RU2176794C2 - Method for setting infection diagnosis - Google Patents

Method for setting infection diagnosis Download PDF

Info

Publication number
RU2176794C2
RU2176794C2 RU2000105746A RU2000105746A RU2176794C2 RU 2176794 C2 RU2176794 C2 RU 2176794C2 RU 2000105746 A RU2000105746 A RU 2000105746A RU 2000105746 A RU2000105746 A RU 2000105746A RU 2176794 C2 RU2176794 C2 RU 2176794C2
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
antigen
solution
polarogram
blood cells
sample
Prior art date
Application number
RU2000105746A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Е.И. Самоделкин
Э.С. Горовиц
Д.В. Николаев
Original Assignee
Пермская государственная медицинская академия
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Пермская государственная медицинская академия filed Critical Пермская государственная медицинская академия
Priority to RU2000105746A priority Critical patent/RU2176794C2/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2176794C2 publication Critical patent/RU2176794C2/en

Links

Images

Landscapes

  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Abstract

FIELD: medicine. SUBSTANCE: method involves subjecting patient blood to diagnostic examination in determining microbial antigen quantity bound by blood erythrocytes in indirect way by applying polarography method, by making comparison to control study results and taking into account the degree of reduction in copper ion wave bound to this antigen. EFFECT: accelerated and simplified diagnosis method. 7 dwg

Description

Изобретение относится к медицине и может быть использовано для диагностики острых вирусных и бактериальных инфекций. The invention relates to medicine and can be used to diagnose acute viral and bacterial infections.

Известен способ иммунодиагностики инфекций путем определения фагоцитарной активности лейкоцитов двух проб крови больного при инкубации ее со специфическим объектом фагоцитоза с добавлением в одну из проб растворимой специфической микробной субстанции, далее рассчитывают индекс изменения фагоцитоза специфического объекта по уровням фагоцитоза в пробе с дополнительным воздействием специфической микробной субстанции по отношению к показателям пробы без дополнительного микробного воздействия и при значении индекса менее 0,75 диагностируют инфекцию (А.с. СССР N 1789927, МКИ G 01 N 33/53). Способ иммунодиагностики инфекций/ В.Н. Каплин, Е.И. Самоделкин, В. Ф. Коломойцев (СССР). - N 4866935/14; Заявлено 11.09.90; Опубл. 23.01.93. Бюл. N 3 // Открытия. Изобретения. - 1993.- N 3.- C.12. There is a method of immunodiagnosis of infections by determining the phagocytic activity of leukocytes of two samples of a patient’s blood when it is incubated with a specific object of phagocytosis with the addition of a soluble specific microbial substance to one of the samples, then the index of change in the phagocytosis of a specific object is calculated by the levels of phagocytosis in the sample with additional exposure to a specific microbial substance in relation to the indices of the sample without additional microbial exposure and with an index value of less than 0.75, the diagnosis infection infection (A.S. USSR N 1789927, MKI G 01 N 33/53). The method of immunodiagnosis of infections / V.N. Kaplin, E.I. Samodelkin, V.F. Kolomoytsev (USSR). - N 4866935/14; Stated September 11, 90; Publ. 01/23/93. Bull. N 3 // Discoveries. Inventions - 1993.- N 3.- C.12.

Однако визуальный подсчет объектов фагоцитоза носит определенный субъективный характер и требует определенных временных затрат. В связи с этим особый интерес представляют аппаратные методы определения степени связывания антигенов. However, the visual count of phagocytosis objects is of a certain subjective nature and requires a certain amount of time. In this regard, hardware methods for determining the degree of antigen binding are of particular interest.

Изобретение направлено на ускорение, упрощение способа при высокой чувствительности и специфичности. The invention is aimed at accelerating, simplifying the method with high sensitivity and specificity.

Сущность изобретения: указанная задача достигается тем, что диагностическое исследование производят с кровью больного, определяя полярографическим методом количество антигена микробов, связанного клетками крови больного до и после дополнительного воздействия на клетки крови тем же самым антигеном по изменению величины волны ионов меди, связанных этим антигеном. Исследование не плазмы, а чувствительности клеток крови к различным антигенам микробов обеспечивает диагностику инфекционных заболеваний даже в самые ранние сроки от момента заражения. The essence of the invention: this task is achieved by the fact that a diagnostic study is carried out with the patient’s blood, using the polarographic method to determine the amount of microbial antigen bound by the patient’s blood cells before and after additional exposure of the blood cells to the same antigen by changing the wavelength of copper ions associated with this antigen. The study is not a plasma, but the sensitivity of blood cells to various microbial antigens provides the diagnosis of infectious diseases even in the earliest possible time from the moment of infection.

Известно, что полярографически неактивные вещества можно обнаружить, если ввести в испытуемое соединение активную группу либо определять косвенно по уменьшению волны восстанавливающего вещества, дающего с испытуемым соединением осадок или комплекс. It is known that polarographically inactive substances can be detected if an active group is introduced into the test compound or determined indirectly by a decrease in the wave of the reducing substance, which gives a precipitate or complex with the test compound.

Полярографическое исследование позволяет количественно (после составления калибровочной кривой) определить степень связывания антигена клетками крови по убыли микроколичества количества ионов меди. В свою очередь, сравнение полярограмм здоровых контрольных доноров и больных лиц позволяет поставить диагноз. A polarographic study allows you to quantitatively (after drawing up the calibration curve) to determine the degree of binding of antigen to blood cells by decreasing the micro amount of the number of copper ions. In turn, a comparison of the polarograms of healthy control donors and sick people allows us to make a diagnosis.

В качестве фонового раствора используют 30%-ный CaCl2 в объеме 4,8 мл. В электролизер добавляют 10 гамма двухвалентной меди (0,1 мл стандартного раствора с концентрацией 100 гамма меди в 1 мл) и после перемешивания производят трехкратную запись полярограммы.As a background solution using 30% CaCl 2 in a volume of 4.8 ml. 10 gamma divalent copper (0.1 ml of a standard solution with a concentration of 100 gamma copper in 1 ml) is added to the electrolyzer and, after mixing, the polarogram is recorded three times.

После этого непосредственно в электролизер добавляют 0,1 мл исследуемого раствора, перемешивают и производят запись полярограммы, измеряя величину полуволны в мм. На основании заранее произведенной калибровки рассчитывают количество антигена, оставшегося в растворе после взаимодействия с эритроцитами, и диагностируют заболевание. After that, 0.1 ml of the test solution is added directly to the electrolyzer, mixed and polarogram recorded, measuring the half-wave in mm. Based on a pre-made calibration, the amount of antigen remaining in the solution after interaction with red blood cells is calculated and the disease is diagnosed.

Способ поясняется чертежами полярограмм, где на фиг. 1 а показана полярограмма фонового раствора 30% CaCl2;
- фиг. 1 б - совмещенная полярограмма фонового раствора и раствора 10 гамма Cu++;
- фиг. 2 - полярограмма фонового раствора и раствора 10 гамма Cu++;
- фиг. 3 - полярограмма после внесения в электролизер 0,1 мл исследуемого антигена;
- фиг. 4 полярограмма после внесения в электролизер 0,1 мл исследуемого антигена, контактировавшего с кровью здоровых лиц без дополнительного воздействия антигена;
- фиг. 5 - полярограмма после внесения в электролизер 0,1 мл исследуемого антигена, контактировавшего с кровью здоровых лиц при дополнительном воздействии антигена;
- фиг. 6 - полярограмма после внесения в электролизер 0,1 мл исследуемого антигена, контактировавшего с кровью больных лиц без дополнительного воздействия антигена;
- фиг. 7 - полярограмма после внесения в электролизер 0,1 мл исследуемого антигена с кровью больных лиц при дополнительном воздействии антигена.
The method is illustrated by drawings of polarograms, where in FIG. 1 a shows the polarogram of a background solution of 30% CaCl 2 ;
- FIG. 1 b - combined polarogram of the background solution and 10 gamma Cu ++ solution;
- FIG. 2 - polarogram of the background solution and 10 gamma Cu ++ solution;
- FIG. 3 - polarogram after introducing into the cell 0.1 ml of the studied antigen;
- FIG. 4 polarograms after introducing into the electrolyzer 0.1 ml of the test antigen in contact with the blood of healthy individuals without additional exposure to the antigen;
- FIG. 5 - polarogram after introducing into the electrolyzer 0.1 ml of the test antigen in contact with the blood of healthy individuals with additional exposure to the antigen;
- FIG. 6 - polarogram after introducing into the electrolyzer 0.1 ml of the test antigen in contact with the blood of sick people without additional exposure to the antigen;
- FIG. 7 - polarogram after introducing into the electrolyzer 0.1 ml of the test antigen with the blood of patients with additional exposure to the antigen.

Способ осуществляют следующим образом. The method is as follows.

Для исследования берут 0,1 мл крови, смешивают с консервантом (0,1 мл "Глюгицира"), центрифугируют в течение 5-10 мин при 500 об/мин, удаляют плазму с антикоагулянтом, трижды отмывают клетки крови от остатков плазмы 0,9%-ным раствором хлористого натрия, разбавляют клетки крови в 0,9%-ном растворе хлористого натрия до 5-10%, в 2 пробы по 0,1 мл этой взвеси добавляют по 0,1 мл исследуемого антигена (гриппа, энтеровируса Коксаки В, шигелл Флекснер, Зонне, Ньюкестл или др.), перемешивают и инкубируют полученные смеси 3-5 мин в термостате при 37-37,5oC, затем одну пробу центрифугируют, после чего снимают полярограмму 10 гамма CuCl++ в фоновом растворе 30% CaCl2, добавив 0,1 мл надосадочной жидкости, вновь снимают полярограмму, принимая ее как АСАЭ без дополнительного воздействия микробным антигеном. Параллельно во вторую пробу крови больного повторно добавляют 0,1 мл того же антигена, перемешивают и вновь инкубируют при 37-37,5oC, центрифугируют, после чего снимают полярограмму вышеописанным способом и сравнивают величины полярограмм до и после дополнительного воздействия антигена на клетки крови. У здоровых лиц дополнительное воздействие антигена вызывает увеличение АСАЭ, тогда как у больных происходит торможение антигенсвязывающей активности эритроцитов после дополнительного воздействия того же антигена.For the study, 0.1 ml of blood is taken, mixed with a preservative (0.1 ml of Glyugitsir), centrifuged for 5-10 minutes at 500 rpm, the plasma with anticoagulant is removed, blood cells are washed three times from plasma residues 0.9 % solution of sodium chloride, dilute blood cells in a 0.9% solution of sodium chloride to 5-10%, in 2 samples of 0.1 ml of this suspension add 0.1 ml of the test antigen (influenza, Koksaki B enterovirus , Shigella Flexner, Sonne, Newcastle or others), mix and incubate the resulting mixture for 3-5 minutes in an thermostat at 37-37.5 o C, then one sample trifugate, and then remove the polarogram 10 gamma CuCl ++ in the background solution of 30% CaCl 2 , adding 0.1 ml of the supernatant, again remove the polarogram, taking it as ASAE without additional exposure to the microbial antigen. In parallel, 0.1 ml of the same antigen is re-added to the patient’s second blood sample, mixed and re-incubated at 37-37.5 o C, centrifuged, then the polarogram is removed as described above and the polarogram values are compared before and after the additional exposure of the antigen to blood cells . In healthy individuals, an additional antigen exposure causes an increase in ASAE, whereas in patients, the antigen-binding activity of red blood cells is inhibited after an additional exposure to the same antigen.

Ячейка электролизера полярографа заполнена фоновым раствором 4,8 мл 30%-ного CaCl2. При подаче напряжения на электроды электролизера в фоновом растворе ячейки полярографа появляется электрический ток, который регистрируется самописцем полярографа в виде стандартной кривой (фиг. 1 а), а при внесении в электролизер 10 гамма Cu++ наблюдается отклонение в виде полуволны (фиг. 1 б).The cell of the electrograph of the polarograph is filled with a background solution of 4.8 ml of 30% CaCl 2 . When voltage is applied to the electrodes of the electrolyzer in the background solution of the polarograph cell, an electric current appears, which is recorded by the polarograph recorder in the form of a standard curve (Fig. 1 a), and when the gamma Cu ++ is introduced into the electrolyzer 10, a deviation in the form of a half wave is observed (Fig. 1 b )

Величина тока зависит от количества электропроводящих ионов в растворе ячейки электролизера полярографа, каковыми в нашем исследовании являются ионы CaCl2 фонового раствора и добавляемое микроколичество двухвалентных ионов меди - 10 гамма Cu++ (фиг. 2).The magnitude of the current depends on the amount of electrically conductive ions in the solution of the cell of the polarograph electrolyzer, which in our study are the CaCl 2 ions of the background solution and the added micro amount of divalent copper ions - 10 gamma Cu ++ (Fig. 2).

Самописец полярографа графически отображает величину тока между электродами ячейки полярографа на бумажной ленте. Определяют зависимость между величиной электрического тока и количеством добавленных в ячейку ионов меди по степени отклонения пера самописца на бумаге. На этом основании составляют калибровочную кривую, измеряя величину отклонения пера самописца полярографа после внесения в электролизер 0,1 мл исследуемого антигена, который, связывая ионы меди, уменьшает величину волны (фиг. 3). Величина, на которую уменьшилась длина волны, принимается за 100 % расчетной величины степени связывания антигена. The polarograph recorder graphically displays the magnitude of the current between the electrodes of the polarograph cell on a paper tape. The relationship between the magnitude of the electric current and the number of copper ions added to the cell is determined by the degree of deviation of the pen of the recorder on paper. On this basis, a calibration curve is made by measuring the deviation of the pen of the polarograph recorder after introducing 0.1 ml of the studied antigen into the electrolyzer, which, by binding copper ions, reduces the wavelength (Fig. 3). The value by which the wavelength decreased is taken as 100% of the calculated value of the degree of antigen binding.

После составления калибровочной кривой исследуют способность клеток крови здоровых лиц связывать на своей поверхности исследуемый антиген. Для этого клетки крови разводят в 0,9%-ном растворе хлористого натрия, добавляют исследуемый антиген и после инкубации в термостате клеток крови с антигеном эту смесь центрифугируют. Надосадочную жидкость отсасывают микропипеткой и вносят в ячейку электролизера ртутно-капельного полярографа, в которую заранее внесен фоновый раствор 30%-ного CaCl2 с 10 гамма Cu++. При подаче напряжения на электроды электролизера в растворе появляется электрический ток, который вызывает отклонение пера самописца от стандартной кривой фонового раствора. Параметры исследования всегда являются постоянными. В этом случае величина тока зависит от количества электропроводящих ионов в растворе ячейки электролизера полярографа, каковыми в нашем исследовании являются ионы Cu++. Для определения степени связывания исследуемого антигена клетками крови здоровых лиц величину электрического тока по степени отклонения пера самописца на бумаге в миллиметрах делят на величину в мм, полученную при определении эталона, и определяют процент связывания количества антигена в данном исследовании до и после дополнительного воздействия антигеном. У здоровых лиц степень связывания эритроцитами антигена после дополнительного воздействия тем же антигеном возрастает, тогда как у больного после дополнительного воздействия антигена связывание его уменьшается вследствие торможения.After drawing up the calibration curve, the ability of the blood cells of healthy individuals to bind the studied antigen on their surface is examined. For this, blood cells are diluted in a 0.9% sodium chloride solution, the test antigen is added, and after incubation in a thermostat of blood cells with antigen, this mixture is centrifuged. The supernatant is sucked off with a micropipette and introduced into the cell of a mercury-droplet polarograph, into which a background solution of 30% CaCl 2 with 10 gamma Cu ++ is preliminarily added. When voltage is applied to the electrodes of the electrolyzer, an electric current appears in the solution, which causes the pen of the recorder to deviate from the standard curve of the background solution. Research parameters are always constant. In this case, the current value depends on the amount of electrically conductive ions in the solution of the cell of the electrograph of the polarograph, which are Cu ++ ions in our study. To determine the degree of binding of the studied antigen by the blood cells of healthy individuals, the electric current is divided by the degree of deviation of the recorder’s pen on paper in millimeters by the value in mm obtained when determining the standard, and the percentage of binding of the amount of antigen in this study is determined before and after additional exposure to the antigen. In healthy individuals, the degree of erythrocyte binding of the antigen after additional exposure to the same antigen increases, while in the patient after additional exposure to the antigen, its binding decreases due to inhibition.

Пример расчета:
фиг. 2) величина волны полярограммы 10 гамма меди в 30%-ном CaCl2 = 160 мм;
фиг. 3) эта величина сократилась после добавления антигена до 100 мм, таким образом при добавлении 0,1 мл исследуемого антигена волна уменьшилась на 60 мм, что принимается за 100% переменной величины при добавлении антигена;
фиг. 4) при записи полярограммы здорового человека после первичного контакта с антигеном величина волны составила 110 мм, соответственно 110 - 100 = 10 мм: 60 мм = связывание антигена 16,6%;
фиг. 5) при записи полярограммы здорового человека после повторного контакта с антигеном величина волны составила 123 мм, соответственно 123-100= 23 мм: 60 мм=38,3% (уровень АСАЭ еще больше возрос - здоровый донор);
фиг. 6) при записи полярограммы больного человека после первичного контакта с антигеном величина волны составила 130 мм, соответственно 130-100=30: 60 (уровень АСАЭ сразу достиг 50% дозы антигена - больной человек);
фиг. 7) при записи полярограммы больного человека после дополнительного воздействия антигеном величина волны составила 110 мм, соответственно 110-100=10 мм:60 мм=16,6 % (уровень АСАЭ снизился - больной человек).
Calculation example:
FIG. 2) the magnitude of the polarogram wave of 10 gamma copper in 30% CaCl 2 = 160 mm;
FIG. 3) this value decreased after adding antigen to 100 mm, so when adding 0.1 ml of the studied antigen, the wave decreased by 60 mm, which is taken as 100% of the variable when adding antigen;
FIG. 4) when recording a polarogram of a healthy person after initial contact with an antigen, the wave size was 110 mm, respectively 110 - 100 = 10 mm: 60 mm = antigen binding of 16.6%;
FIG. 5) when recording a polarogram of a healthy person after repeated contact with an antigen, the wave size was 123 mm, respectively 123-100 = 23 mm: 60 mm = 38.3% (ASAE level increased even more - a healthy donor);
FIG. 6) when recording the polarogram of a sick person after initial contact with an antigen, the wave size was 130 mm, respectively 130-100 = 30: 60 (ASAE level immediately reached 50% of the antigen dose - a sick person);
FIG. 7) when recording the polarogram of a sick person after additional exposure to an antigen, the wave size was 110 mm, respectively 110-100 = 10 mm: 60 mm = 16.6% (ASAE level decreased - a sick person).

Примеры конкретного выполнения. Examples of specific performance.

Пример 1. Б-ной И-нов (43 лет) поступил в инфекционное отделение ОКБ с жалобами на высокую температуру, головную боль, боли в животе. Болен 3-й день. Предварительный диагноз: "Энтеровирусная инфекция". Берут 0,1 мл крови больного, смешивают с консервантом (0,1 мл "Глюгицира"), центрифугируют в течение 5-10 мин при 500 об/мин, удаляют плазму с антикоагулянтом, трижды отмывают клетки крови от остатков плазмы 0,9%-ным раствором хлористого натрия, разбавляют клетки крови в 0,9%-ном растворе хлористого натрия до 5-10%, смешивают 2 пробы по 0,1 мл этой взвеси с 0,1 мл исследуемого антигена (энтеровируса Коксаки В), инкубируют полученные смеси 3-5 мин в термостате при 37-37,5oC, одну пробу центрифугируют, после него снимают полярограмму 10 гамма Cu++ в фоновом растворе 30%-ного CaCl2 (величина волны 160 мм) и, добавив 0,1 мл надосадочной жидкости первой пробы, вновь снимают полярограмму (величина волны 135 мм). Величина волны с 0,1 мл исследуемого антигена (энтеровируса Коксаки В) 105 мм, таким образом эритроцитами больного связано 135-105=30 мм: 55 мм х 100% =54,5%.Example 1. Patient I-nov (43 years old) was admitted to the infectious diseases department of the OKB with complaints of fever, headache, and abdominal pain. Sick 3rd day. Preliminary diagnosis: "Enterovirus infection." Take 0.1 ml of the patient’s blood, mix with a preservative (0.1 ml of Glyugitsir), centrifuge for 5-10 minutes at 500 rpm, remove the plasma with anticoagulant, wash blood cells from plasma residues 0.9% three times solution of sodium chloride, blood cells are diluted in a 0.9% sodium chloride solution to 5-10%, 2 samples of 0.1 ml of this suspension are mixed with 0.1 ml of the studied antigen (Coxsackie enterovirus B), the incubated the mixture for 3-5 minutes in a thermostat at 37-37.5 o C, one sample is centrifuged, after which the polarogram 10 gamma Cu ++ is removed in the background solution of 30% -N Oh CaCl 2 (wavelength 160 mm) and, adding 0.1 ml of the supernatant of the first sample, again remove the polarogram (wavelength 135 mm). The magnitude of the wave with 0.1 ml of the studied antigen (Koksaki B enterovirus) is 105 mm, thus 135-105 = 30 mm: 55 mm x 100% = 54.5% is connected with the patient’s red blood cells.

Параллельно во вторую пробу крови больного повторно добавляют 0,1 мл того же антигена, перемешивают и вновь инкубируют при 37-37,5oC, центрифугируют, после чего снимают полярограмму вышеописанным способом. Величина волны 105 мм, таким образом эритроцитами больного связано 105-105=0 мм:55 мм х 100%=0,0% (торможение АСАЭ после дополнительного воздействия того же антигена характерно для больного человека.In parallel, 0.1 ml of the same antigen is re-added to the second blood sample of the patient, mixed and re-incubated at 37-37.5 o C, centrifuged, and then the polarogram is removed as described above. The magnitude of the wave is 105 mm, thus the patient erythrocytes are connected 105-105 = 0 mm: 55 mm x 100% = 0.0% (inhibition of ASAE after additional exposure to the same antigen is characteristic of a sick person.

Заключение: у больного энтеровирусная инфекция (диагноз позднее был подтвержден серологически и клинически). Conclusion: the patient has an enterovirus infection (the diagnosis was later confirmed serologically and clinically).

Пример 2. Донор С-кин (52 года). Берут 0,1 мл крови больного, смешивают с консервантом (0,1 мл "Глюгицира"), центрифугируют в течение 5-10 мин при 500 об/мин, удаляют плазму с антикоагулянтом, трижды отмывают клетки крови от остатков плазмы 0,9%-ным раствором хлористого натрия, разбавляют клетки крови в 0,9%-ном растворе хлористого натрия до 5-10%, смешивают 2 пробы по 0,1 мл этой взвеси с 0,1 мл исследуемого антигена (энтеровируса Коксаки В), инкубируют полученные смеси 3-5 мин в термостате при 37-37,5oC, одну пробу центрифугируют, после чего снимают полярограмму 10 гамма Cu++ в фоновом растворе 30%-ного CaCl2 (величина волны 160 мм) и, добавив 0,1 мл надосадочной жидкости первой пробы, вновь снимают полярограмму (величина волны 115 мм). Величина волны с 0,1 мл исследуемого антигена (энтеровируса Коксаки В) 105 мм, таким образом эритроцитами связано 115-105=10 мм:55 мм х 100% = 18,2% (уровень связывания здорового человека).Example 2. Donor S-kin (52 years old). Take 0.1 ml of the patient’s blood, mix with a preservative (0.1 ml of Glyugitsir), centrifuge for 5-10 minutes at 500 rpm, remove the plasma with anticoagulant, wash blood cells from plasma residues 0.9% three times -sodium chloride solution, dilute blood cells in a 0.9% sodium chloride solution to 5-10%, mix 2 samples of 0.1 ml of this suspension with 0.1 ml of the studied antigen (Coxsackie enterovirus B), incubate the obtained the mixture for 3-5 minutes in an thermostat at 37-37.5 o C, one sample is centrifuged, after which the polarogram 10 gamma Cu ++ is removed in a 30% -n background solution Oh CaCl 2 (wavelength 160 mm) and, adding 0.1 ml of the supernatant of the first sample, again remove the polarogram (wavelength 115 mm). The magnitude of the wave with 0.1 ml of the studied antigen (Koksaki B enterovirus) is 105 mm, thus 115-105 = 10 mm are connected with red blood cells: 55 mm x 100% = 18.2% (the level of binding of a healthy person).

Параллельно во вторую пробу крови повторно добавляют 0,1 мл того же антигена, перемешивают и вновь инкубируют при 37-37,5oC, центрифугируют, после чего снимают полярограмму вышеописанным способом. Величина волны 125 мм, таким образом эритроцитами больного связано 123 - 105 = 20 мм: 55 мм х 100% = 36,4% (уровень АСАЭ после дополнительного воздействия антигена возрос - это здоровый человек).In parallel, 0.1 ml of the same antigen is re-added to the second blood sample, mixed and re-incubated at 37-37.5 o C, centrifuged, and then the polarogram is removed as described above. The magnitude of the wave is 125 mm, so the patient’s erythrocytes are associated with 123 - 105 = 20 mm: 55 mm x 100% = 36.4% (the ASAE level increased after additional exposure to the antigen - this is a healthy person).

Заключение: у обследуемого энтеровирусной инфекции нет. Conclusion: the examined enterovirus infection does not.

Заключение: учитывая, что основными методами диагностики инфекций являются клинические и серологические методы, результаты которых имеет лишь ретроспективное значение (определение степени нарастания титров антител в "парных" сыворотках производится через 10-15 дней от начала заболевания), либо выделение и идентификация возбудителя в материале от больного человека (что весьма трудоемко и занимает большой промежуток времени), а заявляемый способ позволяет поставить диагноз заболевания в течение 25-30 мин от начала обследования больного и может быть использован для дифференциальной диагностики от сходных с ним по клиническим признакам заболеваний. Conclusion: given that the main methods for diagnosing infections are clinical and serological methods, the results of which are only retrospective (determining the degree of increase in antibody titers in "paired" sera is done 10-15 days after the onset of the disease), or the isolation and identification of the pathogen in the material from a sick person (which is very laborious and takes a long period of time), and the claimed method allows you to diagnose the disease within 25-30 minutes from the start of the examination of the patient and It can be used for differential diagnosis of diseases similar to it according to clinical signs.

Предлагаемый способ точен, при повторных полярографических исследованиях результаты были практически одинаковыми. The proposed method is accurate, with repeated polarographic studies, the results were almost the same.

Предлагаемый способ объективен, т.к. заключение о наличии заболевания делается на основании величины полярографической волны антигена надосадочной жидкости, что осуществляется простым замером с помощью миллиметровой линейки, исключая всякий субъективизм в оценке результатов. The proposed method is objective, because the conclusion about the presence of the disease is made on the basis of the magnitude of the polarographic wave of the antigen of the supernatant, which is carried out by simple measurement using a millimeter ruler, excluding any subjectivity in evaluating the results.

Предлагаемый способ значительно уменьшает трудоемкость и повышает производительность труда по сравнению с аналогами. The proposed method significantly reduces the complexity and increases labor productivity in comparison with analogues.

Claims (1)

Способ иммунодиагностики инфекций, включающий забор пробы крови, получение эритроцитов с последующим добавлением к ним 0,9%-ного раствора хлорида натрия, а затем раствора исследуемого антигена, инкубирование полученной смеси и определение диагностики значимого показателя, отличающийся тем, что к двум пробам смеси эритроцитов и хлорида натрия добавляют раствор исследуемого антигена при их объемном соотношении 1:1, полученные смеси перемешивают и инкубируют в течение 3-5 мин при 37-37,5oС, затем первую пробу центрифугируют, снимают полярограмму 10 мкг ионов Cu++ в 30%-ном растворе СаС12 после добавления надосадочной жидкости и принимают за эталон, а во вторую пробу дополнительно вносят антиген, смесь повторно перемешивают и инкубируют в течение 3-5 мин при 37-37,5oС, затем центрифугируют, снимают полярограмму 10 мкг ионов Cu++ в 30%-ном растворе СаС12 после добавления надосадочной жидкости и сравнивают с эталонной полярограммой и при уменьшении степени отклонения пера самописца в полярограмме после дополнительного добавления антигена по сравнению с величиной отклонения пера самописца на эталонной полярограмме диагностируют заболевание.A method for the immunodiagnostics of infections, including taking a blood sample, obtaining red blood cells, followed by adding to them a 0.9% solution of sodium chloride, and then a solution of the test antigen, incubating the mixture and determining the diagnosis of a significant indicator, characterized in that for two samples of a mixture of red blood cells and sodium chloride is added the test antigen solution at a volume ratio of 1: 1, the mixture obtained is stirred and incubated for 3-5 min at 37-37,5 o C, then the first sample is centrifuged, removed polyarogram at 10 ug Cu ++ ions in 30% strength solution of 2 SaS1 after adding supernatant and taking as the standard, and the second sample introduced further antigen mixture was re-stirred and incubated for 3-5 min at 37-37,5 o C, then centrifuged, removed polarogram 10 g Cu ++ ions in 30% strength solution of 2 SaS1 after adding the supernatant, and compared with the reference polarograms and decreasing the degree of deviation of the pen recorder in polarograms after further addition of the antigen in comparison with the deflection of the recorder pen on the reference polarogram diagnose the disease.
RU2000105746A 2000-03-07 2000-03-07 Method for setting infection diagnosis RU2176794C2 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2000105746A RU2176794C2 (en) 2000-03-07 2000-03-07 Method for setting infection diagnosis

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU2000105746A RU2176794C2 (en) 2000-03-07 2000-03-07 Method for setting infection diagnosis

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2176794C2 true RU2176794C2 (en) 2001-12-10

Family

ID=20231600

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU2000105746A RU2176794C2 (en) 2000-03-07 2000-03-07 Method for setting infection diagnosis

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2176794C2 (en)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
EP0222891A1 (en) Method and test-kit to detect and/or monitor a pathological condition
CA1226216A (en) Hematological prediction of sepsis and other disease states
CN108613977B (en) N-terminal brain natriuretic peptide precursor detection kit
CN106018829A (en) Testing reagent for serum amyloid protein A and preparation method of testing reagent
US4814247A (en) Method for determining the existance and/or the monitoring of a pathological condition in a mammal
Burmester et al. Evaluation of a rapid method for the determination of plasma fibrinogen
US4900679A (en) Method for determining the existence and/or the monitoring of a pathological condition in a mammal and a test kit therefor
Manivannan et al. Diagnosis of paroxysmal nocturnal hemoglobinuria: recent advances
WO2024001044A1 (en) Biomarker combination related to lung cancer, kit containing same, and use thereof
RU2176794C2 (en) Method for setting infection diagnosis
CN108267594A (en) A kind of ST2 detection kits, method of preparation and use based on bimolecular fluorescence complementary technology
JP2022104553A (en) TEST KIT FOR URINARY EPITHELIAL CANCER IDENTIFYING Neu5Gc IN URINE MODIFIED WITH UMOD BASED ON LIP, AND MANUFACTURING METHOD FOR THE SAME
RU2168175C1 (en) Method for diagnosing infection
RU2523413C1 (en) DIAGNOSTIC TECHNIQUE FOR RHEUMATOID ARTHRITIS IF MUTATED CITRULLINATED VIMENTIN ANTIBODIES (Anti-MCV) ARE FOUND IN ORAL FLUID
JP2553606B2 (en) Method for separating and using density-specific blood cells
US3476514A (en) Cancer cytoscreening
RU2137137C1 (en) Method of identification of mycobacterium leprae in patients with disease regression
WO2003069343A2 (en) Method for the detection of tumor markers cea, ca19.9, or ca72.4 in the stool, allowing diagnosis of gastrointestinal tumors
RU2735660C1 (en) Method for differential diagnosis of cervical intraepithelial neoplasia of grade iii and microinvasive cervical cancer associated with human papilloma virus
CN107976543A (en) A kind of diagnosis kit and detection method
RU2024874C1 (en) Method for diagnosing echinococcosis
RU2415430C1 (en) Method for detecting circulating immune complexes
WO2024098369A1 (en) Parkinson's disease in-vitro diagnostic kit based on dna hexahedron and use thereof
RU2095814C1 (en) Method for diagnosing vernal encephalitis
SU1681258A1 (en) Method for making diagnosis of active forms of pulmonary tuberculosis