RU2234093C2 - Вольтамперометрический способ определения инсулина - Google Patents
Вольтамперометрический способ определения инсулина Download PDFInfo
- Publication number
- RU2234093C2 RU2234093C2 RU2002117812/15A RU2002117812A RU2234093C2 RU 2234093 C2 RU2234093 C2 RU 2234093C2 RU 2002117812/15 A RU2002117812/15 A RU 2002117812/15A RU 2002117812 A RU2002117812 A RU 2002117812A RU 2234093 C2 RU2234093 C2 RU 2234093C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- solution
- potential
- insulin
- electrode
- mol
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
Изобретение относится к области медицины, а именно к методам исследования, и предназначено для дифференциальной диагностике сахарного диабета. Регистрируют катодные кривые без предварительного электрохимического концентрирования вещества на поверхности электрода. Проводят предварительное перемешивание и деаэрацию раствора путем пропускания азота с содержанием кислорода менее 0,001% в течение 150 с при потенциале -1,45 В. В качестве рабочего электрода используют ртутно-пленочный игольчатый. Регистрируют поляризационные кривые при линейной скорости развертки потенциала 50 мВ/с. Концентрацию инсулина определяют по высоте пика в интервале потенциалов от -0,8 до -0,9 В относительно хлор-серебряного электрода на фоне 0,01 моль/л раствора калия хлорида с добавлением 5 моль/л раствора винной кислоты до рН 3,0. Способ позволяет увеличить чувствительность и повысить экспрессность диагностики. 5 табл.
Description
Изобретение относится к области аналитической химии, в частности к вольтамперометрическому способу определения гормона инсулина, и может быть использовано в дифференциальной диагностике сахарного диабета.
Инсулин - гормон, вырабатывающийся в β-клетках островков Лангерганса поджелудочной железы, по химической структуре представляющий соединение белковой природы, содержащее 51 аминокислотный остаток. Молекула инсулина состоит из двух цепей: из цепи А (21 аминокислотный остаток) и цепи В (30 остатков), соединенных дисульфидным мостиком. Биологический предшественник - проинсулин представляет собой одну цепь, состоящую из субъединиц А и В, соединенных между собой так называемым С-пептидом (31 аминокислотный остаток у человека) [1].
На сегодняшний день в клинической практике для количественной оценки инсулина используются радиоиммунологический и иммуноферментный методы.
Радиоиммунный метод заключается в проведении реакции связывания свободных лигандов: инсулина пробы и меченого изотопа 125I инсулиноспецифичными антителами. Радиоактивность меченого лиганда, связанного с антителами, обратно пропорциональна концентрации инсулина в исследуемой жидкости [2; 3].
Иммуноферментный метод заключается в количественной оценке антител способом встречного электроиммуноосмофореза. Для осуществления данного метода проводят анализ антигена методом встречного иммуноэлектрофореза и после окрашивания пластинок вырезают участки геля с окрашенным преципитатом, элюируют их 0,1% раствором натрия додецилсульфата в 0,1 моль/л ацетатном буфере, рН 5,0, с последующим фотометрированием элюата [4].
Наиболее близким способом является вольтамперометрический метод определения инсулина на классическом ртутном капающем электроде в растворе Брдички (0,1 моль/л раствор амммония гидроксида в 0,1 моль/л растворе аммония хлорида в присутствии 0,0016 моль/л раствора кобальта хлорида) [5]. Данный способ выбран в качестве прототипа.
Недостатками указанного метода является то, что ртутный капающий электрод является очень токсичным и громоздким, а содержащийся в фоновом растворе аммония гидроксид быстро улетучивается из ячейки, поэтому использование условий, приведенных в прототипе, делают невозможным применение данного способа.
Целью изобретения является увеличение чувствительности и экспрессности способа.
Поставленная цель достигается техническим решением, представляющим собой вольтамперометрический способ определения инсулина на приборе ТА-2 путем регистрации катодных кривых без предварительного электрохимического концентрирования вещества на поверхности электрода. Раствор инсулина предварительно перемешивают и деаэрируют. Для этого через раствор пропускают азот с содержанием кислорода менее 0,001%. Пропускание азота проводят в течение 150 с при потенциале - 1,45 В. В качестве рабочего используют ртутно-пленочный игольчатый электрод. Затем регистрацию поляризационных кривых проводят при линейной скорости развертки потенциала 50 мВ/с. Концентрацию инсулина определяют по высоте пика в интервале потенциалов от -0,8 до -0,9 В относительно хлор-серебряного электрода. Определение проводят на фоне 0,01 моль/л раствора калия хлорида, в который добавляют 5 моль/л раствор винной кислоты до рН 3,0.
Новым в способе является то, что проводят предварительное перемешивание и деаэрацию раствора путем пропускания азота с содержанием кислорода менее 0,001% в течение 150 с при потенциале - 1,45 В на приборе ТА-2. В качестве рабочего электрода используют ртутно-пленочный (игольчатый). Регистрацию поляризационных кривых проводят после перемешивания при линейной скорости развертки потенциала 50 мВ/с, а концентрацию инсулина определяют по высоте пика в интервале потенциалов от -0,8 до -0,9 В относительно хлор-серебряного электрода на фоне 0,01 моль/л раствора калия хлорида с добавлением 5 моль/л раствора винной кислоты до рН 3,0.
Отличительные признаки проявили в заявляемой совокупности новые свойства: увеличение чувствительности (10-4-10-5 мг/л) и экспрессности анализа.
С учетом изложенного следует считать заявляемое решение соответствующим критерию “существенные отличия”.
Все условия определения инсулина подобраны экспериментально. Приготовление фоновых и стандартных растворов органического вещества в воде являются общепринятыми.
В процессе поиска оптимальных условий вольтамперометрического определения инсулина было изучено влияние ряда факторов (индикаторный электрод, фоновый электролит, его концентрация и рН, время и потенциал перемешивания путем пропускания азота, границы и скорость развертки потенциала) на высоту аналитического сигнала (табл.1-5).
Учитывая, что прототип для определения инсулина в качестве фонового электролита предлагает раствор Брдички, были использованы предложенные условия. Однако при работе на приборе ТА-2 нами не было получено четкого пика при использовании раствора Брдички, причем находящийся в растворе аммония гидроксид быстро улетучивался, вследствие чего дальнейший анализ был невозможен. Также были исследованы растворы аммония нитрата, натрия гидрофосфата, калия хлорида, лития хлорида, смесь лития хлорида и разведенной серной кислоты различной концентрации. Исходя из полученных результатов, в качестве фонового электролита был выбран раствор калия хлорида, так как на нем наблюдалась четкая волна восстановления инсулина, кроме того, данный раствор обеспечивал хорошую электропроводность, широкую рабочую область и необходимую площадь для обработки сигнала, был прост в приготовлении, к преимуществам также можно отнести продолжительный срок годности.
Оптимальная концентрация раствора калия хлорида составила 0,01 моль/л. В более концентрированных растворах мы не наблюдали прироста от добавки при наличии большого остаточного тока, тогда как более разбавленный раствор был неустойчив во времени.
В предлагаемом способе в качестве индикаторного электрода использовали пленку ртути на серебряной проволоке, упакованной во фторопластовый пакет (игольчатый электрод). Преимуществом такого электрода является возможность получения более узких и высоких пиков, служащих аналитической характеристикой определяемого вещества, что повышает разрешающую способность метода. Органические вещества способны образовывать с ртутью устойчивые комплексы или труднорастворимые соли.
Оптимальное значение рН фонового электролита составило 3,0. В щелочной среде при подобранных условиях сигнал инсулина отсутствовал, тогда как в нейтральной был слабо выражен, при изменении рН в более кислую сторону (менее 3,0) сужалась рабочая область электрода, при этом невозможно было зафиксировать пик инсулина. Оптимальным подкисляющим агентом была выбрана винная кислота, так как серная загрязняла фоновую линию, а на хлороводородной мы не наблюдали воспроизводимости результатов.
Оптимальное время перемешивания и деаэрации раствора путем пропускания азота составило 150 с, так как до данного значения линия фона была загрязнена кислородом и высота сигнала возрастала пропорционально времени, а после выбранного значения была получена чистая фоновая линия и высота сигнала почти не изменялась, поэтому именно указанное время мы определили как наиболее приемлемое (табл.1).
Оптимальный потенциал перемешивания путем пропускания азота через раствор составил - 1,45 В. При потенциале 0,2 В высота сигнала была минимальной, а в области от -1,5 до -1,3 В имела колоколообразную форму с максимумом при - 1,45 В (табл.2).
Оптимальный параметр границ развертки потенциала был установлен при постоянстве конечного потенциала соответствующего -1,3 В и переменной величине начального значения. Сдвиг нижней границы потенциала в более отрицательную область был нецелесообразным, так как наблюдали процесс восстановления водорода, кроме того, при данном значении рабочая область электрода достигала предела, тогда как при начальном потенциале 0,3 В сигнал инсулина резко уменьшался, что связано с десорбцией молекул ртути из электрода в раствор, тогда как при начальном потенциале 0,2 В мы наблюдали появление выраженного пика, но при сужении области развертки сигнал заметно уменьшался (табл.3).
Важным для определения инсулина вольтамперометрическим методом является выбор скорости развертки потенциала. Оптимально экспериментально установленной является 50 мВ/с. Изменение скорости развертки потенциала в сторону увеличения или уменьшения заметно понижало высоту аналитического сигнала, при этом уменьшалась и разрешающая способность метода, что затрудняло обработку полярограмм, увеличивало время анализа и не позволяло определять очень низкие концентрации инсулина (табл.4).
Пример I. Определение инсулина вольтамперометрическим методом в растворе
В кварцевый стаканчик, емкостью 20 мл, наливают 10 мл 0,01 моль/л раствора калия хлорида, добавляют 5 моль/л раствор винной кислоты до рН 3,0. При потенциале - 1,45 В раствор перемешивают и деаэрируют путем пропускания азота с содержанием кислорода менее 0,001% в течение 150 с. Затем отключают газ и фиксируют вольтамперограмму при скорости развертки потенциала 50 мВ/с, начиная от потенциала 0,2 В. Отсутствие пиков свидетельствует о чистоте фона.
Затем добавляют N капель объемом 0,01 мл стандартного раствора инсулина 1·10-4 мг/л и при потенциале - 1,45 В раствор перемешивают и деаэрируют путем пропускания азота в течение 150 с. Затем отключают газ и фиксируют вольтамперограмму при скорости развертки потенциала 50 мВ/с, начиная от потенциала 0,2 В. Аналитический сигнал для указанной концентрации инсулина регистрируют в диапазоне потенциалов от -0,8 до -0,9 В.
Установленные условия впервые позволили количественно определить инсулин путем регистрации вольтамперных кривых при потенциалах от -0,8 до -0,9 В на фоне 0,01 моль/л раствора калия гидроксида при рН 3,0. Нижняя граница определяемых содержаний инсулина составляет 1·10-5 мг/л. Относительное стандартное отклонение для диапазона концентраций 1·10-4-1·10-5 мг/л, соответствующих содержанию данного гормона в крови, не превышает 0,5 (табл.5).
Время единичного анализа не превышает 10 мин.
Предложенный авторами способ позволяет увеличить чувствительность и экспрессность определения инсулина в водной и биологических средах, а также позволяют разработать методику определения содержания микроколичеств инсулина в плазме, сыворотке крови.
Источники информации
1. Руководство по клинической лабораторной диагностике / Под ред. В.В. Меньшикова. - М.: Медицина, 1982. - 576 с.
2. Кауфман А.С., Северин О.В., Ли Д.Х. Способ радиоиммуннохимического анализа // Патент РФ №2149405.
3. Кауфман А.С., Северин О.В., Ли Д.Х. Способ радиоиммуннохимического анализа // Патент РФ №2454831.
4. Чигрин В.В., Соколов И.И., Каневчева И.С. Способ иммунноэлектроосмофореза // Патент РФ №4655809114.
5. Мискиджьян С.П. Полярография лекарственных препаратов / Мискиджьян С.П., Кравченюк Л.П. - Киев: Вища школа, 1976. – 232 с.
Claims (1)
- Вольтамперометрический способ определения инсулина, заключающийся в регистрации катодных кривых без предварительного электрохимического концентрирования вещества на поверхности электрода, отличающийся тем, что проводят предварительное перемешивание и деаэрацию раствора путем пропускания азота с содержанием кислорода менее 0,001% в течение 150 с при потенциале -1,45 В, в качестве рабочего электрода используют ртутно-пленочный игольчатый, затем регистрируют поляризационные кривые при линейной скорости развертки потенциала 50 мВ/с, а концентрацию инсулина определяют по высоте пика в интервале потенциалов от (-0,8) до (-0,9) В относительно хлорсеребряного электрода на фоне 0,01 моль/л раствора калия хлорида с добавлением 5 моль/л раствора винной кислоты до рН, равной 3,0.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2002117812/15A RU2234093C2 (ru) | 2002-07-02 | 2002-07-02 | Вольтамперометрический способ определения инсулина |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2002117812/15A RU2234093C2 (ru) | 2002-07-02 | 2002-07-02 | Вольтамперометрический способ определения инсулина |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2002117812A RU2002117812A (ru) | 2004-04-27 |
RU2234093C2 true RU2234093C2 (ru) | 2004-08-10 |
Family
ID=33412606
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2002117812/15A RU2234093C2 (ru) | 2002-07-02 | 2002-07-02 | Вольтамперометрический способ определения инсулина |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2234093C2 (ru) |
-
2002
- 2002-07-02 RU RU2002117812/15A patent/RU2234093C2/ru not_active IP Right Cessation
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Trojanowicz et al. | Recent advances in flow injection analysis | |
Wang | Electroanalytical techniques in clinical chemistry and laboratory medicine | |
Green et al. | [1] Chemistry of dioxygen | |
Grau et al. | Recent methodological advances in the analysis of nitrite in the human circulation: nitrite as a biochemical parameter of the L-arginine/NO pathway | |
Kissinger | Biomedical applications of liquid chromatography-electrochemistry | |
Perez-Olmos et al. | Sequential injection analysis using electrochemical detection: A review | |
CA2038603A1 (en) | Metal-free buffer for ion selective electrode-based assays | |
áVan Der Weken | Chemiluminescence determination of penicillamine via flow injection applying a Quinine–cerium (IV) system | |
Tsikas et al. | Gas chromatography− mass spectrometry analysis of nitrite in biological fluids without derivatization | |
Al-Ghamdi et al. | Electrochemical determination of Cephalothin antibiotic by adsorptive stripping voltammetric technique | |
Klotz et al. | A spectrophotometric titration for the determination of sulfhydryl groups | |
Pan et al. | Determination of difenidol hydrochloride by capillary electrophoresis with electrochemiluminescence detection | |
Laeubli et al. | Barium-selective electrodes based on neutral carriers and their use in the titration of sulfate in combustion products | |
Li et al. | Study of the catalytic effect of copper (II)–protein complexes on luminol-H2O2 chemiluminescence reaction and its analytical application | |
Ali | Cathodic adsorptive stripping voltammetric determination of the anti-inflammatory drug indomethacin | |
EP0099923A1 (en) | ANALYSIS METHOD AND REAGENT FOR DETERMINING CHLORIDE. | |
RU2234093C2 (ru) | Вольтамперометрический способ определения инсулина | |
Abdullin et al. | Determination of uric acid by voltammetry and coulometric titration | |
US3822116A (en) | Reagent and method for calcium determination | |
Waddill et al. | Determination of Cysteine with Ferricyanide by Amperometric Titration with Two Polarized Electrodes | |
Qassim et al. | Indirect Way for the Assay of Captopril Drug in Dosage FormsUsing1, 10-Phenanthroline as a Selective Spectrophotometric Agent for Fe (II) Via Homemade CFIA/Merging Zones Technique | |
McCleskey | Fluorometric Method for the Determination of Urea in Blood. | |
Altun et al. | Development and Validation of Voltammetric Techniques for Nabumetone in Pharmaceutical Dosage Form, Human Serum and Urine. | |
Al-Shwaiyat et al. | Sequential injection spectrophotometric determination of analgine in pharmaceutical formulations using 18-molybdo-2-phosphate heteropoly anion as chromogenic reagent | |
Feng et al. | Determination of chlortetracycline in body fluids with the complex cation of chlortetracycline–europium (III)–trioctylphosphine oxide by total internal reflected fluorescence at a water/tetrachloromethane interface |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20050703 |