RU2280689C2 - Method for retention of viable blood leukocytes - Google Patents
Method for retention of viable blood leukocytes Download PDFInfo
- Publication number
- RU2280689C2 RU2280689C2 RU2004113929/13A RU2004113929A RU2280689C2 RU 2280689 C2 RU2280689 C2 RU 2280689C2 RU 2004113929/13 A RU2004113929/13 A RU 2004113929/13A RU 2004113929 A RU2004113929 A RU 2004113929A RU 2280689 C2 RU2280689 C2 RU 2280689C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- leukocytes
- concentrate
- viable
- hanks
- cells
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medical Preparation Storing Or Oral Administration Devices (AREA)
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к биологии, а именно к разделу иммунологии, и может быть использовано для хемилюминесцентного анализа в медицине и ветеринарии.The invention relates to biology, namely to the section of immunology, and can be used for chemiluminescent analysis in medicine and veterinary medicine.
Известен «Стабилизирующий состав для получения лиофилизированных препаратов на основе культурального вируса венесуэльского энцефаломиелита лошадей», авторское свидетельство №1761800 А1, С 12 N 7/00, А 61 К 39/125 от 15.09.92. Бюл. №34. Для получения сухих вирусных препаратов используют стабилизирующий состав, который содержит (г/л культуральной вирусной суспензии): мальтоза 28-60; пептон 44-100; желатин 10-20; бычий сывороточный альбумин 11-25, тиосульфат натрия 1,25-3,0.The well-known "Stabilizing composition for producing lyophilized preparations based on the culture virus of Venezuelan encephalomyelitis horses", copyright certificate No. 1761800 A1, C 12 N 7/00, A 61 K 39/125 from 09/15/92. Bull. Number 34. To obtain dry viral preparations, a stabilizing composition is used that contains (g / l of the culture virus suspension): maltose 28-60; peptone 44-100; gelatin 10-20; bovine serum albumin 11-25, sodium thiosulfate 1.25-3.0.
Однако предложенный стабилизирующий состав можно использовать только после лиофилизации вирусного материала, что требует дорогостоящего оборудования.However, the proposed stabilizing composition can be used only after lyophilization of the viral material, which requires expensive equipment.
Из описанных в литературе наиболее близким к изобретению является «Способ сохранения иммунокомпетентных клеток путем культивирования их в питательной среде», авторское свидетельство №1073281, С 12 N 5/00, G 01 N 54/57 от 15.02.84. Бюл. №6.Of those described in the literature, the closest to the invention is the "Method of preservation of immunocompetent cells by culturing them in a nutrient medium", copyright certificate No. 1073281, C 12 N 5/00, G 01 N 54/57 from 02.15.84. Bull. No. 6.
Способ осуществляют путем выделения иммунокомпетентных клеток или гомогената тканей органов наслаиванием на стандартный градиент плотности фиколл-верографина, выделенные клетки трижды отмывают от фиколла и верографина средой 199. Затем полученные лимфоциты помещают в стеклянные емкости с предварительно охлажденной до 5-15°С питательной средой 199, дополнительно содержащей желеобразующие компоненты, фиксирующие при понижении температуры иммунокомпетентные клетки во взвешенном состоянии, а также инактивированную сыворотку I группы крови человека, 1%-ный раствор 1-глутамина и 2% раствор L-аспарагина. Емкости с культуральной средой и клетками ставят в бытовой холодильник и время от времени периодически встряхивают до момента перехода культуральной среды из жидкого состояния в желеобразное с последующим визуальным контролем равномерного распределения клеток. The method is carried out by isolating immunocompetent cells or organ tissue homogenate by layering ficoll-verographin on a standard density gradient, the isolated cells are washed three times from ficoll and verographin with 199 medium. Then, the obtained lymphocytes are placed in glass containers with nutrient medium 199 previously cooled to 5-15 ° C. additionally containing jelly-forming components, fixing immunocompetent cells in suspension, as well as inactivated serum I group cro and man a 1% solution of 1-glutamine, and 2% solution of L-asparagine. The containers with the culture medium and cells are placed in a household refrigerator and periodically shaken from time to time until the culture medium transitions from a liquid to a jelly-like state with subsequent visual control of the uniform distribution of cells.
Однако предложенный метод позволяет выделить только один тип «белых» клеток - лимфоциты, осуществлять визуальный (субъективный) контроль равномерного распределения клеток, кроме того, метод дорогостоящий.However, the proposed method allows you to select only one type of "white" cells - lymphocytes, to carry out visual (subjective) control of the uniform distribution of cells, in addition, the method is expensive.
Важную роль при бактериальных инфекциях во взаимодействии иммунокомпетентных клеток играют фагоциты (нейтрофилы и др.), которые перерабатывают антиген (микроб, чужеродная клетка), переводя его в более иммуногенную форму и участвуя тем самым в специфической сенсибилизации соответствующих лимфоидных элементов гуморальной и клеточной систем (Я.Е.Коляков, 1986).An important role in bacterial infections in the interaction of immunocompetent cells is played by phagocytes (neutrophils, etc.) that process the antigen (microbe, foreign cell), translating it into a more immunogenic form and thereby participating in the specific sensitization of the corresponding lymphoid elements of the humoral and cellular systems (I .E. Kolyakov, 1986).
Задачей изобретения является повышение срока сохранения жизнеспособных лейкоцитов крови и предотвращения их склеивания при проведении хемилюминесцентного анализа.The objective of the invention is to increase the shelf life of viable blood leukocytes and prevent their adhesion during chemiluminescent analysis.
Способ осуществляют следующим образом. Предварительно производят забор крови с трилоном Б в пробирки, обработанные 3% раствором полиметилсилоксановой жидкости в хлороформе. Разрушение эритроцитов осуществляют путем гипотонического лизиса. Центрифугируют при 1200 об/мин в течение 15 мин. Дополнительно лейкоциты отмывают 0,02% раствором натриевой соли этилендиаминтетрауксусной кислоты (трилон Б). Центрифугируют при вышеуказанном режиме, надосадочную жидкость сливают. Осадок суспензии клеток ресуспендируют в стабилизирующем растворе следующего состава: концентрат Хэнкса без фенолового красного в соотношении с водой 1:9.The method is as follows. Preliminary blood is taken with Trilon B in test tubes treated with a 3% solution of polymethylsiloxane liquid in chloroform. The destruction of red blood cells is carried out by hypotonic lysis. Centrifuged at 1200 rpm for 15 minutes Additionally, leukocytes are washed with a 0.02% solution of sodium salt of ethylenediaminetetraacetic acid (Trilon B). It is centrifuged under the above conditions, the supernatant is drained. The cell suspension pellet is resuspended in a stabilizing solution of the following composition: Hanks concentrate without phenol red in a ratio of 1: 9 with water.
Коцентрат Хэнкса без фенолового красного, используемый для исследований, выпускается промышленным способом Предприятием по производству бактерийных препаратов Свердловского НИИ вирусных инфекций, состоит из концентрированного раствора А, содержащего хлорид натрия, хлорид калия, сульфат магния, хлорид кальция, хлороформ для консервации, бидистиллированную воду; концентрированного раствора Б, содержащем двузамещенный фосфорнокислый натрий, однозамещенный фосфорнокислый калий, глюкозу, бидистиллированную воду; раствора В, содержащего карбонат натрия.Hanks concentrate without phenol red, used for research, is industrially produced by the Sverdlovsk Research Institute of Virus Infections bacterial production enterprise, consists of concentrated solution A containing sodium chloride, potassium chloride, magnesium sulfate, calcium chloride, chloroform for preservation, bidistilled water; concentrated solution B containing disubstituted sodium phosphate, monosubstituted potassium phosphate, glucose, bidistilled water; solution B containing sodium carbonate.
При перемешивании на магнитной мешалке к 100 мл концентрата Хэнкса без фенолового красного в соотношении с водой 1:9 добавляют 10-15 мг глюкозы до полного растворения, затем раствор подогревают до 50°С и добавляют 10-15 мг бычьего сывороточного альбумина лиофилизированного до получения однородного коллоидного раствора. Полученный раствор фильтруют, фасуют, хранят в морозильной камере при -20°С до 1 мес.While stirring on a magnetic stirrer, to 100 ml of Hanks concentrate without phenol red in a ratio of 1: 9 water add 10-15 mg of glucose until completely dissolved, then the solution is heated to 50 ° C and 10-15 mg of bovine serum albumin lyophilized is added until homogeneous colloidal solution. The resulting solution is filtered, packaged, stored in a freezer at -20 ° C for up to 1 month.
Стандартный концентрат Хэнкса без фенолового красного в соотношении с водой 1:9 в качестве буфера обеспечивает благоприятную среду для лейкоцитов, обладает способностью поддерживать рН (водородный показатель) и изотоничность на одном уровне. Предлагаем использовать концентрат Хэнкса без фенолового красного, т.к. фенольные соединения гасят хемилюминесцентное свечение (Nelson et al., 1977). A standard Hanks concentrate without phenol red in a 1: 9 ratio with water as a buffer provides a favorable environment for white blood cells, has the ability to maintain pH (pH) and isotonicity at the same level. We suggest using Hanks concentrate without phenol red, as phenolic compounds quench chemiluminescence (Nelson et al., 1977).
Дополнительное отмывание лейкоцитов стандартным раствором трилона Б, который представляет 0,02% раствор натриевой соли этилендиаминотетрауксусной кислоты в бидистиллированной воде, обеспечивает получение однородной взвеси клеток, т.к. в основе действия этого стандартного раствора лежит способность связывать комплексы, содержащие кальций. В результате связывания ионов кальция и магния межклеточные связи ослабевают и тогда с помощью слабого механического воздействия можно получить однородную взвесь клеток (З.Лярски, 1980).Additional leukocyte washing with a standard solution of Trilon B, which is a 0.02% solution of sodium salt of ethylenediaminetetraacetic acid in bidistilled water, provides a homogeneous suspension of cells, because the basis of the action of this standard solution is the ability to bind complexes containing calcium. As a result of the binding of calcium and magnesium ions, the intercellular bonds weaken and then, using a weak mechanical effect, a homogeneous suspension of cells can be obtained (Z. Lyarski, 1980).
Силикон, или кремнийорганические соединения, характеризуется низкой температурой застывания, гидрофобностью, химической инертностью, высокой термической и термоокислительной стабильностью, относительно малым измененением вязкости с изменением температуры, хорошими диэлектрическими свойствами, что предотвращает прилипание форменных элементов крови к стенкам пробирки, этим самым увеличивает выход лейкоцитов.Silicone, or organosilicon compounds, is characterized by a low pour point, hydrophobicity, chemical inertness, high thermal and thermo-oxidative stability, a relatively small change in viscosity with temperature, good dielectric properties, which prevents the adhesion of blood cells to the walls of the tube, thereby increasing the output of leukocytes.
Альбумин - поддерживает коллоидно-осмотическое (онкотическое) давление, а также рН крови. Комплексы альбуминов легко диссоциируют при изменении рН, ионной силы или при наличии в тканях какого-либо компонента, образуют более прочные связи с ингредиентами комплекса (БМЭ, т.1. С.906).Albumin - supports colloid osmotic (oncotic) pressure, as well as blood pH. Complexes of albumin easily dissociate with a change in pH, ionic strength, or in the presence of any component in the tissues, form stronger bonds with the ingredients of the complex (BME, v. 1. S.906).
В концентрат Хэнкса без фенолового красного в соотношении с водой 1:9 добавляют альбумин, перемешивают, для растворения альбумина смесь подогревают до 50°С, получая однородный коллоидный раствор. Повышение температуры нарушает третичную структуру альбумина, определяющую его специфичность (П.Зенгбуш, 1982).Albumin is added to the Hanks concentrate without phenol red in a 1: 9 ratio with water, mixed; to dissolve albumin, the mixture is heated to 50 ° C, obtaining a homogeneous colloidal solution. An increase in temperature violates the tertiary structure of albumin, which determines its specificity (P. Zengbush, 1982).
Глюкоза - создает осмотическое давление, предохраняет выделенные микроструктуры от разрушения (Л.М.Модель, 1962). Glucose - creates osmotic pressure, protects the allocated microstructures from destruction (L.M. Model, 1962).
Пример 1. Рабочий раствор готовят из стандартного 10-кратного концентрата Хэнкса без фенолового красного в качестве буферного раствора, который имеет рН 7,4-7,6. Состав Хэнкса составлен таким образом, что он уравновешивается воздухом, а не СО2 (В.Лярски, 1980). Ниже приводим таблицу подбора разведений концентрата Хэнкса и дистиллированной воды.Example 1. The working solution is prepared from a standard 10-fold Hanks concentrate without phenol red as a buffer solution, which has a pH of 7.4-7.6. The composition of Hanks is composed in such a way that it is balanced by air, and not by CO 2 (V. Lyarski, 1980). Below is a table of selection of dilutions of Hanks concentrate and distilled water.
Сохранение жизнеспособных лейкоцитов при различных соотношениях концентрата Хэнкса и водыTable 1
Preservation of viable white blood cells at various ratios of Hanks concentrate and water
Из таблицы 1 видно, что разведение 1 ч. концентрата Хэнкса + 9 ч. дистиллированной воды обеспечивает наибольшее сохранение жизнеспособных лейкоцитов.From table 1 it can be seen that a dilution of 1 part of Hanks concentrate + 9 parts of distilled water provides the greatest preservation of viable white blood cells.
Пример 2. Приводим сравнительную оценку сохранения жизнеспособных лейкоцитов в жидких питательных средах, используемых для стабилизирующих растворов.Example 2. We give a comparative assessment of the preservation of viable leukocytes in liquid nutrient media used for stabilizing solutions.
Из таблицы 2 видно, что обе среды имеют большой процент сохранения жизнеспособных лейкоцитов, однако среда 199 содержит фенол, который гасит хемилюминесцентное свечение, поэтому для проведения хемилюминесцентного анализа предлагаем концентрат Хэнкса без фенолового красного в соотношении с водой 1:9.Table 2 shows that both media have a large percentage of viable leukocyte retention, however, medium 199 contains phenol, which dampens the chemiluminescent glow, therefore, for chemiluminescent analysis, we offer Hanks concentrate without phenol red in a ratio of 1: 9 with water.
Пример 3. Приводим сравнительную оценку сохранности жизнеспособных лейкоцитов при добавлении различных доз глюкозы и альбумина в стабилизирующий растворExample 3. We give a comparative assessment of the safety of viable leukocytes when adding various doses of glucose and albumin in a stabilizing solution
Сохранение жизнеспособных лейкоцитов в зависимости от дозы глюкозы и альбуминаTable 3
Preservation of viable leukocytes depending on the dose of glucose and albumin
1-5 мг альбумина1-5 mg glucose
1-5 mg albumin
10-15 мг альбумина10-15 mg glucose
10-15 mg albumin
Из таблицы 3 видно, что добавление глюкозы и альбумина сывороточного в дозе 10-15 мг обеспечивает наибольший выход жизнеспособных лейкоцитов.From table 3 it is seen that the addition of glucose and serum albumin at a dose of 10-15 mg provides the highest yield of viable leukocytes.
В камере Горяева 1% трипановым синим определяют жизнеспособность лейкоцитов, при этом живых клеток должно быть не менее 90-95% в концентрации 2×106 кл/мл.In the Goryaev’s chamber, leukocyte viability is determined by 1% trypan blue, while living cells should be at least 90-95% at a concentration of 2 × 10 6 cells / ml.
Предлагаемый способ позволяет сохранить постоянство параметров клетки: химический состав среды, температуру, кислотность, осмотическое давление. Благодаря проницаемости мембран для воды концентрация растворенных веществ внутри и снаружи клетки не приводит к возникновению градиента гидростатического давления на мембране: за счет изменения объема клетки он сохраняется равным нулю. В то же время биомембраны обладают высокой стереоспецифичностью: через них проникают только Д-изомеры Сахаров и L-аминокислоты (Я.Кагава, 1985).The proposed method allows to maintain the constancy of cell parameters: chemical composition of the medium, temperature, acidity, osmotic pressure. Due to the permeability of membranes for water, the concentration of dissolved substances inside and outside the cell does not lead to a gradient of hydrostatic pressure on the membrane: due to changes in the volume of the cell, it remains equal to zero. At the same time, biomembranes have high stereospecificity: only D-isomers of Sugars and L-amino acids penetrate through them (Y. Kagawa, 1985).
Таким образом, вся совокупность существенных признаков повышает срок сохранения жизнеспособных лейкоцитов (90-95%), что на 20-25% выше по сравнению с известными способами при проведения хемилюминесцентного анализа.Thus, the entire set of essential features increases the shelf life of viable leukocytes (90-95%), which is 20-25% higher compared to known methods for chemiluminescent analysis.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2004113929/13A RU2280689C2 (en) | 2004-05-05 | 2004-05-05 | Method for retention of viable blood leukocytes |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2004113929/13A RU2280689C2 (en) | 2004-05-05 | 2004-05-05 | Method for retention of viable blood leukocytes |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2004113929A RU2004113929A (en) | 2005-10-10 |
RU2280689C2 true RU2280689C2 (en) | 2006-07-27 |
Family
ID=35851059
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2004113929/13A RU2280689C2 (en) | 2004-05-05 | 2004-05-05 | Method for retention of viable blood leukocytes |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2280689C2 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2456595C2 (en) * | 2010-10-04 | 2012-07-20 | Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт бруцеллеза и туберкулеза животных Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ ВНИИБТЖ Россельхозакадемии) | Method for keeping viable blood cells for purposes of chemoluminescent analysis |
-
2004
- 2004-05-05 RU RU2004113929/13A patent/RU2280689C2/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
НОВИКОВ Д.К. с соавт. Клеточные методы иммунодиагностики, Минск, «Беларусь», 1979, стр.20-34. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2456595C2 (en) * | 2010-10-04 | 2012-07-20 | Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт бруцеллеза и туберкулеза животных Российской академии сельскохозяйственных наук (ГНУ ВНИИБТЖ Россельхозакадемии) | Method for keeping viable blood cells for purposes of chemoluminescent analysis |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2004113929A (en) | 2005-10-10 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Anderson et al. | In vitro endothelialization of small-caliber vascular grafts | |
CN101466360A (en) | Multi-membrane immunoisolation system for cellular transplant | |
RU2433170C1 (en) | Nutrient liquid medium for culturing plague microbe of vaccine strain eb | |
RU2280689C2 (en) | Method for retention of viable blood leukocytes | |
CN107099504A (en) | A kind of candidate stem cell culture medium | |
NO320334B1 (en) | Material mixture of solid agarose-coated agarose-containing or agarose-collagen bead-containing cells producing a diffusible biological product, applications thereof, methods of preparation thereof, conditioned medium prepared by the material mixture, and methods for determining whether a material mixture is useful in suppressing proliferation of cancer cells. | |
RU2455014C1 (en) | Method for producing lyophilised preparation of laky blood | |
Ehrhart et al. | A comparative study of freezing single cells and spheroids: towards a new model system for optimizing freezing protocols for cryobanking of human tumours | |
CN108641997A (en) | A kind of porous PLGA microcarriers and its preparation method and application | |
Fukuda et al. | Mass preparation of primary porcine hepatocytes and the design of a hybrid artificial liver module using spheroid culture for a clinical trial | |
EP3863649A1 (en) | Oxygenation media for ex-vivo preservation of organs and tissues | |
White | Giant electron-dense chains, clusters and granules in megakaryocytes and platelets with normal dense bodies: an inherited thrombocytopenic disorder | |
CS216173B2 (en) | Method of making the new mononuclear mycelium coriolus versicolor | |
RU2232395C2 (en) | Method for isolating blood leukocytes for chemiluminescent analysis | |
US9988601B2 (en) | Method for retrieval of stem cells from human and animal blood using an oxygen-ozone mixture | |
US11760991B2 (en) | Multi-functional oxygenating microparticle loaded cell aggregates | |
RU2270856C2 (en) | Nutrient medium for submerged culturing plague microorganism of vaccine antibiotic-resistant strain eb p2 | |
Zhou et al. | Loading trehalose into red blood cells by improved hypotonic method | |
CN113046394B (en) | Preparation process of tectorial membrane yeast fermentation filtrate | |
CN106421925A (en) | Preparation method of pancreas islet culture scaffold based on glycosaminoglycan bionic extracellular matrix hydrogel | |
RU2160992C1 (en) | Dry biopreparation and method of its preparing | |
SU1147316A1 (en) | Method of preserving malaria parasites | |
RU2311027C1 (en) | Solution for leukocyte preservation at near-zero temperature | |
Urushihara et al. | Fusion of cell ghosts with sexually opposite type cells in Dictyostelium discoideum | |
RU2136315C1 (en) | Method of preparing diagnostic serum to brucella in r-form |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20090506 |