RU2279088C2 - Method for predicting myxomatosis in rabbits - Google Patents
Method for predicting myxomatosis in rabbits Download PDFInfo
- Publication number
- RU2279088C2 RU2279088C2 RU2004125497/15A RU2004125497A RU2279088C2 RU 2279088 C2 RU2279088 C2 RU 2279088C2 RU 2004125497/15 A RU2004125497/15 A RU 2004125497/15A RU 2004125497 A RU2004125497 A RU 2004125497A RU 2279088 C2 RU2279088 C2 RU 2279088C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- myxomatosis
- rabbits
- diagnostics
- strain
- value
- Prior art date
Links
Landscapes
- Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к ветеринарии, в частности к экспресс-методам диагностики миксоматоза.The invention relates to veterinary medicine, in particular to express methods for the diagnosis of myxomatosis.
Известны различные способы диагностики миксоматоза кроликов, в том числе обнаружение антигенов в пораженной коже с помощью флуоресцирующих антител, выявление антител, циркулирующих иммунных комплексов с использованием реакций связывания комплемента, реакции иммунодиффузии, реакции нейтрализации и иммуноферментного анализа (Гуненко В.В. и др. О диагностике и профилактике миксоматоза кроликов. Ветеринария, 1987, т.12, с.44-45). Недостатками известных способов являются трудоемкость, наличие дорогостоящего оборудования, невозможность определения наличия вируса в первые дни после заражения.There are various methods for diagnosing rabbit myxomatosis, including the detection of antigens in the affected skin using fluorescent antibodies, the detection of antibodies, circulating immune complexes using complement fixation reactions, immunodiffusion reactions, neutralization reactions and enzyme-linked immunosorbent assays (Gunenko V.V. et al. diagnosis and prevention of rabbit myxomatosis. Veterinary medicine, 1987, T. 12, S. 44-45). The disadvantages of the known methods are the complexity, the availability of expensive equipment, the inability to determine the presence of the virus in the first days after infection.
Целью изобретения является сокращение сроков обнаружения в организме животного возбудителя миксоматоза. Обнаружение возможно начиная с трех-шести часов после заражения.The aim of the invention is to reduce the detection time in the body of the animal pathogen myxomatosis. Detection is possible starting from three to six hours after infection.
Достижение поставленной цели основано на феномене немедленной активации, повышенной чувствительности и перенапряжении иммунокомпетентных клеток крови - лейкоцитов - на повторное воздействие вне организма того же антигена, который до этого внедрился в организм.Achieving this goal is based on the phenomenon of immediate activation, increased sensitivity and overstrain of immunocompetent blood cells - leukocytes - on repeated exposure outside the body of the same antigen that had previously been introduced into the body.
Способ диагностики миксоматоза кроликов осуществляется следующим образом. У исследуемого животного берут пробу крови. В опытную пробирку, содержащую 0,05 мл 3,8%-ного раствора цитрата натрия, вносят 0,1 мл исследуемой крови и рабочую дозу антигена - 0,05 мл вакцины против миксоматоза кроликов сухой живой культуральной из штамма "В-82" в разведении одна иммунизирующая доза на один мл физиологического раствора. Контрольную пробирку заполняют в том же объеме, но физиологический раствор - без антигена.A method for the diagnosis of myxomatosis of rabbits is as follows. A blood sample is taken from the test animal. In a test tube containing 0.05 ml of a 3.8% sodium citrate solution, add 0.1 ml of the test blood and a working dose of antigen of 0.05 ml of live dry culture vaccine against rabbit myxomatosis from strain "B-82" in dilution of one immunizing dose per ml of saline. The control tube is filled in the same volume, but saline is free of antigen.
Пробирки инкубируют в термостате в течение двух часов при температуре +37°С, встряхивая через каждые 30 минут. Затем для разрушения эритроцитов из контрольной и опытной пробирки по 0,02 мл крови переносят в пробирки с 0,4 мл 3%-ного раствора уксусной кислоты и подкрашивают генцианвиолетом. Подсчитывают число лейкоцитов в обеих пробах в камере Горяева и рассчитывают показатель реакции специфического лизиса лейкоцитов (в процентах) по формуле:The tubes are incubated in an incubator for two hours at a temperature of + 37 ° C, shaking every 30 minutes. Then, to destroy red blood cells from the control and experimental tubes, 0.02 ml of blood is transferred to tubes with 0.4 ml of a 3% solution of acetic acid and tinted with a gentian violet. The number of leukocytes in both samples in the Goryaev’s chamber is calculated and the response rate of specific leukocyte lysis (in percent) is calculated by the formula:
где Лк и Ло - абсолютное количество лейкоцитов в контрольной и опытной пробе.where Lk and Lo - the absolute number of leukocytes in the control and experimental samples.
РСЛЛ считают положительной при показателе 10% и выше.RSLL is considered positive at a rate of 10% or higher.
В случае сильного лейкоцитоза, когда затруднительно провести подсчет лейкоцитов, исследуемые контрольные и опытные пробы крови, дополнительно разводят физиологическим раствором в соотношении 1:1 или 1:2.In the case of severe leukocytosis, when it is difficult to count the leukocytes, the studied control and experimental blood samples are additionally diluted with saline in a ratio of 1: 1 or 1: 2.
Пример 1.Example 1
Для определения рабочей дозы антигена (вакцины против миксоматоза кроликов сухой живой культуральной из штамма "В-82") отобрали десять здоровых кроликов. Кровь от каждого кролика разделили на три пробы. В три пробирки с 0,05 мл 3%-ного раствора цитрата натрия внесли по 0,1 мл исследуемой крови. Затем в первую пробирку внесли 0,05 мл антигена - вакцины против миксоматоза кроликов сухой живой культуральной из штамма "В-82" в разведении четыре иммунизирующих дозы препарата на один мл физиологического раствора, во вторую - 0,05 мл вакцины в разведении две иммунизирующих дозы на один мл физиологического раствора, в третью - 0,05 мл вакцины в разведении одна иммунизирующая доза на один мл физиологического раствора.Ten healthy rabbits were selected to determine the working dose of antigen (vaccine against rabbit myxomatosis of dry live culture from strain "B-82"). Blood from each rabbit was divided into three samples. In three test tubes with 0.05 ml of a 3% sodium citrate solution, 0.1 ml of test blood was added. Then, 0.05 ml of the antigen - vaccine against rabbit myxomatosis of dry live culture from strain "B-82" was diluted in the first test tube in a dilution of four immunizing doses of the drug per ml of physiological solution, and in the second, 0.05 ml of the vaccine in dilution of two immunizing doses per ml of physiological saline, in the third - 0.05 ml of vaccine diluted with one immunizing dose per ml of saline.
Пробирки инкубировали в течение двух часов при температуре +37°, встряхивая через каждые 30 минут. Затем для разрушения эритроцитов из контрольных и опытных пробирок по 0,02 мл крови перенесли в пробирки с 0,4 мл 3%-ного раствора уксусной кислоты и подкрасили генцианвиолетом. Далее подсчитали число лейкоцитов во всех пробирках в камере Горяева и рассчитали показатель реакции специфического лизиса лейкоцитов (в процентах) по формуле:The tubes were incubated for two hours at + 37 ° C, shaking every 30 minutes. Then, to destroy red blood cells from control and experimental tubes, 0.02 ml of blood was transferred to tubes with 0.4 ml of a 3% solution of acetic acid and tinted with a gentian violet. Next, we calculated the number of leukocytes in all tubes in the Goryaev chamber and calculated the response rate of specific leukocyte lysis (in percent) according to the formula:
где Лк и Ло - абсолютное количество лейкоцитов в контрольной и опытной пробе.where Lk and Lo - the absolute number of leukocytes in the control and experimental samples.
РСЛЛ для здоровых кроликов должна быть ниже 10%. Результаты представлены в табл. 1.RSLL for healthy rabbits should be below 10%. The results are presented in table. one.
Как видно из таблицы 1 РСЛЛ во всех пробах не превышала 10%, поэтому рациональнее в качестве рабочей дозы антигена взять разведение вакцины против миксоматоза кроликов, сухой живой культуральной из штамма "В-82" из расчета одна иммунизирующая доза на один мл физиологического раствора.As can be seen from table 1, the RFLL in all samples did not exceed 10%, therefore, it is more rational to take the dilution of the vaccine against rabbit myxomatosis, dry live culture from strain "B-82" at the rate of one immunizing dose per ml of physiological saline as a working dose of antigen.
Пример 2.Example 2
Для ретроспективной диагностики миксоматоза в неблагополучном хозяйстве исследовали кровь кроликов.For a retrospective diagnosis of myxomatosis in a dysfunctional farm, rabbit blood was examined.
На основании результатов клинического состояния кроликов были сформированы 4 группы животных по 5 голов в каждой (табл.2).Based on the results of the clinical condition of rabbits, 4 groups of animals were formed, 5 animals each (Table 2).
Первая группа - кролики-вирусоносители, со скрытой формой миксоматоза - находились в контакте с больными, но без клинических изменений. У отдельных были заметны бесшерстные участки, свидетельствующие об миксомных узлах в прошлом.The first group - virus-carrying rabbits, with a hidden form of myxomatosis - were in contact with patients, but without clinical changes. In some, hairless patches were visible, indicating mixed sites in the past.
Во вторую группу - клинически больные миксоматозом - отобрали больных кроликов с отеками век, оснований ушных раковин, аногенетальной области, спины, с узелковыми ограниченными образованиями в коже ушей, головы и век.In the second group - clinically sick with myxomatosis - sick rabbits with swelling of the eyelids, bases of the auricles, anogenetic region, back, with nodular formations in the skin of the ears, head and eyelids were selected.
Кролики третьей группы были вакцинированы с целью установления динамики лизиса лейкоцитов с момента внедрения миксоматозного антигена в организм животного, и для выявления особенностей реакции лизиса лейкоцитов у вакцинированных по сравнению с вирусоносителями.Rabbits of the third group were vaccinated in order to establish the dynamics of leukocyte lysis from the moment the myxomatous antigen was introduced into the body of the animal, and to identify the peculiarities of the leukocyte lysis reaction in vaccinated compared to virus carriers.
Кролики четвертой группы - клинически здоровы и не инфицированы вирусом миксоматоза, служат контролем.Rabbits of the fourth group are clinically healthy and are not infected with the myxomatosis virus, serve as a control.
У животных всех групп определяли показатель реакции специфического лизиса лейкоцитов. Для этого у животных брали пробы крови. Каждую пробу делили на опытную и контрольную. В опытную пробирку, содержащую 0,05 мл 3,8%-ного раствора цитрата натрия, вносили 0,1 мл исследуемой крови и рабочую дозу антигена - 0,05 мл вакцины против миксоматоза кроликов сухой живой культуральной из штамма "В-82" в разведении одна иммунизирующая доза на один мл физиологического раствора. Контрольную пробирку заполняли в том же объеме, но физиологический раствор - без антигена.In animals of all groups, the response rate of specific leukocyte lysis was determined. For this, blood samples were taken from animals. Each sample was divided into experimental and control. In a test tube containing 0.05 ml of a 3.8% sodium citrate solution, 0.1 ml of the test blood was added and a working dose of antigen of 0.05 ml of the live dry culture vaccine against rabbit myxomatosis from strain "B-82" in dilution of one immunizing dose per ml of saline. The control tube was filled in the same volume, but the saline was free of antigen.
Пробирки инкубировали в термостате в течение двух часов при температуре +37°С, встряхивая через каждые 30 минут. Затем для разрушения эритроцитов из контрольной и опытной пробирки по 0,02 мл крови перенесли в пробирки с 0,4 мл 3%-ного раствора уксусной кислоты и подкрасили генцианвиолетом. Подсчитали число лейкоцитов в обеих пробах в камере Горяева и рассчитали показатель реакции специфического лизиса лейкоцитов (в процентах) по формуле:The tubes were incubated in an incubator for two hours at a temperature of + 37 ° C, shaking every 30 minutes. Then, to destroy red blood cells from the control and experimental tubes, 0.02 ml of blood was transferred to tubes with 0.4 ml of a 3% solution of acetic acid and tinted with a gentian violet. We calculated the number of leukocytes in both samples in the Goryaev chamber and calculated the response rate of specific leukocyte lysis (in percent) according to the formula:
где Лк и Ло - абсолютное количество лейкоцитов в контрольной и опытной пробе.where Lk and Lo - the absolute number of leukocytes in the control and experimental samples.
РСЛЛ считали положительной при показателе 10% и выше.RSLL was considered positive at 10% or higher.
Результаты представлены в таблице 2.The results are presented in table 2.
Показатели РСЛЛ у кроликов, больных миксоматозом, вакцинированных и здоровыхtable 2
RSLL in rabbits, myxomatosis, vaccinated and healthy
Как видно из таблицы 2, скорость снижения процента лизиса лейкоцитов у вакцинированных кроликов в 3,2 раза больше, чем у кроликов-вирусоносителей со скрытой формой миксоматоза, и 2 раза больше, чем у клинически больных. У больных с клинической формой миксоматоза процент лизиса лейкоцитов за весь период наблюдений был очень высокий, достигал 60-77%.As can be seen from table 2, the rate of decrease in the percentage of leukocyte lysis in vaccinated rabbits is 3.2 times higher than in virus-carrying rabbits with a hidden form of myxomatosis, and 2 times more than in clinically ill patients. In patients with the clinical form of myxomatosis, the percentage of leukocyte lysis for the entire observation period was very high, reaching 60-77%.
В группе вакцинированных кроликов обнаруживали резкое увеличение процента лизиса лейкоцитов на третьи сутки. Это свидетельство того, что вакцины против миксоматоза кроликов сухой живой культуральной из штамма "В-82" вызывает состояние сенсибилизации лейкоцитов крови (ответственных за иммунитет) до образования в организме специфических антител.A sharp increase in the percentage of leukocyte lysis on the third day was found in the group of vaccinated rabbits. This is evidence that the vaccine against myxomatosis of rabbits with dry live culture from strain B-82 causes a sensitization of blood leukocytes (responsible for immunity) before the formation of specific antibodies in the body.
Лизис лейкоцитов у интактных кроликов за весь период опыта не превышал 10%, т.е. находился в пределах нормы.The leukocyte lysis in intact rabbits for the entire period of the experiment did not exceed 10%, i.e. was within normal limits.
Исследование РСЛЛ позволяет диагнозцировать бессимптомное течение миксоматоза.The study of RSLL allows you to diagnose the asymptomatic course of myxomatosis.
Claims (2)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2004125497/15A RU2279088C2 (en) | 2004-08-19 | 2004-08-19 | Method for predicting myxomatosis in rabbits |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2004125497/15A RU2279088C2 (en) | 2004-08-19 | 2004-08-19 | Method for predicting myxomatosis in rabbits |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2004125497A RU2004125497A (en) | 2006-01-27 |
RU2279088C2 true RU2279088C2 (en) | 2006-06-27 |
Family
ID=36047702
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2004125497/15A RU2279088C2 (en) | 2004-08-19 | 2004-08-19 | Method for predicting myxomatosis in rabbits |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2279088C2 (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2549705C1 (en) * | 2013-12-03 | 2015-04-27 | Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии | Synthetic oligonucleotide primers and their use in method of detection and differentiation of genome of vaccine strain b-82 of myxoma virus of rabbits from field isolates by method of polymerase chain reaction in real time |
-
2004
- 2004-08-19 RU RU2004125497/15A patent/RU2279088C2/en not_active IP Right Cessation
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
ГУНЕНКО В.В. и др. О диагностике и профилактике миксоматоза кроликов. Ветеринария, 1987, т.12, с.44-45. CANCELLOTTI F.M et al "Diagnostic techniques for early diagnosis of rabbit myxomatosis", Abstracts, 1986, p.798-801. CHANTAL J et al "La methode E.L.I.S.A. et l'etude serologique de la myxomatose", Rev. Med. veter, 1983, v.134, № 8-9, p.465-470. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
RU2549705C1 (en) * | 2013-12-03 | 2015-04-27 | Государственное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии | Synthetic oligonucleotide primers and their use in method of detection and differentiation of genome of vaccine strain b-82 of myxoma virus of rabbits from field isolates by method of polymerase chain reaction in real time |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU2004125497A (en) | 2006-01-27 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Reed et al. | Bartonella henselae neuroretinitis in cat scratch disease: diagnosis, management, and sequelae | |
Kono et al. | Experimental vertical transmission of rubella virus in rabbits | |
Greene et al. | Coccidioidomycosis in 48 cats: a retrospective study (1984–1993) | |
Dilbeck-Robertson et al. | Results of a new serologic test suggest an association of Waddlia chondrophila with bovine abortion | |
Switaj et al. | Cowpox after a cat scratch-case report from Poland | |
Buckley et al. | Identification by fluorescent antibody of developmental forms of psittacosis virus in tissue culture. | |
Rahal et al. | Coxsackievirus and adenovirus infection: association with acute febrile and juvenile rheumatoid arthritis | |
Becker et al. | Plague meningitis—a retrospective analysis of cases reported in the United States, 1970-1979 | |
Downie et al. | Haemorrhagic smallpox | |
Wallace | Sabin-Feldman Dye Test for Toxoplasmosis: The Use of Sodium Citrate in Accessory Factor, and a Method for Collecting and Storing Blood on Paper Discs | |
Bradbury et al. | The influence of pH of the culture medium on the sensitivity of Mycoplasma gallisepticum antigens for use in certain serological tests | |
RU2279088C2 (en) | Method for predicting myxomatosis in rabbits | |
Cathie et al. | The laboratory diagnosis of toxoplasmosis | |
Ravitch et al. | Use of blood donors with positive serologic tests for syphilis—with a note on the disappearance of passively transferred reagin | |
Ingram et al. | The Conglutination Phenomenon: XII. Immuno-Conglutinin in Experimental Infections of Laboratory Animals | |
Hofstad | A serological study of infectious sinusitis in turkeys | |
Lewis et al. | The blood in hog cholera | |
Penttinen et al. | The platelet aggregation test in group B arbovirus infections | |
Baxby et al. | Antibody studies in natural bovine cowpox | |
Beswick et al. | A renal lesion in association with influenza | |
Seah et al. | Complement fixation test in Trypanosoma rhodesiense infection with cultured Trypanosoma cruzi as antigen | |
Kholidin et al. | Development of a polyclonal antibody Edwardsiella ictaluri serum for diagnosis of Enteric Septicemia of Catfish (ESC) in Patin Catfish (Pangasianodon hypopthalmus) | |
Nandita | Diagnosis and Management of Canine Distemper in Indigenous Dog | |
RU2366454C2 (en) | Early diagnostic technique for tuberculosis in animals | |
Ramsey et al. | Successful treatment of Rocky Mountain'spotless' fever. |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20070820 |