RU2141532C1 - Способ определения динамики изменчивости микроорганизмов - Google Patents
Способ определения динамики изменчивости микроорганизмов Download PDFInfo
- Publication number
- RU2141532C1 RU2141532C1 RU98100383A RU98100383A RU2141532C1 RU 2141532 C1 RU2141532 C1 RU 2141532C1 RU 98100383 A RU98100383 A RU 98100383A RU 98100383 A RU98100383 A RU 98100383A RU 2141532 C1 RU2141532 C1 RU 2141532C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- cells
- laser radiation
- microorganisms
- energy
- cell
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Способ основан на изменении формы клеток под влиянием ионизирующего излучения лазера в белковой среде с последующей фиксацией красителями (тушью или азур-эозином). Действие низкоэнергетического лазерного излучения изучали при энергетических экспозициях 0,05; 0,18; 0,3; 0,4; 0,5 Дж/см, время воздействия 60 с, напряженность магнитного поля 60 мТл. Исследование препаратов проводили на стеклах и в развивающихся перепелиных эмбрионах. После воздействия лазера микробные клетки приобретают более выраженную окраску. Способ позволяет более качественно оценить динамику изменчивости микроорганизмов. 1 ил.
Description
Изобретение относится к области микробиологии и может быть использовано при изучении L-тpaнсфopмировaнных вариантов бактериальных клеток.
Известен способ определения изменчивости микроорганизмов, основанный на действии ультрафиолетовых лучей на односуточную культуру микроорганизмов в белковой среде ртутно-кварцевой лампой 4,0 а, спектр 5790-2300 A, продолжительность облучения 2-30 с (Надсон Г.А. Действие излучений на микроорганизмы и экспериментальный мутагенез /Избранные труды.- 1967.- Т.2 - С.151-157).
Ультрафиолетовое облучение в течение двух секунд вызывает появление первой фазы клеточных изменений. Цитоплазма возбуждена. Отмечаются выпячивание и образование цитоплазматических выростов. Вакуоли принимают неправильную конфигурацию и причудливые очертания и через некоторое время возвращаются к исходной форме. Происходит осаждение метахроматина, объем которого постепенно увеличивается. Ультрафиолетовые лучи в течение одной минуты угнетающе действуют на микробную клетку.
Однако этот способ не позволяет определить изменчивость микроорганизмов в динамике, т.к. лишенные оболочек клетки скучиваются или сливаются в грубозернистую, аморфную, постепенно разрушающуюся мертвую массу.
С целью получения более качественной картины динамики изменчивости микроорганизмов применяют ионизирующее воздействие в виде низкоэнергетического лазерного излучения, при энергетических экспозициях от 0,05 до 0,5 Дж/см, напряженность магнитного поля 60 мТл, время 60 с на культуру микроорганизмов в биологической среде с последующей фиксацией тушью или азур-зозином.
В качестве биологической среды используют перепелиные эмбрионы первых дней инкубации с целью сохранения осмотического давления при изменении формы клеток.
Общие признаки.
1. Ионизирующее воздействие.
3. Воздействие на микробную (культуру) клетку.
3. Воздействие в белковой среде.
4. Определение стадий изменчивости или фаз.
Отличительные признаки.
1. На микробную клетку воздействуют низкоэнергетическим лазерным излучением при энергетических экспозициях от 0,05 до 0,5 Дж/см, напряженность магнитного поля 60 мТл, время 60 с.
2. Фиксацию проводят тушью или азур-эозином.
3. В качестве биологической среды используют перепелиные эмбрионы первых дней инкубации.
Применение предлагаемого способа позволяет получить полную картину изменчивости микроорганизмов.
В клетках микроорганизмов энергия лазера преобразуется в энергию фотохимических процессов, электронных переходов и в тепловую энергию, что в конечном итоге приводит к сложной гамме морфофункциональных изменений в биологическом объекте.
Термический эффект является важным компонентом взаимодействия лазерного излучения с микробными клетками: при этом результаты взаимодействия определяются, с одной стороны, параметрами лазерного излучения, а с другой стороны способностью микробной клетки поглощать и отражать лазерное излучение и реактивностью микробных клеток, сопряженной с их теплоемкостью и теплопроводностью. Изменение клеток происходит на глазах у наблюдателя. При этом наблюдается быстрое движение клеток за счет влияния электромагнитных полей лазера и заряда поверхностей клеток.
Коринеформные бактерии, отличающиеся выраженным полиморфизмом, изменяют свою форму под влиянием низкоэнергетического лазерного излучения.
При действии теплового эффекта, когда энергетическая экспозиция составляет 0,4-0,5 Дж/см, отмечается сбрасывание клеточной оболочки микробактерий и появление " голых клеток". При освобождении клеток от оболочек один конец расширен, на другом сосредоточены зерна волютина. Стадия полиморфизма сменяется стадией агглютинации.
В этот период происходит склеивание клеток согласно распре деления зарядов их клеточных поверхностей. Характерной особенностью этой стадии является образование правильных геометрических форм. У микробактерий отмечают наличие жгутиков, колбовидных вздутий, гантелеобразную форму клеток. Стадия агглютинации заканчивается образованием вытянутых агглютинирующих форм, располагающихся в виде цепочки.
В стадии адсорбции появляются клетки сферической формы. При воздействии лазера микроорганизмы отражают излученный свет, в результате чего происходит образование энергетических колец вокруг живых клеток. Чем подвижнее клетки, тем больше энергетических колец появляется вокруг них.
В стадии адсорбции наблюдают процесс соединения различных форм клеток путем слияния клеточных слоев и цитоплазмы. При сближении L-трансформированных клеток происходит образование цитоплазматических мостиков, "воротничковой зоны", за счет складчатости цитоплазматической мембраны.
В стадии образования зернистых клеток появляются структуры, заполненные волютиновыми зернами адсорбированных клеток. При нарушении осмотического давления отмечают разрыв цитоплазматической мембраны и выход зернистых клеток. Свободные зернистые клетки при наличии биологической среды способны к L-трансформации, при добавлении стерильной дистиллированной воды наблюдают процесс реверсии к первоначальному виду.
При воздействии НЛИ на культуры коринеформных бактерий отмечают четыре стадии изменчивости (чертеж).
Первая стадия - полиморфизма проявляется при всех энергетических экспозициях и проходит за короткий период времени, при этом воздействие в дозе 0,05 Дж/см на микробную клетку оказывает более замедленный эффект, чем 0,5 Дж/см.
Стадию агглютинации можно наблюдать при энергетических экспозициях 0,3, 0,4, 0,5 Дж/см. При энергетических экспозициях 0,05 - 0,18 Дж/см агглютинация происходит с большой задержкой. Агглютинируюший эффект в лучшей степени проявляется при энергетических экспозициях 0,4-0,5 Дж/см.
Стадия адсорбции не прослеживается при энергетической экспозиции 0,05 Дж/см, что затрудняет работу исследователя. При энергетических экспозициях 0,18-0,3 Дж/см происходит задержка адсорбции, при 0,4-0,5 Дж/см прослеживаются все порядки стадии адсорбции.
Стадия образования зернистых клеток хорошо прослеживается при энергетических экспозициях 0,5 Дж/см, при экспозиции 0,4 Дж/см изменения происходят с некоторой задержкой. Таким образом, при энергетической экспозиции 0,5 Дж/см можно проследить динамику изменчивости актиномицетов.
После воздействия лазера на микробные клетки они приобретают более выраженную окраску. Это связано с активным усвоением красителей поверхностными структурами и цитоплазмой клеток, в результате чего их контуры и интенсивность окраски становятся четче по сравнению с обычными методами.
Окраску L-трансформированных вариантов клеток проводят тушью (отечественной) или азур-зозином (на глицерине), что дает возможность, не изменяя осмотического давления, сохранять шарообразную форму клеток.
В качестве биологической среды используют перепелиные эмбрионы первых дней инкубации с целью сохранения осмотического давления при изменении формы клеток. Перепелиные эмбрионы используются на биофабриках для получения культуры клеток, в микробиологических и вирусологических лабораториях. Это экологически чистый материал для изучения L-трансформированных вариантов клеток. Перепелки в птичниках не подвергаются вакцинациям, развитие эмбрионов происходит быстрее.
Таким образом, под влиянием низкоэнергетического лазерного излучения с использованием биологической среды более качественно прослеживается динамика изменчивости микроорганизмов, что в дальнейшем можно использовать для экспресс-диагностики инфекционных болезней.
Пример 1. Двухсуточную культуру коринебактерий вносят в биологическую среду на предметное стекло и смотрят под микроскопом. Изменения клеток в пределах первоначального размера отмечают в первые 7-15 мин, диаметр клетки 0,22+0,15 мкм, длина 0,44+0,2 мкм. При этом происходит быстрое движение клеток. Стадия полиморфизма переходит во вторую стадию агглютинации, которую отмечают через 30-40 мин для коринебактерий. Для этой стадии характерно полюсное соединение кокковых форм, образующих правильные геометрические фигуры диаметром 0,22+0,7 мкм, длиной 0,67+0,22 мкм. Для стадии адсорбции характерно образование клеток сферической формы, энергетических колец, "воротничковой зоны". Четвертая стадия образования зернистых клеток характеризуется появлением структур, заполненных волютиновыми зернами адсорбированных клеток.
Пример 2. При действии низкоэнергетического лазерного излучения на односуточную культуру диплококка в биологической среде визуально отмечали стадии агглютинации и адсорбции.
Claims (1)
- Способ определения динамики изменчивости микроорганизмов, основанный на ионизирующем воздействии на клетки микроорганизмов в белковой среде, отличающийся тем, что на клетку воздействуют низкоэнергетическим лазерным излучением при энергетических экспозициях 0,05 - 0,5 Дж/см, напряженность магнитного поля 60 мТл, время 60 с, фиксацию проводят тушью или азур-эозином, а в качестве биологической среды используют перепелиные эмбрионы.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU98100383A RU2141532C1 (ru) | 1998-01-06 | 1998-01-06 | Способ определения динамики изменчивости микроорганизмов |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU98100383A RU2141532C1 (ru) | 1998-01-06 | 1998-01-06 | Способ определения динамики изменчивости микроорганизмов |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2141532C1 true RU2141532C1 (ru) | 1999-11-20 |
RU98100383A RU98100383A (ru) | 1999-12-10 |
Family
ID=20201060
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU98100383A RU2141532C1 (ru) | 1998-01-06 | 1998-01-06 | Способ определения динамики изменчивости микроорганизмов |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2141532C1 (ru) |
-
1998
- 1998-01-06 RU RU98100383A patent/RU2141532C1/ru active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Надсон Г.А. Действие излучений на микроорганизмы и экспериментальный мутагенез. Избранные труды. - 1967, т.2, с.151-157. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Geiller et al. | Local circuit amplification of spatial selectivity in the hippocampus | |
Ku et al. | Elasticizing tissues for reversible shape transformation and accelerated molecular labeling | |
Stap et al. | Induction of linear tracks of DNA double-strand breaks by α-particle irradiation of cells | |
CN107209041A (zh) | 使用时空转换的成像流式细胞仪 | |
US8236521B2 (en) | Methods for isolating cells based on product secretion | |
Nishizono et al. | A simple and rapid immunochromatographic test kit for rabies diagnosis | |
Manoto et al. | Resistance of lung cancer cells grown as multicellular tumour spheroids to zinc sulfophthalocyanine photosensitization | |
Sogomonyan et al. | 3D models of cellular spheroids as a universal tool for studying the cytotoxic properties of anticancer compounds in vitro | |
Yoon | Tissue Engineering: A Primer with Laboratory Demonstrations | |
RU2141532C1 (ru) | Способ определения динамики изменчивости микроорганизмов | |
Torres-Fernández et al. | Calbindin distribution in cortical and subcortical brain structures of normal and rabies-infected mice | |
Wang et al. | All-optical regulation of gene expression in targeted cells | |
Roshchina et al. | Fluorescence in the study of diatom Ulnaria ulna cells | |
CN102533647A (zh) | 一种诱导干细胞神经分化的方法 | |
Ermolayev et al. | Ultramicroscopy reveals axonal transport impairments in cortical motor neurons at prion disease | |
Ganguly et al. | Using photoactivatable GFP to track axonal transport kinetics | |
Alberts et al. | Visualizing molecules in living cells | |
Ojha et al. | Membrane potential manipulation with visible flash lamp illumination of targeted microbeads | |
Gaillard et al. | Studies of UV-cured CR-39 recording properties in view of its applicability in radiobiological experiments with alpha particles | |
Loukanov | Two‐photon microscopy assessment of the overall energy metabolism alteration of amoeba in hypertonic environment | |
Betzig et al. | How the optical microscope became a nanoscope | |
Ghezzi et al. | Femtosecond laser microfabrication of an integrated device for optical release and sensing of bioactive compounds | |
Zhou | Investigating ageing of neurodegenerative disease relevant protein condensates | |
Brault et al. | A polarized cell system amenable to subcellular resolution imaging of influenza virus infection | |
Sun et al. | Delayed Blastocyst Formation Reduces the Quality and Hatching Ability of Porcine Parthenogenetic Blastocysts by Increasing DNA Damage, Decreasing Cell Proliferation, and Altering Transcription Factor Expression Patterns |