RU2125465C1 - Вакцина культуральная инактивированная против хламидиоза (орнитоза) птиц - Google Patents

Вакцина культуральная инактивированная против хламидиоза (орнитоза) птиц Download PDF

Info

Publication number
RU2125465C1
RU2125465C1 RU95103695A RU95103695A RU2125465C1 RU 2125465 C1 RU2125465 C1 RU 2125465C1 RU 95103695 A RU95103695 A RU 95103695A RU 95103695 A RU95103695 A RU 95103695A RU 2125465 C1 RU2125465 C1 RU 2125465C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
chlamydia
vaccine
strain
vgnki
titer
Prior art date
Application number
RU95103695A
Other languages
English (en)
Other versions
RU95103695A (ru
Inventor
Г.Н. Данченко
Р.Н. Коровин
Г.П. Щербань
Т.Ф. Кравченко
Original Assignee
Данченко Галина Николаевна
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Данченко Галина Николаевна filed Critical Данченко Галина Николаевна
Priority to RU95103695A priority Critical patent/RU2125465C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2125465C1 publication Critical patent/RU2125465C1/ru
Publication of RU95103695A publication Critical patent/RU95103695A/ru

Links

Images

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)

Abstract

Изобретение касается специфической профилактики и терапии хламидиоза (орнитоза) птиц. Вакцина содержит в качестве антигена штамм Chlamydia psittaci var. avis "ДЖ-87" ВГНКИ 23-ДЕП, выращенный на монослое первичной культуры кле-ток фибробластов эмбрионов кур (ФЭК) с титром не ниже 10-7,0 ТЦД50/мл.. Вакцина также содержит инактиватор-фенол и адъювант - поливинилпирролидон. Вакцина специфична, высокоиммуногенна и имеет низкую реактивность. 6 табл.

Description

Изобретение относится к ветеринарной микробиологии и вирусологии, в частности к производству вакцин, применяемых для специфической профилактики и терапии сельскохозяйственных животных, например птиц от заболевания хламидиозом.
Известна вакцина против энзоотического аборта овец инактивированная изготовленная из зараженных хламидиями куриных эмбрионов (Franc et al. Am. J. Vet. Pec. , Vol. 29, p. 1441, 1968). Недостатком данной вакцины являются ее высокая стоимость, ее изготовление требует больших затрат времени, высокое содержание баластных белков, снижающее ее иммуногенность и повышающее реактогенность. Эта вакцина не содержит специфического антигена и поэтому неиммуногенна для птиц. Данная вакцина выбрана нами в качестве прототипа.
Наиболее близким по технической сущности является патент США N 4386065 A 61 K 39/118, 1983. "Вакцина против энзоотического аборта овец", которая включает в себя смеси водной суспензии, инактивированных формалином хламидийных элементарных телец, полученных из организмов chlamydia SP в пределах от 2 • 106 до 109 ELD 50/мл, размноженных в клеточной культуре и равного количества масляного адъюванта представляющего собой смесь светлого минерального масла и ланолина.
Недостатком этой вакцины является то, что штамм хламидий, как продуцент, не обладает цитопатическим действием. Вследствие этого для контроля накопления хламидий необходимо ежедневно готовить мазки, производить их окраску и подсчет зараженных клеток, а при сборе сырья требуется инфицированный монослой отделить от ростовой поверхности с помощью трипсина с верстном. Для создания нужной концентрации хламидий в вакцине культуральную суспензию подвергают центрифугированию. К тому же один стационарный монослой используется как посевной материал только для пяти чистых монослоев или их эквивалентов. Все эти операции усложняют технологический процесс производства и снижают производительность при изготовлении вакцины, что делает ее дороже. К тому же вакцина профилактирует только энзоотические аборты хламидиозной природы у овец и не профилактирует хламидиоз птиц.
Сущность изобретения
Задачей данного изобретения является создание специфичной, высокоиммуногенной вакцины для профилактики хламидиоза (орнитоза) птиц, имеющей низкую реактогенность и получаемой более простым (в сравнении с прототипом) технологическим способом.
Поставленная задача достигнута благодаря тому, что вакцина культуральная инактивированная против хламидиоза (орнитоза) птиц в качестве антигена, содержит штамм CHLAMYDIA PSITTACI (var. avis) "ДЖ-87" ВГНКИ N 23-ДЭП, выращенный на монослое первичной культуры клеток фибробластов эмбрионов кур с титром не ниже 10-7 ТЦД50/мл,в качестве адъюванта - поливинилпирролидон, а также фенол при следующих процентных соотношениях:
1. Суспензия клеток ФЭК (фибробластов эмбрионов кур), инфицированных хламидиями штамма chlamydia psittaci (var. avis) "ДЖ-87" ВГНКИ N 23-ДЭП с титром не ниже 10-7,0 ТЦД50/мл - 99-99,5.
2. Фенол - 0,3-0,5.
3. Полифинилпирролидон - 0,4-0,6.
Существенным отличием данной вакцины от ее прототипа является то, что в качестве антигена берут штамм chlamydia psittaci (var. avis) "ДЖ-87", депонированный в коллекцию ВГНКИ ветпрепаратов, N 23 ДЭП. Выращивание его ведется на монослое первичной культуры ФЭК.
Штамм chlamydia psittaci (var. avis) "ДЖ-87" ВГНКИ N 23 - ДЭП выделен в 1987 году из печени и селезенки больного орнитозом индюшонка птицефабрики "Мрзытайская" Джамбулской области. Выделение производилось на развивающихся 6-7-дневных куриных эмбрионах путем их заражения в полость желточного мешка. Затем штамм был адаптирован к первичной культуре клеток ФЭК. Штамм прошел 52 пассажа в культуре клеток ФЭК в условиях роллера и в результате приобрел способность оказывать высокое цитопатогенное действие на монослой культуры клеток ФЭК. Наряду с этим устойчиво повысилась его иммуногенная активность и снизилась реактогенность.
Штамм chlamydia psittaci (var. avis) "ДЖ-87" ВГНКИ N 23-ДЭП входит в коллекцию ВГНКИ ветпрепаратов и хранится в музее живых культур СКЗНИВИ.
МОРФОЛОГИЧЕСКИЕ ПРИЗНАКИ. Элементарные (зрелые) тельца хламидий округлой формы, диаметром 180 - 200 нм, (инициальные-промежуточные формы - до 500 - 600 нм) окрашиваются по методу Романовского-Гимза в темно-синий цвет. При окраске акредином оранжевым хламидии приобретают оранжевый и желто-зеленый цвет. Расположены хламидии в цитоплазме клеток и в межклеточном пространстве в виде одиночных форм или скоплений.
КУЛЬТУРАЛЬНЫЕ СВОЙСТВА. Хламидии культивируются в желточных оболочках 6-7 дневных куриных эмбрионов. Штамм "ДЖ-87" ВГНКИ N 23-ДЭП адаптирован к культуре клеток ФЭК, вызывает образование цитоплазматических включений через 48 часов культивирования, проявляет цитопатическое действие.
ПАТОГЕННЫЕ СВОЙСТВА. Штамм патогенен для индюшат, морских свинок и белых мышей - вызывает у них заболевание и гибель. В мазках-отпечатках из органов (печень, селезенка, мозг) павших и больных животных обнаружены цитоплазматические включения и элементарные частицы хламидий при парентеральном (для птиц), интраназальном, внутрибрюшинном, внутримозговом (для мышей) и внутрибрюшинном (для морских свинок) заражении.
АДАПТОГЕННЫЕ СВОЙСТВА. Штамм chlamydia psittaci (var. avis) "ДЖ-87" ВГНКИ N 23-ДЭП - возбудитель хламидиоза (орнитоза) птиц адаптирован к 6-7 дневным куриным эмбрионам и культуре клеток ФЭК, при этом сохраняет патогенность и иммуногенность. Титр хламидий выращенных на куриных эмбрионах составляет 10-6 - 10-7 ЭЛД50/0,3 мл на культуре клеток ФЭК - 10-7 - 10-8 ТЦД50/мл.
АНТИГЕННЫЕ СВОЙСТВА. В постановке перекрестной реакции связывания комплемента (РСК) с гомологичным антигенами установлено высокое антигенное родство к гомологичному антигену в титре 1:80 - 1:160. Антигенное родство к другим антигенам хламидий стоит на четыре разведения дальше.
ТАКСОНОМИЧЕСКАЯ ХАРАКТЕРИСТИКА. Согласно решению Юридической комиссии Международной Ассоциации Микробиологических обществ (МАМО), с 1 января 1980 года определение рассматриваемых микроорганизмов, как Chlamydia, стало обязательным. В соответствии с "The Shorter Bergey's manual of determinative" (1980), хламидии отнесены к царств Procaryotae, отделу 2 прокариотов, индифферентных к свету, т.е. "скотобактериям", классу 2 Rickettsia. В класс Rickettsia включены порядки 1 Rickettsiales и 2 Chlamydiales. Семейство Chlamydia, род Chlamydia, в который включает четыре вида: Chlamydia trachomatis, Chlamydia psittaci, Chlamydia pneumoniae, Chlamydia pecorum. Все виды хламидий гетерогенны.
ИММУНОГЕННЫЕ СВОЙСТВА. В опыт было взято 48 индюшат 3-недельного возраста весом 250-300 граммов. 24 индюшонка было завакцинировано культуральной инактивированной вакциной, изготовленной из штамма chlamydia psittaci (var. avis) "ДЖ-87" ВГНКИ N 23-ДЭП, подкожно в дозе 0,5 мл. Остальные 24 индюшонка составило контрольную (не вакцинированную группу.
Через 14 дней после введения вакцины приготовленной из подтитрованного контрольного штамма chlamydia psittaci (var. avis) "ДЖ-87" ВГНКИ N 23-ДЭП с титром 10-7,0 ТЦД50/мл заразили 12 опытных и 12 контрольных индюшат подкожно в дозе 1 мл. Затем, через 20 дней после введения вакцины, также заразили 12 вакцинированных и 12 не вакцинированных индюшат. Результаты представлены в табл. 1.
Примечание в графах 4,5 числитель обозначает число павших индюшат, знаменатель - число выживших.
Таким образом, как видно из описания и таблицы, штамм chlamydia psittaci (var. avis) "ДЖ-87" ВГНКИ N 23-ДЭП специфичен по отношению к птицам и обладает высокими иммуногенными свойствами, что позволяет осуществить поставленную задачу.
Вторым существенным отличием является то, что в качестве адъюванта в вакцину вводят поливинилпирролидон (ПВП). Поливинилпиролидон-белый порошок, хорошо растворимый в воде, применяется как пролонгатор лекарственных средств. Ему присуще дезинтоксическое и противовоспалительное действие. В нашем препарате ПВП существенно повышает иммуногенность вакцины за счет того, что связывает (адсорбирует) антипенные белки.
Сопоставительный анализ с прототипом позволяет сделать вывод, что заявляемый состав вакцины отличается от известного введением новых компонентов, а именно нового штамма chlamydia psittaci (var. avis) "ДЖ-87" ВГНКИ N 23-ДЭП с титром не менее 10-7,0 ТЦД50/мл и поливинилпирролидона в качестве адъюванта, а также соотношением компонентов.
Таким образом, заявляемое технологическое решение является новым. Введение в качестве адъюванта поливинилпирролидона существенно повышает иммуногенноть вакцины. По сравнению с вакциной, содержащей в качестве адъюванта вазелиновое масло. Для доказательства был проведен следующий опыт восьми голубят вводилась культуральная инактивированная вакцина, изготовленная из штамма chlamydia psittaci (var. avis) "ДЖ-87" ВГНКИ N 23-ДЭП, содержащая в качестве адъюванта вазелиновое масло, и восьми - вакцина, содержащая в качестве адъюванта поливинилпирролидон. Вакцина вводилась подкожно, трехкратно с интервалом 7 дней в дозе 0,2 мл. Иммуногенность вакцины оценивалась по результатам РСК (с сывороткой крови опытных голубей, взятой через 20 дней после последнего введения вакцины). Результаты представлены в таблице 2.
Из таблицы следует, что иммуногенность вакцины с поливинилпирролидоном, используемым в качестве адъюванта, значительно выше, чем вакцины с вазелиновым маслом использованным в качестве адъюванта.
Таким образом, данный состав компонентов придает вакцине новые свойства, что позволяет сделать вывод о соответствии заявляемого технологического решения критерию "изобретательский уровень".
Пример 1. (Оптимальный вариант).
Приготовление культуры клеток ФЭК, заражение ее хламидиями производили по общепринятой методике (Л.П.Дьяконов и др. Культивирование клеток и тканей животных. Часть 1, Ставрополь, 1986). Затем суспензию клеток ФЭК, инфицированных хламидиями штамма Chlamydia psittaci (var. avis) "ДЖ-87" ВГНКИ N 23-ДЭП, подвергали контрольным высевам на бактериальную и грибковую контаминацию. После этого чистую, не контаминированную, суспензию брали для определения титра ТЦД50/мл. Титр определяли по общепринятой методике и подсчитывали по методу Рида и Менча. В данном примере он равен 10-7,0 ТЦД50/мл.
Затем смешивали компоненты в следующих соотношениях суспензии клеток ФЭК, инфицированных хламидиями - 99,1%, фенол - 0,35 мас.%, поливинилпирролидона - 0,55 мас.%. Полученную смесь выдерживали в течение 96 часов при температуре +10oC.
Далее проводили выборочный контроль на иммуногенность. Для этого брали восемь голубей и вводили им вакцину по следующей схеме:
1-е введение - подкожно 0,2 мл;
2-е введение - подкожно через 7 суток 0,2 мл;
3-е введение - подкожно через 14 суток 0,2 мл.
Контролем служили четыре голубя, которым вакцина не вводилась. Через три недели после последнего введения вакцины определяли уровень накопления антител в сыворотке крови голубей в реакции связывания комплемента (РСК). Результат: четыре креста в разведении 1:5, четыре - в разведении 1:10, два - в разведении 1:20.
Аналогично делали для титра 7,5; 7,75; 6,5; 6,0; 5,5 ТЦД50/мл. Сведения приведены в табл. 3.
Таким образом, титр хламидийного штамма от 7,0 и ниже обеспечивает высокое накопление антител в сыворотке крови голубей. Вакцина с качествами, приведенными в примерах 1, 4, 5, считается пригодной для применения на птице. В целях экономии штаммного материала при получении титра выше 7,8 ТЦД50/мл суспензия разводится питательной средой ГЛА до титра, приведенного в примерах 1, 4, 5. Титр штамма ниже 6,5 ТЦД50/мл (пр.6) не обеспечивает нужного накопления хламидий ниже применяется для иммунизации птиц.
В данном опыте отчетливо видна зависимость титра антител в сыворотке крови голубей от титра штамма chlamydia psittaci (var. avis) "ДЖ-87" ВГНКИ N 23-ДЭП. Этот тест взят нами в качестве контроля иммуногенности вакцины при ее изготовлении.
Пример N 7. Приготовление культуры клеток ФЭК, заражение ее хламидиями, выращивание и накопление их производили по общепринятой методике. Затем суспензию клеток ФЭК инфицированных хламидиями штамма chlamydia psittaci (var. avis) "ДЖ-87" ВГНКИ N 23-ДЭП, подвергали контрольным высевам для проверки на бактериальную и грибковую контаминацию и одновременно определяли усредненный титр ТЦД50/мл, который в данном примере равен 10-7,2 ТЦД50/мл. Чистую, неконтаминированную бактериальной и грибковой флорой клеточную хламидийную суспензию, объединяли в общую стерильную емкость и проводили инактивацию хламидий фенолом. Для этого в емкости смешивали компоненты в следующем соотношении: суспензии клеток ФЭК, инфицированных хламидиями, брали 99,2 мас. %, а инактиватор (фенола) добавляли 0,4 мас.%. Полученную смесь выдерживали в течение 98 часов при температуре +10oC. Затем добавляли 0,4 мас. % адъюванта (поливинилпирролидона). Затем проводили выборочный контроль на полноту инактивации. Для этого 10 развивающимся куриным эмбрионам 7-суточной инкубации стерильно вводили в полость желточного мешка 0,3 мл вакцины и инкубировали их при 37,0-37,5o в течение 12 суток. В качестве контроля использовали 10 эмбрионов, которым вводили не инактивированную клеточную взвесь, содержащую хламидий штамма "ДЖ-87" ВГНКИ N 23-ДЭП. Условия инкубации такие же. Опытные эмбрионы оставались живыми в течение 12 суток. В мазках-отпечатках, изготовленных из оболочек желточного мешка, окрашенных по методу Романовского-Гимза, хламидии не обнаруживались. Контрольные эмбрионы пали на 5-7 сутки. Этот результат соответствует установленному контролю вакцины на полноту инактивации.
Аналогично делали для следующих количеств фенола: 0,3 мас.%; 0,2 мас.%; 0,5 мас.%; 0,6 мас.%. Результаты приведены в таблице 4.
Исходя из данных приведенных в таблице, видно, что количество инактиватора в интервале от 0,3 мас.% до 0,5 мас.% обеспечивает полноту инактивации хламидий в суспензии. Свыше 0,5 мас.% фенол не добавляют с целью его экономии, т.к. качества вакцины этого не улучшает. Концентрацию инактиватора ниже 0,3 мас. % не допускают, т.к. это не обеспечивает полной инактивации хламидий.
Пример N 12. Приготовление культуры ФЭК, заражение ее хламидиями, их выращивание и накопление производили по общепринятой методике. Затем суспензию клеток ФЭК, инфицированных хламидиями штамма chlamydia psittasi (var. avis) "ДЖ-87" ВГНКИ N 23-ДЭП, подвергали контрольным высевам для проверки на бактериальную и грибковую контаминацию. Если тест оказывался отрицательным, то выборочно определяли титр ТЦД50/мл, который в этом примере равен 7,3 ТЦД50/мл. Затем смешивали компоненты в следующих соотношениях: суспензия клеток, инфицированных хламидиями, брали 99,3 мас.%, фенола-0,3 мас.% (смесь выдерживали 10 часов при -6oC). Поливинилпирролидона вводили 0,4 мас.%. Процесс вели следующим образом: навеску адъюванта и инактивированную суспензию клеток содержащую антиген штамм хламидий "ДЖ-87" ВГНКИ N 23-ДЭП и составляли при комнатной температуре до его полного растворения - 24 часа. Затем проводили контроль на иммуногенность, так же как в примере N1. Результат следующий: в разведении 1:5 - ++++; в разведении 1:10 - ++++; в разведении 1: 20 - ++. Аналогично делали для 0,3 мас.%. Результаты приведены в таблице 5.
Как указано в таблице содержание адъюванта в интервале значений от 0,4 мас. % до 0,6 мас. % обеспечивает иммуногенность вакцины в соответствии с установленным контролем. Количество адъюванта, превышающее 0,6 мас.%, не применяется с целью его экономии. Существенного улучшения качества вакцины при увеличении содержания в ней адъюванта свыше 0,6 мас.% не происходит.
Содержание адъюванта ниже 0,4 мас.% не допускается, т.к. иммуногенность такой вакцины ниже установленного контроля вакцины и она не вызывает надежного иммунного ответа у птицы.
Пример 17. Приготовление культуры клеток ФЭК, заражение ее хламидиями их выращивание и накопление производили по общепринятой методике. Затем суспензию клеток ФЭК, инфицированных хламидиями штамма chlamydia psittasi (var. avis) "ДЖ-87" ВГНКИ N 23-ДЭП, подвергали контрольным высевам для проверки на бактериальную и грибковую контаминацию. При отрицательном результате теста определяли средней титр ТЦД50/мл, который в этом примере равен 7,4 ТЦД50/мл. Затем смешивали компоненты в следующих соотношениях: суспензии клеток ФЭК, инфицированных хламидиями, брали 99,25 мас.%; фенола - 0,35 мас.%, поливинилпирролидона - 0,4 мас.%. Затем проводили контроль на иммуногенность как в примере 1. Результаты РСК следующие: в разведении 1:5 - ++++; в разведении 1: 10 - ++++; в разведении 1:20 - +++. Аналогично делали для 99 мас.%; 98 мас. %; 99,5 мас.%; 99,7 мас.% суспензии клеток ФЭК, инфицированных хламидиями штамма chlamydia psittaci (var. avis) "ДЖ-87" ВГНКИ N 23-ДЭП. Результат представлен в таблице 6.
Как указано в таблице, содержание суспензии клеток ФЭК инфицированных хламидиями штамма "ДЖ-87" ВГНКИ N 23-ДЭП в пределах от 99,0 мас.% до 99,5 мас. %, обеспечивает иммуногенность вакцины в соответствии с ее контролем. Количество культуральной клеточной суспензии выше 99,5 мас.% не применяется, т.к. это не улучшает качество вакцины, а увеличивает расход ее дорогостоящих компонентов. Использование культуральной клеточной суспензии в количестве ниже 99,0 мас.% также не допускается, т.к. вакцина при этом не обладает иммуногенностью, соответствующей установленному контролю вакцины и не вызывает развитие надежного иммунитета у птицы.
Технический результат.
Вакцина профилактирует возникновение у птиц на почве хламидиоза: пневмонии, артрита, аэросаккулита. Повышает процесс выводимости птенцов на 10-12%, увеличивает сохранность молодняка на 18-24%. Увеличивается яйценоскость, возрастают привесы. Кроме того, вакцина сокращает загрязнение окружающей среды хламидиями, являющимися антропозоонозами, а также снижает затраты неблагополучного хозяйства на проведение малоэффективных лечебно-профилактических мероприятий с применением антибиотиков и других лечебных средств. Вакцина безвредна. В целом эффективность вакцины составляет 90-93%.
Источники информации
1. Л.П.Дьяконов, В.Ф.Глухов и др. Культивирование клеток и тканей животных. Учебно-методическое пособие (часть 1), Ставрополь, 1986 г.
2. Описание к патенту США N 4386065 МКИ A 61 K 39/, 1983.
3. А.с. N 645369 з. N 2528058 МКИ C 12 K 5/00.
4. А.с. N 660390 з. N 2528670 МКИ C 12 K 5/00.
5. А.с. N 661017 з. N 2528672 МКИ C 12 K 5/00.
6. А.с. N 666203 з. N 2528672 МКИ C 12 K 5/00.
7. А.с. N 666202 з. N 2528669 МКИ C 12 K 5/00.
8. А.с. N 655160 з. N 2528668 МКИ C 12 K 5/00.

Claims (1)

  1. Вакцина культуральная инактивированная против хламидиоза (орнитоза) птиц, содержащая антиген хламидий, адъювант и инактиватор, отличающаяся тем, что в качестве антигена она содержит штамм Chlamydia psittaci var, avis "ДЖ-87" ВГНКИ N 23-ДЭП, выращенный на монослое первичной культуры клеток фибробластов эмбрионов кур с титром не ниже 10-7,0 ТЦД50/мл, в качестве адъюванта - поливинилпирролидон, а в качестве инактиватора - фенол при следующем соотношении их, мас.%:
    Суспензия клеток ФЭК, инфицированных хламидиями штамма Chlamydia psittaci var, avis "ДЖ-87" ВГНКИ N 23-ДЭП с титром не ниже 10-7,0 ТЦД50/мл - 99,0 - 99,5
    Фенол - 0,3 - 0,5
    Поливинилпирролидон - 0,4 - 0,6п
RU95103695A 1995-03-14 1995-03-14 Вакцина культуральная инактивированная против хламидиоза (орнитоза) птиц RU2125465C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU95103695A RU2125465C1 (ru) 1995-03-14 1995-03-14 Вакцина культуральная инактивированная против хламидиоза (орнитоза) птиц

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU95103695A RU2125465C1 (ru) 1995-03-14 1995-03-14 Вакцина культуральная инактивированная против хламидиоза (орнитоза) птиц

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2125465C1 true RU2125465C1 (ru) 1999-01-27
RU95103695A RU95103695A (ru) 1999-04-20

Family

ID=20165638

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU95103695A RU2125465C1 (ru) 1995-03-14 1995-03-14 Вакцина культуральная инактивированная против хламидиоза (орнитоза) птиц

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2125465C1 (ru)

Similar Documents

Publication Publication Date Title
York et al. A new member of the psittacosis-lymphogranuloma group of viruses that causes infection in calves
IE47175B1 (en) Fowl cholera vaccine
RU2429012C1 (ru) Способ изготовления ассоциированной вакцины против колибактериоза, стрептококкоза и энтерококковой инфекции телят и поросят
GB2076287A (en) Live vaccines containing mutant strains of ecoli
IE882361L (en) Mycoplasma vaccine
Heddleston et al. Studies on pasteurellosis. III. Control of experimental fowl cholera in chickens and turkeys with an emulsified killed vaccine
US5925361A (en) Ornithobacterium rhinotracheale vaccines
Barnes et al. Susceptibility of turkey poults from vaccinated and unvaccinated hens to alcaligenes rhinotracheitis (turkey coryza)
RU2125465C1 (ru) Вакцина культуральная инактивированная против хламидиоза (орнитоза) птиц
CZ224293A3 (en) Process for preparing vaccines
Knivett et al. The evaluation of a live Salmonella vaccine in mice and chickens
RU2233174C2 (ru) Вакцина культуральная инактивированная против хламидиоза крупного и мелкого рогатого скота
RU2279892C1 (ru) Вакцина культуральная инактивированная против хламидиоза (орнитоза) птиц
Rimler et al. A growth medium for the production of a bacterin for immunization against infectious coryza
RU2233670C2 (ru) Вакцина культуральная инактивированная против хламидиоза свиней
RU2761379C1 (ru) Поливалентная инактивированная вакцина против стрептококкозов свиней, способ ее получения и применения
RU1092947C (ru) Штамм pseudomonas acruginosa серотип 11 n 48, используемый для изготовления псевдомонозного антигена
RU2813752C1 (ru) Способ получения гидроокись алюминиевой масляной вакцины против эшерихиоза телят и поросят
RU2080380C1 (ru) Штамм бактерий listeria monocytogenes усхи-19, используемый для изготовления листериозной вакцины
RU2098127C1 (ru) Ассоциированная вакцина "нековак" против некробактериоза крупного рогатого скота
US3980523A (en) Method of propagating microorganisms
RU2080379C1 (ru) Штамм бактерий listeria monocytogenes усхи-52, используемый для изготовления листериозной вакцины
RU2404803C1 (ru) Вакцина против колибактериоза кур
RU2553631C1 (ru) ШТАММ БАКТЕРИИ Pseudomonas aeruginosa № 9 ДЛЯ ИЗГОТОВЛЕНИЯ ВАКЦИНЫ ПРОТИВ ПСЕВДОМОНОЗА СВИНЕЙ
RU2145353C1 (ru) Штамм бактерий moraxella bovis "г97-вниви", используемый для изготовления диагностикумов и вакцин против инфекционного кератоконъюнктивита крупного рогатого скота