RU2284356C1 - Method for preparing amino acids and lower peptides mixture - Google Patents

Method for preparing amino acids and lower peptides mixture Download PDF

Info

Publication number
RU2284356C1
RU2284356C1 RU2005107594/13A RU2005107594A RU2284356C1 RU 2284356 C1 RU2284356 C1 RU 2284356C1 RU 2005107594/13 A RU2005107594/13 A RU 2005107594/13A RU 2005107594 A RU2005107594 A RU 2005107594A RU 2284356 C1 RU2284356 C1 RU 2284356C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
amino acids
peptides
mixture
autolysate
sorption
Prior art date
Application number
RU2005107594/13A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Давид Исаакович Островский (RU)
Давид Исаакович Островский
занов Евгений Михайлович Р (RU)
Евгений Михайлович Рязанов
Валерий Дмитриевич Ноздрачев (RU)
Валерий Дмитриевич Ноздрачев
Original Assignee
Давид Исаакович Островский
Евгений Михайлович Рязанов
Валерий Дмитриевич Ноздрачев
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Давид Исаакович Островский, Евгений Михайлович Рязанов, Валерий Дмитриевич Ноздрачев filed Critical Давид Исаакович Островский
Priority to RU2005107594/13A priority Critical patent/RU2284356C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2284356C1 publication Critical patent/RU2284356C1/en

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnology, amino acids, peptides.
SUBSTANCE: invention relates to a method for preparing a mixture consisting of amino acids and lower peptides from yeast autolyzates. Method involves autolysis of yeast, separation of cellular debris by centrifugation and purification of autolyzate in ionites resins wherein gel sulfocation-exchange resin in hydrogen form comprising 12-16% of divinylbenzene as a cross-linking agent is used as ionite. Proposed method provides preparing highly purified mixture of amino acids with the low content of peptides.
EFFECT: improved preparing method.
2 tbl, 4 ex

Description

Изобретение относится к биотехнологии и касается способа получения смеси аминокислот и низших пептидов из дрожжевых автолизатов.The invention relates to biotechnology and relates to a method for producing a mixture of amino acids and lower peptides from yeast autolysates.

В современных технологических процессах дрожжи используют в качестве сырья для получения различных продуктов, биологически активных веществ, аминокислот, нуклеиновых компонентов, витаминов и т.д. К числу известных способов переработки дрожжевой биомассы относится автолиз, осуществляемый собственными гидролитическими ферментами дрожжей.In modern technological processes, yeast is used as a raw material for the production of various products, biologically active substances, amino acids, nucleic components, vitamins, etc. Known methods for processing yeast biomass include autolysis carried out by the yeast's own hydrolytic enzymes.

Известны способы получения смеси аминокислот и низших пептидов путем автолиза дрожжей с последующей очисткой целевого продукта на ионитах (например, патент США №2272982, патент Великобритании №952713, авт. свидетельства СССР №602543, 957835, 1369300, 1731806).Known methods for producing a mixture of amino acids and lower peptides by autolysis of yeast, followed by purification of the target product on ion exchangers (for example, US patent No. 2272982, UK patent No. 952713, ed. USSR certificate No. 602543, 957835, 1369300, 1731806).

В известных способах для извлечения, концентрирования и очистки аминокислотных смесей и низших пептидов из дрожжевых автолизатов используют сульфокатиониты и аниониты.In known methods for the extraction, concentration and purification of amino acid mixtures and lower peptides from yeast autolysates, sulfocationionites and anionites are used.

В известном способе по авторскому свидетельству №1731806 процесс выделения из дрожжевого автолизата смеси аминокислот и низших пептидов, аденина и тирозина строится исходя из расчетных режимов сорбции и десорбции этих продуктов на ионитах. Способ реализуется только в условиях точно воспроизводимого расчетного процесса с использованием 2-х ионитов: сульфокатионита КУ-2×8 и сильноосновного анионита типа АРА с получением целевого продукта, содержащего в аминокислотной смеси не менее 20-27% низших пептидов. Поскольку в условиях, реализуемых в известном изобретении, аминокислоты и пептиды не сорбируются анионитом АРА, наличие в целевом продукте большого количества пептидов обусловлено сорбционными свойствами сульфокатионита КУ-2×8.In the known method according to copyright certificate No. 1731806, the process of isolating from a yeast autolysate a mixture of amino acids and lower peptides, adenine and tyrosine is based on the calculated modes of sorption and desorption of these products on ion exchangers. The method is implemented only under the conditions of a precisely reproducible calculation process using 2 ion exchangers: sulfonic cation exchanger KU-2 × 8 and strongly basic anion exchange resin of the APA type to produce the target product containing at least 20-27% lower peptides in the amino acid mixture. Since, under the conditions realized in the known invention, amino acids and peptides are not adsorbed by ARA anion exchange resin, the presence of a large number of peptides in the target product is due to the sorption properties of KU-2 × 8 sulfocationite.

Наиболее близким к заявляемому способу является способ получения смесей амонокислот и низших пептидов из дрожжевого автолизата путем фильтрации автолизата через слабоосновный анионит ИА-1р с последующей сорбцией из фильтрата аминокислот и низших пептидов на сульфокатионите КУ-2×8, упариванием элюата и сушкой готового продукта (авт. свидетельство СССР №602543 - прототип заявляемого способа).Closest to the claimed method is a method for producing mixtures of amino acids and lower peptides from a yeast autolysate by filtering the autolysate through weakly basic anion exchange resin IA-1p, followed by sorption of the amino acids and lower peptides from the filtrate on KU-2 × 8 sulfocationite, evaporation of the eluate and drying of the finished product (aut USSR certificate No. 602543 - prototype of the proposed method).

Существенными недостатками известного способа являются:Significant disadvantages of this method are:

- высокое содержание в целевом продукте биологически активных пептидов, составляющих 24-30% от общего количества аминокислот, что обусловливает ограничение сферы использования продукта в качестве средства пищевого и фармакологического назначения, а также в виде аминокислотного компонента при создании микробиологических питательных сред и парфюмерных композиций;- the high content in the target product of biologically active peptides, constituting 24-30% of the total number of amino acids, which limits the scope of use of the product as a food and pharmacological purpose, as well as in the form of an amino acid component in the creation of microbiological nutrient media and perfume compositions;

- низкая объемная нагрузка автолизата V(авт) на объем сульфокатионита КУ-2×8 V(катионита) при максимальной объемной скорости сорбции V(авт/час) аминокислот и низших пептидов сульфокатионитом после окончания автолиза, отделения клеточных оболочек, составляющих 45-50% от общего объема автолизата, и очистки автолизата на анионите ИА-1р:- low volume load of autolysate V (aut) on the volume of sulfonic cation exchanger KU-2 × 8 V (cation exchanger) at the maximum volumetric rate of sorption of V (aut / hour) of amino acids and lower peptides by sulfocationion after autolysis, separation of cell membranes, comprising 45-50% from the total volume of the autolysate, and purification of the autolysate on the anion exchange resin IA-1r:

V(авт):V(катионита)=0,8-1,0:1;V (aut) : V (cation exchanger) = 0.8-1.0: 1;

V(авт/час):V(катионита)=0,3:1;V (auto / hour) : V (cation exchanger) = 0.3: 1;

- значительный расход дистиллированной воды на промывку ионита КУ-2×8 после сорбции аминокислот и пептидов:- a significant consumption of distilled water for washing the ion exchanger KU-2 × 8 after sorption of amino acids and peptides:

V(воды):V(катионита)=7,5-8,0:1,V (water) : V (cation exchanger) = 7.5-8.0: 1,

- сульфокатионит КУ-2×8 одновременно с сорбцией аминокислот и пептидов практически полностью поглощает оставшиеся в автолизате после фильтрации через анионит ИА-1р растворимые балластные вещества, ответственные за пигментацию автолизатов, и при проведении десорбции аминокислот и пептидов с ионита КУ-2×8 1-3% раствором аммиака сорбированные балластные и красящие вещества попадают в элюат, что препятствует получению качественного целевого продукта.- sulfonic cation exchanger KU-2 × 8 simultaneously with the sorption of amino acids and peptides almost completely absorbs the soluble ballast substances remaining in the autolysate after filtration through anionite IA-1p, which are responsible for the pigmentation of autolysates, and during desorption of amino acids and peptides from the ion exchanger KU-2 × 8 1 With a 3% solution of ammonia, sorbed ballast and coloring substances enter the eluate, which prevents the obtaining of a high-quality target product.

Целью настоящего изобретения является создание эффективного и экономичного способа получения из дрожжевого автолизата высокоочищенной смеси аминокислот с низким содержанием пептидов.An object of the present invention is to provide an efficient and economical method for producing a highly purified amino acid mixture with a low peptide content from a yeast autolysate.

Сущность предложенного способа получения смеси аминокислот и низших пептидов заключается в следующем.The essence of the proposed method for producing a mixture of amino acids and lower peptides is as follows.

Способ включает автолиз дрожжей, отделение клеточных оболочек центрифугированием и очистку автолизата на ионитах, при этом в качестве ионита используют гелевый сульфокатионит в водородной форме, содержащий в качестве сшивающего агента 12-16% дивинилбензола.The method includes autolysis of yeast, separation of cell membranes by centrifugation, and purification of the autolysate on ion exchangers, using gel sulfocationite in hydrogen form containing 12-16% divinylbenzene as a crosslinking agent.

По предлагаемому способу дрожжевой автолизат после отделения клеточных оболочек подкисляют до рН=2,0-3,0, пропускают через сульфокатионит в водородной форме, содержащий в качестве сшивающего агента 12-16% дивинилбензола (далее ДВБ), промывают сульфокатионит подкисленной водой с рН=2-3 и сорбированную аминокислотную смесь элюируют 2-3% раствором аммиака, а элюат известным способом фильтруют через анионит, упаривают и сушат с получением целевого продукта.According to the proposed method, after separation of the cell membranes, the yeast autolysate is acidified to pH = 2.0-3.0, passed through hydrogen sulfation in the form of hydrogen containing 12-16% divinylbenzene (hereinafter DVB) as a crosslinking agent, and the sulfated ion is washed with acidified water with pH = 2-3 and the sorbed amino acid mixture is eluted with a 2-3% ammonia solution, and the eluate is filtered through anion exchange resin in a known manner, evaporated and dried to obtain the desired product.

В основу предлагаемого способа по разделению аминокислот и низших пептидов, содержащихся в дрожжевом автолизате, заложены современные представления о кинетико-диффузионных особенностях сорбции органических ионов на гелевых ионитах различной "плотности" (или проницаемости).The basis of the proposed method for the separation of amino acids and lower peptides contained in the yeast autolysate, based on modern ideas about the kinetic-diffusion features of the sorption of organic ions on gel ion exchangers of various "density" (or permeability).

В предлагаемом изобретении использование слабо набухающих (К(наб)=1,1-1,3) "плотных" сульфокатионитов с 12-16% ДВБ, позволило практически полностью отделить индивидуальные (свободные) аминокислоты от низших пептидов в одноактном процессе сорбции из автолизата. В условиях динамического колоночного процесса на таких сульфокатионитах происходит преимущественная сорбция индивидуальных аминокислот до исчерпания полной обменной емкости ионита. При этом поглощение низших пептидов существенно затруднено из-за кинетико-диффузионных ограничений, обусловленных пониженной проницаемостью "плотной" матрицы сорбента для органических ионов большего размера - в нашем случае пептидов. В то же время, поскольку в многокомпонентном по составу автолизате физико-химические свойства низших пептидов, в частности некоторых три- и дипептидов, мало отличаются от свойств отдельных аминокислот, имеет место незначительная сорбция пептидов на ионитах с 12-16% ДВБ.In the present invention, the use of weakly swelling (K (nab) = 1.1-1.3) "dense" sulfocationionites with 12-16% DVB allowed us to almost completely separate individual (free) amino acids from lower peptides in a one-act sorption process from autolysate. Under the conditions of a dynamic column process on such sulfocationionites, predominant sorption of individual amino acids occurs until the full exchange capacity of the ion exchanger is exhausted. Moreover, the absorption of lower peptides is significantly hampered due to kinetic-diffusion limitations due to the reduced permeability of the “dense” sorbent matrix for larger organic ions — in our case, peptides. At the same time, since in the multicomponent composition of the autolysate, the physicochemical properties of lower peptides, in particular some tri- and dipeptides, differ little from the properties of individual amino acids, there is a slight sorption of peptides on ion exchangers with 12-16% DVB.

В отличие от предлагаемого способа в прототипе, как и в известном способе по авт. свидетельству 1731806, при использовании гелевого сульфокатионита КУ-2×8 с 8% ДВБ, имеющего существенно менее "плотную" матрицу и К(наб)=3,0, диффузия к сорбционным центрам катионита свободных аминокислот и низших пептидов, состоящих из 2-х, 3-х, 4-х или 5 аминокислот, проходит без видимых затруднений, и при десорбции эти пептиды вместе с индивидуальными аминокислотами попадают в целевой продукт, составляя 24-30% от общего количества аминокислотной смеси.In contrast to the proposed method in the prototype, as in the known method according to ed. certificate 1731806, when using KU-2 × 8 gel sulfocationite with 8% DVB, which has a significantly less “dense” matrix and K (nab) = 3.0, diffusion to the sorption centers of cation exchanger of free amino acids and lower peptides consisting of 2 , 3, 4 or 5 amino acids, passes without apparent difficulties, and upon desorption, these peptides together with individual amino acids enter the target product, accounting for 24-30% of the total amount of amino acid mixture.

В этом принципиальное отличие предлагаемого способа от известного.This is the fundamental difference between the proposed method from the known.

Существенными преимуществами предлагаемого способа по сравнению с известными являются:Significant advantages of the proposed method in comparison with the known are:

- конечный продукт содержит не более 5-9% низших пептидов против 24-30% в известном способе;- the final product contains no more than 5-9% of the lower peptides against 24-30% in the known method;

- содержание свободных аминокислот в конечном продукте составляет не менее 90% по сравнению с 65-75% в известном способе;- the content of free amino acids in the final product is at least 90% compared with 65-75% in the known method;

- расширение сферы использования целевого продукта вследствие низкого содержания биологически активных пептидов в продукте;- expanding the scope of use of the target product due to the low content of biologically active peptides in the product;

- полученная смесь индивидуальных аминокислот и низших пептидов является высокоочищенным препаратом, так как использование сильно "сшитых" сульфокатионитов с 12-16% ДВБ существенно препятствует сорбции балластных веществ вследствие стерических и кинетико-диффузионных ограничений, в то время как сульфокатионит КУ-2х8 одновременно с сорбцией аминокислот практически полностью поглощает из автолизата растворимые балластные вещества, которые при десорбции попадают в готовый продукт;- the resulting mixture of individual amino acids and lower peptides is a highly purified preparation, since the use of strongly "crosslinked" sulfocationionites with 12-16% DVB significantly inhibits the sorption of ballast substances due to steric and kinetic diffusion restrictions, while sulfonic cationite KU-2x8 simultaneously with sorption amino acids almost completely absorbs soluble ballast substances from the autolysate, which during desorption fall into the finished product;

- упрощение проведения технологического процесса, так как объемная нагрузка автолизата V(авт) на объем сульфокатионита V(катионита) с 12-16% ДВБ и объемная скорость сорбции V(авт/час) смеси аминокислот и низших пептидов сульфокатионитом непосредственно из автолизата после отделения клеточных оболочек по сравнению с сульфокатионитом КУ-2х8 возрастают соответственно в 2,3-2,6 и в 3 раза;- simplification of the process, since the volume load of the autolysate V (aut) on the volume of sulfocationite V (cationite) with 12-16% DVB and the volumetric rate of sorption V (auth / hour) of a mixture of amino acids and lower peptides by sulfocationite directly from the autolysate after separation of the cell shells compared with sulfonic cation exchanger KU-2x8 increase 2.3-2.6 and 3 times, respectively;

V(авт):V(катионита)=2,3-2,6:1;V (aut) : V (cation exchange resin) = 2.3-2.6: 1;

V(авт/час):V(катионита)=1,0-1,2:1;V (auto / hour) : V (cation exchange resin) = 1.0-1.2: 1;

- уменьшение в 12-15 раз расхода дистиллированной воды на промывку сульфокатионита с 12-16% ДВБ по сравнению с промывкой ионита КУ-2×8 после сорбции аминокислот и пептидов в известном способе:- a decrease of 12-15 times the flow rate of distilled water for washing sulfocationite with 12-16% DVB compared with washing the ion exchanger KU-2 × 8 after sorption of amino acids and peptides in the known method:

V(воды):V(катионита)=0,5-0,7:1.V (water) : V (cation exchanger) = 0.5-0.7: 1.

Пример.Example.

В простерилизованный реактор заливают 400 мл дистиллированной воды и загружают 2,0 кг свежих дрожжей влажностью 75%. Смесь нагревают до 48°С и при работающей мешалке выдерживают 30 часов. Полученную суспензию автолизата центрифугируют и после отделения нерастворимых клеточных оболочек супернатант подкисляют 5N раствором серной кислоты до рН=2,9 и подают на колонку (5×25 см) с сульфокатионитом в водородной форме с 12-16% ДВБ для сорбции аминокислот и пептидов. Оптическая плотность (ОП) "проскока" после колонки при 420 нм составляет 79-92% от оптической плотности исходного автолизата. После окончания сорбции ионит промывают 250-350 мл 0,002 N раствором серной кислоты и смесь аминокислот и низших пептидов десорбируют 2,5%-ным раствором аммиака. Далее известным способом элюат фильтруют через ионит, упаривают и сушат.400 ml of distilled water are poured into a sterilized reactor and 2.0 kg of fresh yeast with a moisture content of 75% is charged. The mixture is heated to 48 ° C and with a working stirrer stand for 30 hours. The resulting autolysate suspension is centrifuged and, after separation of insoluble cell membranes, the supernatant is acidified with a 5N sulfuric acid solution to pH = 2.9 and fed to a column (5 × 25 cm) with sulfocathionite in hydrogen form with 12-16% DVB for sorption of amino acids and peptides. The optical density (OD) of the “slip” after the column at 420 nm is 79-92% of the optical density of the original autolysate. After sorption is completed, the ion exchanger is washed with 250-350 ml of a 0.002 N solution of sulfuric acid, and a mixture of amino acids and lower peptides is stripped with a 2.5% ammonia solution. Further, in a known manner, the eluate is filtered through an ion exchanger, evaporated and dried.

Аминокислотный состав целевого продукта и рабочие параметры осуществления предлагаемого изобретения представлены в таблицах 1 и 2 в примерах №№1, 2, 3. Для сравнения в примере №4 приведены соответствующие данные при использовании ионита КУ-2×8 для сорбции смеси аминокислот и пептидов из автолизата.The amino acid composition of the target product and the operating parameters of the invention are presented in tables 1 and 2 in examples No. 1, 2, 3. For comparison, example No. 4 shows the corresponding data when using KU-2 × 8 ion exchanger for sorption of a mixture of amino acids and peptides from autolysate.

Таблица 1Table 1 No. Пример №1Example No. 1 Пример №2Example No. 2 Пример №3Example No. 3 Пример №4Example No. 4 ионит с 12% ДВЕion exchange with 12% TWO ионит с 13% ДВБion exchange with 13% DVB ионит с 16% ДВБion exchange with 16% DVB ИОНИТ КУ-2×8IONITE KU-2 × 8 Аминокислота (АК)Amino Acid (AK) целевой продуктtarget product целевой продуктtarget product целевой продуктtarget product целевой продуктtarget product гидролизов.*hydrolysis. * не гидролизов.**no hydrolysis. ** гидролизов.*hydrolysis. * не гидролизов.**no hydrolysis. ** гидролизов.*hydrolysis. * не гидролизов.**no hydrolysis. ** гидролизов.*hydrolysis. * не гидролизов.**no hydrolysis. ** мг/гmg / g мг/гmg / g мг/гmg / g мг/гmg / g 1one АргининArginine 39,039.0 34,634.6 37,437,4 33,333.3 31,431,4 30,130.1 12,212,2 6,46.4 22 ЛизинLysine 98,198.1 89,289.2 100,2100,2 91,691.6 75,875.8 74,374.3 52,652.6 30.230.2 33 ТирозинTyrosine 38,638.6 34,734.7 50,550,5 50,050,0 15,215,2 14,814.8 27,527.5 19,619.6 4four ФенилаланинPhenylalanine 33,233,2 31,831.8 25,825.8 24,624.6 35,435,4 34,334.3 39,239.2 29,629.6 55 ГистидинHistidine 21,621.6 20,320.3 19,419,4 16,316.3 20,620.6 20,220,2 14,014.0 5,25.2 66 ЛейцинLeucine 81,881.8 71,471,4 93,293.2 83,283,2 64,264,2 61,261.2 69,369.3 58,958.9 77 ИзолейцинIsoleucine 52,352.3 50,950.9 58,558.5 58,258.2 50,050,0 45,545.5 45,945.9 33,533.5 88 МетионинMethionine 17,117.1 16,316.3 11,211.2 11,011.0 17,217,2 16,916.9 15,515,5 13,613.6 99 ВалинValine 53,353.3 51,751.7 52,252,2 51,951.9 51.551.5 51,951.9 58,858.8 42,342.3 1010 ПролинProline 29,229.2 27,227,2 30,030,0 29,229.2 25,725.7 25,325.3 42,842.8 21,421,4 11eleven ТреонинThreonine 108,6108.6 98,598.5 133,0133.0 132,6132.6 77,177.1 76,176.1 35,535.5 27,427.4 1212 СеринSerine 33,733.7 30,930.9 35,335.3 34,134.1 39,739.7 32,032,0 33,633.6 35,935.9 1313 АланинAlanine 88,288.2 86,486.4 107,4107.4 102,6102.6 78,478,4 77,577.5 73,473,4 63,563.5 14fourteen ГлицинGlycine 39,339.3 35,735.7 41.741.7 41,141.1 36,436,4 37,137.1 36,836.8 14,114.1 15fifteen ЦистеинCysteine 5,65,6 4,24.2 5,35.3 5,35.3 3,93.9 2,92.9 27,927.9 14,914.9 1616 Глютаминовая кислотаGlutamic acid 67,267.2 61,661.6 65,665.6 60,560.5 60,960.9 52,552,5 76,076.0 56,156.1 1717 Аспарагиновая кислотаAspartic acid 50,650.6 37,637.6 49,449.4 32,232,2 45,845.8 42,842.8 63,663.6 61,261.2 18eighteen ТриптофанTryptophan 5,35.3 2,92.9 0.10.1 0,10.1 5,45,4 4,94.9 00 00 Всего в продуктеTotal in product 862,7862.7 785,9785.9 916,2916.2 857,8857.8 734,2734.2 700,1700,1 724,6724.6 533,8533.8 Содержание в смеси АК и низших пептидов:The content in the mixture of AK and lower peptides: - свободные АК- free AK 91,191.1 93,693.6 95,395.3 73,773.7 - низшие пептидыlower peptides 8,98.9 6,46.4 4,74.7 26,326.3 * - полное содержание аминокислот в гидролизованном продукте
** - содержание индивидуальных (свободных) аминокислот в продукте без гидролиза.
* - total amino acid content in the hydrolyzed product
** - the content of individual (free) amino acids in the product without hydrolysis.

Таблица 2table 2 ПараметрыOptions Пример №1Example No. 1 Пример №2Example No. 2 Пример №3Example No. 3 Пример №4Example No. 4 Ионит с 12% ДВБIonite with 12% DVB Ионит с 13% ДВБIonite with 13% DVB Ионит с 16% ДВБIonite with 16% DVB Ионит КУ-2×8Ionite KU-2 × 8 Объемная нагрузка, л/лVolumetric load, l / l 2,6:12.6: 1 2,5:12.5: 1 2.3:12.3: 1 0,9:10.9: 1 V(автол):V(катионита) V (autol) : V (cation exchanger) Объемная скорость сорбции, л/час:лVolumetric sorption rate, l / h: l 1,2:11.2: 1 1,1:11.1: 1 1,0: 1,01.0: 1.0 0,3:10.3: 1 V(автол):V(катионита) V (autol) : V (cation exchanger) ОП* "проскока" после сорбции по отношению к ОП автолизата, 420 нм, %OP * "slip" after sorption with respect to the OD of the autolysate, 420 nm,% 7979 8484 9292 1919 Расход воды на промыв. ионита после сорбции, л/лWater consumption for flushing. ion exchange resin after sorption, l / l 0,7:10.7: 1 0,6: 10.6: 1 0,5:10.5: 1 7,5:17.5: 1 V(воды):V(катионита) V (water) : V (cation exchanger)

Claims (1)

Способ получения смеси аминокислот и низших пептидов, включающий автолиз дрожжей, отделение клеточных оболочек центрифугированием и очистку автолизата на ионитах, отличающийся тем, что в качестве ионита используют гелевый сульфокатионит в водородной форме, содержащий в качестве сшивающего агента 12-16% дивинилбензола.A method of producing a mixture of amino acids and lower peptides, including yeast autolysis, centrifugal separation of cell membranes, and ion-exchange autolysate purification, characterized in that gel sulfonation in hydrogen form containing 12-16% divinylbenzene as a crosslinking agent is used.
RU2005107594/13A 2005-03-14 2005-03-14 Method for preparing amino acids and lower peptides mixture RU2284356C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2005107594/13A RU2284356C1 (en) 2005-03-14 2005-03-14 Method for preparing amino acids and lower peptides mixture

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2005107594/13A RU2284356C1 (en) 2005-03-14 2005-03-14 Method for preparing amino acids and lower peptides mixture

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2284356C1 true RU2284356C1 (en) 2006-09-27

Family

ID=37436504

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2005107594/13A RU2284356C1 (en) 2005-03-14 2005-03-14 Method for preparing amino acids and lower peptides mixture

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2284356C1 (en)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2544959C1 (en) * 2014-04-04 2015-03-20 Александр Владимирович Бубнов Method of production of peptides
RU2720689C1 (en) * 2019-06-04 2020-05-12 Евгений Михайлович Рязанов Beverage production method

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2544959C1 (en) * 2014-04-04 2015-03-20 Александр Владимирович Бубнов Method of production of peptides
RU2720689C1 (en) * 2019-06-04 2020-05-12 Евгений Михайлович Рязанов Beverage production method

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CN105017412A (en) Method for separating high-purity bovine serum albumin from bovine serum
CN112646003B (en) Sipunculus nudus ACE inhibitory peptide and preparation method and application thereof
CN103626847A (en) Wheat germ protein source zinc phytochelatin and preparation method thereof
CN111072756B (en) Tetrodotoxin ACE inhibitory peptide and preparation method thereof
CN111004309B (en) ACE inhibitory peptide prepared from Takifugu flavidus fish skin and preparation method thereof
CN101603038A (en) A kind of preparation method of N,O-Diacetylmuramidase
CN103864922A (en) Affinity chromatography and purifying method for ulinastatin
CN111100186A (en) Puffer fish polypeptide with ACE inhibitory activity and preparation method thereof
CN1222834A (en) Process for producing yeast extract
RU2284356C1 (en) Method for preparing amino acids and lower peptides mixture
CN116162677A (en) Preparation method of high-purity fish skin collagen tripeptide
CN104066747A (en) Process of purification of teicoplanin
CN104497133A (en) Method for purifying ulinastatin by using adsorption column chromatography and pharmaceutical composition containing ulinastatin
CN112111546B (en) Industrial preparation method of phosvitin phosphopeptide and vitellin polypeptide
CN104774827A (en) Method for preparing alginate lyase from abalone internal organs
CN117165646A (en) Collagen tripeptide composition and purification method thereof
CN114990181B (en) Anti-aging soybean peptide and preparation method and application thereof
CN108441535A (en) The production method of three enzymes, one ferment silkworm peptide
CN110699410B (en) Preparation method of euphausia superba small-molecule peptide
WO2008004904A1 (en) Method for producing a mixture of amino acids and lower peptides
CN108976290B (en) Preparation method of rambutan antioxidant peptide
CN113214160A (en) Method for efficiently purifying histidine bulk drug without ammonia nitrogen discharge
CN110117633B (en) Preparation method of sunflower antioxidant active peptide
CN113528605B (en) Method for preparing urechis unicinctus viscera antioxidant peptide by ultrasonic-assisted enzymolysis
CN108504709A (en) A kind of maize oligopeptide and its industrialized preparing process

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20190315