RU2267786C2 - METHOD FOR in vitro EVALUATING GERMINAL ECHINOCOCCUS ELEMENTS VIABILITY - Google Patents

METHOD FOR in vitro EVALUATING GERMINAL ECHINOCOCCUS ELEMENTS VIABILITY Download PDF

Info

Publication number
RU2267786C2
RU2267786C2 RU2003109590/15A RU2003109590A RU2267786C2 RU 2267786 C2 RU2267786 C2 RU 2267786C2 RU 2003109590/15 A RU2003109590/15 A RU 2003109590/15A RU 2003109590 A RU2003109590 A RU 2003109590A RU 2267786 C2 RU2267786 C2 RU 2267786C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
elements
germinal
echinococcus
protoscolexes
viability
Prior art date
Application number
RU2003109590/15A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2003109590A (en
Inventor
Иль с Гаджимурадович Ахмедов (RU)
Ильяс Гаджимурадович Ахмедов
Original Assignee
Дагестанская государственная медицинская академия
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Дагестанская государственная медицинская академия filed Critical Дагестанская государственная медицинская академия
Priority to RU2003109590/15A priority Critical patent/RU2267786C2/en
Publication of RU2003109590A publication Critical patent/RU2003109590A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2267786C2 publication Critical patent/RU2267786C2/en

Links

Landscapes

  • Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
  • Acyclic And Carbocyclic Compounds In Medicinal Compositions (AREA)
  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Abstract

FIELD: medicine.
SUBSTANCE: method involves evaluating germinal elements ability for building micro acephalocystes. When testing, other harmful factors influence upon germinal Echinococcus elements is restricted to minimum. Reversible transformability in protoscolices arisen after treatment with formalin at 32-38°C during 12-48 h. A situation approximating clinical cases is modeled when protoscoleces treated with scolexocidal agents fall into favorable conditions.
EFFECT: simplified low cost method.
1 dwg

Description

Изобретение относится к медицине, а именно к хирургии эхинококкоза. С целью профилактики рецидивов эхинококковой болезни при хирургическом вмешательстве путем обезвреживания зародышевых элементов эхинококка в фиброзной полости и на поверхности тканей больного применяется ряд химических агентов и физических факторов. В качестве таких агентов были испробованы 10% йодоформоглицериновая эмульсия, 2-5% настойка йода, 3% раствор борной кислоты, раствор фурациллина 1:5000, риванола 1:1000, 1-15% водные и глицериновые растворы формалина, 1% диоксидина, различные антибиотики, 3-30% растворы поваренной соли, 80-100% глицерин, горячий физиологический раствор, бетадин и др. [1, 2, 3]. Большая часть из вышеприведенных препаратов не получила широкого применения из-за высокой токсичности для тканей хозяина либо слабой обезвреживающей активности.The invention relates to medicine, namely to surgery of echinococcosis. In order to prevent relapse of echinococcal disease during surgical intervention by neutralizing the germinal elements of echinococcus in the fibrous cavity and on the surface of the patient’s tissues, a number of chemical agents and physical factors are used. As such agents, 10% iodoformoglycerol emulsion, 2-5% tincture of iodine, 3% boric acid solution, furatsillin solution 1: 5000, rivanol 1: 1000, 1-15% aqueous and glycerin formalin solutions, 1% dioxidine, various antibiotics, 3-30% sodium chloride solutions, 80-100% glycerin, hot saline, betadine, etc. [1, 2, 3]. Most of the above preparations were not widely used due to high toxicity to host tissues or weak neutralizing activity.

Использование некоторых физических факторов (лазер, рентгеновское облучение, УФО, УВЧ, плазменный поток, местная гипертермия, криовоздействие, ультразвук низкой частоты) не дало обнадеживающих клинических результатов, хотя экспериментальные данные свидетельствовали об их высокой эффективности [2].The use of certain physical factors (laser, X-ray irradiation, ultraviolet radiation, UHF, plasma flow, local hyperthermia, cryotherapy, low frequency ultrasound) did not give encouraging clinical results, although experimental data showed their high efficiency [2].

В настоящее время поиск эффективных способов обеззараживания стенок фиброзной капсулы гидатидного эхинококка, грудной, брюшной полостей, особенно при прорыве эхинококковых кист, не оказывающих повреждающее действие на ткани организма, особенно легочную и брюшинный покров, продолжает быть актуальным.Currently, the search for effective methods of disinfecting the walls of the fibrous capsule of hydatid echinococcus, thoracic and abdominal cavities, especially with the breakthrough of echinococcal cysts that do not have a damaging effect on body tissues, especially the lung and peritoneal cover, continues to be relevant.

Ключевым моментом подобных исследований является объективность критериев оценки жизнеспособности зародышевых элементов паразита, на обезвреживание которых направлено воздействие. Таковыми являются: двигательная активность протосколексов при температуре 37-40°С, количество известковых телец и морфологическая структура паренхимы, короны крючьев и кутикулярной оболочки [3]. Кроме того, оценивается способность протосколексов окрашиваться в нативном препарате и вызывать образование эхинококковых кист у лабораторных животных при постановке биологической пробы.The key point of such studies is the objectivity of the criteria for assessing the viability of the germinal elements of the parasite, the effect of which is aimed at neutralizing them. These are: the motor activity of protoscolexes at a temperature of 37-40 ° C, the amount of calcareous bodies and the morphological structure of the parenchyma, the crown of the hooks and cuticular membrane [3]. In addition, the ability of protoscolexes to stain in the native preparation and cause the formation of echinococcal cysts in laboratory animals when staging a biological sample is evaluated.

К недостаткам вышеуказанных критериев относятся трудность регистрации возникающих изменений в нативном препарате (за исключением прекращения движения), а также необходимость постоянного и длительного наблюдения за одним и тем же полем зрения. При этом на нативный препарат оказывают дополнительное повреждающее действие колебания температуры и подсыхание. Кроме того, приведенные критерии являются лишь косвенными признаками, по которым приходится судить о неспособности обработанного материала вызывать развитие болезни при попадании на ткани больного. Требуется постановка биологической пробы [3], для которой необходимы высокочувствительные к болезни лабораторные животные и длительное (несколько месяцев) наблюдение за ними.The disadvantages of the above criteria include the difficulty of registering emerging changes in the native drug (with the exception of the cessation of movement), as well as the need for constant and prolonged monitoring of the same field of view. At the same time, the native preparation has an additional damaging effect of temperature fluctuations and drying. In addition, the above criteria are only indirect signs by which it is necessary to judge the inability of the processed material to cause the development of the disease when it enters the patient’s tissue. A biological sample is required [3], for which laboratory animals highly sensitive to the disease and long-term (several months) follow-up are required.

Наиболее близким нашему изобретению является способ, предложенный Ф.П.Коваленко с соавт. (Коваленко Ф.П., Расулов С.М., Хакбердиев П.С. и др. Способ определения жизнеспособных протосколексов эхинококка в пробе in vitro. - Авторское свидетельство №1635961. Бюл. №11 от 1991 г.). Данный способ взят в качестве прототипа.Closest to our invention is the method proposed by F.P. Kovalenko et al. (Kovalenko F.P., Rasulov S.M., Hakberdiev P.S. et al. Method for the determination of viable echinococcus protoscolexes in an in vitro sample. - Copyright certificate No. 1635961. Bull. No. 11 of 1991). This method is taken as a prototype.

Способ-прототип состоит в следующем.The prototype method is as follows.

На предметное стекло помещают две капли взвеси исследуемых протосколексов (после воздействия испытуемым агентом) в физиологическом растворе. Первая капля контрольная, вторая опытная. С помощью фильтровальной бумаги из второй капли удаляют физиологический раствор и наносят на протосколексы одну каплю глицерина. Обе капли покрывают покровным стеклом и тотчас подвергают микроскопии при малом увеличении микроскопа. У живых протосколексов под влиянием глицерина наблюдается контрактура тела. При этом протосколексы уменьшаются в размере 1,5-2 раза по сравнению с контролем, утрачивают округлую форму, приобретают неправильные очертания, паренхима тела протосколексов просветляется, известковые тельца становятся невидимыми. По внешнему виду протосколексы напоминают кристаллы. Указанные изменения наступают через 1-2 секунды и наблюдаются в течение 30-40 минут после добавления глицерина. У погибших протосколексов при добавлении глицерина указанные изменения при сравнении с контролем не наблюдаются.On a glass slide, two drops of a suspension of the studied protoscolexes (after exposure to the test agent) in physiological saline are placed. The first drop is control, the second is experimental. Using filter paper, saline is removed from the second drop and one drop of glycerol is applied to the protoscolexes. Both drops are covered with a coverslip and immediately subjected to microscopy at a small magnification of the microscope. In living protoscolexes under the influence of glycerol, body contracture is observed. At the same time, protoscolexes are reduced in size 1.5-2 times compared with the control, lose their rounded shape, acquire irregular shapes, the parenchyma of the body of protoscolexes is enlightened, the calcareous bodies become invisible. In appearance, protoscolexes resemble crystals. These changes occur within 1-2 seconds and are observed within 30-40 minutes after the addition of glycerol. In the dead protoscolexes with the addition of glycerol, these changes are not observed when compared with the control.

К недостаткам прототипа следует отнести следующие моменты.The disadvantages of the prototype should include the following points.

1. Используемый критерий - появление контрактуры у живых протосколексов и отсутствие таковой у погибших - являются лишь косвенным признаком, по которому приходится судить об эффективности антипаразитарного воздействия и неспособности обработанных зародышевых элементов вызывать болезнь, т.е. формировать кисты.1. The criterion used - the appearance of contracture in living protoscolexes and the absence of such in the dead - are only an indirect sign by which it is necessary to judge the effectiveness of the antiparasitic effect and the inability of the treated germ elements to cause the disease, i.e. form cysts.

2. Регистрация сокращения и обездвиживание возможны только у протосколексов, у которых в исходном состоянии движения заметны и активны. У большинства интактных протосколексов в эхинококковой кисте движения малозаметны, а в выводковых капсулах - вообще трудно фиксируемы. После воздействия агентов, обладающих гипертоническими свойствами (3-30% NaCl, спирт, 80-100% глицерин и др.), протосколексы уже находятся в состоянии контрактуры, что ограничивает использование способа.2. Registration of reduction and immobilization are possible only for protoscolexes, in which in the initial state the movements are noticeable and active. In most intact protoscolexes, movements in the echinococcal cyst are hardly noticeable, and in brood capsules they are generally difficult to detect. After exposure to agents with hypertonic properties (3-30% NaCl, alcohol, 80-100% glycerol, etc.), protoscolexes are already in a state of contracture, which limits the use of the method.

3. После воздействия сколексоцидным агентом в клинической ситуации протосколексы попадают на благоприятные условия для своего развития. При этом не исключается обратимость изменений в протосколексах, что не учитывается в прототипе. Напротив, протосколексы подвергаются дополнительному воздействию неблагоприятных факторов, что может повлечь за собой ложноположительную оценку эффективности воздействия.3. After exposure to a scolexocidal agent in a clinical situation, protoscolexes are placed on favorable conditions for their development. In this case, the reversibility of changes in protoscolexes is not excluded, which is not taken into account in the prototype. On the contrary, protoscolexes are additionally exposed to adverse factors, which may entail a false positive assessment of the effectiveness of the effect.

Целью изобретения является создание объективного и приближенного к биологической пробе способа тестирования методов обезвреживания зародышевых элементов эхинококка, применяемых для профилактики рецидивов болезни.The aim of the invention is the creation of an objective and close to a biological test method for testing methods for the neutralization of germinal elements of echinococcus, used to prevent relapse of the disease.

Сущность изобретенияSUMMARY OF THE INVENTION

Соблюдая стерильность, в пробирку помещают взвесь из однократно отмытого в физиологическом растворе осадка из свежевзятого содержимого гидатидной кисты. Производят микроскопию нативного препарата из осадка. Пригодным для эксперимента считается материал, в котором имеются зрелые протосколексы и выводковые капсулы.Observing sterility, a suspension from a sediment from the freshly taken contents of a hydatid cyst, once washed in physiological saline, is placed in a test tube. Microscopy of the native preparation from the sediment is performed. Suitable material for the experiment is material in which mature protoscolexes and brood capsules are present.

По 0,2-0,5 мл взвеси зародышевых элементов помещают в пробирки с испытуемыми препаратами, в т.ч. физиологическим раствором (для контроля) либо воздействуют тестируемыми физическими факторами необходимое количество времени. После необходимой экспозиции зародышевые элементы отмываются физиологическим раствором и флаконы с ними помещаются в термостат при температуре 32-38°С на 12-48 часов. Все процедуры проводятся с соблюдением стерильности.0.2-0.5 ml of suspension of the germinal elements are placed in test tubes with the tested drugs, including physiological saline (for control) or they are affected by the tested physical factors for the required amount of time. After the necessary exposure, the germinal elements are washed with physiological saline and the vials with them are placed in a thermostat at a temperature of 32-38 ° C for 12-48 hours. All procedures are carried out in compliance with sterility.

По истечении срока инкубации оцениваются наличие и количество микроацефалоцист в каждом флаконе. В контрольном флаконе у большей части протосколексов из ножки формируются микроацефалоцисты (см. чертеж: нативный препарат, увеличение 8×8; поз.1 - протосколекс, поз.2 - микроацефалоциста).At the end of the incubation period, the presence and quantity of microacephalocysts in each vial is assessed. In the control bottle, for the most part of protoscolexes, microacephalocysts are formed from the stem (see drawing: native preparation, magnification 8 × 8; pos. 1 - protoscolex, pos. 2 - microacephalocyst).

Воздействие на зародышевые элементы эхинококка считается эффективным, если микроацефалоцисты не сформировались.The effect on the germinal elements of echinococcus is considered effective if microacephalocysts have not formed.

Пример конкретного использования предлагаемого способаAn example of a specific use of the proposed method

Способ, предложенный в качестве изобретения, применен для изучения антипаразитарной активности 3% формалина при экспозиции в течение 2 минут.The method proposed as an invention is used to study the antiparasitic activity of 3% formalin upon exposure for 2 minutes.

Соблюдая стерильность, в пробирку поместили взвесь из однократно отмытого в физиологическом растворе осадка свежевзятого содержимого гидатидной кисты больного. При микроскопии осадок содержит зрелые протосколексы и выводковые капсулы.Observing sterility, a suspension was placed in a test tube from a precipitate of freshly extracted contents of the patient’s hydatide cyst, which was washed once in physiological saline. At microscopy, the sediment contains mature protoscolexes and brood capsules.

По 0,5 мл взвеси зародышевых элементов поместили в пробирку с 3% формалином и с 0,9% раствором NaCl (контроль). После необходимой экспозиции зародышевые элементы отмыли 4-кратно теплым физиологическим раствором и флаконы с ними поместили в термостат при температуре 32-38°С. Все процедуры проводились с соблюдением стерильности.0.5 ml of suspension of germ elements was placed in a test tube with 3% formalin and 0.9% NaCl solution (control). After the necessary exposure, the germinal elements were washed 4 times with warm saline and the vials with them were placed in a thermostat at a temperature of 32-38 ° С. All procedures were carried out in compliance with sterility.

По истечении 12-48 часов инкубации при микроскопии содержимого осадка из флаконов оценивались наличие и количество микроацефалоцист в каждом флаконе. В контрольном флаконе у большей части протосколексов из ножки сформировались микроацефалоцисты размером до 1/3-1/2 объема протосколекса. Во флаконе с обработанными 3% формалином зародышевыми элементами микроацефалоцист не обнаружено.After 12-48 hours of incubation, microscopy of the contents of the sediment from the vials evaluated the presence and amount of microacephalocysts in each vial. In the control bottle, for the most part of protoscolexes, microacephalocysts up to 1/3-1 / 2 of the protoscolex volume were formed from the peduncle. In a bottle with germinal elements treated with 3% formalin, microacephalocysts were not detected.

Признаки, отличающиеся от прототипаSigns that differ from the prototype

В отличие от известных способов изучения эффективности повреждающего действия различных способов на зародышевые элементы эхинококка, проводимых in vitro, в том числе и в прототипе, в предлагаемом способе оценивается сохранение способности протосколексов формировать микроацефалоцисты (начальную стадию эхинококковой кисты) после воздействия испытуемых сколиксоцидных агентов, тем самым проба приближена к биологической пробе.In contrast to the known methods for studying the effectiveness of the damaging effects of various methods on the germinal elements of echinococcus carried out in vitro, including in the prototype, the proposed method assesses the preservation of the ability of protoscolexes to form microacephalocysts (the initial stage of an echinococcal cyst) after exposure to test scolixocidal agents, thereby the sample is close to a biological sample.

Положительный эффект изобретенияThe beneficial effect of the invention

Ключевым моментом исследований по поиску оптимальных сколиксоцидных агентов является объективность учитываемых критериев оценки жизнеспособности зародышевых элементов паразита, на обезвреживание которых направлено воздействие. К настоящему моменту известными критериями являются двигательная активность протосколексов при температуре 37-40°С, количество известковых телец и морфологическая структура паренхимы, короны крючьев и кутикулярной оболочки [1]. Кроме того, оценивается способность протосколексов окрашиваться в нативном препарате и вызывать образование эхинококковых кист у лабораторных животных при постановке биологической пробы. За исключением последнего критерия (биологической пробы) все остальные критерии являются косвенными признаками неспособности обработанных зародышевых элементов вызывать болезнь (эхинококкоз), т.к. для микроорганизмов могут быть характерны свойства регенерации организма из отдельной их части или нескольких клеток.The key point of research on the search for optimal scoliotic agents is the objectivity of the criteria for assessing the viability of the germinal elements of the parasite, the effect of which is aimed at neutralizing them. To date, the known criteria are the motor activity of protoscolexes at a temperature of 37-40 ° C, the amount of calcareous bodies and the morphological structure of the parenchyma, the crown of the hooks and cuticular membrane [1]. In addition, the ability of protoscolexes to stain in the native preparation and cause the formation of echinococcal cysts in laboratory animals when staging a biological sample is evaluated. With the exception of the last criterion (biological test), all other criteria are indirect signs of the inability of the treated germ elements to cause the disease (echinococcosis), because microorganisms may be characterized by the properties of the regeneration of an organism from a separate part of them or several cells.

Оценка способности формирования микроацефалоцист из зародышевых элементов, учитываемая по предлагаемому способу, является более объективным и приближенным к биологической пробе критерием, по сравнению с другими критериями, оцениваемыми in vitro.Evaluation of the ability to form microacephalocysts from germ elements, taken into account by the proposed method, is a more objective criterion that is closer to a biological sample, compared with other criteria evaluated in vitro.

Кроме того, при тестировании ограничивается до минимума воздействие других повреждающих моментов на испытуемые зародышевые элементы эхинококка, которые имеют место при других способах (окрашивание, колебания температуры и т.д.). В способе учитывается возможность обратимости изменений в протосколексах, происходящих после воздействия агентами. Более того, моделируется ситуация, приближенная к клинической, при которой обработанные сколексоцидными агентами протосколексы попадают в благоприятные условия.In addition, when testing, the effect of other damaging moments on the test germinal elements of echinococcus, which occurs with other methods (staining, temperature fluctuations, etc.), is minimized. The method takes into account the possibility of reversibility of changes in protoscolexes that occur after exposure to agents. Moreover, a situation close to clinical is simulated, in which protoscolexes treated with scolexocidal agents fall into favorable conditions.

Способ прост в исполнении, не требует дополнительного оборудования и больших материальных затрат.The method is simple to implement, does not require additional equipment and high material costs.

Информация, принятая во вниманиеInformation taken into account

RU 1635961, 23.03.1991. - прототип.RU 1635961, 03.23.1991. - prototype.

1. Бирюков Ю.В. и др. Обработка полости кист при гидативном эхинококкозе. Хирургия, 1984, №5, с.27-29.1. Biryukov Yu.V. et al. Treatment of the cavity of cysts with hydroactive echinococcosis. Surgery, 1984, No. 5, pp. 27-29.

2. Гилевич М.Ю. Выбор метода обработки полости фиброзной капсулы при эхинококкэктомии. Хирургия, 1984, №4, с.74-76.2. Gilevich M.Yu. The choice of method for treating the cavity of the fibrous capsule with echinococcectomy. Surgery, 1984, No. 4, pp. 74-76.

3. Коваленко Ф.П. и др. Влияние низкочастотного ультразвука на жизнеспособность зародышевых элементов ларвоцистоднокамерного и многокамерного эхинококков в эксперименте in vitro. Мед. паразитол., 1986, №6, с.31-36.3. Kovalenko F.P. et al. The effect of low-frequency ultrasound on the viability of the germinal elements of the larvocystic chamber and multichamber echinococci in an in vitro experiment. Honey. parasitol., 1986, No. 6, p.31-36.

Claims (1)

Способ оценки сохранения жизнеспособности зародышевых элементов эхинококка после воздействия физическим или химическим фактором in vitro и проведения микроскопии, отличающийся тем, что проводят инкубацию зародышевых элементов эхинококка, обработанных химическим веществом или физическим фактором при температуре 32-38°С в течение 12-48 ч, после чего оценивают жизнеспособность по наличию и количеству развившихся микроацефалоцист.A method for assessing the preservation of viability of echinococcus germ elements after exposure to a physical or chemical factor in vitro and microscopy, characterized in that the echinococcus germ elements, treated with a chemical or physical factor, are incubated at a temperature of 32-38 ° C for 12-48 hours, after which assess the viability by the presence and number of developed microacephalocysts.
RU2003109590/15A 2003-04-04 2003-04-04 METHOD FOR in vitro EVALUATING GERMINAL ECHINOCOCCUS ELEMENTS VIABILITY RU2267786C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2003109590/15A RU2267786C2 (en) 2003-04-04 2003-04-04 METHOD FOR in vitro EVALUATING GERMINAL ECHINOCOCCUS ELEMENTS VIABILITY

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2003109590/15A RU2267786C2 (en) 2003-04-04 2003-04-04 METHOD FOR in vitro EVALUATING GERMINAL ECHINOCOCCUS ELEMENTS VIABILITY

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2003109590A RU2003109590A (en) 2005-02-10
RU2267786C2 true RU2267786C2 (en) 2006-01-10

Family

ID=35207992

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2003109590/15A RU2267786C2 (en) 2003-04-04 2003-04-04 METHOD FOR in vitro EVALUATING GERMINAL ECHINOCOCCUS ELEMENTS VIABILITY

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2267786C2 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
MD111Z (en) * 2008-11-17 2010-06-30 Общественное Медико-Санитарное Учреждение Научно-Исследовательский Институт В Области Охраны Матери И Ребенка Method for assessing the viability of Echinococcus protoscolexes in vitro

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
MD111Z (en) * 2008-11-17 2010-06-30 Общественное Медико-Санитарное Учреждение Научно-Исследовательский Институт В Области Охраны Матери И Ребенка Method for assessing the viability of Echinococcus protoscolexes in vitro

Also Published As

Publication number Publication date
RU2003109590A (en) 2005-02-10

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Dvorak et al. Trypanosoma cruzi: Interaction with vertebrate cells in vitro: I. Individual interactions at the cellular and subcellular levels
CN106667982B (en) A method of preparing zebra fish thrombus model
Durham THE MECHANISM OF REACTION TO PERITONEAL INFECTION. ¹
CN105641716A (en) Imaging model in small animal living bodies with echinococcus granulosus and construction method thereof
RU2267786C2 (en) METHOD FOR in vitro EVALUATING GERMINAL ECHINOCOCCUS ELEMENTS VIABILITY
CN108079363A (en) A kind of kit and its application that cell processing is taken off for animal tissue
Lehr et al. Intravital fluorescence microscopy for the study of leukocyte interaction with platelets and endothelial cells
Frost et al. Pyogenic osteomyelitis: diffusion in live and dead bone with particular reference to the tetracycline antibiotics
Gershenfeld Iodine as a virucidal agent
CN111565760B (en) Aqueous composition for detecting leakage of body fluid
RU2238562C2 (en) Method for intraoperational quick test diagnostics for efficiency of antiparasitic treatment in case of echinococcectomy
Ahmed et al. Xyloglucan based in situ gel: Formulation Development and evaluation of in situ ophthalmic gel of Brimonidine tartarate
CN109260458A (en) Collagen Implant is preparing the purposes in operation for glaucoma auxiliary reconstruction
De Biaggi et al. Ascorbic acid levels of aqueous humor of dogs after experimental phacoemulsification
RU2808738C1 (en) Method for evaluating process of formation of vascular network on chorioallantoic membrane of chicken embryo
Cheyne Recent essays by various authors on bacteria in relation to disease
RU2811124C1 (en) Ophthalmic medicinal films based on biostimulator from cattle brain tissue with addition of silver nanoparticles
CN116270593A (en) Application of hesperetin in preparation of medicine for improving cognitive dysfunction caused by sepsis
Goldberg An approach to the development of in vitro toxicological methods
SU1635961A1 (en) Method for viable protoscoleces of echinococcus in vitro determination
RU2256179C1 (en) Method for detecting nerve fibers of adrenergic and cholinergic nature in tissue
Liepsch Biofluid mechanics–an interdisciplinary research area of the future
RU2623860C2 (en) Method for blood diagnostics for parasitary diseases based on leukogram change after ultrasound impact
RU2349251C1 (en) Method of secondary post-traumatic intraocular hemorrhage forecast
RU2179724C2 (en) Method for determining energoinformation influence applied to human being

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20060405