RU2203070C2 - Method for obtaining immunotropic substances out of swine skin - Google Patents
Method for obtaining immunotropic substances out of swine skin Download PDFInfo
- Publication number
- RU2203070C2 RU2203070C2 RU2001115857/14A RU2001115857A RU2203070C2 RU 2203070 C2 RU2203070 C2 RU 2203070C2 RU 2001115857/14 A RU2001115857/14 A RU 2001115857/14A RU 2001115857 A RU2001115857 A RU 2001115857A RU 2203070 C2 RU2203070 C2 RU 2203070C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- supernatant
- centrifuged
- ammonium sulfate
- immunotropic
- precipitate
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к иммунологии, иммунофармакологии, медицинской биотехнологии и фармацевтической промышленности. Иммунотропные вещества из кожи после соответствующих испытаний могут найти применение как лекарственные средства для иммунокоррекции в качестве иммуномодуляторов. The invention relates to immunology, immunopharmacology, medical biotechnology and the pharmaceutical industry. Immunotropic substances from the skin after appropriate tests can be used as drugs for immunocorrection as immunomodulators.
Известен способ получения тимопоэтина из эмбриональной кожи крупного рогатого скота путем ее измельчения в растворе бикарбоната аммония, центрифугирования, ультрафильтрации, центрифугирования, гель-хроматографии, гидрофобной хроматографии, анионообменной хроматографии в системе высокоэффективной жидкостной хроматографии, обессоливания и лиофилизации [1]. Однако процесс получения технологически довольно сложен, выход препарата незначителен, этап разделения путем высокоэффективной жидкостной хроматографии трудно применить при промышленном получении препарата. Иммунотропное вещество тимопоэтин, полученное из эмбриональной кожи крупного рогатого скота описанным выше методом, обладает активностью в иммунологических тестах: индуцирует дифференцировку протимоцитов и стимулирует образование циклического GMP в Т-клеточной линии СЕМ. Однако оно обнаружено лишь в эмбриональной коже и отсутствует в коже крупного рогатого скота. A known method of producing thymopoietin from embryonic skin of cattle by grinding it in a solution of ammonium bicarbonate, centrifugation, ultrafiltration, centrifugation, gel chromatography, hydrophobic chromatography, anion exchange chromatography in a system of high performance liquid chromatography, desalination and lyophilization [1]. However, the production process is technologically quite complicated, the yield of the drug is negligible, the separation stage by high performance liquid chromatography is difficult to apply in the industrial preparation of the drug. The immunotropic substance thymopoietin, obtained from the embryonic skin of cattle by the method described above, has activity in immunological tests: it induces differentiation of protymocytes and stimulates the formation of cyclic GMP in the TEM cell line CEM. However, it is found only in embryonic skin and is absent in the skin of cattle.
В качестве прототипа взят наиболее близкий к настоящему изобретению способ получения иммунотропных веществ из кожи свиньи путем измельчения кожи в растворе хлористого натрия, центрифугирования, нагревания, центрифугирования, обработки надосадочной жидкости ацетоном, центрифугирования, хроматографии на Сефадексе G-50, обессоливания и лиофилизации [2]. Этот же способ ранее был запатентован как способ получения вещества с молекулярной массой от 1400 до 15000 Д из кожи свиньи, влияющего на пролиферацию и дифференцировку кератиноцитов человека [3]. Однако, применяя этот метод, получают два иммунотропных вещества; одно - с молекулярной массой более 15000 Д и другое - с молекулярной массой от 1400 до 15000 Д, стимулирующие В-систему иммунитета. Они увеличивают количество антителообразующих клеток селезенки мышей на пике первичного иммунного ответа. Однако эти вещества не влияют на Т-систему иммунитета в тесте восстановления чувствительности фоновых розеткообразующих клеток селезенки тимэктомированных мышей к ингибирующему действию азатиоприна. As a prototype, the method closest to the present invention for producing immunotropic substances from pig skin by grinding the skin in a solution of sodium chloride, centrifugation, heating, centrifugation, treatment of the supernatant with acetone, centrifugation, chromatography on Sephadex G-50, desalination and lyophilization [2] . The same method was previously patented as a method of obtaining substances with a molecular weight of 1400 to 15000 D from pig skin, affecting the proliferation and differentiation of human keratinocytes [3]. However, using this method, two immunotropic substances are obtained; one with a molecular weight of more than 15,000 D and the other with a molecular weight of 1,400 to 15,000 D, which stimulate the B-system of immunity. They increase the number of antibody-forming spleen cells of mice at the peak of the primary immune response. However, these substances do not affect the T-system of immunity in the test to restore the sensitivity of background rosette-forming spleen cells of thimectomized mice to the inhibitory effect of azathioprine.
Цель изобретения - увеличить активность получаемых иммунотропных веществ с помощью заявляемого метода так, чтобы они влияли и на В- и на Т-систему иммунитета. The purpose of the invention is to increase the activity of the resulting immunotropic substances using the inventive method so that they affect both the B and T immunity systems.
Эта цель достигается тем, что в способ, взятый в качестве прототипа, были введены три этапа высаливания сульфатом аммония. До стадии получения "ацетонового порошка" этапы методов совпадают: кожу свиньи измельчают, гомогенизируют в растворе хлористого натрия, центрифугируют, подвергают термоденатурации при 75-85oС в течение 10-20 мин, центрифугируют при 5000-15000 g в течение 10-30 мин, обрабатывают охлажденным до -20oС (или ниже) ацетоном в соотношении 1: 6-1: 8, высушивают "ацетоновый порошок" при комнатной температуре. Далее вводятся следующие этапы: "ацетоновый порошок" растворяют в 0,005-0,015 М растворе трис-HCl буфера рН 6,0-8,0, центрифугируют при 8000-10000 g в течение 10-20 мин при 4-6oС; осадок отбрасывают, а к супернатанту прикапывают насыщенный раствор сульфата аммония в соотношении 2:1-3: 1, центрифугируют при 8000-10000 g в течение 40-50 мин при 4-6oС, доводят рН супернатанта до 3,5-4,5 с помощью 8-10% раствора уксусной кислоты, добавляют сухой сульфат аммония из расчета: 14-15 г на 100 мл супернатанта, центрифугируют при 10000-12000 g в течение 20-30 мин при 4-6oС, гомогенизируют осадок в 0,01-0,02 М трис-НСl рН 7,5-8,5, прикапывают к гомогенату насыщенный раствор сульфата аммония в соотношении 1:1-1,5:1, центрифугируют при 16000-18000 g в течение 20-30 мин при 4-6oС. Далее делают по прототипу: гомогенизируют осадок в 30-50 мл 0,01-0,02 М трис-НСl + 0,14-0,15 М NaCl рН 7,5-8,5, центрифугируют при 16000-18000 g в течение 20-30 мин при 4-6oС, хроматографируют на колонке с Сефадексом G-50, собирают две фракции: одну с молекулярной массой выше 15000 Д и другую - с молекулярной массой от 1400 до 15000 Д, обессоливают и лиофилизируют.This goal is achieved by the fact that in the method, taken as a prototype, three stages of salting out with ammonium sulfate were introduced. Prior to the preparation of the "acetone powder", the method steps are the same: the pig skin is crushed, homogenized in sodium chloride solution, centrifuged, thermo-denatured at 75-85 o C for 10-20 min, centrifuged at 5000-15000 g for 10-30 min , treated with acetone cooled to -20 o C (or lower) in a ratio of 1: 6-1: 8, dried "acetone powder" at room temperature. Next, the following steps are introduced: the “acetone powder" is dissolved in a 0.005-0.015 M solution of Tris-HCl buffer pH 6.0-8.0, centrifuged at 8000-10000 g for 10-20 minutes at 4-6 o C; the precipitate is discarded, and a saturated solution of ammonium sulfate is added dropwise to the supernatant in a ratio of 2: 1-3: 1, centrifuged at 8000-10000 g for 40-50 min at 4-6 o С, the pH of the supernatant is adjusted to 3.5-4, 5 using an 8-10% solution of acetic acid, dry ammonium sulfate is added at the rate of: 14-15 g per 100 ml of supernatant, centrifuged at 10000-12000 g for 20-30 minutes at 4-6 o C, the residue is homogenized at 0 , 01-0.02 M Tris-Hcl pH 7.5-8.5, a saturated solution of ammonium sulfate is added dropwise to the homogenate in a ratio of 1: 1-1.5: 1, centrifuged at 16000-18000 g for 20-30 minutes at 4-6 o C. Next make according to the prototype: the precipitate is homogenized in 30-50 ml of 0.01-0.02 M Tris-Hcl + 0.14-0.15 M NaCl pH 7.5-8.5, centrifuged at 16000-18000 g for 20 -30 min at 4-6 o C, chromatographed on a Sephadex G-50 column, two fractions are collected: one with a molecular weight above 15000 D and the other with a molecular weight from 1400 to 15000 D, desalted and lyophilized.
Температура термоденатурации 75-85oС и время термоденатурации подобраны таким образом, что нужные вещества остаются в растворе, в то время как часть неактивного материала денатурируется. Центрифугирование при 5000-15000 g в течение 10-30 мин и температуре 4-6oС подобраны так, что при этих параметрах денатурированные белки удаляются. При центрифугировании ниже 5000 g и менее 10 мин часть денатурированного неактивного материала остается в супернатанте, что загрязняет препарат. Увеличивать скорость центрифугирования более 15000 g и время более 30 мин не имеет смысла, т.к. при этих условиях денатурированный материал полностью осаждается. Изменение соотношения вес порошка после обезжиривания: объем воды менее 1:4 и более 1:6 приводит к загрязнению препарата. Три стадии высаливания сульфатом аммония подобраны таким образом, что удаляется неактивный материал и супрессорные вещества, а активный материал остается и подвергается очистке. Выбор концентрации буфера (0,005-0,015 М) и его рН (6,0-8,0) обусловлен тем, что в нем не происходит потери активности получаемых веществ, в то же время препараты хорошо разделяются по молекулярным массам на Сефадексе G-50. Хлористый натрий до концентрации 0,14-0,15 М добавляется к буферу для того, чтобы можно было определять активность веществ в пробах сразу после разделения на Сефадексе.The temperature of thermal denaturation of 75-85 o C and the time of thermal denaturation are selected so that the desired substances remain in solution, while some of the inactive material is denatured. Centrifugation at 5000-15000 g for 10-30 min and a temperature of 4-6 o With selected so that with these parameters, the denatured proteins are removed. When centrifuged below 5000 g and less than 10 min, part of the denatured inactive material remains in the supernatant, which contaminates the drug. It does not make sense to increase the centrifugation speed over 15000 g and the time over 30 minutes, because under these conditions, the denatured material is completely precipitated. The change in the ratio of the weight of the powder after degreasing: the volume of water less than 1: 4 and more than 1: 6 leads to contamination of the drug. Three stages of salting out with ammonium sulfate are selected in such a way that inactive material and suppressor substances are removed, and the active material remains and is purified. The choice of buffer concentration (0.005-0.015 M) and its pH (6.0-8.0) is due to the fact that there is no loss of activity of the obtained substances in it, at the same time, the preparations are well separated by molecular weight on Sephadex G-50. Sodium chloride to a concentration of 0.14-0.15 M is added to the buffer so that the activity of substances in the samples can be determined immediately after separation in Sephadex.
Определяли активность иммунотропных веществ в двух тестах: тесте Ерне и азатиоприновом тесте. В тесте Ерне определяли влияние иммунотропных веществ на количество антителообразующих клеток (АОК) селезенки мышей СВА на пике первичного иммунного ответа [2, 4]. Эритроциты барана вводили внутрибрюшинно в 0,5 мл физиологического раствора в концентрации 400 млн/мл. Одновременно подкожно вводили испытуемые препараты в дозе 1, 10 и 100 мкг на мышь. На пятые сутки животных забивали, выделяли селезенки и подсчитывали число зон гемолиза в чашках Петри. Определяли процент АОК по отношению к контролю, принимая среднюю арифметическую в контрольной группе за 100%. Все результаты соотносили со средней арифметической в контрольной группе. The activity of immunotropic substances was determined in two tests: the Erne test and the azathioprine test. The Erne test determined the effect of immunotropic substances on the number of antibody-forming cells (AOKs) of the spleen of CBA mice at the peak of the primary immune response [2, 4]. Sheep red blood cells were injected intraperitoneally in 0.5 ml of physiological saline at a concentration of 400 million / ml. At the same time, the test preparations were administered subcutaneously at a dose of 1, 10, and 100 μg per mouse. On the fifth day, animals were killed, spleens were isolated, and the number of hemolysis zones in Petri dishes was counted. The percentage of AOK relative to the control was determined, taking the arithmetic mean in the control group as 100%. All results were correlated with the arithmetic mean in the control group.
В азатиоприновом тесте Баха определяли влияние иммунотропных веществ на восстановление чувствительности фоновых розеткообразующих клеток (фРОК) селезенки тимэктомированных мышей к ингибирующему действию азатиоприна [5]. Мышей-самцов С 57 В 1/6 тимэктомировали в возрасте 6-8 недель для создания модели частичного иммунодефицита по Т-системе иммунитета и брали в опыт через 2-8 недель после операции. Получали суспензию клеток селезенки. В опытные пробы помимо азатиоприна добавляли испытуемые препараты до конечной концентрации 1, 5, 10, 20, 50 и 100 мкг/мл. Подсчитывали количество фРОК селезенки тимэктомированных мышей на 104 ядросодержащих клеток.In the Bach azathioprine test, the effect of immunotropic substances on the restoration of the sensitivity of background rosette-forming cells (FROC) of the spleen of thimectomized mice to the inhibitory effect of azathioprine was determined [5]. Male C 57 B 1/6 mice were thimectomized at the age of 6-8 weeks to create a model of partial immunodeficiency by the T-system of immunity and were taken 2-8 weeks after surgery. A suspension of spleen cells was obtained. In addition to azathioprine, test preparations were added to the experimental samples to a final concentration of 1, 5, 10, 20, 50, and 100 μg / ml. The number of FROCs of the spleen of thimectomized mice per 10 4 nucleated cells was counted.
Результаты выражали в процентах фРОК по формуле
,
где Мк - средняя арифметическая фРОК в контроле;
Мо - то же, в опыте.The results were expressed as percent of FROC by the formula
,
where MK is the arithmetic mean FROK in the control;
Mo is the same in experience.
Активными считали фракции, для которых процент фРОК был менее 50%. Для сравнения активности препаратов определяли минимальную концентрацию, при которой препарат проявлял активность. Active were considered fractions for which the percentage of FROC was less than 50%. To compare the activity of the drugs, the minimum concentration at which the drug was active was determined.
В табл. 1, 2 и 3 представлено сравнение активности иммунотропных веществ прототипа и заявляемого способа по влиянию на В-систему иммунитета в тесте Ерне и Т-систему иммунитета в тесте восстановления чувствительности фоновых розеткообразующих клеток селезенки тимэктомированных мышей к ингибирующему действию азатипрона. Как видно из этих данных, иммунотропные вещества, получаемые по заявляемому способу, активны в обоих методах: Ерне и азатиоприновом, в то время как вещества, получаемые по прототипу, активны лишь в методе Ерне. Помимо этого, иммунотропные вещества, имеющие одинаковые молекулярные массы и полученные по прототипу и по заявляемому методу, имеют в методе Ерне различный характер зависимости активности от дозы. Иммунотропное вещество 1 (ИВ1), полученное по прототипу, имеет максимальную активность при дозе 10 мкг/мышь, в то время как ИВ1, полученное по заявляемому способу, - при дозе 100 мкг/мышь. Иммунотропное вещество 2 (ИВ2), полученное по прототипу, имеет минимальную активность при дозе 10 мкг/мышь; ИВ2, полученное по заявляемому способу, имеет минимальную активность при 1 мкг/мышь. In the table. 1, 2 and 3 presents a comparison of the activity of the immunotropic substances of the prototype and the proposed method for the effect on the B-system of immunity in the Erne test and the T-system of immunity in the test of restoring the sensitivity of background rosette-forming spleen cells of thimectomized mice to the inhibitory effect of azatipron. As can be seen from these data, the immunotropic substances obtained by the present method are active in both methods: Yerne and azathioprine, while the substances obtained by the prototype are active only in the Yerne method. In addition, immunotropic substances having the same molecular masses and obtained by the prototype and by the claimed method have a different character in the Erne method of the dependence of activity on the dose. The immunotropic substance 1 (IV1) obtained by the prototype has a maximum activity at a dose of 10 μg / mouse, while IV1 obtained by the present method has a dose of 100 μg / mouse. The immunotropic substance 2 (IV2), obtained by the prototype, has a minimum activity at a dose of 10 μg / mouse; IV2 obtained by the present method has minimal activity at 1 μg / mouse.
Таким образом, заявляемый способ позволяет получить более активные иммунотропные вещества, влияющее как на В-, так и на Т-систему иммунитета. Thus, the claimed method allows to obtain more active immunotropic substances, affecting both the B- and T-system of immunity.
Пример 1 (прототип). Example 1 (prototype).
Свиную кожу измельчают ножницами и гомогенизируют в 0,14 М растворе хлористого натрия рН 7,0 при 4oС (1094 Homogenizer, Tecator, Sweden). На 50 г кожи берут 650 мл 0,14 М раствора NaCl (соотношение вес ткани: объем раствора - 1: 13). Гомогенат центрифугируют при 2500g в течение 30 мин при 4oС (центрифуга J-6M/E, ротор 4.2, Beckman, Великобритания). Осадок отбрасывают, а супернатант в объеме 630 мл подвергают термоденатурации при 75oС в течение 20 мин на водяной бане при постоянном перемешивании, смесь охлаждают до 4oС. Денатурированный материал осаждают центрифугированием при 10000 g в течение 20 мин при +4oС (центрифуга J2-21M, ротор JA-14, Beckman, США), а супернатант в объеме 620 мл прикапывают к 4 л ацетона, охлажденного до -20oС. Выпавший осадок отмывают ацетоном путем центрифугирования при 2500 g в течение 15 мин при 4oС и высушивают под тягой при комнатной температуре. В результате получают 800 г "ацетонового порошка" (800±50 мг). Полученный ацетоновый порошок растворяют в 30 мл 0,01 М растворе трис-НСl буфера + 0,15М NaCl pH 8,0 при комнатной температуре. Нерастворимую часть удаляют центрифугированием при 4000 g в течение 30 мин при 4oС, а супернатант наносят на колонку 2,5•100 см с Сефадексом G-50 (2,5х80 см), уравновешенной тем же буфером. Собирают две фракции: одну с молекулярной массой более 15000 Д (иммунотропное вещество 1), а другую - с молекулярной массой от 1400 до 15000 Д (иммунотропное вещество 2), обессоливают и лиофилизируют.Pork skin is ground with scissors and homogenized in a 0.14 M sodium chloride solution, pH 7.0 at 4 ° C. (1094 Homogenizer, Tecator, Sweden). 650 ml of 0.14 M NaCl solution are taken per 50 g of skin (ratio tissue weight: solution volume - 1: 13). The homogenate is centrifuged at 2500g for 30 minutes at 4 ° C. (J-6M / E centrifuge, rotor 4.2, Beckman, UK). The precipitate is discarded, and the supernatant in a volume of 630 ml is subjected to thermal denaturation at 75 ° C for 20 min in a water bath with constant stirring, the mixture is cooled to 4 ° C. The denatured material is precipitated by centrifugation at 10,000 g for 20 min at + 4 ° C ( centrifuge J2-21M, rotor JA-14, Beckman, USA), and the supernatant in a volume of 620 ml was added dropwise to 4 l of acetone cooled to -20 o C. The precipitate was washed with acetone by centrifugation at 2500 g for 15 min at 4 o C and dried under draft at room temperature. The result is 800 g of "acetone powder" (800 ± 50 mg). The obtained acetone powder was dissolved in 30 ml of a 0.01 M Tris-HCl buffer solution + 0.15 M NaCl pH 8.0 at room temperature. The insoluble part is removed by centrifugation at 4000 g for 30 min at 4 o C, and the supernatant is applied to a column of 2.5 • 100 cm with Sephadex G-50 (2.5x80 cm), balanced with the same buffer. Two fractions are collected: one with a molecular weight of more than 15000 D (immunotropic substance 1), and the other with a molecular weight of 1400 to 15000 D (immunotropic substance 2), desalted and lyophilized.
Оба вещества обладают иммунологической активностью в тесте Ерне: увеличивают количество антителообразующих клеток селезенки мышей на пике первичного иммунного ответа, но неактивны в тесте восстановления чувствительности фоновых розеткообразующих клеток селезенки тимэктомированных мышей к ингибирующему действию азатиприна (табл. 1, 2, 3). Иммунотропное вещество 1 (ИВ1) имеет максимальную активность при дозе 10 мкг/мышь, иммунотропное вещество 2 (ИВ2) - при дозе 1 мкг/мышь. Both substances have immunological activity in the Erne test: they increase the number of antibody-forming spleen cells of mice at the peak of the primary immune response, but are inactive in the test to restore the sensitivity of background rosette-forming spleen cells of thimectomized mice to the inhibitory effect of azatiprine (Tables 1, 2, 3). Immunotropic substance 1 (IV1) has a maximum activity at a dose of 10 μg / mouse, immunotropic substance 2 (IV2) - at a dose of 1 μg / mouse.
Пример 2 (по предлагаемому методу)
Свиную кожу измельчают ножницами и гомогенизируют в 0,14 М растворе хлористого натрия pH 7,0 при 4oС (1094 Homogenizer, Tecator, Sweden). На 50 г кожи берут 650 мл 0,14 М раствора NaCl (соотношение вес ткани: объем раствора 1:13). Гомогенат центрифугируют при 2500 g в течение 30 мин при 4oС (центрифуга J-6M/E, ротор 4.2, Beckman, Великобритания). Осадок отбрасывают, а супернатант в объеме 630 мл подвергают термоденатурации при 75oС в течение 20 мин на водяной бане при постоянном перемешивании, смесь охлаждают до 4oС. Денатурированный материал осаждают центрифугированием при 10000g в течение 20 мин при + 4oС (центрифуга J2-21M, ротор JA-14, Beckman, США), а супернатант в объеме 620 мл прикапывают к 4 л ацетона, охлажденного до -20oС. Выпавший осадок отмывают ацетоном путем центрифугирования при 2500 g в течение 15 мин при 4oС и высушивают под тягой при комнатной температуре. В результате получают 800 г "ацетонового порошка" (800±50 мг).Example 2 (by the proposed method)
Pork skin is ground with scissors and homogenized in a 0.14 M sodium chloride solution pH 7.0 at 4 ° C. (1094 Homogenizer, Tecator, Sweden). 650 ml of 0.14 M NaCl solution are taken per 50 g of skin (tissue weight: solution volume ratio 1:13). The homogenate is centrifuged at 2500 g for 30 min at 4 o C (centrifuge J-6M / E, rotor 4.2, Beckman, UK). The precipitate is discarded, and the supernatant in a volume of 630 ml is subjected to thermal denaturation at 75 o C for 20 min in a water bath with constant stirring, the mixture is cooled to 4 o C. The denatured material is precipitated by centrifugation at 10000 g for 20 min at + 4 o C (centrifuge J2-21M, rotor JA-14, Beckman, USA), and the supernatant in a volume of 620 ml was added dropwise to 4 L of acetone cooled to -20 o C. The precipitate was washed with acetone by centrifugation at 2500 g for 15 min at 4 o С and dried under draft at room temperature. The result is 800 g of "acetone powder" (800 ± 50 mg).
Затем его растворяли в 0,01 М трис-НСl буфере рН 8,0 при комнатной температуре и центрифугировали при 10000 g в течение 20 мин при 4oС. Осадок отбрасывали, а к супернатанту прикапывали насыщенный раствор сульфата аммония в соотношении 3:1 при 4oС. Нерастворимую часть удаляли центрифугированием при 10000g в течение 50 мин при 4oС. Доводили рН супернатанта до 4,0 с помощью 10% раствора уксусной кислоты. Затем добавляли сухой сульфат аммония при постоянном помешивании из расчета: 14,6 г на 100 мл супернатанта и 30 г на 100 мл уксусной кислоты, перемешивали при комнатной температуре и центрифугировали при 12000 g в течение 30 мин при 4oС. Супернатант сливали, осадок гомогенизировали в 0,01 М трис-НСl рН 8,0. Затем насыщенный раствор сульфата аммония прикапывали к гомогенату в ледяной бане в соотношении 1,5:1 и центрифугировали при 18000 g в течение 30 мин при 4oС. Супернатант сливали, осадок гомогенизировали в минимальном объеме 0,01М трис-НСl + 0,15 М NaCl рН 8,0 и центрифугировали при 18000 g в течение 30 мин при 4oС. Осадок отбрасывали, а супернатант наносили на колонку 2,5х100 см с Сефадексом G-50 с маркерами: голубым декстраном и DNP-L-аланином. Собирали две фракции: одну с молекулярной массой более 15000 Д (иммунотропное вещество 1, ИВ1) и другую - с молекулярной массой от 1400 до 15000 Д (иммунотропное вещество 2, ИВ2) обессоливали и лиофилизировали.Then it was dissolved in 0.01 M Tris-Hcl buffer pH 8.0 at room temperature and centrifuged at 10,000 g for 20 min at 4 ° C. The precipitate was discarded, and a saturated solution of ammonium sulfate was added dropwise to the supernatant in a ratio of 3: 1 at 4 ° C. The insoluble portion was removed by centrifugation at 10,000 g for 50 min at 4 ° C. The supernatant was adjusted to pH 4.0 with a 10% acetic acid solution. Then dry ammonium sulfate was added with constant stirring at the rate of: 14.6 g per 100 ml of supernatant and 30 g per 100 ml of acetic acid, stirred at room temperature and centrifuged at 12000 g for 30 min at 4 ° C. The supernatant was drained, the precipitate homogenized in 0.01 M Tris-Hcl pH 8.0. Then, a saturated solution of ammonium sulfate was added dropwise to the homogenate in an ice bath in a ratio of 1.5: 1 and centrifuged at 18000 g for 30 min at 4 ° C. The supernatant was drained, the precipitate was homogenized in a minimum volume of 0.01 M Tris-Hcl + 0.15 M NaCl pH 8.0 and centrifuged at 18000 g for 30 min at 4 o C. The precipitate was discarded, and the supernatant was applied to a 2.5 x 100 cm column with Sephadex G-50 with markers: blue dextran and DNP-L-alanine. Two fractions were collected: one with a molecular weight of more than 15000 D (immunotropic substance 1, IV1) and the other with a molecular weight of 1400 to 15000 D (immunotropic substance 2, IV2) were desalted and lyophilized.
Получали иммунотропные вещества 1 и 2, активные как в методе Ерне - увеличивающие количество антителообразующих клеток селезенки мышей на пике первичного иммунного ответа, так и в тесте восстановления чувствительности фоновых розеткообразующих клеток селезенки тимэктомированных мышей к ингибирующему действию азатиприна (табл. 1, 2, 3). В тесте Ерне иммунотропное вещество 1 обладало максимальной активностью в концентрации 100 мкг/мышь, а ИВ2 - в концентрации 10 мкг/мышь. В азатиоприновом тесте ИВ1 обладало активностью в концентрации 20 мкг/мл, а ИВ2 - в концентрации 10 мкг/мл. Received immunotropic substances 1 and 2, active both in the Yerne method - increasing the number of antibody-forming spleen cells of mice at the peak of the primary immune response, and in the test for restoring the sensitivity of background rosette-forming spleen cells of thimectomized mice to the inhibitory effect of azatiprine (Tables 1, 2, 3) . In the Erne test, the immunotropic substance 1 had maximum activity at a concentration of 100 μg / mouse, and IV2 at a concentration of 10 μg / mouse. In the azathioprine test, IV1 had activity at a concentration of 20 μg / ml, and IV2 at a concentration of 10 μg / ml.
Литература
1. Audhya Т. К., Goldstein G. Amino acid sequence of thymopoietin isolated from skin. Ann. N.Y. Acad. Sci. 1988, V. 548, P. 233-240.Literature
1. Audhya, T.K., Goldstein G. Amino acid sequence of thymopoietin isolated from skin. Ann. NY Acad. Sci. 1988, V. 548, P. 233-240.
2. Арион В.Я., Белова О.В., Луканидина Т.А., Сысоева О.Б.,. Дворцова В. В., Бреусов Ю.Н. Иммунологические свойства препаратов из кожи. Бюлл. экспер. биол. мед. - 2000. - Т.129. - 2. - С. 194-197. 2. Arion V.Ya., Belova OV, Lukanidina T.A., Sysoeva O.B.,. Dvortsova V.V., Breusov Yu.N. Immunological properties of skin preparations. Bull. an expert. biol. honey. - 2000. - T.129. - 2. - S. 194-197.
3. Арион В. Я., Белова О.В., Орлова В.Ф., Капитанов А.Б., Лопухин Ю.М. Способ получения вещества из кожи свиньи, влияющего на пролиферацию и дифференцировку кератиноцитов человека. Патент 2038087. Зарегистрирован 27.06.1995. Бюлл. изобрет. откр. 18, С. 24, 1995. 3. Arion V. Ya., Belova OV, Orlova VF, Kapitanov A.B., Lopukhin Yu.M. A method of obtaining a substance from pig skin, affecting the proliferation and differentiation of human keratinocytes. Patent 2038087. Registered on June 27, 1995. Bull. invented open 18, p. 24, 1995.
4. Зигль Э., Бем Э. "Метод локального гемолиза в геле." В кн.: Иммунологические методы. С. 96-107,1979. 4. Siegle E., Boehm E. "The method of local hemolysis in the gel." In the book: Immunological methods. S. 96-107.1979.
5. Dardenne M., Bach J.-F. "The sheep cell rosette assay for the evaluation of thymic hormones. " In: Biologycal activity of thymic hormones. P. 235-243, 1975. 5. Dardenne M., Bach J.-F. "The sheep cell rosette assay for the evaluation of thymic hormones." In: Biologycal activity of thymic hormones. P. 235-243, 1975.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2001115857/14A RU2203070C2 (en) | 2001-06-14 | 2001-06-14 | Method for obtaining immunotropic substances out of swine skin |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2001115857/14A RU2203070C2 (en) | 2001-06-14 | 2001-06-14 | Method for obtaining immunotropic substances out of swine skin |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2001115857A RU2001115857A (en) | 2003-03-10 |
RU2203070C2 true RU2203070C2 (en) | 2003-04-27 |
Family
ID=20250596
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2001115857/14A RU2203070C2 (en) | 2001-06-14 | 2001-06-14 | Method for obtaining immunotropic substances out of swine skin |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2203070C2 (en) |
-
2001
- 2001-06-14 RU RU2001115857/14A patent/RU2203070C2/en not_active IP Right Cessation
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
KR100378787B1 (en) | Shark cartilage extract and anti-angiogenic activity and tumor degeneration effect | |
US4250084A (en) | Purified thymic hormone (THF), its preparation and pharmaceutical compositions containing it | |
JPH09502706A (en) | Bile-derived immunomodulatory composition | |
SU1367837A3 (en) | Method of producing agent selectively inhibiting growth or reproduction of normal and leukemia cells of myeloids | |
JPH0247966B2 (en) | ||
RU2203070C2 (en) | Method for obtaining immunotropic substances out of swine skin | |
RU2295963C1 (en) | Method for producing immunostimulator | |
RU2041717C1 (en) | Biologically active remedy, method for its producing, preparation containing the mentioned remedy and its application method | |
US4394374A (en) | Thymus gland extracts | |
RU2038087C1 (en) | Method for obtaining a substance influencing proliferation and differentiation of human keratinocytes from pig skin | |
JPS60243018A (en) | Endogeneous human carcinostatic factor | |
RU2041715C1 (en) | Biologically active remedy, method for its producing, preparation containing the mentioned remedy and method for applying the preparation | |
EP0122926A1 (en) | Immune stimulator | |
RU2126258C1 (en) | Method of isolating immunologically active substances from neuro- secretory structures of mammalian brain epithalamus | |
JPS62249927A (en) | Proteinous substance and antitumor agent | |
RU2134581C1 (en) | Means for treating irradiated mammalians | |
RU2110267C1 (en) | Method of preparing nucleoproteid complexes from bird embryos showing immunotropic and radioprotective activity | |
RU2327475C1 (en) | Method of production of immonuactive polypeptides/peptides having immunomodulating properties | |
RU2320354C2 (en) | Method for obtaining hemopoiesis-affecting immunostimulating thymic polypeptides | |
EP0673652B1 (en) | Biologically active agent having immunomodulating properties, method for its obtaining and pharmaceutical preparation based on it | |
US3629397A (en) | Therapeutic and diagnostic allergenic extracts and process for preparing same | |
RU2062619C1 (en) | Method of follicle-stimulating preparation preparing from animal adenohypophysis | |
RU2116794C1 (en) | Method of immunomodulating preparation preparing | |
RU2112523C1 (en) | Method of preparing thymus polypeptides for antibacterial resistance enhancement | |
JPS62190128A (en) | Preparation of tumor cell proliferation suppressing and tumor cell killing factor |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20060615 |