение 2-4 часов при +4°С и сразу начинают обработку. Хранение проб не допускается, так как при этом увеличиваются потери РНК вследствие деградации. Оба кусочка плаценты переносят из контейнера в ступку, добавляют 1,0 мл культуральной среды, например среды Игла MEM, для того чтобы в случае необходимости часть образца можно было исследовать на культуре ткани или бактериологических средах. Затем кусочки измельчают для того, чтобы успешнее произошел лизис клеток, денатурация белков, нейтрализация и удаление посторонних примесей при последующих этапах пробоподготовки. Недостаточный лизис приводит к тому, что клеточный детрит маскирует специфическую ДНК, уменьшает вероятность ее контакта с ДНК-полимеразой и повышает возможность ложноотрицательных результатов.The technical result is achieved as follows. For research, take 2 pieces of the placenta measuring 1.0 × 1.0 cm in two places. The first is at the site of rupture of the membranes, since this is the most likely place for the presence and reproduction of the pathogen with an ascending path of infectious agents entering the placenta and the fetus from the lower parts of the genital tract. The second sample is taken in the intervillous space in the center of the placenta, where the most active blood flow and the most likely presence of the pathogen that got into the placenta and fetus by the hematogenous route. Then both pieces are placed in a container with sterile saline that covers their surface. Samples are delivered to the laboratory within 2-4 hours at + 4 ° C and immediately begin processing. Storage of samples is not allowed, as this increases the loss of RNA due to degradation. Both pieces of the placenta are transferred from the container to the mortar, 1.0 ml of culture medium, for example, Needle MEM medium, is added so that, if necessary, part of the sample can be examined on tissue culture or bacteriological media. Then the pieces are crushed so that cell lysis, protein denaturation, neutralization and removal of impurities in the subsequent stages of sample preparation occur more successfully. Inadequate lysis leads to the fact that cell detritus masks specific DNA, reduces the likelihood of its contact with DNA polymerase and increases the possibility of false-negative results.

Далее 200 мкл измельченной суспензии переносят в пробирку типа Эппендорф и добавляют 200 мкл щелочной смеси следующего состава: 1,5 М NaCl, 0,3 М NaOH, 0,1% раствор саркозила, 0,5% додецилсульфата натрия. Оставляют пробу на 16-18 часов при +4°С. После этого суспензию встряхивают на микроцентрифуге и центрифугируют 5 минут при 5000 об/ мин. 200 мкл супернатанта переносят в пробирки типа Эппендорф объемом 1,5 мл.Then 200 μl of the crushed suspension is transferred into an Eppendorf type tube and 200 μl of an alkaline mixture of the following composition is added: 1.5 M NaCl, 0.3 M NaOH, 0.1% sarcosyl solution, 0.5% sodium dodecyl sulfate. Leave the sample for 16-18 hours at + 4 ° C. After this, the suspension is shaken in a microcentrifuge and centrifuged for 5 minutes at 5000 rpm. 200 μl of the supernatant is transferred into 1.5 ml Eppendorf tubes.

Затем производят фенольно-хлороформную экстракцию и денатурацию этанолом. В результате получают чистый препарат нуклеиновых кислот, пригодный для ПЦР или от-ПЦР. Измельчение, щелочной лизис и фенольная экстракция позволяют избавиться от примесей в аутопсийном материале, богатом продуктами некроза и аутолиза тканей, распада ядер и клеток, нарушенного обмена протеинов, липидов, ферментов и других ингибиторов ПЦР. Таким образом получают препарат высокой степени очистки, пригодный для эффективного выявления возбудителей.Then produce phenol-chloroform extraction and denaturation with ethanol. The result is a pure nucleic acid preparation suitable for PCR or from-PCR. Grinding, alkaline lysis and phenolic extraction can get rid of impurities in autopsy material rich in products of necrosis and autolysis of tissues, decay of nuclei and cells, impaired metabolism of proteins, lipids, enzymes and other PCR inhibitors. Thus, a high-purity preparation is obtained that is suitable for the effective identification of pathogens.

Полученный препарат используют для выявления возбудителей перинатальных инфекций, как РНК-, так и ДНК-содержащих (например, Enteroviruses, Rubella virus, Herpes simplex virus I, II types, Cytomegalovirus, Chlamydia trachomatis, Mycoplasma hominis, Mycoplasma genitalium, Ureaplasma urealyticum, Listeria monocytogenes) путем последующей постановки амплификации и детекции продуктов ПЦР методом горизонтального электрофореза. Далее результат фотографируют и оставляют на хранение в архиве.The resulting preparation is used to identify pathogens of perinatal infections, both RNA- and DNA-containing (e.g. Enteroviruses, Rubella virus, Herpes simplex virus I, II types, Cytomegalovirus, Chlamydia trachomatis, Mycoplasma hominis, Mycoplasma genitalium, Ureaplasma urealyticumt, Listeria mon ) by subsequent staging of amplification and detection of PCR products by horizontal electrophoresis. Next, the result is photographed and stored in the archive.

Преимущества предлагаемого способа:The advantages of the proposed method:

- уменьшение количества проб при исследовании: берутся только 2 пробы в местах наиболее вероятного размножения вирусов при восходящем и гематогенном пути проникновения возбудителя в плаценту и плод;- reduction in the number of samples in the study: only 2 samples are taken at the sites of the most probable virus multiplication during the ascending and hematogenous pathways of the pathogen penetration into the placenta and fetus;

- высокая чистота препарата нуклеиновых кислот, пригодная для постановки ПЦР, достигается удалением и нейтрализацией примесей, которыми богат аутопсийный материал, с помощью размельчения, щелочной обработки, фенольно-хлороформной экстракции и денатурации этанолом;- high purity of the nucleic acid preparation, suitable for PCR, is achieved by the removal and neutralization of impurities, which are rich in autopsy material, by grinding, alkaline treatment, phenol-chloroform extraction and denaturation with ethanol;

- сокращение времени исследования до 2-х дней;- reduction of research time to 2 days;

- один технически простой способ пробоподготовки для ПЦР используют для выявления комплекса РНК- и ДНК-содержащих возбудителей перинатальных инфекций, при этом уменьшение потерь РНК достигается коротким интервалом времени между забором материала и началом пробоподготовки - не более 4 часов;- one technically simple method of sample preparation for PCR is used to identify a complex of RNA- and DNA-containing causative agents of perinatal infections, while reducing RNA loss is achieved by a short time interval between sampling and the beginning of sample preparation - no more than 4 hours;

- возможность выявления конкретных возбудителей способствует проведению адекватного лечения новорожденного и соответствующей реабилитационной терапии матери.- the ability to identify specific pathogens contributes to the adequate treatment of the newborn and appropriate rehabilitation therapy for the mother.

Пример 1.Example 1

Проведено исследование плаценты у женщины М., 30 лет, беременность которой протекала с угрозой выкидыша на 14 неделе на фоне хронического пиелонефрита. Ребенок родился на 36 неделе, с массой тела 2800 г. Взяты для исследования 2 кусочка плаценты, размером 1,0×1,0 см. Один - в месте разрыва плодных оболочек, второй - в межворсинчатом пространстве в центре плаценты. Пробы в тот же день были доставлены в лабораторию и через 2 часа после забора материала подвергнуты обработке. Оба кусочка были измельчены в ступке, предварительно обработанной хромпиком и простерилизованной, с добавлением культуральной среды Игла MEM. К 200 мкл полученной суспензии добавили равный объем щелочной смеси и оставили на 16 часов при +4°C. После этого произвели встряхивание и центрифугирование 5 мин при 5000 об/мин. 200 мкл супернатанта перенесли в пробирку типа Эппендорф объемом 1.5 мл, затем провели фенольно-хлороформную экстракцию, полученный препарат нуклеиновых кислот использовали для проведения амплификации. Выявление РНК-содержащих вирусов (Enteroviruses, Rubella virus) проводили наборами фирмы "Изоген". Выявление ДНК-содержащих возбудителей (Herpes simplex virus I, II types, Cytomegalovirus, Chlamydia trachomatis, Mycoplasma hominis, Mycoplasma genitalium, Ureaplasma urealyticum, Listeria monocytogenes) - наборами фирмы "Литех". В исследуемой пробе выявлен Cytomegalovirus. Для подтверждения результатов ПЦР пробы исследованы быстрым культуральным методом на культуре тканей ФЭЧ. Выявлен и идентифицирован Cytomegalovirus. При гистологическом исследовании плаценты регистрированы воспалительно-дистрофические изменения: отложения фибриноида на поверхности ворсин, псевдоинфаркты, кальцификаты, диссоциированное созревание ворсин, дистрофические изменения в строме ворсин, в стенках сосудов. По результатам ПЦР-диагностики и гистологического исследования сделан вывод о высоком риске реализации внутриутробной цитомегаловирусной инфекции. У новорожденного были выражены петехии, желтуха, нарушение функции печени. Даны рекомендации о переводе ребенка из роддома в отделение патологии новорожденных с лечением, включающим применение антицитомегаловирусного иммуноглобулина, виферона и другое адекватное лечение.A study of the placenta in a woman M., 30 years old, whose pregnancy proceeded with the threat of miscarriage at 14 weeks against a background of chronic pyelonephritis. The baby was born at 36 weeks, with a body weight of 2800 g. Two pieces of the placenta, 1.0 × 1.0 cm in size, were taken for examination. One was at the rupture of the membranes, the second was in the intervillous space in the center of the placenta. Samples were delivered to the laboratory on the same day and processed 2 hours after sampling. Both pieces were ground in a mortar, pre-treated with chrompeak and sterilized, with the addition of MEM needle culture medium. An equal volume of the alkaline mixture was added to 200 μl of the resulting suspension and left for 16 hours at + 4 ° C. After this, shaking and centrifugation were performed for 5 minutes at 5000 rpm. 200 μl of the supernatant was transferred to a 1.5 ml Eppendorf type tube, then phenol-chloroform extraction was carried out, the obtained nucleic acid preparation was used for amplification. Identification of RNA-containing viruses (Enteroviruses, Rubella virus) was performed using Isogen kits. Detection of DNA-containing pathogens (Herpes simplex virus I, II types, Cytomegalovirus, Chlamydia trachomatis, Mycoplasma hominis, Mycoplasma genitalium, Ureaplasma urealyticum, Listeria monocytogenes) - sets of the company "Litech". In the test sample, Cytomegalovirus was detected. To confirm the results of PCR, the samples were studied by the fast culture method on a tissue culture of PEC. Identified and identified Cytomegalovirus. During histological examination of the placenta, inflammatory and dystrophic changes were recorded: fibrinoid deposits on the surface of the villi, pseudo infarcts, calcifications, dissociated maturation of the villi, dystrophic changes in the stroma of the villi, in the vessel walls. According to the results of PCR diagnostics and histological examination, it was concluded that there is a high risk of intrauterine cytomegalovirus infection. The newborn was expressed petechiae, jaundice, impaired liver function. Recommendations are given on transferring a child from the maternity hospital to the neonatal pathology unit with treatment, including the use of anticytomegalovirus immunoglobulin, viferon, and other appropriate treatment.

Пример 2.Example 2

Исследованы пробы плаценты у женщины К., 24 лет. Беременность первая, протекала с угрозой выкидыша на 24 неделе и гестационным пиелонефритом. Ребенок родился на 39-40 неделе с массой тела 3140 г. Исследование плаценты методом ПНР проводили, как описано в примере 1. В исследуемой пробе обнаружена Ureaplasma urealyticum. При гистологическом исследовании плаценты выявлены воспалительно-дистрофические изменения: фибриноид, выраженные дистрофические изменения в строме ворсин, в стенках сосудов, фибробластическая реакция. На основании этих данных сделан вывод о высокой степени риска развития внутриутробной уреаплазменной инфекции у ребенка. В периоде новорожденности выявлены: задержка внутриутробного развития по гипотрофическому типу, длительный адаптационный период, перинатальная энцефалопатия, синдром нейромышечной дистонии и вегетовисцеральных нарушений. Рекомендовано лечение антибиотиками группы макролидов, например ровамицином.Samples of the placenta in a woman K., 24 years old, were studied. The first pregnancy was with the threat of miscarriage at 24 weeks and gestational pyelonephritis. The baby was born at 39-40 weeks old with a body weight of 3140 g. The placenta was studied by the NDP method as described in Example 1. Ureaplasma urealyticum was found in the test sample. An histological examination of the placenta revealed inflammatory-dystrophic changes: a fibrinoid, pronounced dystrophic changes in the stroma of the villi, in the walls of blood vessels, and a fibroblastic reaction. Based on these data, a conclusion is drawn about a high risk of intrauterine ureaplasma infection in a child. In the neonatal period, the following were identified: intrauterine growth retardation by the hypotrophic type, a long adaptation period, perinatal encephalopathy, neuromuscular dystonia syndrome and vegetovisceral disorders. Recommended treatment with antibiotics of the macrolide group, for example, rovamycin.

Claims (1)

Способ ранней диагностики внутриутробных инфекций у новорожденных, состоящий в ПНР-диагностике возбудителей перинатальных инфекций в последе, отличающийся тем, что пробы плаценты размерами 1,0×1,0 см берут в месте разрыва плодных оболочек и в межворсинчатом пространстве в центре последа, помещают в емкость со стерильным физиологическим раствором, хранят не более 4 ч при 4°C, после этого пробы измельчают, берут 200 мкл и проводят щелочную экстракцию, добавляя к суспензии 200 мкл р-ра, содержащего 1,5 М NaCl, 0,3 М NaOH, 0,1%-ный раствор саркозила, 0,5% додецилсульфата натрия, оставляют пробу на 16-18 ч при 4°C, затем суспензию встряхивают, центрифугируют при 5000 об/мин в течение 5 мин, полученную суспензию переносят в пробирку объемом 1,5 мл и осуществляют хлороформно-фенольную экстракцию и денатурацию этанолом.A method for early diagnosis of intrauterine infections in newborns, consisting of a PNR diagnosis of causative agents of perinatal infections in the placenta, characterized in that placenta samples 1.0 × 1.0 cm in size are taken at the site of rupture of the membranes and in the intervillous space in the center of the placenta, placed in a container with sterile physiological saline, stored for no more than 4 hours at 4 ° C, after which the samples are crushed, 200 μl are taken and alkaline extraction is carried out, adding 200 μl of a solution containing 1.5 M NaCl, 0.3 M NaOH to the suspension , 0.1% sarcosyl solution, 0.5% dodecyl sodium sulfate, leave the sample for 16-18 hours at 4 ° C, then the suspension is shaken, centrifuged at 5000 rpm for 5 minutes, the resulting suspension is transferred to a 1.5 ml tube and chloroform-phenol extraction and denaturation with ethanol are carried out.
RU2005129856/15A 2005-09-26 2005-09-26 Early stage diagnosis method for determining prenatal infection in newborns RU2292551C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2005129856/15A RU2292551C1 (en) 2005-09-26 2005-09-26 Early stage diagnosis method for determining prenatal infection in newborns

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2005129856/15A RU2292551C1 (en) 2005-09-26 2005-09-26 Early stage diagnosis method for determining prenatal infection in newborns

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2292551C1 true RU2292551C1 (en) 2007-01-27

Family

ID=37773516

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2005129856/15A RU2292551C1 (en) 2005-09-26 2005-09-26 Early stage diagnosis method for determining prenatal infection in newborns

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2292551C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2017204674A1 (en) * 2016-05-26 2017-11-30 Общество С Ограниченной Ответственностью Научно-Производственное Предприятие "Биочип" A biochip for multiplex analysis and a method of studying cells in the diagnosis of oncological diseases

Non-Patent Citations (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Инструкция по забору, транспортировке и предобработке биопсийного и аутопсийного материала. Инструкции к комплектам реагентов по выделению нуклеиновых кислот. "Интерлабсервис", М., 2004. *
МИНОЧКИН П.И. и др. Иммуноферментный анализ и полимеразная цепная реакция в диагностике внутриутробной инфекции у новорожденных с церебральными поражениями. Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунобиологии. 1999, N6, с.74-76. MILEWSKA-BOBULA В. Congenital cytomegalovirus infection - clinical characteristics including prenatal diagnosis. Med Wieku Rozwoj. 2003, 7 (3, Suppl 1), p.123-127, PMID: 15537252, реф., [он-лайн], [найдено 11.05.2006], найдено из базы данных PubMed. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2017204674A1 (en) * 2016-05-26 2017-11-30 Общество С Ограниченной Ответственностью Научно-Производственное Предприятие "Биочип" A biochip for multiplex analysis and a method of studying cells in the diagnosis of oncological diseases

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Seferovic et al. Experimental Zika virus infection in the pregnant common marmoset induces spontaneous fetal loss and neurodevelopmental abnormalities
López-Fernández et al. Dynamics of sperm DNA fragmentation in domestic animals: II. The stallion
Marina et al. Human immunodeficiency virus type 1–serodiscordant couples can bear healthy children after undergoing intrauterine insemination
Gomez-Lopez et al. The immunobiology of preterm labor and birth: intra-amniotic inflammation or breakdown of maternal–fetal homeostasis
Isumi et al. Fetal brain infection with human parvovirus B19
Düvel et al. Peripheral blood leukocytes of cows with subclinical endometritis show an altered cellular composition and gene expression
Palm et al. Influence of different semen extenders and seminal plasma on PMN migration and on expression of IL-1β, IL-6, TNF-α and COX-2 mRNA in the equine endometrium
Sheikh et al. Human immunodeficiency virus infection: in situ polymerase chain reaction localization in human placentas after in utero and in vitro infection
Venceslau et al. Adequate placental sampling for the diagnosis and characterization of placental infection by Zika virus
Jha et al. Chlamydia trachomatis heat shock proteins 60 and 10 induce apoptosis in endocervical epithelial cells
Entezami et al. SARS-CoV-2 and human reproduction: An open question
Al-Busadah et al. Serum biochemical profile and molecular detection of pathogens in semen of infertile male dromedary camels (Camelus dromedarius)
RU2334233C1 (en) Method for forecasting preterm labour in presence of urogenital infection
Tsuboi et al. Experimental infection of early pregnant cows with bovine viral diarrhea virus: Transmission of virus to the reproductive tract and conceptus
RU2292551C1 (en) Early stage diagnosis method for determining prenatal infection in newborns
Silver et al. Fetal outcome in murine Lyme disease
Li et al. Early pregnancy affects the expression of toll-like receptor pathway in ovine thymus
Moussa et al. In vitro and in vivo comparison of Ham’s F-10, Emcare holding solution and ViGro holding plus for the cooled storage of equine embryos
Ozkaraca et al. Determination of Coxiella burnetii in bovine foetuses using PCR and immunohistochemistry.
Gude et al. Magnesium regulates hypoxia-stimulated apoptosis in the human placenta
Check et al. Sperm with an abnormal hypo-osmotic swelling test–normal fertilization, normal embryo development, but implantation failure
Schöniger et al. Expression of indoleamine 2, 3-dioxygenase 1 as transcript and protein in the healthy and diseased equine endometrium
Washington et al. Keeping the Zika virus out of the assisted reproductive technology laboratory
Kosič et al. Fetal death from SARS-CoV-2 mediated acute placental failure
Torchinsky et al. Increased TNF-expression in cultured mouse embryos exposed to teratogenic concentrations of glucose

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20070927