RU2279088C2 - Method for predicting myxomatosis in rabbits - Google Patents

Method for predicting myxomatosis in rabbits Download PDF

Info

Publication number
RU2279088C2
RU2279088C2 RU2004125497/15A RU2004125497A RU2279088C2 RU 2279088 C2 RU2279088 C2 RU 2279088C2 RU 2004125497/15 A RU2004125497/15 A RU 2004125497/15A RU 2004125497 A RU2004125497 A RU 2004125497A RU 2279088 C2 RU2279088 C2 RU 2279088C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
myxomatosis
rabbits
diagnostics
strain
value
Prior art date
Application number
RU2004125497/15A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2004125497A (en
Inventor
Борис Лаврентьевич Дубовой (RU)
Борис Лаврентьевич Дубовой
Наталь Владимировна Улько (RU)
Наталья Владимировна Улько
Любовь Григорьевна Белокабыльска (RU)
Любовь Григорьевна Белокабыльская
Елена Викторовна Фалеева (RU)
Елена Викторовна Фалеева
Original Assignee
ФГОУ ВПО "Донской государственный аграрный университет"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by ФГОУ ВПО "Донской государственный аграрный университет" filed Critical ФГОУ ВПО "Донской государственный аграрный университет"
Priority to RU2004125497/15A priority Critical patent/RU2279088C2/en
Publication of RU2004125497A publication Critical patent/RU2004125497A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2279088C2 publication Critical patent/RU2279088C2/en

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Abstract

FIELD: laboratory diagnostics.
SUBSTANCE: the present innovation deals with quick test diagnostics of myxomatosis in rabbits. For this purpose it is necessary to carry out specific leukocytic lysis reaction (SLLR) due to applying anti-myxomatosis vaccine out of B-82 strain, calculate SLLR value and at its value being 10% and more myxomatosis should be stated upon. The innovation enables to conduct accelerated diagnostics at earlier stage of the disease mentioned and detect symptom-free flow of myxomatosis, as well.
EFFECT: higher accuracy of diagnostics.
1 cl, 2 ex, 2 tbl

Description

Изобретение относится к ветеринарии, в частности к экспресс-методам диагностики миксоматоза.The invention relates to veterinary medicine, in particular to express methods for the diagnosis of myxomatosis.

Известны различные способы диагностики миксоматоза кроликов, в том числе обнаружение антигенов в пораженной коже с помощью флуоресцирующих антител, выявление антител, циркулирующих иммунных комплексов с использованием реакций связывания комплемента, реакции иммунодиффузии, реакции нейтрализации и иммуноферментного анализа (Гуненко В.В. и др. О диагностике и профилактике миксоматоза кроликов. Ветеринария, 1987, т.12, с.44-45). Недостатками известных способов являются трудоемкость, наличие дорогостоящего оборудования, невозможность определения наличия вируса в первые дни после заражения.There are various methods for diagnosing rabbit myxomatosis, including the detection of antigens in the affected skin using fluorescent antibodies, the detection of antibodies, circulating immune complexes using complement fixation reactions, immunodiffusion reactions, neutralization reactions and enzyme-linked immunosorbent assays (Gunenko V.V. et al. diagnosis and prevention of rabbit myxomatosis. Veterinary medicine, 1987, T. 12, S. 44-45). The disadvantages of the known methods are the complexity, the availability of expensive equipment, the inability to determine the presence of the virus in the first days after infection.

Целью изобретения является сокращение сроков обнаружения в организме животного возбудителя миксоматоза. Обнаружение возможно начиная с трех-шести часов после заражения.The aim of the invention is to reduce the detection time in the body of the animal pathogen myxomatosis. Detection is possible starting from three to six hours after infection.

Достижение поставленной цели основано на феномене немедленной активации, повышенной чувствительности и перенапряжении иммунокомпетентных клеток крови - лейкоцитов - на повторное воздействие вне организма того же антигена, который до этого внедрился в организм.Achieving this goal is based on the phenomenon of immediate activation, increased sensitivity and overstrain of immunocompetent blood cells - leukocytes - on repeated exposure outside the body of the same antigen that had previously been introduced into the body.

Способ диагностики миксоматоза кроликов осуществляется следующим образом. У исследуемого животного берут пробу крови. В опытную пробирку, содержащую 0,05 мл 3,8%-ного раствора цитрата натрия, вносят 0,1 мл исследуемой крови и рабочую дозу антигена - 0,05 мл вакцины против миксоматоза кроликов сухой живой культуральной из штамма "В-82" в разведении одна иммунизирующая доза на один мл физиологического раствора. Контрольную пробирку заполняют в том же объеме, но физиологический раствор - без антигена.A method for the diagnosis of myxomatosis of rabbits is as follows. A blood sample is taken from the test animal. In a test tube containing 0.05 ml of a 3.8% sodium citrate solution, add 0.1 ml of the test blood and a working dose of antigen of 0.05 ml of live dry culture vaccine against rabbit myxomatosis from strain "B-82" in dilution of one immunizing dose per ml of saline. The control tube is filled in the same volume, but saline is free of antigen.

Пробирки инкубируют в термостате в течение двух часов при температуре +37°С, встряхивая через каждые 30 минут. Затем для разрушения эритроцитов из контрольной и опытной пробирки по 0,02 мл крови переносят в пробирки с 0,4 мл 3%-ного раствора уксусной кислоты и подкрашивают генцианвиолетом. Подсчитывают число лейкоцитов в обеих пробах в камере Горяева и рассчитывают показатель реакции специфического лизиса лейкоцитов (в процентах) по формуле:The tubes are incubated in an incubator for two hours at a temperature of + 37 ° C, shaking every 30 minutes. Then, to destroy red blood cells from the control and experimental tubes, 0.02 ml of blood is transferred to tubes with 0.4 ml of a 3% solution of acetic acid and tinted with a gentian violet. The number of leukocytes in both samples in the Goryaev’s chamber is calculated and the response rate of specific leukocyte lysis (in percent) is calculated by the formula:

Figure 00000001
Figure 00000001

где Лк и Ло - абсолютное количество лейкоцитов в контрольной и опытной пробе.where Lk and Lo - the absolute number of leukocytes in the control and experimental samples.

РСЛЛ считают положительной при показателе 10% и выше.RSLL is considered positive at a rate of 10% or higher.

В случае сильного лейкоцитоза, когда затруднительно провести подсчет лейкоцитов, исследуемые контрольные и опытные пробы крови, дополнительно разводят физиологическим раствором в соотношении 1:1 или 1:2.In the case of severe leukocytosis, when it is difficult to count the leukocytes, the studied control and experimental blood samples are additionally diluted with saline in a ratio of 1: 1 or 1: 2.

Пример 1.Example 1

Для определения рабочей дозы антигена (вакцины против миксоматоза кроликов сухой живой культуральной из штамма "В-82") отобрали десять здоровых кроликов. Кровь от каждого кролика разделили на три пробы. В три пробирки с 0,05 мл 3%-ного раствора цитрата натрия внесли по 0,1 мл исследуемой крови. Затем в первую пробирку внесли 0,05 мл антигена - вакцины против миксоматоза кроликов сухой живой культуральной из штамма "В-82" в разведении четыре иммунизирующих дозы препарата на один мл физиологического раствора, во вторую - 0,05 мл вакцины в разведении две иммунизирующих дозы на один мл физиологического раствора, в третью - 0,05 мл вакцины в разведении одна иммунизирующая доза на один мл физиологического раствора.Ten healthy rabbits were selected to determine the working dose of antigen (vaccine against rabbit myxomatosis of dry live culture from strain "B-82"). Blood from each rabbit was divided into three samples. In three test tubes with 0.05 ml of a 3% sodium citrate solution, 0.1 ml of test blood was added. Then, 0.05 ml of the antigen - vaccine against rabbit myxomatosis of dry live culture from strain "B-82" was diluted in the first test tube in a dilution of four immunizing doses of the drug per ml of physiological solution, and in the second, 0.05 ml of the vaccine in dilution of two immunizing doses per ml of physiological saline, in the third - 0.05 ml of vaccine diluted with one immunizing dose per ml of saline.

Пробирки инкубировали в течение двух часов при температуре +37°, встряхивая через каждые 30 минут. Затем для разрушения эритроцитов из контрольных и опытных пробирок по 0,02 мл крови перенесли в пробирки с 0,4 мл 3%-ного раствора уксусной кислоты и подкрасили генцианвиолетом. Далее подсчитали число лейкоцитов во всех пробирках в камере Горяева и рассчитали показатель реакции специфического лизиса лейкоцитов (в процентах) по формуле:The tubes were incubated for two hours at + 37 ° C, shaking every 30 minutes. Then, to destroy red blood cells from control and experimental tubes, 0.02 ml of blood was transferred to tubes with 0.4 ml of a 3% solution of acetic acid and tinted with a gentian violet. Next, we calculated the number of leukocytes in all tubes in the Goryaev chamber and calculated the response rate of specific leukocyte lysis (in percent) according to the formula:

Figure 00000002
Figure 00000002

где Лк и Ло - абсолютное количество лейкоцитов в контрольной и опытной пробе.where Lk and Lo - the absolute number of leukocytes in the control and experimental samples.

РСЛЛ для здоровых кроликов должна быть ниже 10%. Результаты представлены в табл. 1.RSLL for healthy rabbits should be below 10%. The results are presented in table. one.

Figure 00000003
Figure 00000003

Как видно из таблицы 1 РСЛЛ во всех пробах не превышала 10%, поэтому рациональнее в качестве рабочей дозы антигена взять разведение вакцины против миксоматоза кроликов, сухой живой культуральной из штамма "В-82" из расчета одна иммунизирующая доза на один мл физиологического раствора.As can be seen from table 1, the RFLL in all samples did not exceed 10%, therefore, it is more rational to take the dilution of the vaccine against rabbit myxomatosis, dry live culture from strain "B-82" at the rate of one immunizing dose per ml of physiological saline as a working dose of antigen.

Пример 2.Example 2

Для ретроспективной диагностики миксоматоза в неблагополучном хозяйстве исследовали кровь кроликов.For a retrospective diagnosis of myxomatosis in a dysfunctional farm, rabbit blood was examined.

На основании результатов клинического состояния кроликов были сформированы 4 группы животных по 5 голов в каждой (табл.2).Based on the results of the clinical condition of rabbits, 4 groups of animals were formed, 5 animals each (Table 2).

Первая группа - кролики-вирусоносители, со скрытой формой миксоматоза - находились в контакте с больными, но без клинических изменений. У отдельных были заметны бесшерстные участки, свидетельствующие об миксомных узлах в прошлом.The first group - virus-carrying rabbits, with a hidden form of myxomatosis - were in contact with patients, but without clinical changes. In some, hairless patches were visible, indicating mixed sites in the past.

Во вторую группу - клинически больные миксоматозом - отобрали больных кроликов с отеками век, оснований ушных раковин, аногенетальной области, спины, с узелковыми ограниченными образованиями в коже ушей, головы и век.In the second group - clinically sick with myxomatosis - sick rabbits with swelling of the eyelids, bases of the auricles, anogenetic region, back, with nodular formations in the skin of the ears, head and eyelids were selected.

Кролики третьей группы были вакцинированы с целью установления динамики лизиса лейкоцитов с момента внедрения миксоматозного антигена в организм животного, и для выявления особенностей реакции лизиса лейкоцитов у вакцинированных по сравнению с вирусоносителями.Rabbits of the third group were vaccinated in order to establish the dynamics of leukocyte lysis from the moment the myxomatous antigen was introduced into the body of the animal, and to identify the peculiarities of the leukocyte lysis reaction in vaccinated compared to virus carriers.

Кролики четвертой группы - клинически здоровы и не инфицированы вирусом миксоматоза, служат контролем.Rabbits of the fourth group are clinically healthy and are not infected with the myxomatosis virus, serve as a control.

У животных всех групп определяли показатель реакции специфического лизиса лейкоцитов. Для этого у животных брали пробы крови. Каждую пробу делили на опытную и контрольную. В опытную пробирку, содержащую 0,05 мл 3,8%-ного раствора цитрата натрия, вносили 0,1 мл исследуемой крови и рабочую дозу антигена - 0,05 мл вакцины против миксоматоза кроликов сухой живой культуральной из штамма "В-82" в разведении одна иммунизирующая доза на один мл физиологического раствора. Контрольную пробирку заполняли в том же объеме, но физиологический раствор - без антигена.In animals of all groups, the response rate of specific leukocyte lysis was determined. For this, blood samples were taken from animals. Each sample was divided into experimental and control. In a test tube containing 0.05 ml of a 3.8% sodium citrate solution, 0.1 ml of the test blood was added and a working dose of antigen of 0.05 ml of the live dry culture vaccine against rabbit myxomatosis from strain "B-82" in dilution of one immunizing dose per ml of saline. The control tube was filled in the same volume, but the saline was free of antigen.

Пробирки инкубировали в термостате в течение двух часов при температуре +37°С, встряхивая через каждые 30 минут. Затем для разрушения эритроцитов из контрольной и опытной пробирки по 0,02 мл крови перенесли в пробирки с 0,4 мл 3%-ного раствора уксусной кислоты и подкрасили генцианвиолетом. Подсчитали число лейкоцитов в обеих пробах в камере Горяева и рассчитали показатель реакции специфического лизиса лейкоцитов (в процентах) по формуле:The tubes were incubated in an incubator for two hours at a temperature of + 37 ° C, shaking every 30 minutes. Then, to destroy red blood cells from the control and experimental tubes, 0.02 ml of blood was transferred to tubes with 0.4 ml of a 3% solution of acetic acid and tinted with a gentian violet. We calculated the number of leukocytes in both samples in the Goryaev chamber and calculated the response rate of specific leukocyte lysis (in percent) according to the formula:

Figure 00000004
Figure 00000004

где Лк и Ло - абсолютное количество лейкоцитов в контрольной и опытной пробе.where Lk and Lo - the absolute number of leukocytes in the control and experimental samples.

РСЛЛ считали положительной при показателе 10% и выше.RSLL was considered positive at 10% or higher.

Результаты представлены в таблице 2.The results are presented in table 2.

Таблица 2
Показатели РСЛЛ у кроликов, больных миксоматозом, вакцинированных и здоровых
table 2
RSLL in rabbits, myxomatosis, vaccinated and healthy
Группы подопытных кроликовGroups of experimental rabbits РСЛЛ, в %RSLL, in% Продолжительность наблюдений в суткахDuration of observations in days Снижение % лизиса в среднем в сутки (%)% Reduction in lysis per day on average (%) в начале исследованияat the beginning of the study в конце исследованияat the end of the study 1. Скрытая форма, вирусоносители.1. The latent form, virus carriers. 30-4230-42 29-3829-38 1010 0,250.25 2. Клинически больные миксоматозом2. Clinically ill with myxomatosis 62-7762-77 60-7160-71 1010 0,400.40 3. Вакцинированные противомиксоматозной вакциной3. Vaccinated with anti-myxomatosis vaccine 29-3629-36 21-2821-28 1010 0,800.80 4. Интактные контрольные4. Intact control 4-94-9 4-94-9 1010 00

Как видно из таблицы 2, скорость снижения процента лизиса лейкоцитов у вакцинированных кроликов в 3,2 раза больше, чем у кроликов-вирусоносителей со скрытой формой миксоматоза, и 2 раза больше, чем у клинически больных. У больных с клинической формой миксоматоза процент лизиса лейкоцитов за весь период наблюдений был очень высокий, достигал 60-77%.As can be seen from table 2, the rate of decrease in the percentage of leukocyte lysis in vaccinated rabbits is 3.2 times higher than in virus-carrying rabbits with a hidden form of myxomatosis, and 2 times more than in clinically ill patients. In patients with the clinical form of myxomatosis, the percentage of leukocyte lysis for the entire observation period was very high, reaching 60-77%.

В группе вакцинированных кроликов обнаруживали резкое увеличение процента лизиса лейкоцитов на третьи сутки. Это свидетельство того, что вакцины против миксоматоза кроликов сухой живой культуральной из штамма "В-82" вызывает состояние сенсибилизации лейкоцитов крови (ответственных за иммунитет) до образования в организме специфических антител.A sharp increase in the percentage of leukocyte lysis on the third day was found in the group of vaccinated rabbits. This is evidence that the vaccine against myxomatosis of rabbits with dry live culture from strain B-82 causes a sensitization of blood leukocytes (responsible for immunity) before the formation of specific antibodies in the body.

Лизис лейкоцитов у интактных кроликов за весь период опыта не превышал 10%, т.е. находился в пределах нормы.The leukocyte lysis in intact rabbits for the entire period of the experiment did not exceed 10%, i.e. was within normal limits.

Исследование РСЛЛ позволяет диагнозцировать бессимптомное течение миксоматоза.The study of RSLL allows you to diagnose the asymptomatic course of myxomatosis.

Claims (2)

1. Способ диагностики миксоматоза кроликов, отличающийся тем, что проводят реакцию специфического лизиса лейкоцитов (РСЛЛ) с использованием противомиксоматозной вакцины из штамма В-82, рассчитывают показатель РСЛЛ и при его значении 10% и более диагностируют миксоматоз.1. A method for diagnosing rabbit myxomatosis, characterized in that a specific leukocyte lysis (RSLL) reaction is carried out using an anti-myxomatous vaccine from strain B-82, an RSLL score is calculated and myxomatosis is diagnosed at a value of 10% or more. 2. Способ диагностики миксоматоза кроликов по п.1, отличающийся тем, что при лейкоцитозе пробы крови перед подсчетом лейкоцитов разводят физиологическим раствором в соотношении 1:1 или 1:2.2. A method for diagnosing rabbit myxomatosis according to claim 1, characterized in that during leukocytosis, blood samples are diluted with physiological saline in a ratio of 1: 1 or 1: 2 before leukocyte counting.
RU2004125497/15A 2004-08-19 2004-08-19 Method for predicting myxomatosis in rabbits RU2279088C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2004125497/15A RU2279088C2 (en) 2004-08-19 2004-08-19 Method for predicting myxomatosis in rabbits

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2004125497/15A RU2279088C2 (en) 2004-08-19 2004-08-19 Method for predicting myxomatosis in rabbits

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2004125497A RU2004125497A (en) 2006-01-27
RU2279088C2 true RU2279088C2 (en) 2006-06-27

Family

ID=36047702

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2004125497/15A RU2279088C2 (en) 2004-08-19 2004-08-19 Method for predicting myxomatosis in rabbits

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2279088C2 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2549705C1 (en) * 2013-12-03 2015-04-27 Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии Synthetic oligonucleotide primers and their use in method of detection and differentiation of genome of vaccine strain b-82 of myxoma virus of rabbits from field isolates by method of polymerase chain reaction in real time

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ГУНЕНКО В.В. и др. О диагностике и профилактике миксоматоза кроликов. Ветеринария, 1987, т.12, с.44-45. CANCELLOTTI F.M et al "Diagnostic techniques for early diagnosis of rabbit myxomatosis", Abstracts, 1986, p.798-801. CHANTAL J et al "La methode E.L.I.S.A. et l'etude serologique de la myxomatose", Rev. Med. veter, 1983, v.134, № 8-9, p.465-470. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2549705C1 (en) * 2013-12-03 2015-04-27 Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии Synthetic oligonucleotide primers and their use in method of detection and differentiation of genome of vaccine strain b-82 of myxoma virus of rabbits from field isolates by method of polymerase chain reaction in real time

Also Published As

Publication number Publication date
RU2004125497A (en) 2006-01-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Reed et al. Bartonella henselae neuroretinitis in cat scratch disease: diagnosis, management, and sequelae
Kono et al. Experimental vertical transmission of rubella virus in rabbits
Greene et al. Coccidioidomycosis in 48 cats: a retrospective study (1984–1993)
Dilbeck-Robertson et al. Results of a new serologic test suggest an association of Waddlia chondrophila with bovine abortion
Switaj et al. Cowpox after a cat scratch-case report from Poland
Buckley et al. Identification by fluorescent antibody of developmental forms of psittacosis virus in tissue culture.
Rahal et al. Coxsackievirus and adenovirus infection: association with acute febrile and juvenile rheumatoid arthritis
Becker et al. Plague meningitis—a retrospective analysis of cases reported in the United States, 1970-1979
Downie et al. Haemorrhagic smallpox
Wallace Sabin-Feldman Dye Test for Toxoplasmosis: The Use of Sodium Citrate in Accessory Factor, and a Method for Collecting and Storing Blood on Paper Discs
Bradbury et al. The influence of pH of the culture medium on the sensitivity of Mycoplasma gallisepticum antigens for use in certain serological tests
RU2279088C2 (en) Method for predicting myxomatosis in rabbits
Cathie et al. The laboratory diagnosis of toxoplasmosis
Ravitch et al. Use of blood donors with positive serologic tests for syphilis—with a note on the disappearance of passively transferred reagin
Ingram et al. The Conglutination Phenomenon: XII. Immuno-Conglutinin in Experimental Infections of Laboratory Animals
Hofstad A serological study of infectious sinusitis in turkeys
Lewis et al. The blood in hog cholera
Penttinen et al. The platelet aggregation test in group B arbovirus infections
Baxby et al. Antibody studies in natural bovine cowpox
Beswick et al. A renal lesion in association with influenza
Seah et al. Complement fixation test in Trypanosoma rhodesiense infection with cultured Trypanosoma cruzi as antigen
Kholidin et al. Development of a polyclonal antibody Edwardsiella ictaluri serum for diagnosis of Enteric Septicemia of Catfish (ESC) in Patin Catfish (Pangasianodon hypopthalmus)
Nandita Diagnosis and Management of Canine Distemper in Indigenous Dog
RU2366454C2 (en) Early diagnostic technique for tuberculosis in animals
Ramsey et al. Successful treatment of Rocky Mountain'spotless' fever.

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20070820