RU2142287C1 - Strains of bacteria bacillus subtilis and bacillus licheni-formis used as components of preparation against viral and bacterial infections and preparation based on these strains - Google Patents

Strains of bacteria bacillus subtilis and bacillus licheni-formis used as components of preparation against viral and bacterial infections and preparation based on these strains Download PDF

Info

Publication number
RU2142287C1
RU2142287C1 RU97121774A RU97121774A RU2142287C1 RU 2142287 C1 RU2142287 C1 RU 2142287C1 RU 97121774 A RU97121774 A RU 97121774A RU 97121774 A RU97121774 A RU 97121774A RU 2142287 C1 RU2142287 C1 RU 2142287C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
vkpm
strain
strains
bacterial
subtilis
Prior art date
Application number
RU97121774A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU97121774A (en
Inventor
С.Н. Щелкунов
В.А. Петренко
О.И. Рязанкина
В.Е. Репин
И.С. Андреева
А.А. Ильичев
В.А. Белявская
Л.С. Сандахчиев
О.И. Серпинский
Г.Ф. Сиволобова
А.Н. Синяков
Н.Г. Перминова
И.В. Тимофеев
А.И. Леляк
Г.А. Ноздрин
Л.П. Катковский
Н.К. Данилюк
В.И. Масычева
Original Assignee
Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор"
Товарищество с ограниченной ответственностью Научно-производственная фирма "Исследовательский центр"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор", Товарищество с ограниченной ответственностью Научно-производственная фирма "Исследовательский центр" filed Critical Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор"
Priority to RU97121774A priority Critical patent/RU2142287C1/en
Publication of RU97121774A publication Critical patent/RU97121774A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2142287C1 publication Critical patent/RU2142287C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

FIELD: microbiology, medicine, veterinary science. SUBSTANCE: strains of bacteria Bacillus subtilis VKPM B-7092, VKPM B-7048 and the strain of bacterium Bacillus licheniformis VKPM B-7038 are used as components of the preparation against viral and bacterial infections. The preparation has a mixture of the indicated strains biomass in the spore form at titer 3 x 1010 spores/g, not less. The proposed complex antibacterial preparation has also starch and sugar taken at the definite ratio of components. EFFECT: broadened spectrum of an antiviral and an antibacterial activity of the preparation. 4 cl, 8 tbl

Description

Изобретение относится к биотехнологии, а именно генетической инженерии, и может быть использовано в медицине и ветеринарии для получения препаратов против вирусных и бактериальных инфекций. The invention relates to biotechnology, namely genetic engineering, and can be used in medicine and veterinary medicine to obtain drugs against viral and bacterial infections.

Однако известный природный штамм не обладает противовирусной активностью. Кроме того штамм имеет недостаточную антагонистическую активность, что экспериментально подтверждено, например, в отношении таких тест-культур, как Pseudomonas vulgaris и Pseudomonas fluorescens. В этой связи препараты, изготовленные на основе данного штамма также будут обладать низкой антагонистической активностью и не иметь антивирусную активность. However, the known natural strain does not have antiviral activity. In addition, the strain has insufficient antagonistic activity, which is experimentally confirmed, for example, in relation to such test cultures as Pseudomonas vulgaris and Pseudomonas fluorescens. In this regard, preparations made on the basis of this strain will also have low antagonistic activity and not have antiviral activity.

Известен штамм бактерий Bacillus licheniformis N 31 (Институт микробиологии и вирусологии им. акад. Д.З. Заболотного АН Украины), используемый в качестве одного из компонентов препарата биоспорин [2], предназначенного для лечения гнойно-септических послеродовых заболеваний. A known bacterial strain Bacillus licheniformis N 31 (Academician DZ Zabolotny Institute of Microbiology and Virology, Academy of Sciences of Ukraine), used as one of the components of the biosporin preparation [2], intended for the treatment of purulent-septic postpartum diseases.

Однако указанный штамм не обладает противовирусной активностью. However, this strain does not have antiviral activity.

Известен бактериальный препарат на основе штамма Bacillus subtilis C-3102 [4]. Препарат содержит указанную бактериальную культуру в сухой форме, а также пищевые добавки-наполнители для получения фармацевтических или ветеринарных препаратов. Технология получения препарата включает суспензионное культивирование штамма бактерий в питательной среде, содержащей источник углерода, источник азота, неорганические вещества, витамины, аминокислоты при pH 6-8 и температуре 35-40oC в течение от 0,5 до 7 дней. Бактериальную культуру отделяют от питательной среды, промывают и концентрируют. Полученный продукт высушивают и смешивают с добавками-наполнителями.Known bacterial preparation based on a strain of Bacillus subtilis C-3102 [4]. The drug contains the indicated bacterial culture in dry form, as well as nutritional supplements for pharmaceutical or veterinary preparations. The technology for producing the drug includes suspension cultivation of a bacterial strain in a nutrient medium containing a carbon source, a nitrogen source, inorganic substances, vitamins, amino acids at a pH of 6-8 and a temperature of 35-40 o C for 0.5 to 7 days. The bacterial culture is separated from the nutrient medium, washed and concentrated. The resulting product is dried and mixed with filler additives.

Недостатком данного препарата является то, что он не обладает противовирусной активностью. Кроме того препарат имеет сложную технологию получения, т. к. включает операции по отмывке бактериальных клеток от компонентов питательной среды, а затем концентрирование бактерий центрифугированием. The disadvantage of this drug is that it does not have antiviral activity. In addition, the drug has a complex production technology, because it includes operations to wash bacterial cells from the components of the nutrient medium, and then concentrate the bacteria by centrifugation.

Наиболее близким аналогом предлагаемого препарата (прототипом) является бактериальный лечебно-профилактический препарат в жидкой форме, включающий биомассу бактерий Bac. subtilis 5/6, биомассу бактерий Bac. subtilis 2/10 и биомассу бактерий Bac, licheniformis 31. Смесь указанных компонентов препарата представляет собой микробную ассоциацию при объемном их соотношении 1:1: 1 (содержание каждого компонента препарата 100-150 млрд. микробных клеток в 1 мл физраствора). Указанную жидкую форму препарата используют для лечения гнойно-септических послеродовых заболеваний [5]. Препарат имеет широкий спектр антагонистической активности. The closest analogue of the proposed drug (prototype) is a bacterial therapeutic and prophylactic drug in liquid form, including the biomass of Bac bacteria. subtilis 5/6, the biomass of bacteria Bac. subtilis 2/10 and the biomass of bacteria Bac, licheniformis 31. A mixture of these components of the drug is a microbial association with a volume ratio of 1: 1: 1 (the content of each component of the drug is 100-150 billion microbial cells in 1 ml of saline). The specified liquid form of the drug is used to treat purulent-septic postpartum diseases [5]. The drug has a wide range of antagonistic activity.

Недостатком данного препарата является то, что он имеет жидкую форму, которая долго не хранится и не удобна в применении, а также не обладает противовирусной активностью. The disadvantage of this drug is that it has a liquid form, which is not stored for a long time and is not convenient to use, and also does not have antiviral activity.

Задачей предлагаемых изобретений является получение бактериальных штаммов Bacillus subtilis, Bacillus licheniformis и на их основе создание комплексного бактериального препарата, обладающего более широким спектром антивирусной и антибактериальной активности. The objective of the invention is to obtain bacterial strains of Bacillus subtilis, Bacillus licheniformis and based on them the creation of a comprehensive bacterial preparation with a wider spectrum of antiviral and antibacterial activity.

Для решения указанной задачи предлагается:
- штамм бактерий Bacillus subtilis IC-9, депонированный во Всероссийской Коллекции Промышленных Микроорганизмов (ВКПМ), ГНИИ Генетика под номером ВКПМ В-7048 от 31.05.95 г. Штамм получен из природного изолята селекционным путем. Штамм подвергался селекции на подавление бактериального и грибкового роста. С лучшими вариантами проводили эксперименты по подавлению роста: трихофитов, микроспориумов, эпидермофитонов, кандидомикозов и других грибков.
To solve this problem, it is proposed:
- a bacterial strain Bacillus subtilis IC-9, deposited in the All-Russian Collection of Industrial Microorganisms (VKPM), GNII Genetika under the number VKPM B-7048 dated 05/31/95. The strain was obtained from a natural isolate by selection. The strain was selected for inhibition of bacterial and fungal growth. With the best options, experiments were carried out to suppress growth: trichophytes, microsporiums, epidermophytons, candidomycoses and other fungi.

- штамм бактерий Bacillus licheniformis IC-1, депонированный во Всероссийской Коллекции Промышленных Микроорганизмов (ВКПМ), ГНИИ Генетика под номером ВКПМ И-7038 от 30.05.95 г. Штамм получен из природного изолята селекционным путем. Штамм подвергался селекции на подавление бактериального и грибкового роста. С лучшими вариантами проводили эксперименты по подавлению роста болезнетворных штаммов: стафилококка, стрептококка, сальмонелл, трихофитов, микроспориумов, эпидермофитонов, кандидомикозов и др. - a bacterial strain Bacillus licheniformis IC-1, deposited in the All-Russian Collection of Industrial Microorganisms (VKPM), GNII Genetika under the number VKPM I-7038 dated 05/30/95. The strain was obtained from a natural isolate by selection. The strain was selected for inhibition of bacterial and fungal growth. With the best options, experiments were carried out to suppress the growth of pathogenic strains: staphylococcus, streptococcus, salmonella, trichophytes, microsporiums, epidermophytons, candidomycoses, etc.

- штамм бактерий Bacillus subtilis IC-16 (pBMB5), полученный путем трансформации штамма B. subtilis ВКПМ В-7048 (IC-9) рекомбинантной плазмидой ДНК pBMB 5, содержащий ген α-2 интерферона. Полученный штамм IC-16 депонирован во Всероссийской Коллекции Промышленных Микроорганизмов (ВКПМ) ГНИИ Генетика под номером ВКПМ В-7092. Плазмида pBMB 5 способна реплицироваться в бациллах и содержит в своем составе ген α-2- интерферона человека, промотор для экспрессии этого гена, сайт посадки рибосом (SD-сайт) и сигнальный пептид α-амилазы B. amyloliquefaciens для секреции интерферона в культуральную среду, а также несущую устойчивость к канамицину. - the bacterial strain Bacillus subtilis IC-16 (pBMB5) obtained by transforming the B. subtilis strain VKPM B-7048 (IC-9) with the recombinant plasmid pBMB 5 DNA containing the α-2 interferon gene. The resulting strain IC-16 was deposited in the All-Russian Collection of Industrial Microorganisms (VKPM) GNII Genetika under the number VKPM B-7092. The plasmid pBMB 5 is able to replicate in bacilli and contains the human α-2 interferon gene, a promoter for the expression of this gene, a ribosome landing site (SD site) and the signaling peptide of α amylase B. amyloliquefaciens for the secretion of interferon into the culture medium, as well as bearing resistance to kanamycin.

Кроме того, указанная задача решается тем, что в препарате против вирусных и бактериальных инфекций, включающем смесь биомассы штаммов Bacillus subtilis и Bacillus licheniformis в равных соотношениях, согласно изобретению, он дополнительно содержит крахмал и сахар, а в качестве биомассы штаммов бактерий Bacillus subtilis и Bacillus licheniformis используют биомассу штаммов бактерий Bacillus subtilis ВКПМ В-7092, ВКПМ В-7048 и Bacillus licheniformis ВКПМ В-7038 в споровой форме с титром не менее 3•1010 спор/г при следующем количественном соотношении компонентов (мас.%):
Смесь спор бактерий Bacillus subtilis и Bacillus licheniformis в равных соотношениях - 0,1 - 1,0
Крахмал - 1,0 - 3,0
Сахар - Остальное
Высокий титр спор бактерий (1010 спор/г и более) обеспечивается за счет создания одинаковых условий спорообразования для каждой бактериальной клетки.
In addition, this problem is solved in that in the preparation against viral and bacterial infections, including a mixture of biomass strains of Bacillus subtilis and Bacillus licheniformis in equal proportions, according to the invention, it additionally contains starch and sugar, and as a biomass of bacterial strains Bacillus subtilis and Bacillus licheniformis use the biomass of bacterial strains Bacillus subtilis VKPM B-7092, VKPM B-7048 and Bacillus licheniformis VKPM B-7038 in spore form with a titer of at least 3 • 10 10 spores / g in the following quantitative ratio of components (wt.%):
A mixture of spores of bacteria Bacillus subtilis and Bacillus licheniformis in equal proportions - 0.1 - 1.0
Starch - 1.0 - 3.0
Sugar - Else
A high titer of bacterial spores (10 10 spores / g or more) is ensured by creating the same conditions for spore formation for each bacterial cell.

Иммобилизация спор бактерий на крахмале обеспечивает им дополнительную механическую защиту, предотвращает слипание спор бактерий и обеспечивает более равномерное их распределение в массе наполнителя. The immobilization of bacterial spores on starch provides them with additional mechanical protection, prevents the adhesion of bacterial spores and ensures a more even distribution in the mass of the filler.

При применении препарата крахмал способствует ускорению прорастания спор бактерий, что повышает эффективность его действия. When using the drug, starch helps accelerate the germination of bacterial spores, which increases its effectiveness.

Сахар является не только сорбентом-наполнителем, но и оказывает на препарат стабилизирующий и консервирующий эффект, создает более мягкие условия для хранения спор бактерий. Sugar is not only a sorbent-filler, but also has a stabilizing and preserving effect on the preparation, creates milder conditions for storing bacterial spores.

Кроме того, предлагаемый способ значительно упрощает технологию получения препарата как на этапах культивирования (в технологии отсутствует использование дорогих ферментов, не требуется очистка и концентрирование препарата), так и на этапах получения готовой его формы (удаление или перераспределение влаги совмещено с получением готовой формы препарата). In addition, the proposed method greatly simplifies the technology of obtaining the drug both at the stages of cultivation (the technology does not use expensive enzymes, cleaning and concentration of the drug is not required), and at the stages of obtaining its finished form (removal or redistribution of moisture combined with obtaining the finished form of the drug) .

Культурально-морфологические и биохимические свойства штамма Bac. subtilis ВКПМ В-7048
Штамм ВКПМ В-7048 относится к аэробам, грамположительная бактерия. При росте на среде LA дает форму колоний, похожую на ромашку. Колонии белесые. Штамм имеет вид палочек. Величина клеток односуточный агаровой культуры (2-4)•(0,5-0,8) мкм. Споры образуют. Капсулы не образуют. По Граму окрашиваются положительно. Штамм размножается при 15-50oC, оптимальный рост при температуре 36-37oC.
Cultural, morphological and biochemical properties of the Bac strain. subtilis VKPM B-7048
The strain VKPM B-7048 refers to aerobes, a gram-positive bacterium. When grown on medium, LA gives a colony shape similar to chamomile. The colonies are whitish. The strain has the appearance of sticks. The size of the cells of a one-day agar culture is (2-4) • (0.5-0.8) microns. Disputes form. Capsules do not form. Gram stains positively. The strain multiplies at 15-50 o C, optimal growth at a temperature of 36-37 o C.

Хорошо образуют эндоспоры на картофельном агаре. Эндоспоры эллипсоидные, расположены центрально и не выходят из размеров спорангия. Околоспоральных включений не обнаружено. Well form endospores on potato agar. Endospores are ellipsoidal, located centrally and do not go beyond the size of sporangium. Near-peroral inclusions were not detected.

Через 48 ч роста при +37oC на суслоагаре культура имеет непрозрачные матовые колонии с фестончатым краем. Хорошо снимается петлей с поверхности агара.After 48 hours of growth at +37 o C on wort, the culture has opaque matte colonies with a scalloped margin. It is well removed by a loop from an agar surface.

FH среды: минимальные 4; максимальные 8; оптимальные 6-7. FH medium: minimum 4; maximum 8; optimal 6-7.

Штамм размножается при 37oC на средах МПВ и МПА.The strain multiplies at 37 o C on environments MPV and MPA.

Биохимические свойства. Вызывает гидролиз крахмала, редукцию нитратов. Расщепляет глюкозу, сахарозу, маннит мальтозу и лактозу. Biochemical properties. Causes hydrolysis of starch, reduction of nitrates. Breaks down glucose, sucrose, mannitol maltose and lactose.

Штамм не является фитопатогенным. The strain is not phytopathogenic.

Штамм ВКПМ В-7048 продуцирует антибиотик широкого спектра действия, подавляющий рост грибков, стафилокков, стрептококков и синегнойной палочки. Strain VKPM B-7048 produces a broad-spectrum antibiotic that inhibits the growth of fungi, staphylococci, streptococci and Pseudomonas aeruginosa.

Культура не растет в анаэробных условиях и при 10% NaCl, не образует газ из NO в анаэробных условиях. The culture does not grow under anaerobic conditions and at 10% NaCl, does not form gas from NO under anaerobic conditions.

При длительном хранении штамма субстанцию лиофильно высушивают. Для размножения бактерий используют мясопептонный агар (МПА), а культивирование проводят при температуре 37oC.With prolonged storage of the strain, the substance is lyophilized. For the reproduction of bacteria using meat peptone agar (MPA), and the cultivation is carried out at a temperature of 37 o C.

Культурально-морфологические и биохимические свойства штамма Bac. licheniformis ВКПМ В-7038
Штамм ВКПМ В-7038 относится к аэробам; грамположительная палочка, способная образовывать споры. Размеры вегетативных клеток (0,5-0,8) мкм и (1,5-3) мкм, иногда достигают до 5 мкм. Споры эллиптические, преимущественно расположены центрально, не более одной в клетке-спорангии, без отчетливой раздутости спорангии.
Cultural, morphological and biochemical properties of the Bac strain. licheniformis VKPM B-7038
Strain VKPM B-7038 relates to aerobes; gram-positive bacillus capable of forming spores. The sizes of vegetative cells (0.5-0.8) microns and (1.5-3) microns, sometimes reach up to 5 microns. The spores are elliptical, mainly located centrally, no more than one in the sporangia cell, without distinct bloating of the sporangia.

Вегетативные клетки B. licheniformis ВКПМ В-7038 хорошо растут на богатых питательных средах (мясопептонный бульон - МПБ и мясопептонный агар - МПА) при температуре (37-40)oC. Нет роста в присутствии 0,02% азида, но наблюдается рост на агаре Сабуро, при 7% NaCl и при добавлении 0,001% лизоцима.Vegetative cells of B. licheniformis VKPM B-7038 grow well on rich nutrient media (meat-peptone broth - MPB and meat-peptone agar - MPA) at a temperature of (37-40) o C. There is no growth in the presence of 0.02% azide, but there is an increase in Saburo agar, with 7% NaCl and with the addition of 0.001% lysozyme.

Наблюдается слабый рост в анаэробном агаре. Weak growth is observed in anaerobic agar.

На мясопептонном бульоне pH (7,3±0,1) через 48 часов инкубации при температуре (37±1)oC образует помутнение среды, а на поверхности - сухую пленку; на мясопептонном агаре Хоттингера pH (7,3±0,1) - слабовыпуклые сухие непрозрачные белесые колонии, полиморфные, мелкозернистые диаметром (4-6) мм, врастающие в питательную среду.On a meat and peptone broth, pH (7.3 ± 0.1) after 48 hours of incubation at a temperature of (37 ± 1) o C forms a turbidity of the medium, and on the surface a dry film; on Hottinger’s meat and peptone agar, pH (7.3 ± 0.1) —weakly convex dry opaque whitish colonies, polymorphic, fine-grained with a diameter of (4-6) mm, growing into the nutrient medium.

Для получения спор культуру, выращенную на твердой питательной среде, бактериологической петлей пересевают в пробирки или флаконы на картофельный или пшеничный агар, закрывают ватно-марлевыми тампонами и инкубируют при температуре 37oC в течение (7-10) суток под углом 45oC агаром вверх. После завершения споруляции культуру хранят при 4oC в холодильнике.To obtain spores, a culture grown on solid nutrient medium is transferred through a bacteriological loop into tubes or vials on potato or wheat agar, closed with cotton-gauze swabs and incubated at a temperature of 37 o C for (7-10) days at an angle of 45 o C agar up. After completion of sporulation, the culture is stored at 4 ° C. in a refrigerator.

Биохимические свойства. Вегетативные клетки B. licheniformis ВКПМ В-7038 гидролизуют казеин и крахмал, каталазоположительны. Реакция Фогес-Проскауэра положительная. Biochemical properties. Vegetative cells of B. licheniformis VKPM B-7038 hydrolyze casein and starch, are catalase-positive. The Voges-Proskauer reaction is positive.

Штамм не является патогенным для растений, животных и человека. The strain is not pathogenic for plants, animals and humans.

Штамм ВКПМ В-7038 продуцирует антибиотик широкого спектра действия, подавляющий рост грибков, стафилокков, стрептококков и синегнойной палочки. Strain VKPM B-7038 produces a broad-spectrum antibiotic that inhibits the growth of fungi, staphylococci, streptococci and Pseudomonas aeruginosa.

При длительном хранении штамма субстацию лиофильно высушивают. During prolonged storage of the strain, the substance is lyophilized.

Технология получения рекомбинантного штамма B. subilis ВКПМ В-7092 (IC-16) и характеристика его свойств
Для передачи генетической информации используют метод трансформации протопластов B. subtilis, описанный Chang and Cohen [6]. Методика состоит в следующем. 50 мл среды LB (бульон Лурия) в колбе на 500 мл инокулируют 2,5 мл ночной культуры B. subtilis ВКПМ В-7048 (IC-9) и растят в условиях интенсивной аэрации до D600=0,4ое/мл. Затем клетки осаждают центрифугированием в роторе JA-20 при 6000 об/мин в течение 10 мин, удаляют надосадочную жидкость, а клетки ресуспендируют в 5 мл среды SMMP. Среду SMMP приготавливают, смешивая равные объемы 2хSMM и LBP. Состав 2хSMM-буфера: 0,5 М сахароза, 0,02 М малеат Na, 0,02 М MgCl2, pH 6,5. Среду автоклавируют при 0,7 атм. Состав среды LBP (на 1 л): 20 г триптона ("Difco"), 10 г NaCl, 10 г дрожжевого экстракта ("Difco"), 80 г поливинилпирролидона ("Fluka"). Среду автоклавируют при 0.7 атм.
The technology of obtaining the recombinant strain of B. subilis VKPM B-7092 (IC-16) and the characteristic of its properties
To transmit genetic information, the B. subtilis protoplast transformation method described by Chang and Cohen is used [6]. The technique is as follows. 50 ml of LB medium (Luria broth) in a 500 ml flask was inoculated with 2.5 ml of B. subtilis VKPM B-7048 (IC-9) overnight culture and grown under intensive aeration to D 600 = 0.4 o / ml. The cells are then pelleted by centrifugation in a JA-20 rotor at 6000 rpm for 10 minutes, the supernatant is removed, and the cells are resuspended in 5 ml of SMMP medium. An SMMP medium is prepared by mixing equal volumes of 2xSMM and LBP. Composition of 2xSMM buffer: 0.5 M sucrose, 0.02 M Na maleate, 0.02 M MgCl 2 , pH 6.5. The medium is autoclaved at 0.7 atm. The composition of the LBP medium (per 1 l): 20 g of tryptone ("Difco"), 10 g of NaCl, 10 g of yeast extract ("Difco"), 80 g of polyvinylpyrrolidone ("Fluka"). The medium is autoclaved at 0.7 atm.

К ресуспендированным клеткам добавляют 0,5 мл раствора, содержащего 20 мг/мл лизоцима (раствор лизоцима в SMMP готовят незадолго до использования и стерилизуют фильтрованием через фильтры "Millipore" с размером пор 0,2 нм). 0.5 ml of a solution containing 20 mg / ml lysozyme was added to the resuspended cells (the lysozyme solution in SMMP was prepared shortly before use and sterilized by filtration through 0.2 nm Millipore filters).

Клетки инкубируют при 37oC при мягком перемешивании. Через определенные промежутки времени отбирают аликвоты и исследуют их в фазово-контрастном микроскопе, чтобы определить количество протопластов. Когда в протопласты превратятся не менее 99% клеток (1-1,5 часа), их осаждают в роторе JA-20 в течение 15 мин при 5000 об/мин, промывают 1 раз с помощью ресуспендирования в SMMP и вновь центрифугируют в тех же условиях.Cells are incubated at 37 o C with gentle stirring. Aliquots are taken at specific intervals and examined under a phase contrast microscope to determine the number of protoplasts. When at least 99% of the cells turn into protoplasts (1-1.5 hours), they are pelleted in the JA-20 rotor for 15 min at 5000 rpm, washed 1 time by resuspension in SMMP and centrifuged again under the same conditions .

Далее протопласты ресуспендируют в 1/15 объема стартовой культуры. т.е. в 3,3 мл SMMP, добавляют 5-10 мкг плазмидной ДНК и 1,5 мл 40%-ного раствора полиэтиленгликоля, растворяют 50 мл 2хSMM, доводят водой до 100 мл, автоклавируют при 0,7 атм, осторожно перемешивают и оставляют на 2 мин при комнатной температуре. Затем добавляют 5 мл среды SMMP для разбавления полиэтиленгликоля, перемешивают и центрифугируют в роторе JA-20 при 5000 об/мин в течении 10 мин. Протопласты ресуспендируют в 1 мл среды SMMP и инкубируют при 37oC при мягком перемешивании в течение 1,5 часов. Аликвоты по 0,1 мл рассевают на чашки со средой ДМ3, содержащей 1 мг/мл канамицина, для регенерации протопластов. Состав среды ДМ3 (на 1 л): 200 мл 4% агара ("Difco"), 500 мл 1 М сукцината Na, pH 7,3, 100 мл 5%-ных казаминовых кислот (Difco), 50 мл 10% дрожжевого экстракта ("Difco"), 100 мл 3,5% K2HPO4 и 1,5% KH2PO4, 25 мл 20% глюкозы, 20 мл 1 М MgCl2. После автоклавирования при 0,7 атм в среду добавляют 5 мл 2%-ного BSA.Next, the protoplasts are resuspended in 1/15 of the starting culture volume. those. in 3.3 ml of SMMP, add 5-10 μg of plasmid DNA and 1.5 ml of a 40% solution of polyethylene glycol, dissolve 50 ml of 2xSMM, bring to 100 ml with water, autoclave at 0.7 atm, mix gently and leave for 2 min at room temperature. Then 5 ml of SMMP medium is added to dilute the polyethylene glycol, mixed and centrifuged in a JA-20 rotor at 5000 rpm for 10 minutes. Protoplasts are resuspended in 1 ml of SMMP medium and incubated at 37 ° C. with gentle stirring for 1.5 hours. Aliquots of 0.1 ml are seeded into plates with DM3 medium containing 1 mg / ml kanamycin for the regeneration of protoplasts. The composition of the DM3 medium (per 1 l): 200 ml of 4% agar ("Difco"), 500 ml of 1 M Na succinate, pH 7.3, 100 ml of 5% casamino acids (Difco), 50 ml of 10% yeast extract ("Difco"), 100 ml of 3.5% K 2 HPO 4 and 1.5% KH 2 PO 4 , 25 ml of 20% glucose, 20 ml of 1 M MgCl 2 . After autoclaving at 0.7 atm, 5 ml of 2% BSA is added to the medium.

В качестве контроля трансформации протопластов B.subtilis используют описанную выше процедуру, но вместо плазмидной ДНК добавляют такой же объем буфера TE (10 мМ HCl), pH 8,0, 1 мМ ЭД-ТА) или воды. Для контроля интактности и жизнеспособности протопластов одну аликвоту высевают на среду, не содержащую канамицина). The procedure described above is used to control the transformation of B.subtilis protoplasts, but the same volume of TE buffer (10 mM HCl), pH 8.0, 1 mM ED-TA) or water is added instead of plasmid DNA. To control the intactness and viability of protoplasts, one aliquot is seeded on a medium that does not contain kanamycin).

В результате проделанных процедур на среде с канамицином получено 7 клонов (после трансформации B. subtilis плазмидной ДНК pBMB 5). Контрольные чашки, содержащие протопласты после добавления к ним буфера ТЕ были пусты. На чашке со средой без канамицина протопласты выросли сплошным газоном. As a result of the procedures performed on the medium with kanamycin, 7 clones were obtained (after transformation of B. subtilis plasmid DNA pBMB 5). Control plates containing protoplasts after adding TE buffer to them were empty. On a plate with medium without kanamycin, the protoplasts grew solid lawn.

Протопласты, устойчивые к канамицину, рассевали штрихом на чашки Петри со средой LA (агаризованный бульон Лурия), содержащий 50 мкг/мл канамицина. Для контроля используют среду LA с 50 мкг/мл ампициллина, а также LA с 10 мкг/мл тетрациклина. Все 7 протопластов дали хороший рост на среде с канамицином, слабый рост на среде с ампициллином и отсутствие роста на среде с тетрациклином. Исходный штамм B. subtilis не дает роста на среде с канамицином или тетрациклином и имеет слабый рост на среде с ампициллином. Kanamycin-resistant protoplasts were streaked onto LA Petri dishes (Luria agar broth) containing 50 μg / ml kanamycin. For control, LA medium with 50 μg / ml ampicillin and LA with 10 μg / ml tetracycline are used. All 7 protoplasts showed good growth on medium with kanamycin, weak growth on medium with ampicillin and no growth on medium with tetracycline. The original B. subtilis strain does not grow on medium with kanamycin or tetracycline and has weak growth on medium with ampicillin.

Для описания морфологии колоний полученных 7 протопластов суспензию этих культур в физиологическом растворе (0,85% NaCl), высевают на среду JA и растят при 37oC 18 часов. В качестве контроля используют исходный штамм B. subtilis IC-9 (ВКПМ-7048).To describe the colony morphology of the obtained 7 protoplasts, a suspension of these cultures in physiological saline (0.85% NaCl) is plated on JA medium and grown at 37 ° C. for 18 hours. As a control, the original B. subtilis IC-9 strain (VKPM-7048) is used.

5 из 7 колоний протопластов имеют такую же морфологию, как исходный штамм B. subtilis IC-9. Диаметр колоний составляет 0,3- 0,5 мм. Колонии шероховатые, напоминают ромашку, т.е. углубление в середине, а затем плотный валик, окаймляющий "сердцевину", и более прозрачные края, слегка волнистые. 5 out of 7 protoplast colonies have the same morphology as the original B. subtilis IC-9 strain. The diameter of the colonies is 0.3-0.5 mm. The colonies are rough, resembling chamomile, i.e. a recess in the middle, and then a dense roller bordering the “core”, and more transparent edges, slightly wavy.

При окраске по Ожешко [7] и микроскопии мазков культур, выращенных на среде JA в течение ночи при 37oC и выдержанных в течение 3 часов в холодильнике, обнаружены продолговатые вегетативные палочки и овальные споры. Все 7 протопластов и исходном штамме B. subtilis имеют одинаковую картину.When stained according to Orzeszko [7] and microscopy of smears of cultures grown on JA medium overnight at 37 ° C and kept for 3 hours in a refrigerator, oblong vegetative sticks and oval spores were found. All 7 protoplasts and the original B. subtilis strain have the same picture.

Все протопласты обнаруживают стабильность поддержания плазмиды в клетках, т. е. при хранении на среде JA с 50 мкг/мг канамицина и последующих пересевах на аналогичную среду не наблюдалось утери признака устойчивости к канамицину. All protoplasts exhibit stability of plasmid maintenance in cells, i.e., when stored on JA medium with 50 μg / mg kanamycin and subsequent subcultures on a similar medium, no sign of resistance to kanamycin was observed.

Для выделения плазмиды из клонов после трансформации исходного штамма использовали методику Birnboim and Doly [8]. С помощью электрофореза в 0,8% агарозном геле и последующей окраски бромистым этидием было показано наличие плазмиды в трансформированных клонах. To isolate the plasmid from clones after transformation of the initial strain, the Birnboim and Doly method was used [8]. Using electrophoresis in 0.8% agarose gel and subsequent staining with ethidium bromide, the presence of the plasmid in the transformed clones was shown.

Штамм B. subtilis ВКПМ В-7092 характеризуется следующими свойствами. Strain B. subtilis VKPM B-7092 is characterized by the following properties.

Культурально - морфологические свойства. B. subtilis относится к аэробам. При росте на среде LA дает форму колоний, похожую на ромашку. Колонии белесые. Бактерии имеют вид палочек. Величина клеток односуточной агаровой культуры (2-4)•(0,5-0,8) мкм. Споры образуют. Капсулы не образуют. По Граму окрашиваются положительно. Штамм размножается при 15-50oC, оптимальный рост при температуре 36-37oC.Cultural - morphological properties. B. subtilis belongs to aerobes. When grown on medium, LA gives a colony shape similar to chamomile. The colonies are whitish. Bacteria look like sticks. The size of the cells of a one-day agar culture is (2-4) • (0.5-0.8) microns. Disputes form. Capsules do not form. Gram stains positively. The strain multiplies at 15-50 o C, optimal growth at a temperature of 36-37 o C.

Биохимические свойства. Вызывает гидролиз крахмала, редукцию нитратов. Расщепляет глюкозу, сахарозу, маннит, мальтозу и лактозу. Biochemical properties. Causes hydrolysis of starch, reduction of nitrates. Breaks down glucose, sucrose, mannitol, maltose and lactose.

Штамм устойчив к канамицину и не является фитопатогенным. The strain is resistant to kanamycin and is not pathogenic.

Штамм ВКПМ В-7092 синтезирует α2- интерферон и антибиотик широкого спектра действия, подавляющий рост грибков, стафилококков, стрептококков и синегнойной палочки. Strain VKPM B-7092 synthesizes α2-interferon and a broad-spectrum antibiotic that inhibits the growth of fungi, staphylococci, streptococci and Pseudomonas aeruginosa.

При длительном хранении штамма субстацию лиофильно высушивают. Для размножения бактерий используют мясопептонный агар (МПА), а культивирование проводят при температуре 37oC.During prolonged storage of the strain, the substance is lyophilized. For the reproduction of bacteria using meat peptone agar (MPA), and the cultivation is carried out at a temperature of 37 o C.

Пример 1. Исследование непатогенности B. subtilis ВКПМ-7048
Исследование проведено в лаборатории антибактериальных средств и микробиологической токсикологии Всероссийского научного центра по безопасности биологически активных веществ (ВНЦ БАВ).
Example 1. The study of the pathogenicity of B. subtilis VKPM-7048
The study was conducted in the laboratory of antibacterial agents and microbiological toxicology of the All-Russian Scientific Center for the Safety of Biologically Active Substances (VSC BAS).

Патогенность микроорганизма оценивали по выживаемости инфицированных животных, по их внешнему виду и общему поведению, высеваемости бактерий из крови и органов в различные сроки после заражения, а также по макроскопической картине внутренних органов при вскрытии животных в конце срока наблюдения. The pathogenicity of the microorganism was assessed by the survival of infected animals, by their appearance and general behavior, bacterial seeding from blood and organs at various times after infection, as well as by a macroscopic picture of the internal organs when opening the animals at the end of the observation period.

В работе использованы лабораторные животные двух видов. Опыты поставлены на 12 нелинейных белых мышах (18-20 г) и 4 белых крысах (180-200 г). Two types of laboratory animals were used in the work. The experiments were performed on 12 nonlinear white mice (18-20 g) and 4 white rats (180-200 g).

Исследуемый штамм B. subtilis выращен на агаре Хоттингера при 32oC в течение суток. Заражающая доза для животных составляла 10 микробных тел на животное. Микробную взвесь вводили внутрибрюшинно в 0,5 мл изотонического раствора хлорида натрия. Животных наблюдали на протяжении 30 суток.The studied B. subtilis strain was grown on Hottinger agar at 32 o C for a day. The infectious dose for animals was 10 microbial bodies per animal. The microbial suspension was administered intraperitoneally in 0.5 ml of isotonic sodium chloride solution. Animals were observed for 30 days.

Высевы микроорганизмов из крови и органов проводили на агар Хоттингера в чашки Петри. У мышей микробиологической анализ крови, печени и селезенки производили трехкратно за период наблюдения - через 3, 7 и 14 суток после введения изучаемого штамма, у крыс - однократно через 14 суток. Во всех случаях брали по 2 животных каждого вида. Microorganisms were seeded from blood and organs on Hottinger agar in Petri dishes. In mice, a microbiological analysis of blood, liver and spleen was performed three times during the observation period - 3, 7 and 14 days after the introduction of the studied strain, in rats - once after 14 days. In all cases, 2 animals of each species were taken.

В конце срока наблюдения (30 суток) по 2 животных каждого вида забивали этиловым эфиром, вскрывали и производили макроскопическую оценку внутренних органов: сердца, легких, желудка, печени, почек и селезенки. At the end of the observation period (30 days), 2 animals of each species were killed with ethyl ether, opened and a macroscopic evaluation of the internal organs: heart, lungs, stomach, liver, kidneys and spleen was performed.

В результате проведенных исследований установлено нижеследующее. В течение опыта не зарегистрировано гибели животных. Не отмечено каких-либо изменений в их внешнем виде и поведении. При макроскопической оценке внутренних органов на 30 день наблюдения патологических изменений не обнаружено. As a result of the studies established the following. No animal deaths were recorded during the experiment. No changes in their appearance and behavior were noted. A macroscopic evaluation of the internal organs on the 30th day of observation of pathological changes was not detected.

Микробиологический анализ не показал высеваемости микроорганизма из крови и внутренних органов животных во все сроки исследования. Microbiological analysis did not show the seeding of the microorganism from the blood and internal organs of animals at all stages of the study.

На основании отсутствия гибели животных и каких-либо изменений в их внешнем виде и общем поведении на протяжении 30-ти дневного наблюдения, отрицательных результатов микробиологического анализа крови, печени и селезенки, нормальной картины внутренних органов животных при вскрытии в конце срока наблюдения сделан вывод, что штамм Bacillus subtilis IC-9 (ВКПМ В-7048) является непатогенным. Based on the absence of animal death and any changes in their appearance and general behavior during a 30-day observation, negative results of a microbiological analysis of blood, liver and spleen, normal picture of the internal organs of animals during autopsy at the end of the observation period, it was concluded that Bacillus subtilis strain IC-9 (VKPM B-7048) is non-pathogenic.

Пример 2. Исследование непатогенности штамма Bacillus licheniformis ВКПМ-7038
Исследуемый штамм B. licheniformis выращен на агаре Хоттингера при 35oC в течение суток.
Example 2. The study of the pathogenicity of the strain of Bacillus licheniformis VKPM-7038
The studied strain of B. licheniformis was grown on Hottinger agar at 35 o C for a day.

Исследования проводились на белых мышах. Заражающая доза для животных составляла 1010 микробных тел на животное. Микробную взвесь вводили внутрибрюшинно в 0,5 мл изотонического раствора хлорида натрия. Животных наблюдали на протяжении 30 суток.Studies were conducted on white mice. The infectious dose for animals was 10 10 microbial bodies per animal. The microbial suspension was administered intraperitoneally in 0.5 ml of isotonic sodium chloride solution. Animals were observed for 30 days.

Высевы микроорганизмов из крови и органов проводили на агар Хоттингера в чашки Петри. У мышей микробиологический анализ крови, печени и селезенки производили трехкратно за период наблюдения - через 3, 7 и 14 суток после введения изучаемого штамма, у крыс - однократно через 14 суток. Во всех случаях брали по 2 животных каждого вида. Microorganisms were seeded from blood and organs on Hottinger agar in Petri dishes. In mice, a microbiological analysis of blood, liver, and spleen was performed three times during the observation period — 3, 7, and 14 days after administration of the studied strain, and in rats — once every 14 days. In all cases, 2 animals of each species were taken.

В конце срока наблюдения (30 суток) животных забивали этиловым эфиром, вскрывали и производили макроскопическую оценку внутренних органов: сердца, легких, желудка, печени, почек и селезенки. At the end of the observation period (30 days), the animals were sacrificed with ethyl ether, opened and a macroscopic evaluation of the internal organs: heart, lungs, stomach, liver, kidneys and spleen was performed.

В результате проведенных исследований установлено нижеследующее. В течение опыта не зарегистрировано гибели животных. Не отмечено каких-либо изменений в их внешнем виде и поведении. При макроскопической оценке внутренних органов на 30 день наблюдения патологических изменений не обнаружено. As a result of the studies established the following. No animal deaths were recorded during the experiment. No changes in their appearance and behavior were noted. A macroscopic evaluation of the internal organs on the 30th day of observation of pathological changes was not detected.

Микробиологический анализ не показал высеваемости микроорганизма из крови и внутренних органов животных после 7 суток исследования. Microbiological analysis did not show inoculation of the microorganism from the blood and internal organs of animals after 7 days of the study.

На основании отсутствия гибели животных и каких-либо изменений в их внешнем виде и общем поведении на протяжении 30-ти дневного наблюдения, отрицательных результатов микробиологического анализа крови, печени и селезенки, нормальной картины внутренних органов животных при вскрытии в конце срока наблюдения сделан вывод, что штамм Bacillus licheniformis ВКПМ В-7038 является непатогенным. Based on the absence of animal death and any changes in their appearance and general behavior during a 30-day observation, negative results of a microbiological analysis of blood, liver and spleen, normal picture of the internal organs of animals during autopsy at the end of the observation period, it was concluded that Bacillus licheniformis strain VKPM B-7038 is non-pathogenic.

Данные о непатогенности штамма Bac. licheniformis ВКПМ В-7038 представлены в таблице 1. Data on the non-pathogenicity of the Bac strain. licheniformis VKPM B-7038 are presented in table 1.

Анализ таблицы 1 показывает, что предлагаемый штамм является безвредным для животных. Analysis of table 1 shows that the proposed strain is harmless to animals.

Пример 3. Исследование непатогенности штамма бактерий Bacillus subtilis ВКПМ-7092
Исследование проведено в лаборатории антибактериальных средств и микробиологической токсикологии Всероссийского научного центра по безопасности биологически активных веществ (ВНЦ БАВ).
Example 3. The study of the pathogenicity of the bacterial strain Bacillus subtilis VKPM-7092
The study was conducted in the laboratory of antibacterial agents and microbiological toxicology of the All-Russian Scientific Center for the Safety of Biologically Active Substances (VSC BAS).

Патогенность микроорганизма оценивали по выживаемости инфицированных животных, по их внешнему виду и общему поведению, высеваемости бактерий из крови и органов в различные сроки после заражения, а также по макроскопической картине внутренних органов при вскрытии животных в конце срока наблюдения. The pathogenicity of the microorganism was assessed by the survival of infected animals, by their appearance and general behavior, bacterial seeding from blood and organs at various times after infection, as well as by a macroscopic picture of the internal organs when opening the animals at the end of the observation period.

В работе использованы лабораторные животные двух видов. Опыты поставлены на 12 нелинейных белых мышах (18-20 г) и 4 белых крысах (180-200 г). Two types of laboratory animals were used in the work. The experiments were performed on 12 nonlinear white mice (18-20 g) and 4 white rats (180-200 g).

Исследуемый штамм B. subtilis выращен на агаре Хоттингера при 32oC в течение суток. Заражающая доза для животных составляла 10 микробных тел на животное. Микробную взвесь вводили внутрибрюшинно в 0,5 мл изотонического раствора хлорида натрия. Животных наблюдали на протяжении 30 суток.The studied B. subtilis strain was grown on Hottinger agar at 32 o C for a day. The infectious dose for animals was 10 microbial bodies per animal. The microbial suspension was administered intraperitoneally in 0.5 ml of isotonic sodium chloride solution. Animals were observed for 30 days.

Высевы микроорганизмов из крови и органов проводили на агар Хоттингера в чашки Петри. У мышей микробиологический анализ крови, печени и селезенки производили трехкратно за период наблюдения - через 3, 7 и 14 суток после введения изучаемого штамма, у крыс - однократно через 14 суток. Во всех случаях брали по 2 животных каждого вида. Microorganisms were seeded from blood and organs on Hottinger agar in Petri dishes. In mice, a microbiological analysis of blood, liver, and spleen was performed three times during the observation period — 3, 7, and 14 days after administration of the studied strain, and in rats — once every 14 days. In all cases, 2 animals of each species were taken.

В конце срока наблюдения (30 суток) по 2 животных каждого вида забивали этиловым эфиром, вскрывали и производили макроскопическую оценку внутренних органов: сердца, легких, желудка, печени, почек и селезенки. At the end of the observation period (30 days), 2 animals of each species were killed with ethyl ether, opened and a macroscopic evaluation of the internal organs: heart, lungs, stomach, liver, kidneys and spleen was performed.

В результате проведенных исследований установлено нижеследующее. В течение опыта не зарегистрировано гибели животных. Не отмечено каких-либо изменений в их внешнем виде и поведении. При макроскопической оценке внутренних органов на 30 день наблюдения патологических изменений не обнаружено. As a result of the studies established the following. No animal deaths were recorded during the experiment. No changes in their appearance and behavior were noted. A macroscopic evaluation of the internal organs on the 30th day of observation of pathological changes was not detected.

Микробиологический анализ не показал высеваемости микроорганизма из крови и внутренних органов животных во все сроки исследования. Microbiological analysis did not show the seeding of the microorganism from the blood and internal organs of animals at all stages of the study.

На основании отсутствия гибели животных и каких-либо изменений в их внешнем виде и общем поведении на протяжении 30-ти дневного наблюдения, отрицательных результатов микробиологического анализа крови, печени и селезенки, нормальной картины внутренних органов животных при вскрытии в конце срока наблюдения сделан вывод, что штамм Bacillus subtilis IC-16 (ВКПМ В-7092) является непатогенным. Based on the absence of animal death and any changes in their appearance and general behavior during a 30-day observation, negative results of a microbiological analysis of blood, liver and spleen, normal picture of the internal organs of animals during autopsy at the end of the observation period, it was concluded that Bacillus subtilis strain IC-16 (VKPM B-7092) is non-pathogenic.

Пример 4. Исследование антагонистической активности штаммов B. subitilis ВКПМ В-7048, ВКПМ В-7092 и B. licheniformis ВКПМ В-7038
Селективно полученный штамм B. subtilis ВКПМ В-7048 характеризуется высокой антагонистической активностью в отношении патогенных и условно патогенных микроорганизмов.
Example 4. The study of the antagonistic activity of strains of B. subitilis VKPM B-7048, VKPM B-7092 and B. licheniformis VKPM B-7038
The selectively obtained B. subtilis strain VKPM B-7048 is characterized by high antagonistic activity against pathogenic and conditionally pathogenic microorganisms.

Антагонистическую активность в отношении тест-культур проверяют методом отсроченного антагонизма. В качестве тест-культур используют Shigella sonnei, Salmonella typhimurium. S. stenly, S. reading, S. derby, Staphylococous aureus, Pseudomonas aeruginose, Proteus vulgaris, Klebsiella pneumoniae, Candida albicans, C. tropicalis и др. Используемые тест-микробы должны удовлетворять следующим требованиям: находиться в S-форме, иметь типичные морфологические и ферментативные свойства. Antagonistic activity against test cultures is checked by the method of delayed antagonism. Shigella sonnei, Salmonella typhimurium are used as test cultures. S. stenly, S. reading, S. derby, Staphylococous aureus, Pseudomonas aeruginose, Proteus vulgaris, Klebsiella pneumoniae, Candida albicans, C. tropicalis, etc. The test microbes used must meet the following requirements: be in S-form, have typical morphological and enzymatic properties.

Используемые штаммы тест-микробов давали положительную кератоконъюнктивальную пробу на морских свинках. Used strains of test microbes gave a positive keratoconjunctival test in guinea pigs.

Тест-штаммы стафилококков образовывали зону гемолиза размером 3-5 мм вокруг своих колоний через 18-20 часов роста на кровяном агаре, коагулировали плазму крови кролика в течение 2-х часов, вызывали некроз в течение 48-72 часов при внутрикожном введении кролику 200 млн микробных клеток суточной культуры в 0,2 мл физиологического раствора. Staphylococcus test strains formed a 3-5 mm hemolysis zone around their colonies after 18-20 hours of growth on blood agar, coagulated rabbit blood plasma for 2 hours, caused necrosis for 48-72 hours with 200 million intradermal administration to the rabbit microbial cells of a daily culture in 0.2 ml of physiological saline.

Исследование антагонистической активности штаммов B. subtilis ВКПМ В-7048, ВКПМ В-7092 и B. licheniformis ВКПМ В-7038 производят на плотной среде Гаузе N 2. The study of the antagonistic activity of B. subtilis strains VKPM B-7048, VKPM B-7092 and B. licheniformis VKPM B-7038 is carried out on a dense Gause medium N 2.

Рецептура плотной среды Гаузе N 2 на 1 л:
1. Бульон Хоттингера (700 мг% общего азота) - 30 мл
2. Пептон - 5 г
3. Натрия хлорид - 5 г
4. Глюкоза - 10 г
5. Агар микробиологический - 15 г
6. Дистиллированная вода - до общего объема 1 л.
The formulation of a dense medium Gause N 2 1 l:
1. Hottinger broth (700 mg% total nitrogen) - 30 ml
2. Peptone - 5 g
3. Sodium chloride - 5 g
4. Glucose - 10 g
5. Microbiological agar - 15 g
6. Distilled water - up to a total volume of 1 liter.

После смешивания компонентов среду разогревают до полного растворения агара и фильтруют через ватно-марлевый фильтр в колбы по 0,3 - 0,4 л. Колбы со средой стерилизуют в автоклаве при давлении 0,1 МПа в течение 15 мин. После остывания до температуры (45±2)oC среду разливают по стерильным чашкам Петри. Чашки Петри со средой помещают в термостат и выдерживают при температуре (37±1)oC в течение (24±2) часов для проверки стерильности.After mixing the components, the medium is heated until the agar is completely dissolved and filtered through a cotton-gauze filter into 0.3-0.4 l flasks. The flasks with the medium are sterilized in an autoclave at a pressure of 0.1 MPa for 15 minutes. After cooling to a temperature of (45 ± 2) o C, the medium is poured into sterile Petri dishes. Petri dishes with the medium are placed in a thermostat and incubated at a temperature of (37 ± 1) o C for (24 ± 2) hours to verify sterility.

Культуры Shigella sonnei, Salmonella typhimurium, Staphylococcus aureus, Candida albicans и другие вышеуказанные тест-культуры выращивают на чашках Петри в течение (18+2) часов на мясопептонном агаре (МПА). В стерильные пробирки приливают по 1 мл физиологического раствора и готовят суспензии тест-штаммов с концентрацией (5,0 ± 0,5)•108 клеток/мл.Cultures of Shigella sonnei, Salmonella typhimurium, Staphylococcus aureus, Candida albicans and other above test cultures were grown on Petri dishes for (18 + 2) hours on meat peptone agar (MPA). 1 ml of physiological saline solution is poured into sterile tubes and suspensions of test strains with a concentration of (5.0 ± 0.5) • 10 8 cells / ml are prepared.

Для проведения испытания от каждой серии отбирают 4 пробы по 2 г. For testing, 4 samples of 2 g are taken from each series.

Далее 0,5 г препарата на основе штамма B. subtilis 7048 разводят в 1 мл физиологического раствора. Полученную взвесь высевают штрихом с помощью микробиологической петли по диаметру чашки Петри с плотной средой Гаузе N 2. Посевы инкубируют в термостате при (37±1)oC в течение (72±2) часов. Затем к выросшей культуре подсеивают посевной материал тест-микробов методом перпендикулярных штрихов.Then, 0.5 g of the preparation based on the B. subtilis strain 7048 is diluted in 1 ml of physiological saline. The resulting suspension is streaked using a microbiological loop along the diameter of the Petri dish with a dense Gause medium N 2. Crops are incubated in an incubator at (37 ± 1) o C for (72 ± 2) hours. Then the test microbe seed is seeded to the grown culture by the method of perpendicular strokes.

Учет результатов проводят через 18 часов инкубирования при (37±1)oC по величине зон отсутствия роста тест-культур. Контролем роста тест-культур служит их параллельный высев на чашки с той же плотной средой Гаузе N 2 без исследуемой ассоциации культур.Analysis of the results is carried out after 18 hours of incubation at (37 ± 1) o C according to the size of the zones of lack of growth of test cultures. The growth control of test cultures is controlled by their parallel plating on plates with the same dense Gauze N 2 medium without the studied culture association.

Штаммы B. subtilis ВКПМ В-7048 и ВКПМ В-7092 характеризуются следующими показателями зон задержки роста тест-культуры (мм):
Shigella sonnei - 17-22
Salmonella typhimarium - 21-25
S. stenly - 13-17
S. reading - 14-18
S. derby - 15-18
Staphylococcus aureus - 22-27
Pseudomonas fluoresocens - 8-10
Pseudomonas vulgaris - 10-12
Pseudomonas aeruginose - 7-9
Proteus vulgaris - 12-14
Klebsiella pheumoniae - 13-15
Candida albicans - 25-29
C. tropicalis - 22-26
Штамм B. licheniformis 7038 характеризуется следующими показателями зон задержки роста тест-культуры (мм):
Shigella sonnei - 22-27
Salmonella typhimurim - 26-30
S. stenly - 18-22
S. reading - 19-23
S. derby - 20-23
Stapgylococcus aureus - 27-33
Pseudomonas aeruginose - 12-15
Proteus vulgaris - 17-19
Klebsiella pneumoniae - 18-20
Candida albicans - 30-34
C. tropicalis - 27-31
Таким образом исследуемые штаммы бактерий имеют высокую антагонистическую активность в отношении широкого спектра патогенных и условно патогенных микроорганизмов.
The B. subtilis strains VKPM B-7048 and VKPM B-7092 are characterized by the following indicators of growth inhibition zones of the test culture (mm):
Shigella sonnei - 17-22
Salmonella typhimarium - 21-25
S. stenly - 13-17
S. reading - 14-18
S. derby - 15-18
Staphylococcus aureus - 22-27
Pseudomonas fluoresocens - 8-10
Pseudomonas vulgaris - 10-12
Pseudomonas aeruginose - 7-9
Proteus vulgaris - 12-14
Klebsiella pheumoniae - 13-15
Candida albicans - 25-29
C. tropicalis - 22-26
Strain B. licheniformis 7038 is characterized by the following indicators of growth inhibition zones of the test culture (mm):
Shigella sonnei - 22-27
Salmonella typhimurim - 26-30
S. stenly - 18-22
S. reading - 19-23
S. derby - 20-23
Stapgylococcus aureus - 27-33
Pseudomonas aeruginose - 12-15
Proteus vulgaris - 17-19
Klebsiella pneumoniae - 18-20
Candida albicans - 30-34
C. tropicalis - 27-31
Thus, the studied bacterial strains have high antagonistic activity against a wide range of pathogenic and conditionally pathogenic microorganisms.

Кроме того, исследована антибиотическая активность производственных штаммов R. subtilis ВКПМ В-7048, ВКПМ В-7092 и B. licheniformis ВКПМ В-7038 по отношению друг к другу как составных частей комплексных препаратов. При этом можно сделать вывод, что антагонизм клеток B. subtilis и B. licheniformis не является существенной помехой для их совместного использования в препаратах. In addition, the antibiotic activity of production strains of R. subtilis VKPM B-7048, VKPM B-7092 and B. licheniformis VKPM B-7038 with respect to each other as components of complex preparations was studied. In this case, we can conclude that the antagonism of B. subtilis and B. licheniformis cells is not a significant obstacle to their joint use in drugs.

Пример 5. Исследование антивирусной активности штамма B. subtilis ВКПМ И-7092
Для исследования антивирусной активности штамм бактерий культивируют на плотной питательной среде следующего состава:
Агар-агар - 20 г/л
Пептон - 12 г/л
Дрожжевой экстракт - 5 г/л
NaCl - 5 г/л
Вода - До 1 литра
Канамицин - 50 г/л
На 1 литр агаризованной среды требуется 25-30 мл бактерий с титром около 108 кл/мл. Питательную среду формируют в емкости в виде слоя, на который укладывают полупроницаемую мембрану, например целлофановую пленку. Сверху на пленку наносят посевную дозу штамма бактерий. Культивирование осуществляют в термостате при температуре 34-37oC в течение 20-24 часов. Далее емкость переносят в термостат с температурой +(6-10)oC и выдерживают при этой температуре в течение 1 суток до образования спор бактерий. При указанном способе культивирования может быть получен титр спор 3•1010 спор/г. Споры бактерий снимают стеклянным шпателем с поверхности целлофановой пленки и собирают в стерильную емкость. Указанные споры бактерий представляют собой чистый концентрат биомассы, которую исследуют на противовирусную активность.
Example 5. The study of the antiviral activity of the strain B. subtilis VKPM I-7092
To study the antiviral activity, a bacterial strain is cultivated on a solid nutrient medium of the following composition:
Agar-agar - 20 g / l
Peptone - 12 g / l
Yeast extract - 5 g / l
NaCl - 5 g / l
Water - Up to 1 liter
Kanamycin - 50 g / l
25 g of bacteria with a titer of about 10 8 cells / ml are required per 1 liter of agar medium. The nutrient medium is formed in the container in the form of a layer on which a semipermeable membrane, for example a cellophane film, is laid. A seed dose of the bacterial strain is applied on top of the film. Cultivation is carried out in a thermostat at a temperature of 34-37 o C for 20-24 hours. Next, the container is transferred to a thermostat with a temperature of + (6-10) o C and maintained at this temperature for 1 day until the formation of bacterial spores. With this cultivation method, a spore titer of 3 x 10 10 spores / g can be obtained. Bacterial spores are removed with a glass spatula from the surface of the cellophane film and collected in a sterile container. These bacterial spores are pure biomass concentrate that is tested for antiviral activity.

Противовирусную активность штамма ВКПМ В-7092 определяют по ингибированию цитопатического действия вируса везикулярного стоматита (ВВС) на культуре клеток Л-68. The antiviral activity of the VKPM B-7092 strain is determined by the inhibition of the cytopathic effect of the vesicular stomatitis virus (BBC) on the L-68 cell culture.

ВВС предварительно пассируют на куриных эмбрионах по ТУ 42-14-99-77, проводят не менее 3-х пассажей при заражающей дозе 100-1000 ТЦД50/0,1 мл. Инфекционная активность материала должна составлять 1•106 - 1•107 ТЦД50/мл. Монослой клеток Л-68, выращивают на матраце вместимостью 1000 мл в присутствии ростовой среды (среда Игла MEM с двойным набором ингредиентов - 90% по ФС 42-7ВС-90, сыворотка плодов коровы по ФС 42-7ВС-90-10%) с антибиотиками (канамицин 100 тыс. Ед/мл, гентамицин 16 Ед/мл), после чего клетки снимают со стекла, суспендируют в 40 мл ростовой среды и подсчитывают их количество в счетной камере Горяева. После этого клеточную взвесь разводят ростовой средой из расчета, чтобы в 1,0 мл содержалось 200 тыс. кл/мл. В лунки микропланшетов вносят по 0,1 мл клеточной взвеси и через 2-3 суток инкубации при 37oC получают монослойную культуру.The Air Force is pre-passaged on chicken embryos according to TU 42-14-99-77, at least 3 passages are performed at an infectious dose of 100-1000 TCD 50 / 0.1 ml. Infectious activity of the material should be 1 • 10 6 - 1 • 10 7 TCD 50 / ml. A monolayer of L-68 cells is grown on a mattress with a capacity of 1000 ml in the presence of a growth medium (Migla MEM medium with a double set of ingredients - 90% FS 42-7BC-90, serum of cow fruits FS 42-7BC-90-10%) s antibiotics (kanamycin 100 thousand units / ml, gentamicin 16 units / ml), after which the cells are removed from the glass, suspended in 40 ml of growth medium and their number is counted in the Goryaev counting chamber. After this, the cell suspension is diluted with growth medium so that 1.0 ml contains 200 thousand cells / ml. 0.1 ml of cell suspension is added to the wells of the microplates and after 2-3 days of incubation at 37 ° C, a monolayer culture is obtained.

После сформирования монослоя отсасывают ростовую среду, в первую лунку вносят 20 мкл образца стерильного фильтрата клеток штамма ВКПМ В-7092, полученного как описано выше, и 180 мкл поддерживающей среды; после осторожного перемешивания 100 мкл из первой лунки переносят во вторую лунку, смешивают со 100 мкл поддерживающей среды и т.д. Клетки выдерживают 24 ч при 37oC и после этого в каждую лунку вносят 100 тканевых цитопатических доз, вызывающих поражение в половине проб, вируса ВВС и выдерживают при 37oC 24-48 ч. Через 1 сутки проводят первый учет, через 2 суток - второй. Величину антивирусной активности в исследуемых образцах определяют методом сравнения с антивирусной активностью рефренс-препарата, в качестве которого используют препарат реаферона, и выражают в международных единицах (ME).After the monolayer is formed, the growth medium is aspirated, 20 μl of a sample of a sterile filtrate of cells of VKPM strain B-7092 obtained as described above and 180 μl of support medium are introduced into the first well; after stirring gently, 100 μl from the first well is transferred to the second well, mixed with 100 μl of support medium, etc. Cells were incubated for 24 hours at 37 o C and after that 100 tissue cytopathic doses, causing damage in half of the samples, of the BBC virus were added to each well and kept at 37 o C for 24-48 hours. After 1 day, the first count was carried out, after 2 days - second. The amount of antiviral activity in the test samples is determined by comparison with the antiviral activity of the reference drug, which is used as a reaferon drug, and expressed in international units (ME).

Все исследуемые образцы обладают антивирусной активностью 3•105-5•105ME/л, в то время как в образцах, полученных из бесплазмидного штамма B.subtilis IC-9 антивирусная активность не выявлена.All the studied samples possess antiviral activity of 3 • 10 5 -5 • 10 5 ME / l, while in the samples obtained from the plasmid-free B.subtilis strain IC-9, no antiviral activity was detected.

Пример 6. Определение стабильности рекомбинантной плазмиды рВМВ 5, несущей синтетический ген α-2 интерферона человека, в бактериальных клетках B. subtilis ВКПМ В-7092. Example 6. Determination of the stability of the recombinant plasmid rBMB 5 carrying the synthetic gene α-2 of human interferon in the bacterial cells of B. subtilis VKPM B-7092.

Клетки B. subtilis выращивают в среде 2.LB с крахмалом до поздней стационарной фазы, затем переносят в свежую среду и выращивают снова до поздней стационарной фазы и т.д., всего 10 пересевов. После каждого пересева проводят высев на МПА без антибиотика. Выросшие изолированные колонии перекалывают на чашки с МПА с канамицином и без антибиотика на нитроцеллюлозный фильтр. После подращивания подсчитывают и сравнивают число колоний, выросших на МПА с антибиотиком и без антибиотика. Таким образом определяют количество клонов, потерявших рекомбинантную плазмиду после каждого пересева. Отсутствие плазмиды подтверждают методом выделения плазмидной ДНК. B. subtilis cells are grown in 2.LB medium with starch until the late stationary phase, then transferred to fresh medium and grown again until the late stationary phase, etc., a total of 10 transfers. After each reseeding, seeding is performed on MPA without an antibiotic. The grown isolated colonies are transferred to plates with MPA with kanamycin and without antibiotic on a nitrocellulose filter. After growing, the number of colonies grown on MPA with an antibiotic and without an antibiotic is calculated and compared. In this way, the number of clones that have lost the recombinant plasmid after each reseeding is determined. The absence of the plasmid is confirmed by plasmid DNA isolation.

Сохранность гена интерферона человека типа α-2 в рекомбинантной плазмиде pВМВ 5 после пересевов подтверждают методом гибридизации. Фильтры с отпечатками колоний после пересевов ингибируют с меченым фрагментом, содержащим ген интерферона типа α-2, выделенным из плазмиды рВМВ 5. Все клоны, не потерявшие рекомбинантные плазмиды после пересевов, гибридизируют с меченым фрагментом, содержащим ген интерферона, что свидетельствует о сохранности гена интерферона типа α-2 в составе плазмиды рВМВ 5. Кроме того, из случайно отобранных клонов выделяют плазмидную ДНК и анализируют с помощью эндонуклеаз рестрикции. The safety of the α-2 type human interferon gene in the recombinant plasmid pMBB 5 after reseeding is confirmed by the hybridization method. Filters with colony imprints after passages are inhibited with a labeled fragment containing the α-2 type interferon gene isolated from rBMB 5 plasmid. All clones that have not lost recombinant plasmids after passages are hybridized with the labeled fragment containing the interferon gene, which indicates the preservation of the interferon gene type α-2 as part of the plasmid rBMB 5. In addition, plasmid DNA is isolated from randomly selected clones and analyzed by restriction endonucleases.

Установлено, что плазмидная ДНК сохраняется и наследуется в течение 10 пересевов на МПА, что свидетельствует о ее стабильности. It was found that plasmid DNA is preserved and inherited for 10 passages on MPA, which indicates its stability.

Пример 7. Методика культивирования бактерий рода Bacillus для получения бактериальной биомассы
Для получения биомассы спор бактерий раздельно культивируют штаммы бактерий B.licheniformis ВКПМ-7038, B.subtilis ВКПМ В-7092, B.subtilis ВКПМ В-7048 на плотной питательной среде следующего состава:
Агар-агар - 20 г/л
Пептон - 12 г/л
Дрожжевой экстракт - 5 г/л
NaCl - 5 г/л
Вода - До 1 литра
На 1 литр агаризованной среды требуется 25-30 мл бактерий одного вида с титром (106-10)8 кл/мл. Питательную среду формируют в емкостях в виде слоев, на которые наносят посевные дозы каждого указанного вида бактерий рода Bacillus. Культивирование каждого вида бактерий осуществляют раздельно в термостате при температуре +(34-37)oCo в течение 20-24 часов. Далее емкости переносят в термостат с температурой +(6-10)oC и выдерживают при этой температуре в течение 1-2 суток до образования спор бактерий. При указанном способе культивирования может быть получен титр спор (3-10)•1010 спор/г.
Example 7. The method of cultivation of bacteria of the genus Bacillus to obtain bacterial biomass
To obtain biomass of bacterial spores, B.licheniformis VKPM-7038, B.subtilis VKPM B-7092, B.subtilis VKPM B-7048, and B.subtilis VKPM B-7048 strains of bacteria are separately cultivated on a solid nutrient medium of the following composition:
Agar-agar - 20 g / l
Peptone - 12 g / l
Yeast extract - 5 g / l
NaCl - 5 g / l
Water - Up to 1 liter
For 1 liter of agar medium, 25-30 ml of the same species of bacteria with a titer of (10 6 -10) 8 cells / ml are required. The nutrient medium is formed in containers in the form of layers on which the inoculative doses of each specified type of bacteria of the genus Bacillus are applied. The cultivation of each type of bacteria is carried out separately in a thermostat at a temperature of + (34-37) o C o for 20-24 hours. Next, the containers are transferred to a thermostat with a temperature of + (6-10) o C and maintained at this temperature for 1-2 days until the formation of bacterial spores. With this cultivation method, a spore titer of (3-10) • 10 10 spores / g can be obtained.

Пример 8. Получение готовой формы препарата на основе микробной ассоциации рода Bacillus
Вначале приготавливают раздельно для биомассы каждого вида бактерий смесь сахара с крахмалом в соотношении 1:1. Далее к 5 частям полученной смеси наполнителя добавляют 1 часть биомассы спор бактерий штамма ВКПМ В-7092 или ВКПМ В-7048 и перемешивают При этом происходит иммобилизация спор бактерий на частицах крахмала. Далее в полученную смесь вводят сахар при соотношении биомассы спор бактерий и сахара не более 1:50. В результате получают составные части препарата в сухой форме при следующем соотношении компонентов (мас.%):
1. компонент А
Споры бактерий Bac. subtilis ВКПМ В-7092 с титром не менее 3•1010спор/г - 0,1-1,0
Крахмал - 1,0-3,0
Сахар - Остальное
2. компонент Б
Споры бактерий Bac.subtilis ВКПМ В-7048 с титром не менее 3•1010спор/г - 0,1-1,0
Крахмал - 1,0-3,0
Сахар - Остальное
3. компонент В
Споры бактерий Bac. subtilis ВКПМ В-7092 с титром не менее 3•1010 спор/г - 0,1-1,0
Крахмал - 1,0-3,0
Сахар - Остальное
Далее компоненты А, Б, и В препарата в сухой форме смешивают в соотношении 1:1:1 и получают готовую форму препарата.
Example 8. Obtaining the finished product based on the microbial association of the genus Bacillus
First, a mixture of sugar with starch in a ratio of 1: 1 is prepared separately for the biomass of each type of bacteria. Then, to 5 parts of the obtained filler mixture, add 1 part of the bacterial spore biomass of the VKPM B-7092 strain or VKPM B-7048 strain and mix. In this case, the bacterial spores are immobilized on starch particles. Next, sugar is introduced into the resulting mixture at a ratio of biomass of spores of bacteria and sugar of not more than 1:50. The result is the components of the drug in dry form in the following ratio of components (wt.%):
1. component A
Bac. subtilis VKPM B-7092 with a titer of at least 3 • 10 10 spores / g - 0.1-1.0
Starch - 1.0-3.0
Sugar - Else
2. component B
Spores of bacteria Bac.subtilis VKPM B-7048 with a titer of at least 3 • 10 10 spores / g - 0.1-1.0
Starch - 1.0-3.0
Sugar - Else
3. component B
Bac. subtilis VKPM B-7092 with a titer of at least 3 • 10 10 spores / g - 0.1-1.0
Starch - 1.0-3.0
Sugar - Else
Next, the components A, B, and C of the drug in dry form are mixed in a ratio of 1: 1: 1 and get the finished form of the drug.

Остаточная влажность препарата составляет не более 2-5%
Пример 9. Данные по хранению сухой формы препарата на основе ассоциации спор бактерий рода Bacillus
Для установления срока годности и условий хранения препаратов проведены соответствующие исследования.
The residual moisture content of the drug is not more than 2-5%
Example 9. Data on the storage of the dry form of the drug based on the association of spores of bacteria of the genus Bacillus
To establish the shelf life and storage conditions of the preparations, relevant studies were conducted.

Из таблицы 2 следует, что в течение 12 месяцев хранения сухой формы препарата при температуре +24oC титр практически не изменился, что подтверждает высокую термостабильность препаратов в споровой форме, обеспечивающую значительное упрощение технологии их применения в сельском хозяйстве и медицине.From table 2 it follows that within 12 months of storage of the dry form of the drug at a temperature of +24 o C, the titer practically did not change, which confirms the high thermal stability of the preparations in spore form, which provides a significant simplification of the technology of their use in agriculture and medicine.

Пример 10. Применение сухой формы препарата на основе ассоциации спор бактерий рода Bacillus
Препарат обладает одновременно антибактериальной и антивирусной активностью за счет высокой антагонистической активности микробной ассоциации опор бактерий рода Bacillus и действия альфа-2-интерферона, а также стимулирует клеточные и гуморальные факторы иммунитета и способен повышать неспецифическую резистентность организма.
Example 10. The use of a dry form of the drug based on the association of spores of bacteria of the genus Bacillus
The drug has both antibacterial and antiviral activity due to the high antagonistic activity of the microbial association of the supports of bacteria of the genus Bacillus and the action of alpha-2-interferon, and also stimulates cellular and humoral factors of immunity and is able to increase nonspecific resistance of the body.

Препарат применяют перорально всем видам млекопитающих для лечения и профилактики колибактериозов, дисфункций и дисбактериозов различной природы, чумки, парагриппа, гриппа, диспепсии, сальмонеллезов, инфекционного ринотрахеита крупнорогатого скота, вирусной диареи, ротавирусного энтерита, дизентерии, стафилококковых инфекций, везикулярного стоматита, язвенного дерматита, а также для профилактики иммунодефицитных состояний. The drug is used orally for all types of mammals for the treatment and prevention of colibacteriosis, dysfunctions and dysbacterioses of various nature, plague, parainfluenza, influenza, dyspepsia, salmonella, infectious rhinotracheitis in cattle, viral diarrhea, rotavirus enteritis, dysentery, staphylococcus dermatitis, staphylococcus dermatitis as well as for the prevention of immunodeficiency conditions.

Для лечения препарат назначают перорально в дозе 50 мг/кг массы два раза в сутки с интервалом 12 часов или в дозе 75 мг/кг массы один раз в сутки до выздоровления организма. For treatment, the drug is administered orally at a dose of 50 mg / kg weight twice a day with an interval of 12 hours or at a dose of 75 mg / kg of weight once a day until the body recovers.

Ассоциация бактерий, используемая в препарате, отличается высокой устойчивостью к пищеварительным сокам и ферментам желудочно-кишечного тракта млекопитающих и способностью к быстрому заселению желудка и кишечника. При приеме внутрь с водой или пищей бактерии размножаются в желудочно-кишечном тракте в течение 3-6 суток, затем они полностью выводятся из организма, не вызывая негативных последствий даже при передозировке. The bacterial association used in the preparation is highly resistant to the digestive juices and enzymes of the gastrointestinal tract of mammals and the ability to rapidly colonize the stomach and intestines. When taken orally with water or food, bacteria multiply in the gastrointestinal tract for 3-6 days, then they are completely eliminated from the body without causing negative consequences even with an overdose.

Размножаясь, бактерии своими протеазами лизируют все несвойственные организму млекопитающего белки, денатурированные белки и нуклеопротеиды. При этом уничтожаются бактериальные токсины, элементы опухолевых новообразований и другие дефектные клетки. Здоровые клетки остаются неповрежденными благодаря наличию в них ингибиторов-антиферментов. Бактерии штамма B. subtilis ВКПМ В-7092 в процессе своей жизнедеятельности вырабатывают интерферон. Через стенки кишечника интерферон попадает в кровь. При этом повышается фагоцитарная активность лейкоцитов крови, повышается иммунный статус организма и устойчивость к различным видам вирусных и других заболеваний. Стабилизируются регенерационные процессы тканей организма. Нормализуется обмен веществ. Стимулируется гуморальный иммунный ответ, а антигенреактивные Т-лимфоциты активизируют функции перитонеальных макрофагов. Propagating, bacteria with their proteases lyse all proteins unusual for the mammalian organism, denatured proteins and nucleoproteins. In this case, bacterial toxins, elements of tumor neoplasms and other defective cells are destroyed. Healthy cells remain intact due to the presence of anti-enzyme inhibitors in them. Bacteria of the B. subtilis strain VKPM B-7092 in the course of their life produce interferon. Through the walls of the intestine, interferon enters the bloodstream. At the same time, the phagocytic activity of blood leukocytes increases, the body's immune status and resistance to various types of viral and other diseases increase. The regenerative processes of body tissues are stabilized. Metabolism is normalized. A humoral immune response is stimulated, and antigen-reactive T-lymphocytes activate the functions of peritoneal macrophages.

Пример 11. Исследование эффективности лечения чумы плотоядных
Для этого из заболевших собак с диагнозом кишечная форма чумы плотоядных в начальной стадии было сформировано 1 контрольная и 4 опытных группы по 5 животных в каждой (табл. 3).
Example 11. The study of the effectiveness of treatment of plague carnivores
For this, from the affected dogs diagnosed with the intestinal form of carnivore plague in the initial stage, 1 control and 4 experimental groups of 5 animals each were formed (Table 3).

Схема опытов при лечении чумы плотоядных
Лечение по предлагаемому способу проводили в течение 5-6 дней. После исчезновения клинических признаков животным предлагаемый препарат в течении 3-5 дней вводили перорально однократно через двое суток с целью профилактики возможных рецидивов. В контрольной группе для лечения применяли сыворотку гипериммунную, γ-глобулины, антибиотики, сульфаниламиды, витамины, сердечные.
The scheme of experiments in the treatment of plague carnivores
Treatment by the proposed method was carried out for 5-6 days. After the disappearance of clinical signs to animals, the proposed drug was administered orally for 3-5 days once after two days in order to prevent possible relapses. In the control group, hyperimmune serum, γ-globulins, antibiotics, sulfonamides, vitamins, and heart were used for treatment.

Результаты лечения чумы плодоядных
При применении предлагаемого способа эффективность лечения кишечной формы чумы собак повышается. Причем просматривается прямая зависимость между дозой предлагаемого препарата и выраженностью его терапевтического эффекта. Так, при назначении препарата в дозе 50 мг/кг массы через 12 часов и в дозе 75 мг/кг раз в сутки получены оптимальные результаты. При лечении животных больных чумой с использованием предлагаемого препарата в указанных выше дозировках достигнут 100% положительный эффект без применения традиционных сывороток и иммуноглобулинов. Улучшение в течении заболевания наблюдается уже на 2-3 сутки и в дальнейшем болезнь протекает в более легкой форме в сравнении с аналогами из контрольной группы.
The results of treatment of plague
When using the proposed method, the effectiveness of the treatment of intestinal forms of dog plague increases. Moreover, there is a direct relationship between the dose of the proposed drug and the severity of its therapeutic effect. So, when prescribing the drug at a dose of 50 mg / kg weight after 12 hours and at a dose of 75 mg / kg once a day, optimal results were obtained. When treating animal patients with plague using the proposed drug in the above dosages, a 100% positive effect was achieved without the use of traditional serums and immunoglobulins. Improvement in the course of the disease is already observed for 2-3 days and in the future the disease proceeds in a milder form in comparison with analogues from the control group.

Под влиянием лечения предлагаемым способом происходит функциональная перестройка организма позитивного характера. Стимулируются функции жизненно важных органов и систем. Повышаются окислительно-восстановительные процессы и активизируется обмен веществ. Увеличение количества лимфоцитов и лейкоцитов может свидетельствовать о повышении защитных функций организма собак. Under the influence of treatment by the proposed method, a functional reorganization of the body of a positive nature occurs. The functions of vital organs and systems are stimulated. Redox processes increase and metabolism is activated. An increase in the number of lymphocytes and white blood cells may indicate an increase in the protective functions of the dog's body.

В контрольной группе при использовании комплексной терапии заболевание протекало тяжело и продолжительность лечения колебалась в пределах (10 -12) дней. In the control group, when using complex therapy, the disease was severe and the duration of treatment ranged from (10 -12) days.

Таким образом, предлагаемый способ является эффективным при лечении кишечной формы чумы собак в начале заболевания. Оптимальные результаты получены при использовании препарата в дозе 50 мг/кг массы через 12 часов и в дозе 75 мг/кг массы раз в сутки. Thus, the proposed method is effective in the treatment of intestinal forms of dog plague at the beginning of the disease. Optimum results were obtained when using the drug at a dose of 50 mg / kg of weight after 12 hours and at a dose of 75 mg / kg of weight once a day.

Пример 12. Исследование эффективности лечения парвовирусного энтерита
Для изучения эффективности предлагаемого способа при лечении парвовирусного энтерита собак также были сформированы 1 контрольная и 4 опытных группы по 5 собак в каждой с диагнозом парвовирусный энтерит (табл. 4).
Example 12. The study of the effectiveness of treatment of parvovirus enteritis
To study the effectiveness of the proposed method in the treatment of dogs parvovirus enteritis, 1 control group and 4 experimental groups of 5 dogs each with a diagnosis of parvovirus enteritis were also formed (Table 4).

Продолжительность лечения определялась наличием симптомов заболевания. После исчезновения клинических признаков, с учетом особенностей течения заболевания, переболевшим животным в течении 3-4 дней продолжали проводить профилактический курс в дозе 50 мг/кг, один раз в две суток. Животным всех опытных групп назначали регидратационные средства. The duration of treatment was determined by the presence of symptoms of the disease. After the disappearance of clinical signs, taking into account the peculiarities of the course of the disease, the sick animals continued to conduct a preventive course at a dose of 50 mg / kg for 3-4 days, once every two days. Animals of all experimental groups were prescribed rehydration agents.

Для лечения животных контрольной группы применяли сердечные, противоспазмолитические и противорвотные препараты, антибиотики, регидратационные средства и гиперимунную сыворотку. For the treatment of animals of the control group, cardiac, antispasmodic and antiemetic drugs, antibiotics, rehydration agents and hyperimmune serum were used.

Критериями оценки эффективности курса лечения служили продолжительность, характер и степень тяжести течения заболевания, исход, изменения морфологических показателей крови животных. Кровь у собак исследовали до назначения лечения, в период лечения (на 5 день) и после выздоровления. The criteria for evaluating the effectiveness of the treatment course were the duration, nature and severity of the course of the disease, outcome, changes in the morphological parameters of the blood of animals. Blood in dogs was examined before treatment, during treatment (on day 5) and after recovery.

Результаты лечения парвовирусного энтерита
При парвовирусном энтерите собак предлагаемый способ оказывает выраженное терапевтическое действие. Оптимальные результаты получены при назначении препарата внутрь, в начальный период заболевания, в дозах 50 мг/кг массы через 12 часов и в дозе 75 мг/кг массы 1 раз в сутки до выздоровления животных.
Parvovirus Enteritis Treatment Results
When parvovirus enteritis in dogs, the proposed method has a pronounced therapeutic effect. Optimal results were obtained when the drug was administered orally, in the initial period of the disease, in doses of 50 mg / kg of weight after 12 hours and at a dose of 75 mg / kg of weight once a day until the animals recover.

Продолжительность лечения парвовирусного энтерита предлагаемым способом с использованием препарата в дозах 50 мг/кг массы через 12 часов и в дозе 75 мг/кг массы 1 раз в сутки в зависимости от тяжести заболевания колебалась от 2 до 5 дней. The duration of treatment of parvovirus enteritis with the proposed method using the drug in doses of 50 mg / kg weight after 12 hours and at a dose of 75 mg / kg weight 1 time per day, depending on the severity of the disease, ranged from 2 to 5 days.

Под влиянием предлагаемого препарата изменяется характер проявления и развития патологического процесса. При назначении препарата в начальной стадии заболевания, воспаление кишечника носило преимущественно катаральный характер и у собак отсутствовали геморрагические выделения. Одним из основных клинических симптомов при парвовирусном энтерите является резкое угнетение лейкопоэза. Предлагаемый способ исключает развитие лейкопении. В меньшей степени у животных развиваются явления интоксикации и дегидратации организма. Under the influence of the proposed drug, the nature of the manifestation and development of the pathological process changes. When prescribing the drug in the initial stage of the disease, intestinal inflammation was predominantly catarrhal and the dogs had no hemorrhagic discharge. One of the main clinical symptoms of parvovirus enteritis is a sharp inhibition of leukopoiesis. The proposed method eliminates the development of leukopenia. To a lesser extent, animals develop intoxication and dehydration phenomena.

Под влиянием предлагаемого препарата профилактируется развитие других вирусных инфекций собак (чума, гепатит) и вторичных бактериальных инфекций, которые часто наблюдаются у собак, переболевших парвовирусным энтеритом, и, как правило, часто приводят к летальному исходу. Under the influence of the proposed drug, the development of other viral infections of dogs (plague, hepatitis) and secondary bacterial infections, which are often observed in dogs that have had parvovirus enteritis, and, as a rule, are often fatal, is prevented.

У животных контрольной группы заболевание протекало со средней степенью тяжести, преимущественно с геморрагическим воспалением кишечника и выраженной лейкопенией. Продолжительность лечения животных контрольной группы, в зависимости от тяжести заболевания колебалась от 5 до 7 дней. In animals of the control group, the disease progressed with moderate severity, mainly with hemorrhagic inflammation of the intestine and severe leukopenia. The duration of treatment of animals in the control group, depending on the severity of the disease ranged from 5 to 7 days.

Пример 13. Исследование эффективности профилактики поросят предлагаемым способом
В опыте использовались две свиноматки с пометом в возрасте 19 дней. Поросятам опытной группы внутрь назначали препарат в дозе 50 мг/кг через 12 часов в течении 5 дней. Поросятам контрольной группы препарат не вводили. В опытной группе было 9 поросят, а в контрольной - 10 поросят.
Example 13. The study of the effectiveness of the prevention of piglets of the proposed method
Two sows with a litter at the age of 19 days were used in the experiment. Piglets of the experimental group were prescribed a drug at a dose of 50 mg / kg after 12 hours for 5 days. The drug was not administered to the piglets of the control group. There were 9 piglets in the experimental group, and 10 piglets in the control group.

Для определения эффективности профилактического действия препарата в крови определяли содержание эритроцитов, лейкоцитов, гемоглобина, РОЭ, лейкограмму, субпопуляции Т-лимфоцитов, IgM и IgG. Также учитывали показатели сохранности поросят до отъема. В случае заболевания поросят устанавливали продолжительность, характер течения и исход заболевания. To determine the effectiveness of the preventive effect of the drug in the blood, the content of erythrocytes, leukocytes, hemoglobin, ROE, leukogram, subpopulations of T-lymphocytes, IgM and IgG was determined. Also considered indicators of the safety of piglets before weaning. In case of disease, the piglets were determined by the duration, nature of the course and outcome of the disease.

При исследовании крови поросят до введения препарата не регистрировалось характерных различий морфологических и иммунологических показателей сыворотки крови животных опытной и контрольной групп (таблицы 5, 6). In the study of blood of piglets before the introduction of the drug, no characteristic differences in the morphological and immunological parameters of the blood serum of animals of the experimental and control groups were recorded (tables 5, 6).

Результаты исследования крови на 10-й день эксперимента свидетельствуют об увеличении количества эритроцитов на 14,2% и содержания гемоглобина на 10%. Содержание лейкоцитов повышалось на 32,7%, сегментоядерных нейтрофилов на 18% и лимфоцитов на 9% в сравнении с аналогами из контрольной группы (табл. 7). The results of a blood test on the 10th day of the experiment indicate an increase in the number of red blood cells by 14.2% and the hemoglobin content by 10%. The content of leukocytes increased by 32.7%, segmented neutrophils by 18% and lymphocytes by 9% in comparison with analogues from the control group (Table 7).

Как у поросят опытной, так и контрольной группы количественные изменения всех субпопуляций Т-лимфоцитов, IgM и IgG происходят в сторону их увеличения, что обусловлено возрастной спецификой. Однако у животных опытной группы эти показатели были значительно выше, чем у аналогов из контрольной группы (табл. 8). In both experimental and control piglets, quantitative changes in all subpopulations of T-lymphocytes, IgM and IgG occur in the direction of their increase, which is due to age-related specifics. However, in animals of the experimental group, these indicators were significantly higher than in analogues from the control group (table. 8).

Таким образом предлагаемый препарат стимулирует образование и выход:
- малодифференцированных Т-лимфоцитов;
- функционально зрелых Т-индукторов-хелперов и Т-киллеров
- супрессоров;
- Т-активных лимфоцитов.
Thus, the proposed drug stimulates the formation and output:
- poorly differentiated T-lymphocytes;
- functionally mature T-inductors-helpers and T-killers
- suppressors;
- T-active lymphocytes.

Под влиянием препарата в крови увеличивается содержание IgG. Следовательно препарат в предлагаемом способе повышает естественную резистентность организма, активизируя Т- и В-звенья иммунитета. Препарат интенсивнее стимулирует факторы клеточного иммунитета и в меньшей степени влияет на гуморальные факторы. В крови опытных поросят значительно увеличивается содержание Т-киллеров-супрессоров (на 32%), повышается активность Т-лимфоцитов (на 51,7%), увеличивается содержание посттимических предшественников функционально зрелых клеток (на 58,5%). Концентрация IgG в крови увеличивается на 20,8% в сравнении с контролем. Уменьшение содержания IgM в опытной группе связано с тем, что они вероятно принимают участие в антигенно зависимой клеточной цитотоксичности и интенсивно фиксируются клетками-киллерами и антигенами, а следовательно, их выход в реакции радиальной простой иммунодиффузии ниже. Under the influence of the drug, the content of IgG in the blood increases. Therefore, the drug in the proposed method increases the natural resistance of the body, activating the T - and B-links of the immune system. The drug stimulates the factors of cellular immunity more intensively and to a lesser extent affects humoral factors. In the blood of experimental piglets, the content of T-killer suppressors significantly increases (by 32%), the activity of T-lymphocytes increases (by 51.7%), the content of post-thymic precursors of functionally mature cells increases (by 58.5%). The concentration of IgG in the blood increases by 20.8% compared with the control. The decrease in the content of IgM in the experimental group is due to the fact that they are likely to participate in antigenically dependent cellular cytotoxicity and are intensively fixed by killer cells and antigens, and therefore, their yield in the reaction of radial simple immunodiffusion is lower.

Поросята в опытной группе не болели, лучше росли и развивались. Сохранность поросят в опытной группе составила 100%, а в контрольной группе - 83,3%. Средний прирост живой массы на период отъема в контрольной группе равнялся (14,5 + 4,45) кг, в опытной - (15,2 + 1,35) кг. Следовательно в опытной группе средний прирост живой массы на 4,83% выше аналогов из контрольной группы. В опытной группе интенсивность роста поросят была равномерной, за исключением одного поросенка, разница в приросте составляла 1 кг, а в контрольной группе - до 8 кг. Pigs in the experimental group were not sick, they grew and developed better. The safety of piglets in the experimental group was 100%, and in the control group - 83.3%. The average increase in live weight during the weaning period in the control group was (14.5 + 4.45) kg, in the experimental group (15.2 + 1.35) kg. Therefore, in the experimental group, the average increase in live weight is 4.83% higher than analogues from the control group. In the experimental group, the growth rate of piglets was uniform, with the exception of one piglet, the difference in growth was 1 kg, and in the control group - up to 8 kg.

Животные хорошо переносят препарат, побочных отрицательных явлений у поросят не наблюдалось. Animals tolerate the drug well; adverse pigment adverse events were not observed.

Пример 14. Исследование эффективности профилактики телят предлагаемым способом
Для проведения исследования были сформированы опытная и контрольная группы по пять животных в каждой группе в возрасте семь дней. Телятам опытной группы вводили предлагаемым способом препарат на основе Bac. subtilis в дозе 50 мг/кг массы через 48 часов в течение 20 дней.
Example 14. The study of the effectiveness of prevention of calves in the proposed method
For the study, experimental and control groups of five animals were formed in each group at the age of seven days. The calves of the experimental group were injected with the proposed method a preparation based on Bac. subtilis at a dose of 50 mg / kg weight after 48 hours for 20 days.

Животным контрольной группы препараты не вводили. The animals of the control group were not injected.

Критериями оценки эффективности профилактики предлагаемым способом в сравнении с контролем служили: изменения уровня гемоглобина в крови, эритроцитов, лейкоцитов, субпопуляций Т-лимфоцитов и данных лейкограммы; общее состояние телят; показатели по заболеваемости телят. The criteria for evaluating the effectiveness of prevention by the proposed method in comparison with the control were: changes in the level of hemoglobin in the blood, red blood cells, white blood cells, subpopulations of T-lymphocytes and leukogram data; general condition of calves; indicators for the incidence of calves.

Т-лимфоциты определяли с использованием метода спонтанного розеткообразования, основанного на взаимодействии мембранного Е-рецептора Т-лимфоцитов с эритроцитами барана. T-lymphocytes were determined using the method of spontaneous rosette formation, based on the interaction of the membrane E-receptor of T-lymphocytes with sheep erythrocytes.

Результаты исследований. При исследовании крови телят до проведения профилактических мероприятий не регистрировалось характерных различий морфологических и иммунологических показателей сыворотки крови животных опытной и контрольной групп. Анализы показали низкое содержание в крови животных активированных Т-лимфоцитов и посттимических предшественников. Research results. In the study of calf blood prior to preventive measures, no characteristic differences in the morphological and immunological parameters of the blood serum of animals of the experimental and control groups were recorded. Analyzes showed low levels of activated T-lymphocytes and post-thymic precursors in the blood of animals.

Далее исследования показывают, что в процессе проведения профилактики, как у телят опытной, так и контрольной групп количественные изменения гематологических показателей и всех популяций Т-лимфоцитов происходят в сторону их увеличения, что обусловлено возрастной спецификой. Однако у животных опытной группы происходили более выраженные их изменения, в сравнении с контролем. Further studies show that in the process of prophylaxis, in both experimental and control calves, quantitative changes in hematological parameters and all populations of T-lymphocytes occur in the direction of their increase, which is due to age-specific characteristics. However, in animals of the experimental group, their changes were more pronounced in comparison with the control.

У телят опытной группы при исследовании крови через 10 дней после начала профилактики по сравнению с контролем увеличивается уровень лейкоцитов на 6,2%, содержание лимфоцитов на 6,6%, тЕ-рок - на 51,85%, рЕ-рок на 43,3%, вЕ-рок на 67,2%, бЕ-рок на 168,2% и аЕ-рок на 225%. In blood test calves 10 days after the start of prophylaxis, compared with the control, the level of leukocytes increases by 6.2%, the content of lymphocytes by 6.6%, T-rock - by 51.85%, p-rock by 43, 3%, BE-rock by 67.2%, BE-rock by 168.2% and aE-rock by 225%.

На 20 день исследования из изучаемых гематологических показателей в сравнении с контролем в опытной группе регистрировалось увеличение лимфоцитов на 14,6% и лейкоцитов на 6,3%, а исследование крови на содержание субпопуляций Т-лимфоцитов показало увеличение соответственно содержание тЕ-рок на 18,1%, рЕ-рок на 10,6%, вЕ-рок на 33,7%, бЕ-рок на 34,1%, аЕ-рок на 40,5%. On the 20th day of the study, from the studied hematological parameters in comparison with the control, an increase in lymphocytes by 14.6% and leukocytes by 6.3% was recorded in the experimental group, and a blood test for the content of subpopulations of T-lymphocytes showed an increase in the content of te-rock by 18, respectively. 1%, RE-rock by 10.6%, BE-rock by 33.7%, BE-rock by 34.1%, and BE-rock by 40.5%.

Промышленная применимость. Изобретение может быть использовано в медицине, ветеринарии и биотехнологии. Industrial applicability. The invention can be used in medicine, veterinary medicine and biotechnology.

Источники научно-технической и патентной информации:
1. Авт. свид. СССР N 681923, МКИ C 12 N 15/00, опубл. 1979 г.
Sources of scientific, technical and patent information:
1. Auth. testimonial. USSR N 681923, MKI C 12 N 15/00, publ. 1979

2. Авт. свид. СССР N 1722502, МКИ A 61 K 39/02, 1989 г. 2. Auth. testimonial. USSR N 1722502, MKI A 61 K 39/02, 1989

3. Патент РФ N 1839459, МКИ C 12 N 1/21, опубл. 1995 г. 3. RF patent N 1839459, MKI C 12 N 1/21, publ. 1995 year

4. Заявка ЕПВ N 0287699, МКИ C 12 N 1/20, опубл. 26.10.88 г. 4. Application EPO N 0287699, MKI C 12 N 1/20, publ. 10.26.88 g.

5. Авт. свид. СССР N 1398868, МКИ A 61 K 35/74, опубл. 1988 г. 5. Auth. testimonial. USSR N 1398868, MKI A 61 K 35/74, publ. 1988 year

6. Chang S. , Cohen S.N. High frequency transformationof Bac. subtilis protoplasts by plasmid DNA.-Mol. Gen. Genet., 1976, v. 168, p. 111 - 115. 6. Chang S., Cohen S.N. High frequency transformationof Bac. subtilis protoplasts by plasmid DNA.-Mol. Gen. Genet., 1976, v. 168, p. 111 - 115.

7. Лабинская А.С. Микробиология с техникой микробиологических исследований. - М., "Медицина", 1978. - с. 47. 7. Labinskaya A.S. Microbiology with the technique of microbiological research. - M., "Medicine", 1978. - p. 47.

8. Birnboim H. C. , Doly J. A rapid alkaline eatraction procedure for screening recombinant plasmid DNA. - Nucleic Acids Res., 1979. - v. 7, p. 1513 - 1523. 8. Birnboim H. C., Doly J. A rapid alkaline eatraction procedure for screening recombinant plasmid DNA. - Nucleic Acids Res., 1979. - v. 7, p. 1513 - 1523.

Claims (4)

1. Штамм бактерий Bacillus subtilis ВКПМ В-7092, используемый в качестве компонента препарата против вирусных и бактериальных инфекций. 1. The bacterial strain Bacillus subtilis VKPM B-7092, used as a component of the drug against viral and bacterial infections. 2. Штамм бактерий Bacillus subtilis ВКПМ В-7048, используемый в качестве компонента препарата против вирусных и бактериальных инфекций. 2. The bacterial strain Bacillus subtilis VKPM B-7048, used as a component of the drug against viral and bacterial infections. 3. Штамм бактерий Bacillus licheniformis ВКПМ В-7038, используемый в качестве компонента препарата против вирусных и бактериальных инфекций. 3. The bacterial strain Bacillus licheniformis VKPM B-7038, used as a component of the drug against viral and bacterial infections. 4. Препарат против вирусных и бактериальных инфекций, включающий смесь биомассы штаммов бактерий Bacillus subtilis и Bacillus licheniformis в равных соотношениях, отличающийся тем, что он дополнительно содержит крахмал и сахар, а в качестве биомассы штаммов бактерий Bacillus subtilis и Bacillus licheniformis используют биомассу штаммов бактерий Bacillus subtilis ВКПМ В-7092, ВКПМ В-7048 и Bacillus licheniformis ВКПМ В-7038 в споровой форме с титром не менее 3•1010 спор/г при следующем количественном соотношении компонентов, мас.%:
Смесь спор бактерий Bacillus subtilis и Bacillus licheniformis в равных соотношениях - 0,1 - 1,0
Крахмал - 1,0 - 3,0
Сахар - Остальное
4. The drug against viral and bacterial infections, including a mixture of the biomass of the bacterial strains Bacillus subtilis and Bacillus licheniformis in equal proportions, characterized in that it additionally contains starch and sugar, and as the biomass of the bacterial strains Bacillus subtilis and Bacillus licheniformis use the biomass of bacterial strains Bacillus licheniformis subtilis VKPM B-7092, VKPM B-7048 and Bacillus licheniformis VKPM B-7038 in spore form with a titer of at least 3 • 10 10 spores / g in the following quantitative ratio of components, wt.%:
A mixture of spores of bacteria Bacillus subtilis and Bacillus licheniformis in equal proportions - 0.1 - 1.0
Starch - 1.0 - 3.0
Sugar - Else
RU97121774A 1997-12-16 1997-12-16 Strains of bacteria bacillus subtilis and bacillus licheni-formis used as components of preparation against viral and bacterial infections and preparation based on these strains RU2142287C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU97121774A RU2142287C1 (en) 1997-12-16 1997-12-16 Strains of bacteria bacillus subtilis and bacillus licheni-formis used as components of preparation against viral and bacterial infections and preparation based on these strains

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU97121774A RU2142287C1 (en) 1997-12-16 1997-12-16 Strains of bacteria bacillus subtilis and bacillus licheni-formis used as components of preparation against viral and bacterial infections and preparation based on these strains

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU97121774A RU97121774A (en) 1999-10-27
RU2142287C1 true RU2142287C1 (en) 1999-12-10

Family

ID=20200591

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU97121774A RU2142287C1 (en) 1997-12-16 1997-12-16 Strains of bacteria bacillus subtilis and bacillus licheni-formis used as components of preparation against viral and bacterial infections and preparation based on these strains

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2142287C1 (en)

Cited By (4)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2006115430A1 (en) 2005-04-28 2006-11-02 Irina Grigorievna Osipova Irilis biopreparation based on bacillus-strain bacteria, bacillus subtilis and bacillus licheniformis contained therein
RU2471864C1 (en) * 2011-12-13 2013-01-10 ОБЩЕСТВО С ОГРАНИЧЕННОЙ ОТВЕТСТВЕННОСТЬЮ "БИО Агат Групп" Probiotic preparation for viral and bacterial infections toxisporin, method for preparing it, bacillus licheniformis bacterial strain used as ingredient of probiotic preparation
RU2477596C2 (en) * 2011-05-16 2013-03-20 Александр Иванович Леляк Method to stimulate growth and protect small-fruit crops against diseases caused by fungic pathogens
RU2481760C2 (en) * 2011-05-16 2013-05-20 Александр Иванович Леляк Method of plant cultivation

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2006115430A1 (en) 2005-04-28 2006-11-02 Irina Grigorievna Osipova Irilis biopreparation based on bacillus-strain bacteria, bacillus subtilis and bacillus licheniformis contained therein
US8414878B2 (en) 2005-04-28 2013-04-09 Irina Grigorievna Osipova Irilis biopreparation based on bacillus-strain bacteria, bacillus subtilis and bacillus licheniformis contained therein
RU2477596C2 (en) * 2011-05-16 2013-03-20 Александр Иванович Леляк Method to stimulate growth and protect small-fruit crops against diseases caused by fungic pathogens
RU2481760C2 (en) * 2011-05-16 2013-05-20 Александр Иванович Леляк Method of plant cultivation
RU2471864C1 (en) * 2011-12-13 2013-01-10 ОБЩЕСТВО С ОГРАНИЧЕННОЙ ОТВЕТСТВЕННОСТЬЮ "БИО Агат Групп" Probiotic preparation for viral and bacterial infections toxisporin, method for preparing it, bacillus licheniformis bacterial strain used as ingredient of probiotic preparation

Similar Documents

Publication Publication Date Title
CA2566617C (en) Method and composition for reducing e.coli disease and enhancing performance using bacillus
CN110612349B (en) Novel pseudomonas aeruginosa phage Pse-AEP-3 and use thereof for inhibiting pseudomonas aeruginosa proliferation
CN112322553A (en) Clostridium difficile resistant lactococcus lactis and application thereof
CN109486732B (en) Bifidobacterium longum and application thereof
RU2142287C1 (en) Strains of bacteria bacillus subtilis and bacillus licheni-formis used as components of preparation against viral and bacterial infections and preparation based on these strains
CN113088468A (en) Lactobacillus casei Ma. GLRGJ1 and application thereof
RU2264453C2 (en) Veterinary biopreparation
RU2298032C2 (en) Bacillus subtilis 1719 BACTERIUM STRAIN AS PRODUCER OF ANTAGONISTICALLY ACTIVE BIOMASS IN RELATES TO PATHOGENIC MICROORGANISMS, AS WELL AS PROTEOLYTIC, AMYLOLYTIC, AND LIPOLYTIC ENZYMES
JPH0930981A (en) Immunopotentiative composition
RU2471864C1 (en) Probiotic preparation for viral and bacterial infections toxisporin, method for preparing it, bacillus licheniformis bacterial strain used as ingredient of probiotic preparation
WO2006115430A1 (en) Irilis biopreparation based on bacillus-strain bacteria, bacillus subtilis and bacillus licheniformis contained therein
JPH01502340A (en) Preparations for the prevention and treatment of gastrointestinal diseases in livestock
CN115992116B (en) Multifunctional dairy cow lysozyme and preparation method and application thereof
SU1722502A1 (en) Medicinal preparation ъbiosporinъ for prevention and treatment of gastrointestinal diseases in man
RU2172343C2 (en) Strain of bacterium bacillus licheniformis showing antiviral and antibacterial activity
CN118086222B (en) Clostridium perfringens bacteriophage suitable for oral administration and application thereof
CN116103197B (en) Streptococcus thermophilus with helicobacter pylori inhibiting effect and application thereof
RU2146935C1 (en) Dry immunoprobiotic preparation for poultry farming
RU2158302C2 (en) Nutrient medium for bifidobacterium and lactobacterium culturing
WO2021241914A1 (en) Antibacterial substance having lytic activity against actinobacillus pleuropneumoniae and method for producing same
RU2159625C1 (en) Probiotic preparation of complex action
CN118217315A (en) Escherichia coli phage embedding method and application thereof
RU2123345C1 (en) Agent for disbacteriosis treatment
CN117887671A (en) Application of multivalent coliphage for preventing resistance from generating in poultry cultivation
Wainwright Biological control of microbial infections and cancer in humans: Historical use to future potential

Legal Events

Date Code Title Description
PC43 Official registration of the transfer of the exclusive right without contract for inventions

Effective date: 20100416

PD4A Correction of name of patent owner
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20141217