RU2132880C1 - Способ выявления возбудителя бруцеллеза - Google Patents
Способ выявления возбудителя бруцеллеза Download PDFInfo
- Publication number
- RU2132880C1 RU2132880C1 RU97113192A RU97113192A RU2132880C1 RU 2132880 C1 RU2132880 C1 RU 2132880C1 RU 97113192 A RU97113192 A RU 97113192A RU 97113192 A RU97113192 A RU 97113192A RU 2132880 C1 RU2132880 C1 RU 2132880C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- brucellosis
- added
- gentian violet
- cortisone
- bacteriological
- Prior art date
Links
Landscapes
- Measuring Or Testing Involving Enzymes Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Изобретение касается бактериологической диагностики объектов, подозрительных в качестве факторов передачи бруцеллезной инфекции. Биопробным животным вводят подкожно в область спины 0,5-1 мл суспензии исследуемого материала в физиологическом растворе. Исследуемый материал предварительно смешивают с желтком куриного яйца в соотношении 1:0,5-1:0,7. Добавляют в смесь 0,5-0,7 мл гепаринизированной крови морской свинки, 5-7 мг кортизона, 0,4-1,0 мг полимиксина и 0,04-0,08 мг генцианвиолета. Затем проводят бактериологическое исследование патологического материала только с места введения, при этом в твердую питательную среду добавляют 200-300 мкг/мл полимиксина и 0,02-0,03 мкг/мл генцианвиолета. Изобретение позволяет в кратчайшие сроки получить чистую культуру возбудителя бруцеллеза за счет обеспечивания благоприятных условий для задержки, размножения и накопления бруцелл только на месте введения без развития генерализованного процесса.
Description
Изобретение относится к медицинской микробиологии и может быть использовано при бактериологической диагностике бруцеллеза.
Известен бактериологический метод выделения бруцелл из исследуемого материала путем посева его на питательные среды для выращивания указанных возбудителей ("Бруцеллез" под редакцией акад. АМН СССР П.А.Вершиловой -М.: Медицина, 1972 г., с.198-200).
Недостатком этого метода является трудность выделения чистой культуры возбудителя брццеллеза, так как его рост на питательных средах подавляется сопутствующей микрофлорой.
Известен метод ускоренного выделения возбудителей бруцеллеза, включающий введение исследуемого материала предварительно обработанным кортизоном белым мышам, которых через 14 дней умерщвляют и осуществляют посев кусочков внутренних органов на питательные среды для выращивания бруцелл (Методические рекомендации "Диагностика бруцеллеза и применение лабораторных данных при проведении противоэпидемических мероприятий". Алма-Ата, 1983 г., с. 18-20).
Недостатками этого способа являются длительные сроки получения окончательных результатов (до 14 суток), необходимость исследования многих внутренних органов биопробных животных (лимфатических узлов, селезенки, печени, костного мозга), что приводит к большому объему работ. Указанные недостатки затрудняют проведение ускоренного анализа и увеличивают сроки выдачи результатов исследования, особенно при наличии небольшого количества микробных клеток в исследуемых пробах.
Наиболее близким к заявляемому является способ индикации возбудителя бруцеллеза, направленный на ускорение процесса (Заявка N 92006909/13, МПК C 12 Q 1/04, C 01 N 33/569, положительное решение от 26.04.95 г.).
Способ включает введение белым мышам подкожно в область спины 0,5-1 мл суспензии исследуемого материала в физиологическом растворе, которую предварительно смешивают в гепаринизированной кровью морской свинки в соотношении 1: 0,5-1:0,7, к полученной смеси добавляют 0,5-0,7 мл желтка куриного яйца, 5-7 мг кортизона и 90-120 мг сухого молока, а патологический материал берут с места введения.
Использование этого способа позволяет ускорить процесс индикации возбудителя бруцеллеза до 3-4 суток благодаря задержке и накоплению бруцеллезного микроба только на месте введения исследуемого материала. Однако указанный способ не предусматривает выделение чистой культуры возбудителя бруцеллеза и при высеве патологического материала с места введения на твердые питательные среды имеет место подавление специфического роста бруцелл сопутствующей микрофлорой.
Целью предлагаемого изобретения является ускоренное введение чистой культуры бруцелл из материала, загрязненного посторонней микрофлорой.
Поставленная цель достигается тем, что биопробным животным вводят подкожно в область спины 0,5-1 мл суспензии исследуемого материала в физиологическом растворе, смешанной с желтком куриного яйца в соотношении 1:0,5-1: 0,7 и с добавленными затем в смесь 0,5-0,7 мл гепаринизированной крови морской свинки, 5-7 мг кортизона, 0,4-1 мг полимиксина, 0,04-0,08 мг генцианвиолета, бактериологически исследуют только место введения, патологический материал которого высевают на пластины твердой питательной среды, содержащей 200-300 мкг/мл полимиксина и 0,02-0,03 мкг/мл генцианвиолета.
По отношению к прототипу заявляемый способ имеет следующие отличительные признаки. Предварительно добавляемый к исследуемой суспензии желтого, куриного яйца предохраняет возбудитель бруцеллеза от действия фагоцитов и других факторов естественного иммунитета, обеспечивает благоприятные условия для задержки, размножения и накопления бруцелл только на месте введения до развития генерализованого процесса. Добавление к исследуемого материалу и твердой питательной среде полимиксина и генцианвиолета подавляет рост посторонней микрофлоры и обеспечивает получение чистой культуры бруцилл при ее минимальной концентрации.
Способ осуществляется следующим образом. Исследуемый материал в количестве 0,5-1 мл смешивают с желтком куриного яйца в соотношении 1:0,5-1:0,7, к полученной смеси добавляют 0,5-0,7 мл гапаринизированной крови морской свинки, а также кортизон, полимиксин и генцианвиолет из расчета 5-7 мг, 0,4-1,0 мг и 0,04-0,08 мг соответственно на одно животное. Полученную суспензию набирают в шприц и вводят двум белым мышам подкожно в область спины, при этом помощник фиксирует животное, а экспериментатор пинцетом захватывает кожу в складку в области крестца и вводит иглу под контролем глаза так, чтобы срез иглы был на уровне лопаток. После этого, плавным движением надавливая на поршень шприца, вводят нужное количество материала.
Биопробных животных умерщвляют хлороформированием на 1 и 2 сутки после заражения. Грызунов прикрепляют к вскрывочной доске приколышами спиной кверху. Кожу над крестцом животного захватывают хирургическим пинцетом, приподнимают вверх, делают маленький поперечный разрез ножницам и в образовавшееся окошечко вводят закругленную браншу ножниц и делают дугообразные разрывы кожи, обход по бокам место введения. Образовавшийся лоскут кожи (в виде фартука) откидывают на голову грызуна. При этом легко обнаруживают место введения за счет пропитывания мягких тканей кровью.
Место введения подвергают бактериологическому, серологическому и иммунофлюоресцентному исследованиям. Ножницами тщательно срезают ткани места введения, пропитанные кровью, переносят их в стерильные фарфоровые ступки, в которые предварительно наливают 0,5 мл стерильного физиологического раствора и тщательно растирают пестиком. По 0,2 мл полученной эмульсии вносят в две чашки Петри с агаром "Альбими" и равномерно распределяют по поверхности агаровых пластин. После впитывания эмульсии в агар одну из чашек используют для определения антибиотикочувствительности диско-диффузионным методом, другую - для излучения морфологических, культуральных и биохимических признаков по совокупности которых определяют видовую принадлежность бруцелл. Оставшиеся грубые частицы тканей с места введения в фарфоровых ступках вновь тщательно растирают в 1 мл стерильного физиологического раствора, полученный гомогенизат переносят в пробирки, обеззараживают по общепринятой методике и используют для постановки серологических реакций. Посевы места введения выдерживают в термостате при 37oC в течение 2 суток.
Возможность использования предлагаемого способа иллюстрируется примерами практического его выполнения с использованием полной совокупности заявляемых признаков.
Пример 1. Из расчета на одно животное берут 0,5 мл исследуемого материала, смешивают его с желтком куриного яйца в соотношении 1:0,5. К полученной смеси добавляют 0,5 мл гепаринизированной крови морской свинки, 5 мг кортизона, 0,4 мг полимиксина и 0,04 мг генцианвиолета. Приготовленную смесь набирают в шприц и вводят под кожу спины двум белым мышам поровну, которых затем вскрывают через 24 и 28 ч после заражения и исследуют только место введения с помощью бактериологического, серологического и иммунофлуорецсцентного методов, которые позволяют выделить и идентифицировать возбудитель бруцеллеза при его концентрации 108 - 107 и 106 - 101 КОЕ мл соответственно на 3 и 4 сутки от начала исследования.
Пример 2. Из расчета на одно животное берут 0,7 мл исследуемого материала, смешивают его с желтком куриного яйца в соотношении 1:0,6. К полученной смеси добавляют 0,6 мг гепаринизированной крови морской свинки, 6 мг кортизона, 0,6 мг полимиксина и 0,06 мг генцианвиолета. Приготовленную смесь набирают в шприц и вводят под кожу спины двум белым мышам поровну, которых затем вскрывают через 24 и 48 ч после заражения и исследуют только место введения с помощью бактериологического, серологического и иммунофлуоресцентного методов, которые позволяют выделить и идентифицировать возбудитель бруцеллеза при его концентрации 108 - 107 и 106 и 101 КОЕ мл соответственно на 3 и 4 сутки от начала исследования.
Пример 3. Из расчета на одно животное берут 1,0 мл исследуемого материала, смешивают его с желтком куриного яйца в соотношении 1:0,7. К полученной смеси добавляют 0,7 мг гепаринизированной крови морской свинки, 7 мг кортизона, 1,0 мг полимиксина и 0,08 мг генцианвиолета. Приготовленную смесь набирают в шприц и вводят поровну под кожу спины двум белым мышкам, которых вскрывают через 24 и 48 ч после заражения и исследуют только место введения с помощью бактериологического, серологического и иммунофлуоресцентного методов, которые позволяют выделить и идентифицировать возбудителя бруцеллеза при его концентрации 108 - 107 и 106 - 101 КОЕ мл соответственно на 3 и 4 сутки на начала исследования.
Как показали экспериментальные исследования, заявляемые пределы содержания ингредиентов, входящих в состав инокулята и твердой питательной среды, являются оптимальными для достижения поставленной цели, так как при уменьшении их содержания менее заявляемых пределов не происходит ингибиции роста посторонней микрофлоры, а при их увеличении подавляется рост бруцелл.
Таким образом, изобретение практически осуществимо, его использование в бактериологических исследованиях позволит в кратчайшие сроки получить чистую культуру возбудителя бруцеллеза с последующим ускоренным проведением дифференциации возбудителя и определения антибиотикочувствительности.
Claims (1)
- Способ выявления возбудителя бруцеллеза, включающий введение биопробным животным подкожно в область спины 0,5-1 мл суспензии исследуемого материала в физиологическом растворе в смеси с гепаринизированной кровью морской свинки, желтком куриного яйца, 5-7 мг кортизона и последующим исследованием патологического материала с места введения, отличающийся тем, что исследуемый материал смешивают с желтком куриного яйца в соотношении 1:0,5-1:0,7, затем добавляют 0,5-0,7 мл гепаринизированной крови морской свинки, кортизон, дополнительно добавляют 0,4-1,0 мг полимиксина, 0,04-0,08 мг генцианвиолета, а при бактериологическом исследовании патологического материала в твердую питательную среду добавляют 200-300 мкг/мл полимиксина и 0,02-0,03 мкг/мл генцианвиолета.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU97113192A RU2132880C1 (ru) | 1997-07-31 | 1997-07-31 | Способ выявления возбудителя бруцеллеза |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU97113192A RU2132880C1 (ru) | 1997-07-31 | 1997-07-31 | Способ выявления возбудителя бруцеллеза |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2132880C1 true RU2132880C1 (ru) | 1999-07-10 |
RU97113192A RU97113192A (ru) | 1999-07-20 |
Family
ID=20195903
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU97113192A RU2132880C1 (ru) | 1997-07-31 | 1997-07-31 | Способ выявления возбудителя бруцеллеза |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2132880C1 (ru) |
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US7951913B2 (en) | 2006-06-02 | 2011-05-31 | Biotika A.S. | Method of polymyxin B recovery from fermentation broth |
US8119371B2 (en) | 2006-06-15 | 2012-02-21 | Biotika A.S. | Process for the preparation of polymyxin B employing (PAENI) Bacillus polymyxa |
-
1997
- 1997-07-31 RU RU97113192A patent/RU2132880C1/ru active
Cited By (2)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US7951913B2 (en) | 2006-06-02 | 2011-05-31 | Biotika A.S. | Method of polymyxin B recovery from fermentation broth |
US8119371B2 (en) | 2006-06-15 | 2012-02-21 | Biotika A.S. | Process for the preparation of polymyxin B employing (PAENI) Bacillus polymyxa |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
OSGOOD et al. | Culture of human marrow: details of a simple method | |
Colebrook | The mycelial and other micro-organisms associated with human actinomycosis | |
Evelyn et al. | Use of erythromycin as a means of preventing vertical transmission of Renibacterium salmoninarum. | |
Goadby | The mycology of the mouth: a text-book of oral bacteria | |
Baldwin et al. | Tuberculosis, Bacteriology, Pathology and Laboratory Diagnosis: With Sections on Immunology, Epidemiology, Prophylaxis and Experimental Therapy | |
RU2132880C1 (ru) | Способ выявления возбудителя бруцеллеза | |
Gasser et al. | Bilateral mammary abscess and uveitis caused by Brucella melitensis—report of a case | |
Klein | Micro-organisms and disease | |
RU2093580C1 (ru) | Способ индикации возбудителя бруцеллеза | |
RU2077591C1 (ru) | Способ лабораторной диагностики чумы | |
RU2133274C1 (ru) | Способ выделения возбудителя чумы от эктопаразитов, например блох | |
RU2070933C1 (ru) | Способ индикации возбудителя туляремии | |
RU2045576C1 (ru) | Способ определения антибиотикочувствительности возбудителя чумы | |
RU2218410C2 (ru) | Способ постановки биопробы при диагностике чумы | |
Soekardono et al. | The prepatent and patent periods of Eimeria alabamensis and further description of the exogenous stages | |
Hayasaka et al. | Furunculosis in cultured American eel Anguilla rostrata (Le Sueur) | |
Green, Jennifer R.* Herbst, IA** & Schneider | An outbreak of lymphosarcoma in merino sheep in the South Western Cape | |
Turton | The growth and development of Hymenolepis diminuta and H. nana in vitro and in vivo | |
Koch | Aetiology of tuberculosis | |
RU2249206C2 (ru) | Способ бактериологического исследования рыб | |
Van Rooyen | Some properties of the encephalitogenic agent in lymphadenomatous tissue | |
RU2012595C1 (ru) | Способ индикации возбудителя сибирской язвы | |
RU2218412C2 (ru) | Способ экспрессного определения антибиотикочувствительности возбудителя чумы с помощью реакции непрямой гемагглютинации (рнга) | |
RU2344169C1 (ru) | Среда для сохранения жизнеспособности клинических изолятов патогенной treponema pallidum | |
SU1734699A1 (ru) | Способ обогащени биологического материала при бактериологическом исследовании на туберкулез |