RU2229520C1 - Cyclodecapeptide antibiotic laterocidin with broad spectrum of antagonistic effect, strain of bacterium brevibacillus laterosporus eliciting broad spectrum of antagonistic effect as producer of antibiotic laterocidin - Google Patents

Cyclodecapeptide antibiotic laterocidin with broad spectrum of antagonistic effect, strain of bacterium brevibacillus laterosporus eliciting broad spectrum of antagonistic effect as producer of antibiotic laterocidin Download PDF

Info

Publication number
RU2229520C1
RU2229520C1 RU2002129351/13A RU2002129351A RU2229520C1 RU 2229520 C1 RU2229520 C1 RU 2229520C1 RU 2002129351/13 A RU2002129351/13 A RU 2002129351/13A RU 2002129351 A RU2002129351 A RU 2002129351A RU 2229520 C1 RU2229520 C1 RU 2229520C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
laterocidin
strain
antibiotic
broad spectrum
antagonistic effect
Prior art date
Application number
RU2002129351/13A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU2002129351A (en
Inventor
н Р.Р. Азизбек (RU)
Р.Р. Азизбекян
Т.В. Овчинникова (RU)
Т.В. Овчинникова
Т.Н. Шамшина (RU)
Т.Н. Шамшина
А.А. Тагаев (RU)
А.А. Тагаев
Т.А. Смирнова (RU)
Т.А. Смирнова
З.А. Якименко (RU)
З.А. Якименко
Н.И. Кузнецова (RU)
Н.И. Кузнецова
А.С. Арсеньев (RU)
А.С. Арсеньев
А.И. Кузин (RU)
А.И. Кузин
А.Г. Соболь (RU)
А.Г. Соболь
М.В. Орлова (RU)
М.В. Орлова
Original Assignee
Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов"
Институт биоорганической химии им. М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов", Институт биоорганической химии им. М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН filed Critical Федеральное государственное унитарное предприятие "Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов"
Priority to RU2002129351/13A priority Critical patent/RU2229520C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2229520C1 publication Critical patent/RU2229520C1/en
Publication of RU2002129351A publication Critical patent/RU2002129351A/en

Links

Abstract

FIELD: antibiotics, biotechnology, microbiology. SUBSTANCE: invention relates to manufacturing the novel antibiotic laterocidin. Laterocidin shows antagonistic effect against bacteria, cyanobacteria, phytopathogenic fungi and protozoa. Laterocidin is a cyclodecapeptide antibiotic and represents white amorphous substance of the formula: [cyclo-(L-Val-L-Om-L-Leu-D-Tyr-L-Pro-L-Phe-D-Phe-L-Asn-L-Asp-L-Leu)] and molecular mass 1224.4 Da. Producer of laterocidin is the strain of bacterium Brevibacillus laterosporus that is obtained from the natural strain of the same species as result of multi-step selection. The strain is deposited at number VKPEM B-8287. The strain shows activity against series of Gr+ and Gr- microorganisms, phytopathogenic fungi and protozoa microorganisms. Application of the strain and laterocidin provides expanding the assortment of antagonists with broad spectrum of effect. EFFECT: valuable medicinal properties of antibiotic. 3 cl, 4 tbl, 8 ex

Description

Изобретение относится к микробиологии, биотехнологии и, в частности, к производству средств бактериального происхождения для борьбы с болезнями растений и животных.The invention relates to microbiology, biotechnology and, in particular, to the production of means of bacterial origin for combating diseases of plants and animals.

В настоящее время в качестве средств борьбы с возбудителями болезней растений в основном используются химические фунгициды. Несмотря на высокую эффективность, ряд недостатков химических средств защиты растений (возникновение устойчивости у возбудителей, отсутствие селективного эффекта, токсичность для теплокровных) диктуют необходимость поиска новых соединений. В качестве альтернативных средств защиты растений могут быть использованы бактериальные фунгицидные препараты, в состав которых входят штаммы микроорганизмов, проявляющих антагонистическую активность по отношению к различным биологическим объектам.Currently, chemical fungicides are mainly used as a means of combating plant pathogens. Despite its high efficiency, a number of shortcomings of chemical plant protection products (the emergence of resistance in pathogens, the lack of a selective effect, toxicity to warm-blooded animals) necessitate the search for new compounds. As alternative plant protection products, bacterial fungicidal preparations can be used, which include strains of microorganisms that exhibit antagonistic activity against various biological objects.

Широкое применение так называемых “классических” антибиотиков привело к возникновению резистентных форм болезнетворных микроорганизмов, что создает серьезные социальные и медицинские проблемы. Одним из способов решения данной проблемы является поиск антибиотиков нового поколения, к которым относятся пептидные антибиотики. Интерес к ним обусловлен механизмом их действия, вызывающего физические нарушения клеточных мембран микроорганизмов. Предполагается, что такой механизм действия в определенной степени обеспечивает снижение вероятности возникновения устойчивости болезнетворных бактерий.The widespread use of the so-called “classic” antibiotics has led to the emergence of resistant forms of pathogens, which creates serious social and medical problems. One way to solve this problem is to search for new generation antibiotics, which include peptide antibiotics. Interest in them is due to the mechanism of their action, which causes physical disturbances in the cell membranes of microorganisms. It is assumed that such a mechanism of action to a certain extent reduces the likelihood of the emergence of resistance of pathogenic bacteria.

В настоящее время известен ряд бациллярных штаммов, способных продуцировать пептидные антибиотики, обладающие антибактериальной и/или фунгицидной активностью. Характерными особенностями бациллярных пептидных антибиотиков и фунгицидов является их нерибосомальный синтез и содержание необычных (орнитин и др.) и D-аминокислот. Так, описаны штаммы Bacillus licheniformis, синтезирующие низкомолекулярные (мол. масса 1400-3200) полипептиды и липопептиды, обладающие широким спектром антагонистического действия (1, 2). Штаммы Bacillus subtilis продуцируют ряд антимикробных факторов. Микобациллин - анионный 13-членный циклический полипептид с мол. массой ~1800, обладает широким спектром действия против бактерий, простейших и грибков (3). Новый класс липопептидных фунгицидов объединяет активные пептиды семейств итурина, сурфактина и фенгицина (4). Итурины (4) и бацилломицины (5) - нейтральные или анионные циклогептапептиды с мол. массой ~1000, соединенные с жирной кислотой либо сложноэфирной связью с образованием лактонного цикла (итурины), либо пептидной связью в цикле (бацилломицины) (6). Итурины и бацилломицины имеют ограниченную антибактериальную активность и широкий спектр активности против грибов и дрожжей. Сурфактин - циклический липопептид, содержащий семь гидрофобных аминокислотных остатков, соединенных с β-гидроксижирной кислотой (7). Это мощное поверхностно активное соединение, известное также как антибактериальный и фунгицидный агент. Фенгицин (8) и плипастатин (9) - липопептиды, содержащие десять аминокислот и липидную часть, расположенную на N-конце молекулы. Они отличаются от итурина и сурфактина присутствием таких необычных аминокислот, как орнитин и allo-треонин. Известна группа циклодекапептидов (грамицидин S и тироцидины), продуцируемая штаммами Bacillus brevis, обладающая антибактериальной и слабой фунгицидной активностью (10). Имеются сведения о штаммах Bacillus laterosporus, ингибирующих рост бактерий и грибов (11, 19, 20). Из штамма Bacillus laterosporus MK-PNG-276A выделены лолоатины А, В, С, Д - группа циклических декапептидов тироцидинового семейства, проявляющих антагонистическую активность в отношении грамположительных бактерий Staphylococcus aureus, Staphylococcus ssp., Streptococcus ssp., Enterococcus faecicum и дрожжеподобных грибов Candida albicans, но не активных по отношению к грамоотрицательным бактериям Pseudomonas mendocina и Pseudomonas marginata (12, 13). Сведения об антагонистической активности этих веществ в отношении простейших, цианобактерий, дрожжей Saccharomyces cerevisiae и фитопатогенных грибов отсутствуют. Штамм - продуцент лолоатинов Bacillus laterosporus MK-PNG-276A выбран в качестве ближайшего аналога заявляемого штамма с широким спектром антагонистического действия.Currently, a number of bacillary strains are known that are capable of producing peptide antibiotics having antibacterial and / or fungicidal activity. Characteristic features of bacillary peptide antibiotics and fungicides are their non-ribosomal synthesis and the content of unusual (ornithine, etc.) and D-amino acids. Thus, strains of Bacillus licheniformis are described that synthesize low molecular weight (molecular weight 1400-3200) polypeptides and lipopeptides with a wide spectrum of antagonistic action (1, 2). Strains of Bacillus subtilis produce a number of antimicrobial factors. Mycobacillin is an anionic 13-membered cyclic polypeptide with mol. weighing ~ 1800, has a wide spectrum of action against bacteria, protozoa, and fungi (3). A new class of lipopeptide fungicides combines the active peptides of the families of iturin, surfactin and fengicin (4). Iturins (4) and bacillomycin (5) are neutral or anionic cycloheptapeptides with mol. weighing ~ 1000, combined with a fatty acid or an ester bond with the formation of a lactone cycle (iturins), or a peptide bond in the cycle (bacillomycin) (6). Iturins and bacillomycin have limited antibacterial activity and a wide range of activity against fungi and yeast. Surfactin is a cyclic lipopeptide containing seven hydrophobic amino acid residues connected to β-hydroxy fatty acid (7). This is a powerful surface-active compound, also known as an antibacterial and fungicidal agent. Fengicin (8) and plipastatin (9) are lipopeptides containing ten amino acids and a lipid part located at the N-terminus of the molecule. They differ from iturin and surfactin in the presence of such unusual amino acids as ornithine and allo-threonine. A known group of cyclodecapeptides (gramicidin S and thyrocidins) produced by strains of Bacillus brevis, which has antibacterial and weak fungicidal activity (10). There is evidence of strains of Bacillus laterosporus that inhibit the growth of bacteria and fungi (11, 19, 20). Loloatins A, B, C, D were isolated from the Bacillus laterosporus MK-PNG-276A strain, a group of cyclic decapeptides of the thyrocidic family that exhibit antagonistic activity against gram-positive bacteria Staphylococcus aureus, Staphylococcus ssp., Streptococcus spp., Enterococcus funecum faecum funecida but not active against gram-negative bacteria Pseudomonas mendocina and Pseudomonas marginata (12, 13). There is no information on the antagonistic activity of these substances against protozoa, cyanobacteria, Saccharomyces cerevisiae yeast, and phytopathogenic fungi. The strain producing Lacatoins Bacillus laterosporus MK-PNG-276A is selected as the closest analogue of the claimed strain with a wide spectrum of antagonistic action.

Поставлена задача: расширить арсенал средств на основе циклических декапептидов, используемых для борьбы с возбудителями болезней растений и животных.The task: to expand the arsenal of products based on cyclic decapeptides used to combat pathogens of plants and animals.

Задача решена путем:The problem is solved by:

- выделения циклодекапептидного антибиотика широкого спектра антагонистического действия латероцидина;- isolation of a cyclodecapeptide antibiotic of a wide spectrum of antagonistic action of laterocidine;

- получения штамма бактерий Brevibacillus laterosporus ВКПМ В-8287, продуцирующего антибиотик латероцидин и обладающего широким спектром антагонистического действия, обусловленного в том числе и антибиотиком латероцидином.- obtaining a strain of bacteria Brevibacillus laterosporus VKPM B-8287, which produces the antibiotic laterocidin and has a wide spectrum of antagonistic action, including due to the antibiotic laterocidin.

Заявляемый циклодекапептидиый антибиотик, названный нами латероцидин, не известен из источников информации. Латероцидин обладает антагонистическим действием против бактерий, цианобактерий, фитопатогенных грибов и простейших (таблица 1). Латероцидин представляет собой белое аморфное твердое вещество, имеющее формулу [cyclo-(L-Val-L-Orn-L-Leu-D-Tyr-L-Pro-L-Phe-D-Phe-L-Asn-L-Asp-L-Leu)] и молекулярную массу 1224,4. Латероцидин растворяется в метаноле, этаноле, других низших спиртах, не растворяется в воде.The inventive cyclodecapeptidium antibiotic, called us laterocidin, is not known from sources of information. Laterocidin has an antagonistic effect against bacteria, cyanobacteria, phytopathogenic fungi and protozoa (table 1). Laterocidin is a white amorphous solid having the formula [cyclo- (L-Val-L-Orn-L-Leu-D-Tyr-L-Pro-L-Phe-D-Phe-L-Asn-L-Asp- L-Leu)] and a molecular weight of 1224.4. Laterocidin is soluble in methanol, ethanol, other lower alcohols, not soluble in water.

Заявляемый штамм выделен нами в результате многоступенчатой селекции из природного штамма Brevibacillus laterosporus. Он депонирован во Всероссийской коллекции промышленных микроорганизмов под номером ВКПМ В-8287.The inventive strain was isolated by us as a result of multistage selection from a natural strain of Brevibacillus laterosporus. It is deposited in the All-Russian Collection of Industrial Microorganisms under the number VKPM V-8287.

Штамм Brevibacillus laterosporus ВКПМ В-8287 заявляетсяThe strain of Brevibacillus laterosporus VKPM B-8287 is claimed

- как продуцент антибиотика латероцидина и- as a producer of the antibiotic laterocidine and

- как штамм, обладающий широким спектром антагонистического действия.- as a strain with a wide spectrum of antagonistic action.

Заявляемый штамм Brevibacillus laterosporus ВКПМ В-8287 имеет следующие характеристики:The inventive strain of Brevibacillus laterosporus VKPM B-8287 has the following characteristics:

1. Культурально-морфологические признаки.1. Cultural and morphological characteristics.

Аэробные грамположительные подвижные палочки размером 0,5-0,7×2,5-5,0 мкм капсулу не образуют. Вегетативные клетки - палочки со жгутиками, перитрихи. Споры овальные, с каноэвидными включениями, прикрепленными к одной стороне споры. Размер спор равен 0,9-1,2×1,5-1,7 мкм. Через 24 часа роста на богатых агаризованных средах [NBY г/л: питательный бульон (nutrient broth)-8; дрожжевой экстракт (yeast extract) - 3, агар-агар - 20; ДПС г/л: дрожжи эприновые - 30, кукурузная мука - 15, агар-агар - 20; ГД г/л: гидролизные дрожжи - 45, агар-агар 20] штамм образует округлые колонии 3-4 мм в диаметре с гладкой поверхностью кремового цвета и неровным краем.Aerobic gram-positive movable sticks with a size of 0.5-0.7 × 2.5-5.0 μm do not form a capsule. Vegetative cells - sticks with flagella, peritrichi. The spores are oval, with canoe-like inclusions attached to one side of the spores. The size of the spores is 0.9-1.2 × 1.5-1.7 microns. After 24 hours of growth on rich agarized media [NBY g / L: nutrient broth -8; yeast extract (yeast extract) - 3, agar-agar - 20; DPS g / l: yeast - 30, corn flour - 15, agar-agar - 20; GD g / l: hydrolysis yeast - 45, agar-agar 20] strain forms round colonies 3-4 mm in diameter with a smooth cream-colored surface and an uneven edge.

2. Культивирование штамма.2. Cultivation of the strain.

При выращивании в жидкой питательной среде [NBY (г/л): питательный бульон (nutrient broth) - 8; дрожжевой экстракт (yeast extract) - 3] при 28-30°С со встряхиванием (250 об/мин) равномерный рост культуры наблюдается по всему объему. К 96 часам культивирования наблюдается преимущественно 90-95% спор и 5-10% вегетативных клеток. Титр культуры после 96 часов культивирования составляет ~3,0×109 мл.When grown in liquid nutrient medium [NBY (g / l): nutrient broth (nutrient broth) - 8; yeast extract (yeast extract) - 3] at 28-30 ° C with shaking (250 rpm) uniform growth of the culture is observed throughout the volume. By 96 hours of cultivation, mainly 90-95% of spores and 5-10% of vegetative cells are observed. The culture titer after 96 hours of cultivation is ~ 3.0 × 10 9 ml.

3. Физиолого-биохимические признаки.3. Physiological and biochemical characteristics.

Штамм сбраживает глюкозу, мальтозу, фруктозу. Не сбраживает сахарозу и лактозу. Образует лецитиназу; не гидролизует крахмал; гидролизует казеин и желатину. Мочевину не расщепляет. Образует твин-эстеразу.The strain ferments glucose, maltose, fructose. Does not ferment sucrose and lactose. Forms lecithinase; does not hydrolyze starch; hydrolyzes casein and gelatin. Urea does not break down. Forms a twin esterase.

На основании морфологических (наличие каноэвидной структуры, прикрепленной к споре) и физиолого-биохимических признаков выделенный штамм ВКПМ В-8287 отнесен к Bacillus laterosporus (14). По новой классификации - к Brevibacillus laterosporus (15).Based on morphological (the presence of a canoe-like structure attached to the spore) and physiological and biochemical characteristics, the isolated strain VKPM B-8287 is assigned to Bacillus laterosporus (14). According to the new classification, to Brevibacillus laterosporus (15).

4. Антагонистическая активность.4. Antagonistic activity.

Штамм синтезирует антибиотик латероцидин и проявляет антагонистическую активность по отношению к грамположительным бактериям: Bacillus thuringiensis, Bacillus subtilis, Bacillus megaterium, Bacillus cereus, Bacillus sphaericus, Staphylococcus ssp., Staphylococcus aureus, Streptococcus ssp., Enterococcus ssp., Enterococcus faecium, Sarcina flava (таблица 2);Strain synthesizes antibiotic laterotsidin and shows antagonistic activity against Gram-positive bacteria: Bacillus thuringiensis, Bacillus subtilis, Bacillus megaterium, Bacillus cereus, Bacillus sphaericus, Staphylococcus ssp, Staphylococcus aureus, Streptococcus ssp, Enterococcus ssp, Enterococcus faecium, Sarcina flava (... table 2);

грамотрициательным бактериям: Acinetobacter calcoaceticus, Flavobacterium aquatile, Pseudomonas marginata, Pseudomonas mendocina, Xanthomonas ssp., Erwinia herbicola, Erwinia carotovora, Erwinia atroseptica. Vibrio nereis (таблица 2);gram-negative bacteria: Acinetobacter calcoaceticus, Flavobacterium aquatile, Pseudomonas marginata, Pseudomonas mendocina, Xanthomonas ssp., Erwinia herbicola, Erwinia carotovora, Erwinia atroseptica. Vibrio nereis (table 2);

цианобактериям: Nostoc ssp. 29411 и Anabaena ssp. 5781 (таблица 3);cyanobacteria: Nostoc ssp. 29411 and Anabaena ssp. 5781 (table 3);

фитопатогенным грибам: Fusarium graminearum, Fusarium nivale, Fusarium solani, Rhizoctonia solani, Sclerotinia sclerotiorum, Phomopsis helianthi, Phoma solanicola, Alternaria tenuis, Aspergillus niger (таблица 4);phytopathogenic fungi: Fusarium graminearum, Fusarium nivale, Fusarium solani, Rhizoctonia solani, Sclerotinia sclerotiorum, Phomopsis helianthi, Phoma solanicola, Alternaria tenuis, Aspergillus niger (table 4);

дрожжам: Saccharomyces cerevisiae (таблица 4);yeast: Saccharomyces cerevisiae (table 4);

простейшим: Tetrahymena pyriformis u Entamoeba moshkovskii (пример 8).protozoa: Tetrahymena pyriformis u Entamoeba moshkovskii (example 8).

Изобретение иллюстрируется следующими примерамиThe invention is illustrated by the following examples.

Пример 1.Example 1

Микробиологический синтез латероцидина штаммом Brevibacillus laterosporus ВКПМ В-8287, выделение и очистка латероцидина.Microbiological synthesis of laterocidine with a strain of Brevibacillus laterosporus VKPM B-8287, isolation and purification of laterocidine.

Штамм Brevibacillus laterosporus ВКПМ В-8287 культивировали в жидкой питательной среде NBY 72 часа при 30°С на круговой качалке (250 об/мин). Культуральную жидкость центрифугировали при 10000 g 15 мин, полученную надосадочную жидкость отбрасывали, а к трижды отмытому водой при центрифугировании осадку добавляли абсолютный этанол. Спиртовую экстракцию продолжали в течение 20 часов при комнатной температуре. Полученный спиртовой экстракт отделяли центрифугированием (15 мин при 10000g), полученный раствор выпаривали при 56°С до получения кристаллов желто-бурого цвета. Спиртовой раствор кристаллов фракционировали с помощью ВЭЖХ (HPLC) на обращенно-фазовой колонке Delta Pak C-18, 300

Figure 00000001
, 20 мкм (19×300 мм. Waters) при скорости потока 2 мл/мин в линейном градиенте (от 0 до 100%) раствора Б (метанол - ацетонитрил - вода, 75:22,5:2,5) в растворе А (метанол - ацетонитрил - вода, 60:5:35) за 100 мин и затем в растворе Б в течение 20 мин. На колонку наносили по 10 мкл раствора. Полученные фракции, проявляющие антагонистическую активность, объединяли, упаривали досуха и растворяли в этаноле. Далее раствор (по 10 мкл) наносили на обращенно-фазовую колонку Vydac С-18, 300
Figure 00000002
, 5 мкм (4,6×250 мм, Vydac). Элюцию осуществляли при скорости потока 0,5 мл/мин в линейном градиенте (от 10 до 100%) раствора Б в растворе А за 60 мин и затем в растворе Б в течение 20 мин. Фракции, проявляющие антибактериальную активность, объединяли и упаривали досуха. Полученный гомогенный антибиотик представлял собой аморфное вещество белого цвета.The strain Brevibacillus laterosporus VKPM B-8287 was cultured in NBY liquid nutrient medium for 72 hours at 30 ° C on a circular shaker (250 rpm). The culture fluid was centrifuged at 10,000 g for 15 min, the resulting supernatant was discarded, and absolute ethanol was added to the triply washed water by centrifugation. Alcohol extraction was continued for 20 hours at room temperature. The resulting alcoholic extract was separated by centrifugation (15 min at 10000 g), the resulting solution was evaporated at 56 ° C to obtain yellow-brown crystals. The alcohol solution of the crystals was fractionated by HPLC on a Delta Pak C-18, 300 reverse phase column
Figure 00000001
, 20 μm (19 × 300 mm. Waters) at a flow rate of 2 ml / min in a linear gradient (from 0 to 100%) of solution B (methanol - acetonitrile - water, 75: 22.5: 2.5) in solution A (methanol - acetonitrile - water, 60: 5: 35) for 100 minutes and then in solution B for 20 minutes. 10 μl of solution was applied to the column. The obtained fractions exhibiting antagonistic activity were combined, evaporated to dryness and dissolved in ethanol. Next, the solution (10 μl each) was applied to a Vydac C-18, 300 reversed-phase column
Figure 00000002
5 μm (4.6 × 250 mm, Vydac). Elution was carried out at a flow rate of 0.5 ml / min in a linear gradient (from 10 to 100%) of solution B in solution A for 60 minutes and then in solution B for 20 minutes. Fractions exhibiting antibacterial activity were combined and evaporated to dryness. The resulting homogeneous antibiotic was an amorphous white substance.

Пример 2.Example 2

Определение первичной структуры латероцидина.Determination of the primary structure of laterocidine.

Для определения структуры выделенного антибиотика применяли ЯМР-спектроскопию. 1H-ЯМР спектр пептидного антибиотика, растворенного в метаноле (1,7 мг/600 мкл, рН=8,4; 30°С), получен на спектрометре Varian Unity 600 с рабочей частотой 600 МГц. На основании анализа ЯМР-спектра COSY, TOCSY и ROESY при помощи стандартной процедуры (17) проведено полное отнесение сигналов протонов исследуемого образца, которое соответствует аминокислотной последовательности [cyclo-(L-Val-L-Orn-L-Leu-D-Tyr-L-Pro-L-Phe-D-Phe-L-Asn-L-Asp-L-Leu)]. После анализа базы данных SRS выявлено, что пептид с вышеуказанной последовательностью не имеет аналогов. Данный пептид, названный нами латероцидином, относится к семейству тироцидиновых антибиотиков.NMR spectroscopy was used to determine the structure of the isolated antibiotic. 1 H-NMR spectrum of a peptide antibiotic dissolved in methanol (1.7 mg / 600 μl, pH = 8.4; 30 ° C) was obtained on a Varian Unity 600 spectrometer with an operating frequency of 600 MHz. Based on the analysis of the NMR spectrum of COSY, TOCSY and ROESY using the standard procedure (17), the proton signals of the test sample were completely assigned, which corresponds to the amino acid sequence [cyclo- (L-Val-L-Orn-L-Leu-D-Tyr- L-Pro-L-Phe-D-Phe-L-Asn-L-Asp-L-Leu)]. After analyzing the SRS database, it was revealed that the peptide with the above sequence has no analogues. This peptide, called us laterocidin, belongs to the family of thyrocidin antibiotics.

Пример 3.Example 3

Определение молекулярной массы латероцидина.Determination of the molecular weight of laterocidine.

Для определения молекулярной массы латероцидина использовали масс-спектрометрический анализ.Mass spectrometric analysis was used to determine the molecular weight of laterocidine.

MALDI (matrix-assisted lazer desorption ionization) масс-спектометрический анализ пептида проводили на масс-спектрометре VISION 2000 (ThermoBioAnalysis, OK). В качестве матрицы использовали 0,15 М 2,5-дигидроксибензойную кислоту (DHB) в смеси, содержащей 25% метанол и 0,1% трифторуксусную кислоту. Образец облучали УФ-лазером с длиной волны 337 нм и максимальной энергией 250 мкДж в импульсном режиме с частотой 3 нс. При масс-спектрометрическом исследовании пептида (мощность лазера - 57%, число лазерных ударов - 20) был получен пик с m/z 1224,4; соответствующий молекулярному иону нового антибиотика латероцидина.MALDI (matrix-assisted lazer desorption ionization) peptide mass spectrometry was performed on a VISION 2000 mass spectrometer (ThermoBioAnalysis, OK). As a matrix used 0.15 M 2,5-dihydroxybenzoic acid (DHB) in a mixture containing 25% methanol and 0.1% trifluoroacetic acid. The sample was irradiated with a UV laser with a wavelength of 337 nm and a maximum energy of 250 μJ in a pulsed mode with a frequency of 3 ns. During mass spectrometric analysis of the peptide (laser power - 57%, the number of laser strokes - 20), a peak was obtained with m / z 1224.4; corresponding to the molecular ion of the new antibiotic laterocidine.

Пример 4.Example 4

Определение минимальной ингибирующей концентрации латероцидина.Determination of the minimum inhibitory concentration of laterocidine.

Количественную оценку антагонистического действия латероцидина проводили путем определения его минимальной ингибирующей концентрации (МИК). Для этого полученный латероцидин растворяли в минимальном объеме абсолютного этанола и готовили исходный раствор, содержащий 200 мкг/мл 5%-ного этанола. Минимальную ингибирующую концентрацию латероцидина определяли стандартным методом серийных двухкратных разведении исходного раствора антибиотика (18) против каждого тест-микроорганизма (таблица 1).Quantitative assessment of the antagonistic action of laterocidine was carried out by determining its minimum inhibitory concentration (MIC). For this, the obtained laterocidin was dissolved in a minimum volume of absolute ethanol and a stock solution was prepared containing 200 μg / ml of 5% ethanol. The minimum inhibitory concentration of laterocidine was determined by the standard method of serial two-fold dilution of the initial antibiotic solution (18) against each test microorganism (table 1).

Figure 00000003
Figure 00000003

Из данных, приведенных в таблице 1, следует, что латероцидин обладает широким спектром антагонистического действия, наиболее высокий уровень антагонистической активности он проявляет по отношению к фитопатогенным грибам рода Fusarium, простейшим, цианобактериям, патогенным бактериям групп стрептококков, стафиллококков и энтерококков.From the data given in table 1, it follows that laterocidine has a wide spectrum of antagonistic action, it shows the highest level of antagonistic activity against phytopathogenic fungi of the genus Fusarium, protozoa, cyanobacteria, pathogenic bacteria of streptococcus, staphylococcus and enterococci groups.

Пример 5.Example 5

Определение спектра антибактериального действия штамма ВКПМ В-8287 и его сравнение с ближайшим аналогом.Determination of the spectrum of antibacterial action of the strain VKPM B-8287 and its comparison with the closest analogue.

Антибактериальное действие культуры штамма выявляли методом лунок. В 25 мл агаризованной среды NBY добавляли 1 мл 4-х часовой культуры тест- бактерии, в вырезанные лунки диаметром 8 мм вносили по 50 мкл 72-часовой КЖ штамма В-8287. Чашки Петри выдерживали 2 часа при +5°С и далее инкубировали при 30°С. Антагонистическое действие штамма фиксировали через 24 часа по измерению зон ингибирования роста тест-микроорганизмов. Результаты приведены в таблице 2.The antibacterial effect of the strain culture was detected by the hole method. In 25 ml of agarized NBY medium, 1 ml of a 4-hour culture of test bacteria was added, and 50 μl of 72-hour QOL of strain B-8287 were added to cut holes in a diameter of 8 mm. Petri dishes were kept for 2 hours at + 5 ° C and then incubated at 30 ° C. The antagonistic effect of the strain was fixed after 24 hours by measuring zones of inhibition of growth of test microorganisms. The results are shown in table 2.

Figure 00000004
Figure 00000004

Пример 6.Example 6

Определение цианолитической активности штамма ВКПМ В-8287.Determination of the cyanolytic activity of the strain VKPM B-8287.

Цианолитическую активность штамма выявляли при смешанном культивировании. Культуральную жидкость 72-часовой культуры ВКПМ В-8287 вносили в суспензию 14-суточной культуры цианобактерий Nostoc ssp. 29411 или Anabaena ssp. 5781 (16). Измеряли оптическую плотность (при длине волны 590 нм) смеси в нулевой момент времени и после инкубации при 25°С и круглосуточном освещении. Цианолитическую активность оценивали по падению оптической плотности через 24 часа инкубации. Штамм ВКПМ В-8287 вызывал падение оптической плотности в 3-4 раза, что свидетельствовало о его литическом действии на цианобактерии (таблица 3). Лизис клеток цианобактерий выявлялся также при оптической микроскопии.The cyanolytic activity of the strain was detected by mixed cultivation. The culture fluid of the 72-hour culture VKPM B-8287 was introduced into a suspension of a 14-day culture of cyanobacteria Nostoc ssp. 29411 or Anabaena ssp. 5781 (16). Measured the optical density (at a wavelength of 590 nm) of the mixture at zero time and after incubation at 25 ° C and round-the-clock illumination. Cyanolytic activity was evaluated by the decrease in optical density after 24 hours of incubation. Strain VKPM B-8287 caused a drop in optical density by 3-4 times, which indicated its lytic effect on cyanobacteria (table 3). Lysis of cyanobacterial cells was also detected by optical microscopy.

Figure 00000005
Figure 00000005

Сведений о цианолитической активности штамма - ближайшего аналога в источниках информации не обнаружено.No information on the cyanolytic activity of the strain, the closest analogue, was found in the information sources.

Пример 7.Example 7

Определение фунгицидной активности штамма Brevibacillus laterosporus ВКПМ В-8287.Determination of the fungicidal activity of a strain of Brevibacillus laterosporus VKPM B-8287.

Для выявления фунгицидной активности штамма против грибов и дрожжей использовали метод лунок. Культуру тест-микроорганизма помещали в центр чашки Петри с картофельным агаром (бакто-агар - 20 г, глюкоза - 15 г, картофельный отвар - до 1 л). В лунки вносили культуральную жидкость 72-часовой культуры В-8287. Чашки инкубировали в темноте при комнатной температуре. Через 48 часов оценивали наличие или отсутствие зон подавления роста грибов.To identify the fungicidal activity of the strain against fungi and yeast, the hole method was used. The culture of the test microorganism was placed in the center of the Petri dish with potato agar (bacto-agar - 20 g, glucose - 15 g, potato broth - up to 1 l). The culture fluid of the 72-hour B-8287 culture was added to the wells. The plates were incubated in the dark at room temperature. After 48 hours, the presence or absence of fungal growth inhibition zones was assessed.

Заявляемый штамм подавлял рост мицелия следующих микроорганизмов: Fusarium graminearum, Fusarium nivale, Fusarium solani, Rhizoctonia solani, Sclerotinia sclerotiorum, Phomopsis helianthi, Phoma solanicola, Alternaria tenuis, Aspergillus niger и Saccharomyces cerevisiae, но не был активен против Candida albicans (таблица 4), в отличие от ближайшего аналога.The inventive strain inhibited the growth of the mycelium of the following microorganisms: Fusarium graminearum, Fusarium nivale, Fusarium solani, Rhizoctonia solani, Sclerotinia sclerotiorum, Phomopsis helianthi, Phoma solanicola, Alternaria tenuis, Aspergillus niger and Saccharomyce cerebra 4, Candice unlike the closest analogue.

Figure 00000006
Figure 00000006

Пример 8.Example 8

Определение активности штамма ВКПМ В-8287 против простейших.Determination of the activity of the strain VKPM B-8287 against protozoa.

Активность штамма ВКПМ В-8287 против простейших определяли при смешанном культивировании штамма и простейших. 72-часовую культуральную жидкость штамма вносили в суспензию клеток простейших. Использовали 4-дневную культуру инфузорий Tetrahymena pyriformis (15-20×10, количество инфузорий подсчитывали микроскопически) или 7-дневную культуру амеб Entamoeba moshkovskii (5-8×103, количество амеб подсчитывали микроскопически). После 24 часов инкубации гибель простейших составляла 100%.The activity of the VKPM B-8287 strain against protozoa was determined by mixed cultivation of the strain and protozoa. The 72-hour culture fluid of the strain was added to a suspension of protozoan cells. A 4-day culture of Tetrahymena pyriformis ciliates was used (15-20 × 10, the number of ciliates was counted microscopically) or a 7-day culture of Entamoeba moshkovskii amoeba (5-8 × 10 3 , the number of amoebas was counted microscopically). After 24 hours of incubation, the death of the protozoa was 100%.

Сведения об антагонистической активности ближайшего аналога против простейших отсутствуют.Information on the antagonistic activity of the nearest analogue against protozoa is absent.

Таким образом, нами получен штамм бактерий Brevibacillus laterosporus ВКПМ В-8287 с широким спектром антагонистического действия, проявляющий антибиотическую активность по отношению к ряду грамположительных и грамотрицательных бактерий, цианобактерий, фитопатогенных грибов, дрожжей и простейших. Он является продуцентом впервые выделенного циклодекапептидного антибиотика, названного нами латероцидином, который также обладает широким, но несколько отличающимся от такового у штамма-продуцента, спектром антагонистического действия. Оба этих объекта могут найти независимое применение в качестве антибактериальных, фунгицидных и антипротозойных средств для борьбы с возбудителями болезней у растений и животных.Thus, we obtained a strain of bacteria Brevibacillus laterosporus VKPM B-8287 with a wide spectrum of antagonistic action, showing antibiotic activity against a number of gram-positive and gram-negative bacteria, cyanobacteria, phytopathogenic fungi, yeasts and protozoa. He is the producer of the first isolated cyclodecapeptide antibiotic, which we called laterocidin, which also has a wide, but slightly different from that of the producer strain, spectrum of antagonistic action. Both of these objects can be independently used as antibacterial, fungicidal and antiprotozoal agents for controlling pathogens in plants and animals.

Список литературыList of references

1. De Lucca A.J., Walsh T.J. 1999. Antifungal peptides: novel therapeutic compouds against emerging pathogens. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 43:1-11.1. De Lucca A.J., Walsh T.J. 1999. Antifungal peptides: novel therapeutic compouds against emerging pathogens. Antimicrobial Agents and Chemotherapy. 43: 1-11.

2. Galvez A.M., Maqueda M., Martinez-Bueno M., Lebbadi M., Valdivia E. 1993. Isolation and physico-chemical characterization of an antifungal and antibacterial peptide produced by Bacillus licheniformis A 12. Appl. Microbiol. Biotechnol. 38:438-442.2. Galvez A.M., Maqueda M., Martinez-Bueno M., Lebbadi M., Valdivia E. 1993. Isolation and physico-chemical characterization of an antifungal and antibacterial peptide produced by Bacillus licheniformis A 12. Appl. Microbiol. Biotechnol. 38: 438-442.

3. Егоров Н.С. 1994. Основы учения об антибиотиках. Издательство МГУ. 422-423.3. Egorov N.S. 1994. Fundamentals of the doctrine of antibiotics. MSU Publishing House. 422-423.

4. Klich M.A., Lax A.R., Bland J.M. 1991. Inhibition of some mycotoxigenic fungi by iturin A, a peptidolipid produced by Bacillus subtilis. Mycopathology. 116:77-80.4. Klich M.A., Lax A.R., Bland J.M. 1991. Inhibition of some mycotoxigenic fungi by iturin A, a peptidolipid produced by Bacillus subtilis. Mycopathology. 116: 77-80.

5. Mhammedi A.F., Peypoux F., Besson F., Michel G. 1982. Bacillomycin F, a new antibiotic of iturin group. Isolation and characterization. J. Antibiot. 35: 306-311.5. Mhammedi A.F., Peypoux F., Besson F., Michel G. 1982. Bacillomycin F, a new antibiotic of iturin group. Isolation and characterization. J. Antibiot. 35: 306-311.

6. Moyne A.L., Cleveland Т.Е., Tuzun S. Small peptides with antipathogenic activity, treated and methods for treating same. U.S. Patent No. 6183736.6. Moyne A.L., Cleveland T.E., Tuzun S. Small peptides with antipathogenic activity, treated and methods for treating same. U.S. Patent No. 6183736.

7. Volpon L., Besson F., Lancelin J. 1999. NMR structure of active and inactive forms of the sterol-dependent antifungal antibiotic bacillomycin L. Eur. J. Biochem. 263:1-12.7. Volpon L., Besson F., Lancelin J. 1999. NMR structure of active and inactive forms of the sterol-dependent antifungal antibiotic bacillomycin L. Eur. J. Biochem. 263: 1-12.

8. Ahimou F., Jacques P., Deleu M. 2000. Surfactin and iturin A effect on Bacillus subtilis surface hydrophobility. Enzyme Microb. Technol. 27:749-754.8. Ahimou F., Jacques P., Deleu M. 2000. Surfactin and iturin A effect on Bacillus subtilis surface hydrophobility. Enzyme Microb. Technol. 27: 749-754.

9. Volpon L., Besson F., Lancelin J. 2000. NMR structure of antibiotics plipastatins A and В from Bacillus subtilis inhibitors of phospholipase A2. FEMS Lett. 485:76-80.9. Volpon L., Besson F., Lancelin J. 2000. NMR structure of antibiotics plipastatins A and B from Bacillus subtilis inhibitors of phospholipase A2. FEMS Lett. 485: 76-80.

10. Hancock R.E.W., Lehrer R. 1998. Cationic peptides as a new source of antibiotics. Trends Biotechnol. 16:82-88.10. Hancock R.E.W., Lehrer R. 1998. Cationic peptides as a new source of antibiotics. Trends Biotechnol. 16: 82-88.

11. O'Donnell В. J. Method of inhibiting fungi by Bacillus laterosporus. 1995. U.S. Patent № 5455028.11. O'Donnell B. J. Method of inhibiting fungi by Bacillus laterosporus. 1995. U.S. Patent No. 5455028.

12. Kelly M.T. Loloatin derivates and analogs. 1999. U.S. Patent № 5962407.12. Kelly M.T. Loloatin derivates and analogs. 1999. U.S. Patent No. 5962407.

13. Gerald J.M., Haden P., Kelly M.T., Andersen R.J. 1999. Loloatins A-D, cyclic decapeptide antibiotics produced in culture by a tropical marine bacterium. J. Nat. Prod., 62:80-85.13. Gerald J.M., Haden P., Kelly M.T., Andersen R.J. 1999. Loloatins A-D, cyclic decapeptide antibiotics produced in culture by a tropical marine bacterium. J. Nat. Prod., 62: 80-85.

14. Определитель бактерий Берджи. 1997. Москва, “Мир”, т.2, стр. 567.14. The determinant of bacteria Bergey. 1997. Moscow, Mir, vol. 2, p. 567.

15. Shida O., Takagi H., Kadowaki К., Komagata К. 1996. Proposal for new genera, Brevibaciillus gen.nov. and Aneurinibacillus gen.nov. Int. J. Sysyt. Bacteriol., 45:939-946.15. Shida O., Takagi H., Kadowaki K., Komagata K. 1996. Proposal for new genera, Brevibaciillus gen.nov. and Aneurinibacillus gen.nov. Int. J. Sysyt. Bacteriol., 45: 939-946.

16. Stanier R.Y., Kunisava R., Mandel M., Cohen-Basire G. 1971. Purification and properties of unicellular blue-green algae (order Chroococcales). Bacteriological Reviews. 35:171-205.16. Stanier R. Y., Kunisava R., Mandel M., Cohen-Basire G. 1971. Purification and properties of unicellular blue-green algae (order Chroococcales). Bacteriological Reviews. 35: 171-205.

17. Wuthrich К. NMR of Proteins and Nucleic Acids. New York: John Wiley Sons, 1986.17. Wuthrich, K. NMR of Proteins and Nucleic Acids. New York: John Wiley Sons, 1986.

18. Woods, G. L. and Washington, J. A, "Antibacterial susceptibility tests: dilution and disk diffusion methods. Manual of Clinical Microbiology (6. sup. th Ed.), Murray, Baron, Pfaller, Tenover and Yolken (Eds.), ASM Press, Washington DC, 1995, pp. 1327-1341.18. Woods, GL and Washington, J. A, "Antibacterial susceptibility tests: dilution and disk diffusion methods. Manual of Clinical Microbiology (6. sup. Th Ed.), Murray, Baron, Pfaller, Tenover and Yolken (Eds.) , ASM Press, Washington DC, 1995, pp. 1327-1341.

19. O’Donnell В.J. Treatment of soil and plants with a composition containing Bacillus laterosporus. 1997. U.S. Patent № 5702701.19. O’Donnell B.J. Treatment of soil and plants with a composition containing Bacillus laterosporus. 1997. U.S. Patent No. 5702701.

20. Yasunaka К. Antibiotic KSY-5 and production thereof. 1991. JP Patent № 3206099.20. Yasunaka K. Antibiotic KSY-5 and production thereof. 1991. JP Patent No. 3206099.

Claims (2)

1. Циклодекапептидный антибиотик широкого спектра антагонистического действия латероцидин, имеющий первичную структуру: [cyclo-(L-Val-L-Orn-L-Leu-D-Tyr-L-Pro-L-Phe-D-Phe-L-Asn-L-Asp-L-Leu)] и молекулярную массу 1224,4 Da.1. Cyclodecapeptide antibiotic with a wide spectrum of antagonistic action of laterocidin having a primary structure: [cyclo- (L-Val-L-Orn-L-Leu-D-Tyr-L-Pro-L-Phe-D-Phe-L-Asn- L-Asp-L-Leu)] and a molecular weight of 1224.4 Da. 2. Штамм бактерий Brevibacillus laterosporus ВКПМ B-8287, обладающий широким спектром антагонистического действия - продуцент антибиотика латероцидина.2. The bacterial strain Brevibacillus laterosporus VKPM B-8287, which has a wide spectrum of antagonistic action, is the producer of the antibiotic laterocidine.
RU2002129351/13A 2002-11-05 2002-11-05 Cyclodecapeptide antibiotic laterocidin with broad spectrum of antagonistic effect, strain of bacterium brevibacillus laterosporus eliciting broad spectrum of antagonistic effect as producer of antibiotic laterocidin RU2229520C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2002129351/13A RU2229520C1 (en) 2002-11-05 2002-11-05 Cyclodecapeptide antibiotic laterocidin with broad spectrum of antagonistic effect, strain of bacterium brevibacillus laterosporus eliciting broad spectrum of antagonistic effect as producer of antibiotic laterocidin

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2002129351/13A RU2229520C1 (en) 2002-11-05 2002-11-05 Cyclodecapeptide antibiotic laterocidin with broad spectrum of antagonistic effect, strain of bacterium brevibacillus laterosporus eliciting broad spectrum of antagonistic effect as producer of antibiotic laterocidin

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2229520C1 true RU2229520C1 (en) 2004-05-27
RU2002129351A RU2002129351A (en) 2004-06-20

Family

ID=32679160

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2002129351/13A RU2229520C1 (en) 2002-11-05 2002-11-05 Cyclodecapeptide antibiotic laterocidin with broad spectrum of antagonistic effect, strain of bacterium brevibacillus laterosporus eliciting broad spectrum of antagonistic effect as producer of antibiotic laterocidin

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2229520C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2701502C1 (en) * 2018-09-28 2019-09-26 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов Национального исследовательского центра "Курчатовский институт" (НИЦ "Курчатовский институт" - ГосНИИгенетика) Crystal-forming bacterial strain brevibacillus laterosporus with a wide spectrum of antagonist activity and use thereof

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
ЕГОРОВ Н.С. Основы учения об антибиотиках. - М.: Высшая школа, 1986, с.167-194. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2701502C1 (en) * 2018-09-28 2019-09-26 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Государственный научно-исследовательский институт генетики и селекции промышленных микроорганизмов Национального исследовательского центра "Курчатовский институт" (НИЦ "Курчатовский институт" - ГосНИИгенетика) Crystal-forming bacterial strain brevibacillus laterosporus with a wide spectrum of antagonist activity and use thereof

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Lim et al. Diffusible and volatile antifungal compounds produced by an antagonistic Bacillus velezensis G341 against various phytopathogenic fungi
Araujo et al. Phytohormones and antibiotics produced by Bacillus subtilis and their effects on seed pathogenic fungi and on soybean root development
Wang et al. Characterization of Fusarium graminearum inhibitory lipopeptide from Bacillus subtilis IB
Bull et al. Syringomycin E produced by biological control agents controls green mold on lemons
Savadogo et al. Identification of surfactin producing strains in Soumbala and Bikalga fermented condiments using polymerase chain reaction and matrix assisted laser desorption/ionization-mass spectrometry methods
JP2002539820A (en) Bacillus pumilus strains for controlling plant diseases
CA2350782A1 (en) Compositions and methods for controlling plant pests
Zin et al. Cultivation-dependent characterization of endophytic actinomycetes
US6183736B1 (en) Small peptides with antipathogenic activity, treated plants and methods for treating same
Rhee Purification and identification of an antifungal agent from Streptomyces sp. KH-614 antagonistic to rice blast fungus, Pyricularia oryzae
Ma et al. Identification and characterization of a cyclic lipopeptide iturin A from a marine-derived Bacillus velezensis 11-5 as a fungicidal agent to Magnaporthe oryzae in rice
Shams-Ghahfarokhi et al. Terrestrial bacteria from agricultural soils: versatile weapons against aflatoxigenic fungi
Nam et al. Structural characterization and temperature-dependent production of C 17-fengycin B derived from Bacillus amyloliquefaciens subsp. plantarum BC32-1
Jiang et al. Screening and identification of Aspergillus activity against Xanthomonas oryzae pv. oryzae and analysis of antimicrobial components
Tedsree et al. Antifungal activity of endophytic Streptomyces strains from Dendrobium orchids and the secondary metabolites of strain DR7-3 with its genome analysis
Lievens et al. Dominant rhizosphere bacteria as a source for antifungal agents
KR100423121B1 (en) Bacillus Amyloliquefaciens CHO104 with Antagonic Property and Antimicrobial Compound Produced by This Strain
Roberts et al. Metabolite production by entomopathogenic fungi
Novikova et al. Isolation, identification, and antifungal activity of a Gamair complex formed by Bacillus subtilis M-22, a producer of a biopreparation for plant protection from mycoses and bacterioses
RU2229520C1 (en) Cyclodecapeptide antibiotic laterocidin with broad spectrum of antagonistic effect, strain of bacterium brevibacillus laterosporus eliciting broad spectrum of antagonistic effect as producer of antibiotic laterocidin
Chandrakar et al. Studies on the production of broad spectrum antimicrobial compound polypeptide (actinomycins) and lipopeptide (fengycin) from Streptomyces sp. K-R1 associated with root of Abutilon indicum against multidrug resistant human pathogens
Kim et al. Identification of antifungal niphimycin from Streptomyces sp. KP 6107 by screening based on adenylate kinase assay
Gupta et al. Antimicrobial effect of a cyclic peptide Nostophycin isolated from wastewater cyanobacteria, Nostoc calcicola
KR100485877B1 (en) Microorganism producing tacrolimus and mass-productive method of tacrolimus using the same
Singh et al. Purification and chemical characterization of antimicrobial compounds from a new soil isolate Streptomyces rimosus MTCC 10792

Legal Events

Date Code Title Description
PC43 Official registration of the transfer of the exclusive right without contract for inventions

Effective date: 20170327

MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20181106