RU2134420C1 - Method of determination of erythrocyte peroxide resistance - Google Patents

Method of determination of erythrocyte peroxide resistance Download PDF

Info

Publication number
RU2134420C1
RU2134420C1 RU97105596A RU97105596A RU2134420C1 RU 2134420 C1 RU2134420 C1 RU 2134420C1 RU 97105596 A RU97105596 A RU 97105596A RU 97105596 A RU97105596 A RU 97105596A RU 2134420 C1 RU2134420 C1 RU 2134420C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
hemolysis
red blood
erythrocyte
blood cells
optical density
Prior art date
Application number
RU97105596A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU97105596A (en
Inventor
С.С. Михайлов
Л.А. Романчук
Э.А. Фактор
Original Assignee
Санкт-Петербургская государственная академия физической культуры им.П.Ф.Лесгафта
Михайлов Сергей Сергеевич
Романчук Людмила Александровна
Фактор Эдуард Александрович
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Санкт-Петербургская государственная академия физической культуры им.П.Ф.Лесгафта, Михайлов Сергей Сергеевич, Романчук Людмила Александровна, Фактор Эдуард Александрович filed Critical Санкт-Петербургская государственная академия физической культуры им.П.Ф.Лесгафта
Priority to RU97105596A priority Critical patent/RU2134420C1/en
Publication of RU97105596A publication Critical patent/RU97105596A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2134420C1 publication Critical patent/RU2134420C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Abstract

FIELD: medicine, biochemical methods of analysis. SUBSTANCE: peroxide resistance of erythrocytes is measured on the basis of three parameters: (1) optical density of a sample subjected for peroxide hemolysis; (2) optical density corresponding 100% hemolysis and (3) optical density indicating the spontaneous (without H2O2) hemolysis of erythrocytes. Method involves the use of a single batch of erythrocyte suspension. Optical density is determined at wavelength 536 nm. Value of peroxide resistance is measured based on erythrocyte suspension dilution. EFFECT: increased precision and sensitivity of method. 1 tbl, 1 dwg, 1 ex

Description

Изобретение относится к биохимическим методам исследования, а именно к способам определения перекисной резистентности эритроцитов. The invention relates to biochemical research methods, and in particular to methods for determining the peroxide resistance of red blood cells.

Перекисное окисление (ПО) является нормальной составной частью окислительных процессов, постоянно протекающих в организме. Чрезмерная активация ПО оказывает отчетливое повреждающее действие на уровне субклеточных образований. Peroxide oxidation (PO) is a normal component of the oxidative processes that constantly occur in the body. Excessive activation of the software has a distinctly damaging effect at the level of subcellular formations.

Изобретение представляет интерес для спортивной биохимии, т. к. практически любая спортивная деятельность сопровождается активацией ПО, что в силу упомянутого повреждающего воздействия негативно сказывается на физической работоспособности организма. Поэтому контроль интенсивности ПО в организме атлета является важной задачей биохимии спорта. Этот контроль удобно осуществлять на основании оценки гемолитической стойкости эритроцитарных мембран. Фосфолипидные структуры клеточных мембран относятся к биологическим объектам, наиболее чувствительным к изменению уровня ПО. В то же время эритроциты легко доступны для исследования. The invention is of interest for sports biochemistry, since almost any sports activity is accompanied by activation of software, which, due to the aforementioned damaging effect, negatively affects the physical performance of the body. Therefore, controlling the intensity of software in the body of an athlete is an important task in the biochemistry of sports. This control is conveniently carried out on the basis of assessing the hemolytic resistance of red blood cell membranes. Phospholipid structures of cell membranes are among the biological objects most sensitive to changes in the level of PO. At the same time, red blood cells are readily available for research.

Из описанных в литературе способов определения гемолитической стойкости эритроцитов наиболее близкими к предлагаемому оказались [1, 2]. Of the methods described in the literature for determining the hemolytic resistance of red blood cells, they turned out to be closest to the proposed one [1, 2].

В качестве ближайшего аналога был взят способ [2]. Он заключается в следующем. 2 мл 0,068% раствора перекиси водорода добавляли к 2 мл 5% суспензии эритроцитов и 0,16 мл 0,2% раствора азида натрия. Суспензия эритроцитов и растворы перекиси водорода и азида натрия приготовляли на забуференном физиологическом растворе с pH 7,4. The method [2] was taken as the closest analogue. It is as follows. 2 ml of a 0.068% hydrogen peroxide solution was added to 2 ml of a 5% suspension of red blood cells and 0.16 ml of a 0.2% sodium azide solution. A erythrocyte suspension and solutions of hydrogen peroxide and sodium azide were prepared in buffered saline with a pH of 7.4.

Таким образом готовили две опытные пробы. Третья - контрольная проба, предназначенная для определения спонтанного гемолиза эритроцитов, состояла из тех же объемов суспензии эритроцитов и раствора азида натрия, но вместо раствора перекиси водорода брали равный объем забуференного физиологического раствора с pH 7,4. Thus, two experimental samples were prepared. The third - control sample, designed to determine spontaneous hemolysis of red blood cells, consisted of the same volumes of a suspension of red blood cells and a solution of sodium azide, but instead of a solution of hydrogen peroxide, an equal volume of buffered saline was taken with a pH of 7.4.

Опытные и контрольную пробы инкубировали 1 час при 37oC. Для получения 100% гемолиза эритроцитов к одной из опытных проб добавляли 0,2 мл 4% раствора сапонина. После инкубации все пробы (опытные и контрольную) центрифугировали 10' при 2000 об/мин. Надосадочную жидкость использовали для определения степени гемолиза. Для этого к 0,3 мл надосадочной жидкости добавляли 2,7 мл трансформирующего раствора (см. Инструкцию Минздрава СССР от 07.06.82 "Определение гемоглобина крови гемоглобинцианидным методом") и далее определяли оптическую плотность E541, пропорциональную количеству гемоглобина в пробе.The experimental and control samples were incubated for 1 hour at 37 o C. To obtain 100% erythrocyte hemolysis, 0.2 ml of a 4% saponin solution was added to one of the experimental samples. After incubation, all samples (experimental and control) were centrifuged 10 'at 2000 rpm. The supernatant was used to determine the degree of hemolysis. To do this, 2.7 ml of a transforming solution was added to 0.3 ml of the supernatant (see Instruction of the USSR Ministry of Health dated 07.06.82 “Determination of blood hemoglobin by the hemoglobin cyanide method”) and then the optical density E 541 was determined, which is proportional to the amount of hemoglobin in the sample.

Степень гемолиза А (в %), определяемую в стандартных условиях, под влиянием перекиси водорода рассчитывали по формуле
А = 100 (а - в)/(б - в), (1)
где а - величина оптической плотности опытной пробы E541;
б - величина оптической плотности при полном (100%) гемолизе под влиянием сапонина;
в - величина оптической плотности контрольной пробы - характеристика спонтанного гемолиза эритроцитов в условиях опыта.
The degree of hemolysis A (in%), determined under standard conditions, under the influence of hydrogen peroxide was calculated by the formula
A = 100 (a - c) / (b - c), (1)
where a is the optical density of the experimental sample E 541 ;
b - optical density at full (100%) hemolysis under the influence of saponin;
in - the value of the optical density of the control sample is a characteristic of spontaneous hemolysis of red blood cells in the experience.

Рассчитанная таким образом средняя перекисная резистентность эритроцитов для группы здоровых людей А = 8,9 + 1,13 [2]. The average peroxide resistance of erythrocytes calculated in this way for a group of healthy people is A = 8.9 + 1.13 [2].

Недостатки метода, взятого в качестве ближайшего аналога. Как следует из описания, исходным субстратом для определения перекисной резистентности является суспензия эритроцитов. The disadvantages of the method taken as the closest analogue. As follows from the description, the initial substrate for determining peroxide resistance is a suspension of red blood cells.

Очевидно, что даже при очень тщательном суспензировании и аккуратном отборе эритроцитарной суспензии для приготовления проб количество эритроцитов неизбежно оказывается различным во всех пробах, особенно при проведении массовых поточных определений. Поэтому и оценка степени гемолиза эритроцитов в опытной пробе по отношению к пробе со 100% гемолизом (см. формулу (1)) сопровождается существенной ошибкой, особенно, если в опытной пробе наблюдается незначительный гемолиз или же имеет место достаточно сильный спонтанный гемолиз эритроцитов в контрольной пробе. Obviously, even with very careful suspension and careful selection of the erythrocyte suspension for sample preparation, the number of red blood cells inevitably turns out to be different in all samples, especially during mass flow measurements. Therefore, the assessment of the degree of hemolysis of erythrocytes in the experimental sample with respect to the sample with 100% hemolysis (see formula (1)) is accompanied by a significant error, especially if slight hemolysis is observed in the experimental sample or there is a sufficiently strong spontaneous hemolysis of red blood cells in the control sample .

Таким образом, неоднородность суспензии эритроцитов и необходимость приготовления отдельной пробы для проведения 100% гемолиза негативно сказываются на точности метода. Ведь количество эритроцитов в пробе, в которой за счет добавления сапонина осуществлен 100% гемолиз, и в других пробах может существенно различаться, что снимает точность и воспроизводимость метода. Thus, the heterogeneity of the erythrocyte suspension and the need to prepare a separate sample for 100% hemolysis negatively affect the accuracy of the method. After all, the number of red blood cells in the sample, in which 100% hemolysis is carried out by adding saponin, and in other samples can vary significantly, which removes the accuracy and reproducibility of the method.

По ходу определения неоднократно приходится манипулировать малыми объемами субстрата и используемых реактивов. Погрешность измерения этих объемов также негативно сказывается на точности конечного результата. In the course of determination, it is necessary to repeatedly manipulate small volumes of substrate and reagents used. The measurement error of these volumes also negatively affects the accuracy of the final result.

Взятый в качестве ближайшего аналога метод используется главным образом в клинической биохимии, где полученный результат сравнивается с нормальными значениями степени гемолиза для здорового человека. The method taken as the closest analogue is mainly used in clinical biochemistry, where the result is compared with normal values of the degree of hemolysis for a healthy person.

В нижеприводимой таблице приводятся (для сравнения с данными, полученными предлагаемым способом) результаты определения перекисной резистентности по способу [2]. The table below shows (for comparison with the data obtained by the proposed method) the results of determining peroxide resistance by the method [2].

Предлагаемый способ определения перекисной резистентности эритроцитов. Разработанный способ учитывает недостатки ближайшего аналога. Прежде чем перейти к его подробному рассмотрению на основе конкретного примера следует остановиться на нескольких практических характеристиках предлагаемого способа. The proposed method for determining the peroxide resistance of red blood cells. The developed method takes into account the disadvantages of the closest analogue. Before proceeding to its detailed consideration on the basis of a specific example, we should dwell on several practical characteristics of the proposed method.

1. Из двукратно отмытых физиологическим раствором эритроцитов готовили 4,4% суспензию. Например, из эритроцитов, содержащихся в 0,2 мл цельной крови, готовили 2 мл суспензии. 1. A 4.4% suspension was prepared from twice erythrocytes washed with physiological saline. For example, 2 ml of suspension was prepared from red blood cells contained in 0.2 ml of whole blood.

2. В серии специальных экспериментов эмпирически подобрали исходную рабочую концентрацию перекиси водорода - 2,2%, которая обеспечивает удобную для измерения величину оптической плотности гемолизата (от 0,1 до 0,8). Концентрацию перекиси водорода контролировали по экстинкции при λ = 230 нм, используя молярный коэффициент экстинкции. 2. In a series of special experiments, the initial working concentration of hydrogen peroxide, 2.2%, was selected empirically, which provides a convenient value for measuring the optical density of the hemolysate (from 0.1 to 0.8). The concentration of hydrogen peroxide was controlled by extinction at λ = 230 nm using a molar extinction coefficient.

3. В способе [2] азид натрия применяют для ингибиции эритроцитарной каталазы с тем, чтобы оценивать непосредственно резистентность мембран эритроцитов к перекисному окислению, инициированному H2O2. Предлагаемый же способ преследует несколько иную цель: оценивать общую резистентность эритроцитарных мембран, включая действие эритроцитарной каталазы, разлагающей перекись водорода. Поэтому азид натрия в предлагаемом способе не использовали.3. In method [2], sodium azide is used to inhibit erythrocyte catalase in order to directly evaluate the resistance of erythrocyte membranes to peroxidation initiated by H 2 O 2 . The proposed method has a slightly different goal: to evaluate the overall resistance of erythrocyte membranes, including the action of erythrocyte catalase, which decomposes hydrogen peroxide. Therefore, sodium azide in the proposed method was not used.

4. Как уже отмечалось, в способе [2] применяют трансформирующий раствор, дающий окрашенный комплекс с Fe3+ гемоглобина. Величина оптической плотности E541 полученного раствора позволяет судить о концентрации гемоглобина и, следовательно, о степени гемолиза эритроцитов. В предлагаемом способе трансформирующий раствор не использовали. О степени гемолиза судили по оптической плотности E536, непосредственно отражающей концентрацию гемоглобина. Измерения проводили на спектрофотометре СФ-46, обеспечивающим точность считывания показаний до третьего знака после запятой.4. As already noted, in the method [2] apply a transforming solution that gives a colored complex with hemoglobin Fe 3+ . The optical density E 541 of the resulting solution allows us to judge the concentration of hemoglobin and, therefore, the degree of hemolysis of red blood cells. In the proposed method, a transforming solution was not used. The degree of hemolysis was judged by the optical density E 536 , which directly reflects the concentration of hemoglobin. The measurements were carried out on an SF-46 spectrophotometer, which ensured the accuracy of reading the readings to the third decimal place.

Пример конкретного применения предлагаемого способа
Взяты 10 образцов одной и той же донорской крови. В спектрофотометрическую кювету объемом 1 мл и с толщиной поглощающего слоя жидкости 1 см вносят 0,8 мл забуференного физиологического раствора (pH 7,4), добавляют 0,1 мл суспензии эритроцитов. Содержимое перемешивают.
An example of a specific application of the proposed method
10 samples of the same donated blood were taken. In a spectrophotometric cuvette with a volume of 1 ml and with a thickness of an absorbing liquid layer of 1 cm, 0.8 ml of buffered saline solution (pH 7.4) is added, 0.1 ml of a suspension of red blood cells is added. The contents are mixed.

Все три параметра каждой пробы ("а", "б" и "в"), фигурирующие в формуле (1), определяются непосредственно в одной и той же спектрофотометрической кювете. All three parameters of each sample ("a", "b" and "c"), appearing in formula (1), are determined directly in the same spectrophotometric cell.

Сначала определяется величина "в", характеристика спонтанного гемолиза. В серии предварительных опытов было установлено, что в условиях описываемого определения в течение 60' спонтанный гемолиз практически пропорционален времени инкубации. Сразу же после вышеописанного перемешивания пробу в спектрофотометрической кювете центрифугируют (5', 3000 об/мин) и определяют оптическую плотность надосадочной жидкости при λ = 536 нм. Получают E0 - нулевую точку на приводимом ниже графике. Далее осадок взмучивают и после 30' инкубации при 37oC снова центрифугируют и определяют оптическую плотность E30. Затем по графику с учетом линейной зависимости путем экстраполяции получают E60. В качестве примера на чертеже приведены данные, относящиеся к определению "в" для первой пробы (первая строка таблицы, II). E0 = 0,010; E30 = 0,035.First, the value "b" is determined, the characteristic of spontaneous hemolysis. In a series of preliminary experiments, it was found that under the conditions of the described determination for 60 ', spontaneous hemolysis is practically proportional to the incubation time. Immediately after the above mixing, the sample in a spectrophotometric cuvette is centrifuged (5 ', 3000 rpm) and the absorbance of the supernatant is determined at λ = 536 nm. Get E 0 - the zero point in the graph below. Next, the precipitate is agitated and after 30 'incubation at 37 o C again centrifuged and determine the optical density E 30 . Then, according to the graph, taking into account the linear dependence, E 60 is obtained by extrapolation. As an example, the drawing shows data related to the definition of "c" for the first sample (first row of the table, II). E 0 = 0.010; E 30 = 0.035.

Как следует из чертежа, величина E60 = 0,060. Очевидно, что операция линейной экстраполяции не обязательно связана с построением графика. В данном случае E60 = 2 E30 - E0. Отсюда с учетом разбавления при последующем добавлении H2О2 (методика описана ниже) имеем
в = 0,9 E60 = 1,8 E30 - 0,9 E0. (2)
Методика заключается в следующем: добавляют 0,1 мл 2,2% раствора перекиси водорода и при постоянном покачивании кюветы и перемешивании содержимого пробы инкубируют в течение 30' при той же температуре. Затем после центрифугирования (5', 3000 об/мин) определяют оптическую плотность, соответствующую величине "а".
As follows from the drawing, the value of E 60 = 0,060. Obviously, the operation of linear extrapolation is not necessarily related to the construction of the graph. In this case, E 60 = 2 E 30 - E 0 . Hence, taking into account dilution with the subsequent addition of H 2 O 2 (the procedure is described below), we have
c = 0.9 E 60 = 1.8 E 30 - 0.9 E 0 . (2)
The procedure is as follows: 0.1 ml of a 2.2% hydrogen peroxide solution is added and, with constant shaking of the cuvette and stirring of the contents of the sample, incubate for 30 'at the same temperature. Then, after centrifugation (5 ', 3000 rpm), the optical density corresponding to the value of "a" is determined.

Далее в кюветы вносят стеклянную палочку, смоченную в 4% растворе сапонина, после чего осадок взмучивают. Предварительные опыты показали, что эта операция и последующая 10' экспозиция обеспечивают 100% гемолиз. По достижении 100% гемолиза пробы вновь центрифугируют (5', 3000 об/мин) и фотометрируют надосадочную жидкость, определяя величину "б". Полученные данные приведены в таблице в конце описания. Next, a glass rod soaked in a 4% saponin solution is introduced into the cuvettes, after which the sediment is stirred up. Preliminary experiments showed that this operation and the subsequent 10 'exposure provide 100% hemolysis. Upon reaching 100% hemolysis, the samples are again centrifuged (5 ', 3000 rpm) and the supernatant is photographed, determining the value of "b". The data obtained are shown in the table at the end of the description.

В левой части таблицы представлены результаты определений перекисной резистентности 10 проб одной и той же донорской крови по способу [2], в правой - по предлагаемому способу. Сопоставление полученных результатов показывает, что наш способ обеспечивает более высокую точность и воспроизводимость результатов. Средняя ошибка определения составляет 3,8%. В то время как ошибка способа [2] составляет 13%. При этом повышение точности сопровождается упрощением и удешевлением метода (в нем не используют применяемый в [2] трансформирующий раствор). The left side of the table presents the results of the determination of peroxide resistance of 10 samples of the same donor blood by the method [2], in the right - by the proposed method. Comparison of the obtained results shows that our method provides higher accuracy and reproducibility of the results. The average error of determination is 3.8%. While the error of the method [2] is 13%. At the same time, an increase in accuracy is accompanied by a simplification and cheaper method (the transforming solution used in [2] is not used in it).

Таким образом, устранение недостатков ближайшего аналога достигнуто за счет индивидуализации каждой пробы. Суспензия эритроцитов, помещенная в спектрофотометрическую кювету, уже не покидает ее и используется сначала для определения спонтанного гемолиза, потом для определения гемолиза, вызванного добавлением H2O2, и, наконец, для определения полного гемолиза, обусловленного добавлением сапонина.Thus, the elimination of the shortcomings of the closest analogue is achieved through the individualization of each sample. The erythrocyte suspension placed in the spectrophotometric cell no longer leaves it and is used first to determine spontaneous hemolysis, then to determine hemolysis caused by the addition of H 2 O 2 , and finally, to determine the complete hemolysis due to the addition of saponin.

Область применения предлагаемого способа выходит за рамки спортивной биохимии. Он представляет интерес для всех случаев, включая и клинические, в которых важно иметь точные данные о динамике изменения перекисной резистентности эритроцитов. The scope of the proposed method is beyond the scope of sports biochemistry. It is of interest for all cases, including clinical ones, in which it is important to have accurate data on the dynamics of changes in red blood cell peroxide resistance.

Литература
1. Покровский A.A., Абраров А.А. К вопросу о перекисной резистентности эритроцитов. - Вопр. питания, 1964. - N 6. - С. 44-46.
Literature
1. Pokrovsky AA, Abrarov A.A. To the question of peroxide resistance of red blood cells. - Q. Food, 1964. - N 6. - S. 44-46.

2. Бенисович В.И., Идельсон Л.И. Образование перекисей непредельных жирных кислот в оболочке эритроцитов при болезни Маркиафа-Микели. - Вопр. мед. химии, 1973. - N 6. - С. 596-599. 2. Benisovich V.I., Idelson L.I. The formation of peroxides of unsaturated fatty acids in the membrane of red blood cells in the disease of Markiath-Miqueli. - Q. honey. Chemistry, 1973. - N 6. - S. 596-599.

Claims (1)

Способ определения перекисной резистентности эритроцитов, включающий определение спонтанного гемолиза суспензии эритроцитов, гемолиза, вызванного добавкой Н2О2, и 100% гемолиза, вызванного детергентом, и по отношению этих величин рассчитывают перекисную резистентность, отличающийся тем, что после перемешивания порции суспензии эритроцитов ее центрифугируют 5 мин при 3000 об/с, определяют резистентность эритроцитарных мембран, включая действие эритроцитарной каталазы путем оценки величины спонтанного гемолиза, гемолиза, вызванного добавлением Н2О2, а затем - 100% гемолиза в одной и той же порции суспензии эритроцитов, помещенной в спектрофотометрическую кювету, при этом оптическую плотность надосадочной жидкости определяют при длине волны λ=536 нм, а величину перекисной резистентности определяют с учетом разбавления суспензии эритроцитов.A method for determining red blood cell peroxide resistance, including determination of spontaneous hemolysis of a suspension of red blood cells, hemolysis caused by the addition of H 2 O 2 , and 100% hemolysis caused by a detergent, and peroxide resistance is calculated based on these values, characterized in that it is centrifuged after mixing a portion of the suspension of red blood cells 5 min at 3000 rpm, determine the resistance of erythrocyte membranes, including the action of erythrocyte catalase by assessing the magnitude of spontaneous hemolysis, hemolysis caused by ext by applying H 2 O 2 , and then 100% hemolysis in the same portion of a erythrocyte suspension placed in a spectrophotometric cuvette, the optical density of the supernatant is determined at a wavelength of λ = 536 nm, and the value of peroxide resistance is determined taking into account the dilution of the suspension red blood cells.
RU97105596A 1997-04-09 1997-04-09 Method of determination of erythrocyte peroxide resistance RU2134420C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU97105596A RU2134420C1 (en) 1997-04-09 1997-04-09 Method of determination of erythrocyte peroxide resistance

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU97105596A RU2134420C1 (en) 1997-04-09 1997-04-09 Method of determination of erythrocyte peroxide resistance

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU97105596A RU97105596A (en) 1999-04-10
RU2134420C1 true RU2134420C1 (en) 1999-08-10

Family

ID=20191734

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU97105596A RU2134420C1 (en) 1997-04-09 1997-04-09 Method of determination of erythrocyte peroxide resistance

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2134420C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2801864C1 (en) * 2022-10-31 2023-08-17 Павел Вадимович Логинов Method for determining antioxidant activity of natural compounds in experiment

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
1. Бенисович В.И., Идельсон Л.И. Образование перекисей непредельных жирных кислот в оболочке эритроцитов при болезни Маркиафа-Микели. - Вопросы мед. химии, 1973, N6, с.596-599. 2. Физиология человека/Под ред.Е.Б.Бабского - М.: Медицина, 1972, с.42, 57. 3. Покровский А.А. и др. К вопросу о перекисной резистивности эритроцитов. - Вопросы питания, 1964, N6, с.44 - 46. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2801864C1 (en) * 2022-10-31 2023-08-17 Павел Вадимович Логинов Method for determining antioxidant activity of natural compounds in experiment

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Walters et al. An ultramicromethod for the determination of conjugated and total bilirubin in serum or plasma
Navar et al. Relationship between colloid osmotic pressure and plasma protein concentration in the dog
Owen et al. A simple method for the determination of serum haptoglobins
FI102192B (en) Methods to determine the glucose content of whole blood and cuvette and photometer for carrying out the method
AU2004200506B2 (en) Method for Reducing Effect of Hematocrit on Measurement of an Analyte in Whole Blood, and Test Kit and Test Article Useful in the Method
US3733179A (en) Method and apparatus for the quantitative determination of blood chemicals in blood derivatives
Ambade et al. Methods for estimation of blood glucose: a comparative evaluation
Chayen et al. A sensitive bioassay for adrenocorticotrophic hormone in human plasma
Liu Electrochemical sensors
Rao et al. New manual and automated method for determining activity of creatine kinase isoenzyme MB, by use of dithiothreitol: Clinical applications
Grandjean et al. Erythrocyte-Zn-protoporphyrin as an indicator of lead exposure
EP0329682B1 (en) A method for ascertaining the history of a condition of the body from a single blood sample
Stewart Evaluation of a reagent-strip method for glucose in whole blood, as compared with a hexokinase method.
Ohkubo et al. Plasma glucose concentrations of whole blood, as determined with a multilayer-film analytical element.
RU2134420C1 (en) Method of determination of erythrocyte peroxide resistance
Starlinger et al. Oxygen consumption of the isolated carotid body tissue (cat)
Zhao et al. A novel stopped-flow assay for quantitating carbonic-anhydrase activity and assessing red-blood-cell hemolysis
US4211531A (en) Colorimetric cholesterol assay
KOBAYASHI et al. Glycation index of hair for non-invasive estimation of diabetic control
Hultborn A sensitive method for measuring oxygen consumption
RU2328741C1 (en) Method of erythrocytes osmoresistivity evaluation
Fog Turbidity in photometry. Correction for turbidity in photometric methods
RU2160898C1 (en) Method for determining antioxidation activity of antioxidant preparations
Bandi et al. Extended clinical trial and evaluation of glucose determination with the Eastman Kodak Ektachem GLU/BUN Analyzer.
da Fonseca-Wollheim Haemoglobin interference in the bichromatic spectrophotometry of NAD (P) H at 340/380 nm