RU2194755C2 - Recombinant plasmid dna pad5-f carrying of adenovirus type 5 genome fragment with deletion in gene e1b-55k and strain of mutant adenovirus ade 12 exhibiting selective antitumor activity - Google Patents
Recombinant plasmid dna pad5-f carrying of adenovirus type 5 genome fragment with deletion in gene e1b-55k and strain of mutant adenovirus ade 12 exhibiting selective antitumor activity Download PDFInfo
- Publication number
- RU2194755C2 RU2194755C2 RU2001106247A RU2001106247A RU2194755C2 RU 2194755 C2 RU2194755 C2 RU 2194755C2 RU 2001106247 A RU2001106247 A RU 2001106247A RU 2001106247 A RU2001106247 A RU 2001106247A RU 2194755 C2 RU2194755 C2 RU 2194755C2
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- adenovirus
- gene
- strain
- pad5
- deletion
- Prior art date
Links
Images
Abstract
Description
Изобретение относится к области медицины и биотехнологии, конкретно к генетической инженерии, и представляет собой рекомбинантную плазмиду, несущую фрагмент генома аденовируса 5 типа с делецией в гене Е1В 55К, и полученный гомологичной рекомбинацией с использованием данной плазмиды мутантный штамм аденовируса человека Adel2, обладающий селективной противоопухолевой активностью. The invention relates to medicine and biotechnology, specifically to genetic engineering, and is a recombinant plasmid carrying a fragment of the
Недавние исследования показали, что клетки различных типов человеческих злокачественных опухолей содержат делеции или мутации в гене р53, которые сопровождаются потерей некоторых функций кодируемого им белка [1]. Примерно 50% опухолей человека являются дефектными по р53, включая злокачественные опухоли легких (60%), кишечника (50%), груди (40%), яичников (60%), головы и шеи (60%) [2]. Мутации или делеции гена, кодирующего р53, представляют собой одну из основных причин, которая обуславливает устойчивость опухолевых клеток к стандартным терапевтическим воздействиям [3]. Ген-супрессор (tumor suppressor gene) p53 является одним из основных факторов, препятствующих размножению патологических клеток в организме. В ответ на различные повреждения, грозящие наследственно-передаваемыми изменениями генома (мутагенные воздействия, активация онкогенов, гипоксия и проч.), происходит активация p53, в результате которой клетка прекращает делиться либо погибает путем апоптоза [4, 5]. Однако ряд ДНК-содержащих вирусов, таких как аденовирусы, SV40 и вирус папиломы человека, кодируют белки, которые инактивируют р53 и тем самым позволяют им эффективно реплицироваться в нормальных клетках. Инактивация р53 обеспечивает жизнеспособность клетки в течение репродукции этих вирусов [4, 6, 8]. Район Е1В аденовирусного генома кодирует белок Е1В 55К, который связывает и инактивирует р53. Предполагается, что мутантные варианты вируса, которые не экспрессируют функциональный белок Е1В 55К будут неспособны эффективно реплицироваться в нормальных человеческих клетках, но будут сохранять репликативную активность в опухолевых клетках, дефектных по гену белка р53 и соответственно лизировать их. Recent studies have shown that cells of various types of human malignant tumors contain deletions or mutations in the p53 gene, which are accompanied by the loss of some functions of the protein encoded by them [1]. About 50% of human tumors are p53 defective, including malignant tumors of the lungs (60%), intestines (50%), breast (40%), ovaries (60%), head and neck (60%) [2]. Mutations or deletions of the gene encoding p53 represent one of the main reasons that determines the resistance of tumor cells to standard therapeutic effects [3]. The tumor suppressor gene p53 is one of the main factors that impede the growth of pathological cells in the body. In response to various injuries threatening genetically transmitted changes in the genome (mutagenic effects, activation of oncogenes, hypoxia, etc.), p53 is activated, as a result of which the cell stops dividing or dies by apoptosis [4, 5]. However, a number of DNA-containing viruses, such as adenoviruses, SV40 and human papillomavirus, encode proteins that inactivate p53 and thereby allow them to efficiently replicate in normal cells. Inactivation of p53 ensures cell viability during the reproduction of these viruses [4, 6, 8]. The E1B region of the adenoviral genome encodes the E1B 55K protein, which binds and inactivates p53. It is assumed that mutant variants of the virus that do not express the functional E1B 55K protein will be unable to efficiently replicate in normal human cells, but will retain replicative activity in tumor cells defective in the p53 protein gene and accordingly lyse them.
В настоящее время в зарубежной литературе описаны различные варианты рекомбинантных штаммов аденовируса - как с делециями в различных участках генома, в том числе мутантный вариант аденовируса dl1520, несущий делецию 827 п.н. в области Е1В 55К гена [7, 9 - прототип], так и с клонированными в составе геномной ДНК генами, кодирующими рекомбинантные белки, обладающие антиопухолевой активностью [10, 11]. В работах J. R. Bischoff et аl. и С. Heise et аl. [9, 12] было показано, что мутантный вариант аденовируса dl1520 (другое название - ONYX-015) способен избирательно инфицировать и лизировать р53-дефектные опухолевые клетки человека in vitro, а также обладает онколитической активностью при интратуморальном и внутривенном введении бестимусным nu/nu мышам с привитыми опухолями человека. В настоящее время в США проводятся клинические испытания данного штамма на пациентах с различными формами злокачественных новообразований. Однако в более поздних исследованиях других авторов [13, 14], проведенных с мутантным штаммом dl1520, были получены результаты, противоречащие данным J.R. Bischoff и С. Heise. В этих работах на панели культур клеток, включающей как р53-дефектные и р53-позитивные опухолевые клетки человека, так и нормальные первичные линии клеток человека, было показано, что уровень репликативной активности dl1520 in vitro не коррелирует с р53 статусом использованных клеток. Более того, в работе Rothmann Т. et al. [14] отмечается, что мутантный штамм аденовируса dl1520 инфицирует и лизирует нормальные первичные клетки человека (МЕС - эпителиальные клетки грудной железы, FF105 - фибробласты крайней плоти) с эффективностью, близкой к дикому типу аденовируса. Таким образом, несмотря на то что dl1520 (ONYX-015) используется в настоящее время в клинической практике (фаза 1 клинических испытаний), существуют научно-обоснованные сомнения в его способности к избирательному инфицированию и лизису р53-дефектных опухолевых клеток человека. Currently, various variants of recombinant adenovirus strains are described in foreign literature, such as with deletions in different parts of the genome, including the mutant variant of adenovirus dl1520, carrying a deletion of 827 bp. in the E1B region of the 55K gene [7, 9 - prototype], and with genes cloned in the genomic DNA encoding recombinant proteins with antitumor activity [10, 11]. In the works of J. R. Bischoff et al. and C. Heise et al. [9, 12] it was shown that the mutant variant of the adenovirus dl1520 (also known as ONYX-015) is capable of selectively infecting and lysing p53-defective human tumor cells in vitro, and also has oncolytic activity in intratumoral and intravenous administration to nude / nu mice with vaccinated human tumors. Currently, the USA is conducting clinical trials of this strain on patients with various forms of malignant neoplasms. However, in later studies of other authors [13, 14], carried out with the mutant strain dl1520, results were obtained that contradict J.R. Bischoff and C. Heise. In these studies, a panel of cell cultures, including both p53-defective and p53-positive human tumor cells and normal primary human cell lines, showed that the level of replicative activity of dl1520 in vitro does not correlate with the p53 status of the cells used. Moreover, in the work of Rothmann, T. et al. [14] it is noted that the mutant strain of adenovirus dl1520 infects and lyses normal human primary cells (MEC - epithelial cells of the breast, FF105 - foreskin fibroblasts) with an efficiency similar to that of the wild type of adenovirus. Thus, despite the fact that dl1520 (ONYX-015) is currently used in clinical practice (
Технической задачей изобретения является получение мутантного варианта аденовируса, несущего делецию в гене Е1В 55К, селективно реплицирующегося в р53-дефектных опухолевых клетках и обладающего онколитической активностью. An object of the invention is to obtain a mutant variant of adenovirus carrying a deletion in the E1B 55K gene, selectively replicating in p53-defective tumor cells and having oncolytic activity.
Поставленная задача решается путем конструирования рекомбинантной плазмидной ДНК pAd5-f, несущей 3505 п.н. 5'-области геномной ДНК аденовируса с делецией 1118 п.н. в гене Е1В 55К, которая используется для получения мутантного варианта аденовируса Adel2 путем гомологичной рекомбинации. The problem is solved by constructing recombinant plasmid DNA pAd5-f, carrying 3505 bp 5'-region of adenovirus genomic DNA with a deletion of 1118 bp in the E1B 55K gene, which is used to obtain the mutant variant of Adel2 adenovirus by homologous recombination.
Рекомбинантная плазмида pAd5-f характеризуется следующими признаками:
- имеет длину 6231 п.н. и молекулярную массу 4,05 кДа;
- содержит векторный фрагмент EcoRI-XbaI из плазмиды pRS-2 размером 2726 п.н.The recombinant plasmid pAd5-f is characterized by the following features:
- has a length of 6231 bp and a molecular weight of 4.05 kDa;
- contains a vector fragment of EcoRI-XbaI from plasmid pRS-2 with a size of 2726 bp
- несет фрагмент EcoRI-XbaI 5'-области геномной ДНК аденовируса 5 типа размером 3505 п.н. с делецией после сайта терминации трансляции гена Е1В19К размером 1118 п. н. , содержащий сайт эндонуклеазы рестрикции SalI, непосредственно за которым введен сайт терминации трансляции гена Е1В 55К;
- несет следующие генетические маркеры: ген устойчивости к ампициллину;
- уникальные сайты эндонуклеаз рестрикции, имеющие следующие координаты:
SalI - 1604
EcoRI - 3945
Kpn2.1 - 3114
XhoI - 430
Способ конструирования плазмиды pAd5-f заключается во встраивании продуктов амплификации, полученных при использовании рассчитанных праймеров и матрицы аденовирусной ДНК 5 типа в плазмиду pRS-2 (производная от pUC18 с добавленными уникальными сайтами в полилинкере) по соответствующим сайтам полилинкера.- carries a fragment of EcoRI-XbaI 5'-region of genomic DNA of
- carries the following genetic markers: ampicillin resistance gene;
- unique restriction endonucleases sites having the following coordinates:
SalI - 1604
EcoRI - 3945
Kpn2.1 - 3114
XhoI - 430
The method for constructing plasmid pAd5-f consists in embedding amplification products obtained using the calculated primers and
Схема конструирования описана в примере 1 и проиллюстрирована фиг.1. Для создания мутантного варианта аденовируса были проведены эксперименты по совместной контрансфекции плазмиды pAd5-f, линеаризованной по сайту EcoRI, и аденовирусной ДНК, обработанной эндонуклеазой рестрикции ClaI и щелочной фосфатазой CIAP. Трансфекцию проводили кальций-фосфатным методом преципитации. Отбор мутантных штаммов проводили с помощью ПЦР со специфическими праймерами. Продукт амплификации Adel2 был проверен рестриктным картированием и частичным секвенированием района, примыкающего к месту делеции. The design scheme is described in example 1 and illustrated in figure 1. To create a mutant variant of adenovirus, experiments were conducted on co-transfection of the plasmid pAd5-f linearized at the EcoRI site and adenovirus DNA treated with ClaI restriction endonuclease and alkaline phosphatase CIAP. Transfection was carried out by calcium-phosphate precipitation method. Mutant strains were selected using PCR with specific primers. The Adel2 amplification product was verified by restriction mapping and partial sequencing of the region adjacent to the deletion site.
Сущность изобретения заключается в том, что используя целевую плазмидную ДНК pAd5-f, несущую фрагмент 5'-области геномной ДНК аденовируса 5-го типа размером 3505 п.н. с делецией в гене Е1В 55К, размером 1118 п.н. после сигнала терминации трансляции гена Е1В 19К, имеющую сайт для эндонуклеазы рестрикции SalI, непосредственно за которым введен сигнал терминации трансляции гена Е1В 55К, получают путем гомологичной рекомбинации мутантный штамм аденовируса Adel2, обладающий специфичной противоопухолевой активностью для р53-дефектных опухолевых клеток. The essence of the invention lies in the fact that using the target plasmid DNA pAd5-f, carrying a fragment of the 5'-region of genomic DNA of
Полученный мутантный вариант аденовируса 5 типа Adel2 отличается от прототипа мутантного аденовируса dl1520 протяженностью делеции в гене Е1В 55К (в прототипе 827 п.н., в заявляемом вирусе 1118 п.н.), а также наличием уникального сайта рестрикции SalI, позволяющего использовать его в дальнейшем для встройки специфичных нуклеотидных последовательностей, усиливающих селективность данного мутантного варианта. Полученный штамм Adel2 характеризуется следующими признаками:
Морфологические признаки.The obtained mutant variant of
Morphological signs.
Мутантный вариант Adel2 обладает всеми типичными морфологическими свойствами аденовирусов 5 типа. The mutant variant Adel2 possesses all the typical morphological properties of
Физико-биохимические признаки. Physico-biochemical characteristics.
ДНК штамма Adel2 имеет длину 34817 п.н. (дикий тип аденовируса 5-го серотипа - 35935 п.н.), при этом нарушена открытая рамка считывания гена Е1В 55К, структурные белки не отличаются от белков вируса дикого типа. The DNA of strain Adel2 has a length of 34817 bp (the wild type of adenovirus of the 5th serotype is 35935 bp), while the open reading frame of the E1B 55K gene is violated, the structural proteins do not differ from the proteins of the wild-type virus.
Патогенность для животных. Pathogenicity for animals.
Исследование биологических свойств штамма Adel2 на животных показало, что штамм не патогенен для лабораторных животных. В стандартных тестах на токсичность, безвредность и специфичность рекомбинантный штамм не отличается от исходного штамма аденовируса 5 типа (Ad5). A study of the biological properties of strain Adel2 in animals showed that the strain is not pathogenic for laboratory animals. In standard tests for toxicity, safety and specificity, the recombinant strain does not differ from the original strain of
Репликативные свойства штамма. Replicative properties of the strain.
Мутантный вариант Adel2, несущий делецию гена Е1В 55К, обладает высокой степенью репликативной активности для комплементарных клеток 293 и р53-дефектных опухолевых клеток (А431, SW480 и НЕр2) и, в то же время, имеет существенные ограничения по репликации в нормальных фибробластах кожи взрослого человека (HSF) и эмбриональных фибробластах кожи человека (НSЕF) (табл.1). The mutant Adel2 variant, carrying a deletion of the E1B 55K gene, has a high degree of replicative activity for complementary cells of 293 and p53-defective tumor cells (A431, SW480, and HEP2) and, at the same time, has significant replication restrictions in normal fibroblasts of adult skin (HSF) and human embryonic fibroblasts (HSEF) (Table 1).
Онколитическая активность штамма. Oncolytic activity of the strain.
Штамм Adel2 обладает выраженным ингибирующим действием на развитие привитой nu/nu мышам опухоли человека (линия клеток А431). Штамм мутантного аденовируса Adel2 депонирован в НИИ ККМ ГНЦ ВБ "Вектор" под номером V-336. Strain Adel2 has a pronounced inhibitory effect on the development of nu / nu grafted mice in human tumors (A431 cell line). The strain of the mutant adenovirus Adel2 was deposited at the Research Institute of KKM SSC VB "Vector" under the number V-336.
Изобретение иллюстрируется следующими графическими изображениями:
Фиг. 1 - схема рекомбинантной плазмиды pAd5-f и способ ее конструирования.The invention is illustrated by the following graphic images:
FIG. 1 is a schematic of the recombinant plasmid pAd5-f and a method for constructing it.
Фиг.2 - ПЦР-анализ ДНК мутантного аденовируса Adel2, где: М - маркеры, 1 - плазмида pAd5-f, 2 - контроль клеточной культуры, 3 - Adel2, 4, 5, 6 - дикий штамм аденовируса 5 типа. Figure 2 - PCR analysis of the mutant adenovirus Adel2 DNA, where: M - markers, 1 - plasmid pAd5-f, 2 - cell culture control, 3 - Adel2, 4, 5, 6 -
Фиг. 3 - уровень репродукции мутантного вируса Adel2 в р53-дефектных опухолевых и нормальных клетках, где А431, SW480 и Нер2 - р53-дефектные опухолевые клетки человека; 293 - эмбриональные клетки почки человека, трансформированные генами Е1А и Е1В аденовируса; HSF - фибробласты кожи человека; HSEF - эмбриональные фибробласты кожи человека. FIG. 3 - reproduction level of the mutant Adel2 virus in p53-defective tumor and normal cells, where A431, SW480 and Hep2 - p53-defective human tumor cells; 293 - human kidney embryonic cells transformed with E1A and E1B genes of adenovirus; HSF - human skin fibroblasts; HSEF - embryonic fibroblasts of human skin.
Изобретение иллюстрируется следующими примерами. The invention is illustrated by the following examples.
Пример 1. Конструирование плазмидной ДНК pAd5-f. Example 1. Construction of plasmid DNA pAd5-f.
Процедуры обработки плазмидных ДНК эндонуклеазами рестрикции, ферментами модификации, электрофоретического разделения гидролизатов ДНК, полимеразной цепной реакции, выделения фрагментов ДНК из агарозного геля, проведения лигазных реакций, трансфекции эукариотических клеток, выделения плазмидных ДНК, секвенирования по методу Сэнгера проводят в соответствии со стандартными генно-инженерными методами. Procedures for treating plasmid DNA with restriction endonucleases, modification enzymes, electrophoretic separation of DNA hydrolysates, polymerase chain reaction, isolation of DNA fragments from agarose gel, ligase reactions, transfection of eukaryotic cells, isolation of plasmid DNA, sequencing according to the Sanger method are carried out in accordance with standard genetic engineers methods.
Специфические олигонуклеотиды 603, 609, 610, 608, А, F рассчитывают по последовательности Ad5 с помощью программы Оligo 3,0. Specific oligonucleotides 603, 609, 610, 608, A, F are calculated according to the Ad5 sequence using the Oligo 3.0 program.
Последовательности олигонуклеотидов:
603 5'-CGGAATTCGAGTGCCAGCGAGTAGAGТТТT-3'
609 5'-ACGCGTCGACCTCCCTCТТТACCCCCТТТAGC-3'
610 5'-ACGCGTCGACGTGATGCTGGATGTGACCGA-3'
608 5'-CGCGGATCCACAAGGGCGTCTCCAAGTT-3
А 5'-GCCAGCCTCGTGGCAGGTAAGATCG-3'
F 5'-CGGAATTCATCATCAATAATATACCTTAТТТTGG-3'
Выделение геномной ДНК аденовируса 5 типа для проведения полимеразной цепной реакции проводят следующим образом.Oligonucleotide sequences:
603 5'-CGGAATTCGAGTGCCAGCGAGTAGAGTTTT-3 '
609 5'-ACGCGTCGACCTCCCTCTTTTACCCCCTTTAGC-3 '
610 5'-ACGCGTCGACGTGATGCTGGATGTGACCGA-3 '
608 5'-CGCGGATCCACAAGGGGCGTCTCCAAGTT-3
A 5'-GCCAGCCTCGTGGCAGGTAAGATCG-3 '
F 5'-CGGAATTCATCATCAATAATATACCTTAТТТТTGG-3 '
Isolation of genomic DNA of
На первом этапе наработку дикого типа аденовируса человека 5-го серотипа (Ad5) осуществляют на субконфлюентной монослойной культуре клеток 293 (клетки почки эмбриона человека, трансформированные генами Е1А и Е1В Ad5). При достижении 70% цитопатогенного воздействия вируса на клеточную культуру клетки отбирают и концентрируют центрифугированием (1500 g, 5 мин). Гомогенат инфицированных клеток экстрагируют равным объемом фтористого углерода, затем водную фракцию, содержащую вирус, центрифугируют на градиенте хлористого цезия (1/45-1/33 г/мл, 2 ч при 90000 g). Для освобождения вируса от остаточных количеств клеточных компонентов проводят дополнительную очистку на преформированном градиенте хлористого цезия (1/45-1/33 г/мл, 6 ч при 100000 g). Фракцию, содержащую вирус, отбирают и разводят в соотношении 1:4 трис-ЭДТА буфером и проводят высокоскоростное центрифугирование для осаждения вируса, после чего осадок ресуспендируют в 3 мл трис-ЭДТА буфера (5 мМ трис-HCl, 1 мМ ЭДТА, рН 7,8). At the first stage, the production of wild type human adenovirus of the 5th serotype (Ad5) is carried out on a subconfluent monolayer culture of 293 cells (human embryonic kidney cells transformed with Ad5 E1A and E1B genes). Upon reaching 70% of the cytopathogenic effect of the virus on the cell culture, the cells are selected and concentrated by centrifugation (1500 g, 5 min). The homogenate of infected cells is extracted with an equal volume of carbon fluoride, then the aqueous fraction containing the virus is centrifuged on a gradient of cesium chloride (1 / 45-1 / 33 g / ml, 2 hours at 90,000 g). To free the virus from residual amounts of cellular components, additional purification is carried out on a preformed gradient of cesium chloride (1 / 45-1 / 33 g / ml, 6 hours at 100,000 g). The virus-containing fraction was selected and diluted in a 1: 4 ratio with Tris-EDTA buffer and high-speed centrifugation was performed to precipitate the virus, after which the precipitate was resuspended in 3 ml of Tris-EDTA buffer (5 mM Tris-HCl, 1 mM EDTA, pH 7, 8).
На втором этапе из очищенного вируса выделяют вирусную ДНК. Для этого к вирусному препарату добавляют протеиназу-К до концентрации 20 мкг/мл и лаурилсаркозилат натрия до концентрации 0,5%, инкубируют при 37oС в течение 3 часов. Затем в пробирку вносят равный объем фенола, насыщенного буфером Трис-HCl; рН 8,0. Раствор перемешивают и центрифугируют 2000 g, 10 мин. Верхнюю водную фазу переносят в другую пробирку, ДНК осаждают добавлением 2х объемов этилового спирта с последующим центрифугированием 2000 g, 10 мин. Осадок растворяют в 100 мкл дистиллированной воды.In a second step, viral DNA is isolated from the purified virus. For this, proteinase-K is added to the viral preparation to a concentration of 20 μg / ml and sodium lauryl sarcosylate to a concentration of 0.5%, incubated at 37 ° C. for 3 hours. Then an equal volume of phenol saturated with Tris-HCl buffer is added to the tube; pH 8.0. The solution was stirred and centrifuged 2000 g, 10 min. The upper aqueous phase is transferred to another tube, DNA is precipitated by the addition of 2 x volumes of ethanol, followed by centrifugation of 2000 g, 10 min. The precipitate was dissolved in 100 μl of distilled water.
Для полимеразной цепной реакции используют геномную ДНК аденовируса 5 типа, выделенную фенольным методом. Применяют следующие температурные режимы с 1 по 36 цикл: 95oС - 20 с, 50oС - 20 с, 72oC - 30 с, 37 цикл 95oС - 20 с, 50oС - 20 с, 72oС - 7 мин. Продукт амплификации (10 мкг) 603/609 1827 п.н. обрабатывают эндонуклеазами рестрикции EcoRI-SalI ("СибЭнзим"). 2 мкг плазмидной ДНК pRS-2 обрабатывают рестриктриктазами EcoRI-SalI. Аликвоты ПЦР-фрагмента и плазмидной ДНК используют для проведения лигазной реакции в обьеме 20 мкл. 10 мкл лигазной смеси используют для трансформации компетентных клеток E.coli JM103. Трансформанты рассеивают на LB-агар, содержащий 100 мкг/мл ампициллина. Выросшие клоны используют для наработки и выделения рекомбинантных плазмидных ДНК. Плазмидные ДНК далее подвергают рестриктному картированию и клоны, несущие целевую вставку 1827 п.н. (pAd1), нарабатывают, выделяют и используют как вектор для клонирования второго продукта амплификации 610/608. Амплифицированный продукт 610/608 1157 п.н. (10 мкг) обрабатывают эндонуклеазами рестрикции SalI-BamHI. Плазмидная ДНК pAd1 (2 мкг) обрабатывается рестриктазами SalI-BglI, далее полученный гидролизат подвергают дефосфорилированию с использованием щелочной фосфатазы, выделяют векторную плазмидную ДНК. Аликвоты фрагмента ПЦР и векторной ДНК используют для проведения реакции лигирования в объеме 20 мкл, и 10 мкл лигазной смеси берут на трансформацию компетентных клеток. Клоны, несущие целевую вставку 2984 п. н. 5'-области аденовирусной ДНК (pAd5) нарабатывают и используют как вектор для встройки фрагмента ПЦР амплификации AF длиной 932 п.н. 2 мкг плазмидной ДНК pAd5 обрабатывают эндонуклеазами рестрикции EcoRI-Крn2,1; полученный гидролизат разделяют с помощью электрофореза в 1% агарозном геле; выделяют векторную часть плазмиды длиной 5421 п.н. 10 мкг продукта ПЦР-амплификации AF обрабатывают эндонуклеазами рестрикции EcoRI-Kpn2,1; полученный гидролизат разделяют с помощью электрофореза в 1,5% агарозном геле; выделяют фрагмент 827 п. н. Аликвоты фрагмента ПЦР и векторной ДНК используют для проведения реакции лигирования в объеме 20 мкл, и 10 мкл лигазной смеси берут на трансформацию компетентных клеток E.coli JM103. Трансформанты рассевают на LB-агар, содержащий 100 мкг/мл ампициллина. Выросшие клоны используют для наработки и выделения рекомбинантных плазмидных ДНК, которые анализируют рестриктным картированием и далее клоны, несущие целевую вставку 3505 п.н. нарабатывают для детального рестриктного картирования и секвенирования методом Сэнгера. Целевая плазмида pAd5-f включает фрагмент 5'-области геномной ДНК аденовируса 5 типа длиной 3505 п.н. с делецией в области гена Е1В 55К и содержит уникальный рестриктный сайт SalI. Схема плазмидной ДНК pAd5-f и способ ее конструирования представлены на фиг.1.For polymerase chain reaction using genomic DNA of
Сконструированную рекомбинантную плазмидную ДНК pAd5-f используют для гомологичной рекомбинации с аденовирусной ДНК и получения мутантного варианта вируса с делецией в гене Е1В 55К. The constructed recombinant plasmid DNA pAd5-f is used for homologous recombination with adenoviral DNA and to obtain a mutant variant of the virus with deletion in the E1B 55K gene.
Пример 2. Получение мутантного аденовируса Adel2. Example 2. Obtaining mutant adenovirus Adel2.
Для трансфекции культур клеток используют ДНК вируса Ad5, находящуюся в комплексе с терминальным белком, которую получают из очищенного вирусного препарата гуанидин-хлоридным методом. Для этого к вирусной суспензии добавляют равный объем 8 М гуанидин-хлорида, раствор перемешивают и наносят на хроматографическую колонку с сефарозой-4В, уравновешенную 4 М гуанидин-хлоридом. ДНК, выходящую в первом пике оптической плотности, собирают, диализуют против 0,01 М Трис-НСl буфера, содержащего 0,001 М ЭДТА, разливают по аликвотам, замораживают и хранят в жидком азоте. For transfection of cell cultures, Ad5 virus DNA is used, which is in complex with the terminal protein, which is obtained from the purified viral preparation by the guanidine-chloride method. For this, an equal volume of 8 M guanidine chloride is added to the viral suspension, the solution is stirred and applied to a chromatographic column with Sepharose-4B, equilibrated with 4 M guanidine chloride. DNA leaving the first peak in optical density is collected, dialyzed against 0.01 M Tris-Hcl buffer containing 0.001 M EDTA, poured into aliquots, frozen and stored in liquid nitrogen.
Для котрансфекции 10 мкг плазмиды pAd5-f обрабатывают эндонуклеазами рестрикции EcoRI, 15 мкг ДНК аденовируса 5 типа обрабатывают эндонуклеазами рестрикции ClaI и ферментом модификации щелочной фосфатазой CIAP. Кубарики с монослоем перевиваемой линии клетки почки эмбриона человека, трансформированные генами Е1А и Е1В Ad5, промывают фосфатным буфером, и проводят совместную ко-трансфекцию 1 мкг вирусной ДНК в комплексе с терминальным белком в смеси с 10-кратным избытком плазмидной ДНК по стандартной кальций-фосфатной методике трансфекции. К 450 мкл смеси линеаризованной плазмидной ДНК pAd5-f и аденовирусной ДНК в стерильной деионизованной воде добавляют 50 мкл 2,5 М CaCl2. К 500 мкл буфера HEPES добавляют полученную смесь ДНК/СаСl2 и оставляют на 20 мин для формирования преципитата. Наносят на клеточный монослой преципитат и среду DMEM без сыворотки. Через сутки удаляют среду и добавляют нормальную ростовую среду DMEM с гентамицином и 10% FCS. Через пять суток после проведения трансфекции обнаруживается цитопатогенное воздействие на культуру клеток в случае трансфекции нативной ДНК и в случаях трансфекции клеток обработанной EcoRI аденовирусной ДНК совместно с линеаризованной плазмидой pAd5-f. Для предварительного подтверждения наличия целевых мутаций в геноме полученных в результате трансфекции вирусов проводят ПЦР-анализ. В качестве матрицы используются вирусные ДНК, выделенные из препаратов полученных вариантов аденовируса в результате трехкратного клонирования методом бляшек. При проведении ПЦР используются праймеры 605/608.For cotransfection, 10 μg of pAd5-f plasmid is treated with EcoRI restriction endonucleases, 15 μg of
Последовательности праймеров
605: 5'-TCTGAGCGGGGGGTACCTGCTGGATT-3'
608: 5'-CGCGGATCCACAAGGGCGTCTCCAAGTT-3
В результате ПЦР амплифицируется продукт 1422 п.н. (в контроле с диким штаммом продукт ПЦР 2540 п.н.). Результаты ПЦР анализа, подтверждающие наличие целевой делеции в гене Е1В 55К, представлены на Фиг.2.Primer Sequences
605: 5'-TCTGAGCGGGGGGTACCTGCTGGATT-3 '
608: 5'-CGCGGATCCACAAGGGCCTCTCCCAAGTT-3
As a result of PCR, the product of 1422 bp is amplified. (in control with a wild strain, the PCR product is 2540 bp). The results of PCR analysis, confirming the presence of a target deletion in the E1B 55K gene, are presented in Figure 2.
Препаративную наработку клонированного через бляшку мутантного варианта Adel2 проводят на культуре клеток 293. Полученный препарат вируса очищают в градиенте хлористого цезия, после чего фенольным методом выделяют соответствующую вирусную ДНК. На следующем этапе методом полимеразной цепной реакции с использованием в качестве матрицы геномной ДНК варианта Adel2 амплифицируют фрагмент генома, соответствующий Е1В 55К (2048-4582 п.н.). После чего амплифицированные фрагменты секвенируют согласно методу Сэнгера. The preparative production of a cloned mutant Adel2 variant through a plaque was performed on 293 cell culture. The resulting virus preparation was purified in the gradient of cesium chloride, after which the corresponding viral DNA was isolated by the phenol method. At the next stage, the polymerase chain reaction using the Adel2 variant as a matrix of genomic DNA amplifies a fragment of the genome corresponding to E1B 55K (2048-4582 bp). After that, the amplified fragments are sequenced according to the Sanger method.
Определение нуклеотидной последовательности гена Е1В 55К мутантного варианта Adel2 показывает делецию 1118 п.н. (длина интактного гена 1488 п.н.) после сигнала терминации трансляции гена Е1В 19К. Кроме того, имеется сайт для эндонуклеазы рестрикции SalI, вносимый в процессе конструирования мутантного штамма Adel2. Непосредственно за сайтом для SalI расположен сигнал терминации трансляции гена Е1В 55К. Determination of the nucleotide sequence of the E1B 55K gene of the mutant variant Adel2 shows a deletion of 1118 bp (the length of the intact gene is 1488 bp) after the translation termination signal of the E1B 19K gene. In addition, there is a site for SalI restriction endonuclease introduced during the construction of the mutant strain Adel2. Directly behind the SalI site is a translation termination signal for the E1B 55K gene.
Пример 3. Характеристика репликативных свойств Adel2 на р53-дефектных опухолевых клетках и нормальных фибробластах человека. Example 3. Characterization of the replicative properties of Adel2 on p53-defective tumor cells and normal human fibroblasts.
Для культивирования клеточных культур и наработки вирусных штаммов используют среду Dulbecco modified Eagle medium (DMEM) и фетальную сыворотку (FCS) производства Life Technology (Gibco BRL, Germany). Клетки 293, HEp2, SW480 и А431 (р53-дефектные опухолевые клетки человека) культивируют как монослойные культуры на среде DMEM, содержащей 10% FCS с 80 мкг/мл гентамицина сульфата. Нормальные первичные фибробласты кожи человека и фибробласты кожи эмбриона человека (HSF и HSEF соответственно) культивируют как монослойные культуры на среде DMEM, содержащей 10% FCS с 80 мкг/мл гентамицина сульфата. Dulbecco modified Eagle medium (DMEM) and fetal serum (FCS) manufactured by Life Technology (Gibco BRL, Germany) were used to cultivate cell cultures and produce viral strains. 293, HEp2, SW480, and A431 cells (p53-defective human tumor cells) were cultured as monolayer cultures on DMEM medium containing 10% FCS with 80 μg / ml gentamicin sulfate. Normal primary human skin fibroblasts and human embryo skin fibroblasts (HSF and HSEF, respectively) are cultured as monolayer cultures on DMEM containing 10% FCS with 80 μg / ml gentamicin sulfate.
После дополнительного клонирования мутантного варианта Adel2 и подтверждения методом полимеразной цепной реакции отсутствия примеси дикого типа аденовируса в препаратах Adel2 проводят исследования инфекционности мутантного варианта для нормальных фибробластов человека и различных р53-дефектных опухолевых клеток в сравнении с диким типом аденовируса. Инфекционность Adel2 и дикого типа аденовируса оценивают по цитолитическому воздействию на культуры клеток и по их репродуктивной активности на панели исследуемых культур клеток. Исследование цитолитической активности мутантного варианта и дикого типа аденовируса на панели р53-дефектных опухолевых и нормальных клеток человека проводят микрометодом согласно Chanas et al. на 96-луночных культуральных планшетах (Costar); инфекционный титр вирусов для соответствующих типов клеток выражают через ТЦПД50 (50% тканевая цитопатогенная доза). Перед проведением эксперимента препараты Adel2 и дикого типа аденовируса титруют на 293 клетках и приводят к одному титру. Результаты представлены в табл.1. Для определения репродуктивных свойств вирусов нормальные фибробласты и р53-дефектные опухолевые клетки человека инфицируют Adel2 или диким типом аденовируса с множественностью 1 БОЕ/кл. Через 48 ч после инфицирования соответствующий вирус освобождают из клеток посредством трехкратного перемораживания; полученные после центрифугирования супернатанты титруют на 293 клетках. Количество Adel2, продуцированного через 48 ч после инфицирования, нормализуют против количества дикого типа аденовируса, продуцированного в той же клеточной линии за тот же период времени. Результаты представлены на фиг. 3. Мутантный вариант Adel2, несущий делецию гена Е1В 55К, инфицирует комплементарные клетки 293 и р53-дефектные опухолевые клетки (А431, SW480 и НЕр2) с эффективностью дикого типа аденовируса. В то же время, он имеет существенные ограничения по репликации в нормальных р53-позитивных фибробластах кожи взрослого человека и эмбриональных фибробластах кожи человека в сравнении с диким типом аденовируса.After additional cloning of the mutant variant of Adel2 and confirmation by the method of polymerase chain reaction of the absence of wild-type adenovirus impurities in Adel2 preparations, the infectivity of the mutant variant for normal human fibroblasts and various p53-defective tumor cells is studied in comparison with the wild type of adenovirus. The infectivity of Adel2 and wild-type adenovirus is assessed by the cytolytic effect on cell cultures and their reproductive activity on the panel of the studied cell cultures. A study of the cytolytic activity of the mutant variant and wild-type adenovirus on a panel of p53-defective tumor and normal human cells is carried out using a micromethod according to Chanas et al. on 96-well culture plates (Costar); the viral infectious titer for the respective cell types is expressed in terms of TCP 50 (50% tissue cytopathogenic dose). Before the experiment, Adel2 and wild-type adenovirus preparations were titrated on 293 cells and resulted in one titer. The results are presented in table 1. To determine the reproductive properties of viruses, normal fibroblasts and p53-defective human tumor cells infect Adel2 or wild-type adenovirus with a multiplicity of 1 PFU / cell. 48 hours after infection, the corresponding virus is released from the cells by triple freezing; supernatants obtained after centrifugation are titrated on 293 cells. The amount of Adel2 produced 48 hours after infection was normalized against the amount of wild-type adenovirus produced in the same cell line over the same period of time. The results are shown in FIG. 3. A mutant variant of Adel2, carrying a deletion of the E1B 55K gene, infects complementary 293 cells and p53-defective tumor cells (A431, SW480 and HEP2) with the efficacy of wild-type adenovirus. At the same time, it has significant limitations on replication in normal p53-positive fibroblasts of adult skin and embryonic fibroblasts of human skin in comparison with the wild type of adenovirus.
Пример 4. Исследование онколитической активности мутантного штамма Adel2
Для исследования онколитической эффективности мутантного варианта Adel2 в экспериментах in vivo проводят его препаративную наработку с последующей очисткой в градиенте плотности хлористого цезия. Полученный препарат титруют на культуре клеток 293, инфекционные титры должны быть не менее 5•1010 БОЕ/мл.Example 4. The study of the oncolytic activity of the mutant strain Adel2
To study the oncolytic efficacy of the mutant variant Adel2 in experiments in vivo, its preparative life is carried out with subsequent purification in the density gradient of cesium chloride. The resulting preparation is titrated on a 293 cell culture, infectious titers must be at least 5 • 10 10 PFU / ml.
Исследование онколитической активности проводят на 8-недельных бестимусных nu/nu мышах, прошедших предварительный двухнедельный карантин и содержащихся в асептических условиях. Для прививки животным используют культуру опухолевых клеток человека А431. Согласно литературным данным, эти опухолевые клетки человека эффективно формируют опухоли при подкожном введении nu/nu мышам. 1,0•107 клеток в 0,2 мл DMEM инъецируют подкожно в каждый бок nu/nu мышей. Объем опухолей определяют согласно следующей формуле: (максимальная длина) • (перпендикулярная ширина)2/2. Прививка мышам клеток А431 обычно приводит к прогрессивному росту опухолей у всех животных. По достижению опухолей А431 объема, который позволяет осуществить интратуморальное введение, опухоли обрабатывают препаратом Adel2. С этой целью в каждую опухоль инъецируют 109 БОЕ исследуемого препарата в 60 мкл DMEM (по 15 мкл в каждый квадрант опухоли). Инъекции проводят ежедневно в течение 5 дней. Контрольные опухоли (привитые контрольным животным) обрабатывают по той же схеме препаратом инактивированного ультрафиолетовым облучением Adel2. Результаты представлены в табл.2. Они свидетельствуют о том, что обработка опухолей препаратом Adel2 приводит к выраженному ингибированию роста опухолевых клеток как по средним значениям объемов опухолей, так и по кратности увеличения объемов с начала наблюдения до его завершения.The study of oncolytic activity is carried out on 8-week nude / nu nude mice that have undergone a preliminary two-week quarantine and kept under aseptic conditions. For vaccination of animals using a culture of human tumor cells A431. According to published data, these human tumor cells effectively form tumors by subcutaneous administration of nu / nu to mice. 1.0 x 10 7 cells in 0.2 ml of DMEM are injected subcutaneously in each flank of nu / nu mice. Tumor volumes are determined according to the following formula: (max) • (perpendicular width) 2/2. Vaccination of A431 cells in mice typically results in progressive tumor growth in all animals. Upon reaching the volume of A431 tumors, which allows intratumoral administration, the tumors are treated with Adel2. For this purpose, 10 9 PFU of the study drug is injected into each tumor in 60 μl of DMEM (15 μl in each quadrant of the tumor). Injections are carried out daily for 5 days. Control tumors (vaccinated with control animals) are treated according to the same scheme with Adel2 inactivated with ultraviolet radiation. The results are presented in table.2. They indicate that the treatment of tumors with Adel2 leads to a pronounced inhibition of tumor cell growth both in average values of tumor volumes and in the multiplicity of increase in volume from the start of observation to its completion.
Таким образом, сконструирована рекомбинантная плазмидная ДНК pAd5-f, несущая фрагмент генома аденовируса 5 типа с делецией в гене Е1В 55К, и получен гомологичной рекомбинацией с использованием данной плазмиды мутантный штамм аденовируса человека Adel2, обладающий селективной противоопухолевой активностью. Thus, a recombinant plasmid DNA pAd5-f was constructed that carries a fragment of the
ЛИТЕРАТУРА
1. Hollstein, M. , D. Sidnarsky, B. Vogelstein, and С.С. Harris (1991) p53 mutations in human cancers. Science 253: 49-53.LITERATURE
1. Hollstein, M., D. Sidnarsky, B. Vogelstein, and C. S. Harris (1991) p53 mutations in human cancers. Science 253: 49-53.
2. Chang, F., Syrianen, S. & Syrianen, K. (1995) Implications of the p53 tumor-suppressor gene in clinical oncology. J. Clin. Oncol. 13, 1009-1022. 2. Chang, F., Syrianen, S. & Syrianen, K. (1995) Implications of the p53 tumor-suppressor gene in clinical oncology. J. Clin. Oncol. 13, 1009-1022.
3. Lowe, S.W. et al. (1994) p53 status and the efficacy of cancer therapy in vivo. Science 266, 807-810. 3. Lowe, S.W. et al. (1994) p53 status and the efficacy of cancer therapy in vivo. Science 266, 807-810.
4. Debbas, M. & White, E. (1993) Wild-type p53 mediates apoptosis by E1A, which is inhibited by E1B. Genes Dev. 7, 546-554. 4. Debbas, M. & White, E. (1993) Wild-type p53 mediates apoptosis by E1A, which is inhibited by E1B. Genes Dev. 7, 546-554.
5. Lowe, S. W. , Ruley, H.T., Jacks, T. & Housman, D.E. (1993) p53-dependent apoptosis modulates the cytotoxicity of anticancer agents. Cell 74, 957-967. 5. Lowe, S. W., Ruley, H.T., Jacks, T. & Housman, D.E. (1993) p53-dependent apoptosis modulates the cytotoxicity of anticancer agents. Cell 74, 957-967.
6. Cannon, J.V. & Lane D.P. (1987) p53 and DNA polymerase alpha complete for binding to SV40 T antigen. Nature 329, 456-458. 6. Cannon, J.V. & Lane D.P. (1987) p53 and DNA polymerase alpha complete for binding to SV40 T antigen. Nature 329, 456-458.
7. Патент США N 5801029, кл. МПК 6 С 12 N 15/01, опубликовано в 1998 г. 7. US patent N 5801029, cl. IPC 6 C 12
8. Lechner, M.S. et al. (1992) Human papillomavirus E6 proteins bind p53 in vivo and abrogate p53-mediated repression of transcription. EMBO J. 11, 3045-3052. 8. Lechner, M.S. et al. (1992) Human papillomavirus E6 proteins bind p53 in vivo and abrogate p53-mediated repression of transcription. EMBO J. 11, 3045-3052.
9. Bischoff J. R., Kirn D.H., Williams A., Heise C., Horn S., Muna M., McCormick F. (1996) An adenovirus mutant that replicates selectively in p53-deficient human tumor cells. Science, 274, 373-376. 9. Bischoff J. R., Kirn D.H., Williams A., Heise C., Horn S., Muna M., McCormick F. (1996) An adenovirus mutant that replicates selectively in p53-deficient human tumor cells. Science, 274, 373-376.
10. Li J.H., Lax S.A., Kim J., Klamut H., Liu F.F. (1999) The effects of combining ionizing radiation and adenoviral p53 therapy in nasopharyngeal carcinoma. Int. J. Radiat. Oncol. Biol. Phys. 43 (3), 607-616. 10. Li J.H., Lax S.A., Kim J., Klamut H., Liu F.F. (1999) The effects of combining ionizing radiation and adenoviral p53 therapy in nasopharyngeal carcinoma. Int. J. Radiat. Oncol. Biol. Phys. 43 (3), 607-616.
11. Marr R. A. , Hitt M., Muller W.J., Gauldie J., Graham F.L. (1998) Tumor therapy in mice using adenovirus vectors expressing human TNFa. Int. J. Oncol., 12 (3), 509-515. 11. Marr R. A., Hitt M., Muller W.J., Gauldie J., Graham F.L. (1998) Tumor therapy in mice using adenovirus vectors expressing human TNFa. Int. J. Oncol., 12 (3), 509-515.
12. С. Heise, A. Sampson-Johannes, A. Williams, F. McCormick, D. Von Hoff & D. Kien (1997) ONYX-015, an E1В gene-attenuated adenovirus, causes tumor-specific cytolysis and antitumoral efficacy that can be augmented by standard chemotherapeutic agents. Nature Medicine, 3 (6), 639-644. 12. C. Heise, A. Sampson-Johannes, A. Williams, F. McCormick, D. Von Hoff & D. Kien (1997) ONYX-015, an E1 gene-attenuated adenovirus, causes tumor-specific cytolysis and antitumoral efficacy that can be augmented by standard chemotherapeutic agents. Nature Medicine, 3 (6), 639-644.
13. F. Goodrum & D. Ornells (1998) p53 status does not determine replication of ONYX-015. J. Virol. 72 (12), 9479-9490. 13. F. Goodrum & D. Ornells (1998) p53 status does not determine replication of ONYX-015. J. Virol. 72 (12), 9479-9490.
14. Т. Rothmann, A. Hengstermann, N. Whitaker, M. Scheffner, & H. Hausen (1998) Replication of ONYX-015, a potential anticancer adenovirus, is independent of p53 status in tumor cells. J. Virol. 72 (12), 9470-9478. 14. T. Rothmann, A. Hengstermann, N. Whitaker, M. Scheffner, & H. Hausen (1998) Replication of ONYX-015, a potential anticancer adenovirus, is independent of p53 status in tumor cells. J. Virol. 72 (12), 9470-9478.
Claims (2)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2001106247A RU2194755C2 (en) | 2001-03-05 | 2001-03-05 | Recombinant plasmid dna pad5-f carrying of adenovirus type 5 genome fragment with deletion in gene e1b-55k and strain of mutant adenovirus ade 12 exhibiting selective antitumor activity |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU2001106247A RU2194755C2 (en) | 2001-03-05 | 2001-03-05 | Recombinant plasmid dna pad5-f carrying of adenovirus type 5 genome fragment with deletion in gene e1b-55k and strain of mutant adenovirus ade 12 exhibiting selective antitumor activity |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2194755C2 true RU2194755C2 (en) | 2002-12-20 |
Family
ID=20246872
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU2001106247A RU2194755C2 (en) | 2001-03-05 | 2001-03-05 | Recombinant plasmid dna pad5-f carrying of adenovirus type 5 genome fragment with deletion in gene e1b-55k and strain of mutant adenovirus ade 12 exhibiting selective antitumor activity |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2194755C2 (en) |
-
2001
- 2001-03-05 RU RU2001106247A patent/RU2194755C2/en not_active IP Right Cessation
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
JP7326396B2 (en) | Tumor-selective E1A and E1B mutants | |
RU2361611C2 (en) | Designing of carcinolytic adenovirus recombinant, specifically expressing immunomodulatory factor gm-csf in tumoral cells and its application | |
AU696495B2 (en) | Adenoviral vectors of animal origin and use in gene therapy | |
Chinnadurai et al. | Physical mapping of a large-plaque mutation of adenovirus type 2 | |
US6585968B2 (en) | Adenovirus vectors specific for cells expressing alpha-fetoprotein and methods of use thereof | |
Kim et al. | Antitumoral effects of recombinant adenovirus YKL-1001, conditionally replicating in α-fetoprotein-producing human liver cancer cells | |
CA2449013C (en) | Viral mutants that selectively replicate in targeted human cancer cells | |
ZA200500047B (en) | Tumor-lysing virus growing selectively in tumor cells | |
AU2002346084A1 (en) | Viral mutants that selectively replicate in targeted human cancer cells | |
US9175309B2 (en) | Recombinant adenovirus with enhanced therapeutic effect and pharmaceutical composition comprising said recombinant adenovirus | |
ES2239841T3 (en) | CHEMICAL ADENOVIRAL VECTORS. | |
Nagayama et al. | Targeting the replication of adenovirus to p53-defective thyroid carcinoma with a p53-regulated Cre/loxP system | |
Goldsmith et al. | Trans complementation of an E1A-deleted adenovirus with codelivered E1A sequences to make recombinant adenoviral producer cells | |
WO2006125381A1 (en) | Tumor targeting gene-virus zd55-il-24, construction method and application thereof | |
RU2194755C2 (en) | Recombinant plasmid dna pad5-f carrying of adenovirus type 5 genome fragment with deletion in gene e1b-55k and strain of mutant adenovirus ade 12 exhibiting selective antitumor activity | |
Fang et al. | A packaging system for SV40 vectors without viral coding sequences | |
Kachko et al. | Adenovirus serotype 5 variants defective in early genes: Selective replication in p53-deficient human tumor cells | |
Hammer | Engineering of oncolytic adenoviruses for delivery by mesenchymal stem cells to pancreatic cancer | |
Cai et al. | 136. The Oncolytic Adenovirus Targeting to TERT and Rb Pathway Induced Specific Cytotoxicity to Tumor Cells | |
Wang et al. | 138. Targeted Adenoviral Vectors Expressing Soluble TGFβRIIFc for Breast Cancer Metastasis | |
Quinn et al. | 137. Streamlined Method for the Simultaneous Construction and Purification of Multiple Recombinant Adenoviral Vectors | |
Artlip et al. | 139. Manufacture of a Replication-Selective and Enhanced-Lytic Adenovirus Vector | |
Cheng et al. | Adenovirus-mediated transfer of RA538 gene and its antitumor effect |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
PC43 | Official registration of the transfer of the exclusive right without contract for inventions |
Effective date: 20100805 |
|
PD4A | Correction of name of patent owner | ||
MM4A | The patent is invalid due to non-payment of fees |
Effective date: 20190306 |