RU2110576C1 - Method of selection of high-producing strain - a producer of oxytetracycline and the strain streptomyces rimosus - a producer of oxytetracycline - Google Patents

Method of selection of high-producing strain - a producer of oxytetracycline and the strain streptomyces rimosus - a producer of oxytetracycline Download PDF

Info

Publication number
RU2110576C1
RU2110576C1 RU95120904A RU95120904A RU2110576C1 RU 2110576 C1 RU2110576 C1 RU 2110576C1 RU 95120904 A RU95120904 A RU 95120904A RU 95120904 A RU95120904 A RU 95120904A RU 2110576 C1 RU2110576 C1 RU 2110576C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
oxytetracycline
strain
producer
serine
selection
Prior art date
Application number
RU95120904A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU95120904A (en
Inventor
В.Н. Даниленко
В.А. Миронов
Original Assignee
Ассоциация содействия развитию новейших направлений биотехнологии продуцентов антибиотиков "БИОАН"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ассоциация содействия развитию новейших направлений биотехнологии продуцентов антибиотиков "БИОАН" filed Critical Ассоциация содействия развитию новейших направлений биотехнологии продуцентов антибиотиков "БИОАН"
Priority to RU95120904A priority Critical patent/RU2110576C1/en
Publication of RU95120904A publication Critical patent/RU95120904A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2110576C1 publication Critical patent/RU2110576C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

FIELD: microbiology, antibiotics. SUBSTANCE: selection of high-producing strain-producers of oxytetracycline is carried out by culturing the strain-producer of species Streptomyces rimosus, in part, the strain Streptomyces rimosus M-1 (VKPM S-1512) producing oxytetracycline. Culturing is carried out on solid nutrient medium in the presence of kanamycin. Kanamycin-resistant mutants are selected and after their culturing on liquid nutrient medium in the presence of L-serine strain variants are selected. In these variants oxytetracycline biosynthesis is inhibited by L-serine. EFFECT: improved method of selection. 2 cl, 2 tbl

Description

Изобретение относится к области биотехнологии и касается микробиологического способа получения антибиотика окситетрациклина. The invention relates to the field of biotechnology and relates to a microbiological method for producing an antibiotic oxytetracycline.

Окситетрациклин относится к антибиотикам широкого спектра действия и в настоящее время находит достаточно широкое применение как исходный продукт для получения химических производных окситетрациклина, используемых в медицине. Oxytetracycline is a broad-spectrum antibiotic and is currently widely used as a starting material for the production of chemical derivatives of oxytetracycline used in medicine.

Описанные штаммы-продуценты окситетрациклина не отличаются высоким уровнем биосинтеза антибиотика, и поэтому изыскание более продуктивных штаммов представляет значительный практический интерес. The described strains producing oxytetracycline do not differ in the high level of antibiotic biosynthesis, and therefore, the search for more productive strains is of considerable practical interest.

Указывается, например, что известные штаммы-продуценты окситетрациклина вида Streptomyces rimosus в условиях регулируемой ферментации с дробной подачей источника углерода могут образовывать до 14 г/л окситетрациклина [1] . It is indicated, for example, that known strains producing oxytetracycline of the species Streptomyces rimosus under conditions of controlled fermentation with a fractional supply of a carbon source can form up to 14 g / l of oxytetracycline [1].

Наиболее близким к предложенному по физиологическим признакам является штамм-продуцент окситетрациклина Streptomyces rimosus R83, который в лабораторных условиях накапливает до 12 г/л антибиотика [2]. The physiological strain closest to the one proposed is the oxytetracycline producing strain Streptomyces rimosus R83, which accumulates up to 12 g / l of antibiotic under laboratory conditions [2].

Этот штамм проявляет чувствительность к присутствию в среде L-серина и снижает уровень антибиотикообразования на 43-59% при концентрации L-серина 250-500 мг/л. This strain is sensitive to the presence of L-serine in the medium and reduces the level of antibiotic formation by 43-59% at a concentration of L-serine of 250-500 mg / L.

Существующие способы отбора высокопродуктивных штаммов- продуцентов антибиотиков основаны в основном на непосредственной оценке уровня антибиотикообразования у исследуемых штаммов, что является весьма трудоемкой задачей [3]. Existing methods for selecting highly productive antibiotic-producing strains are based mainly on a direct assessment of the level of antibiotic formation in the studied strains, which is a very time-consuming task [3].

Описаны, однако, методы отбора перспективных продуцентов антибиотиков по иным, чем уровень антибиотикообразования, признакам, которые коррелируют с уровнем биосинтеза антибиотиков. However, methods are described for selecting promising antibiotic producers for signs other than the level of antibiotic formation that correlate with the level of antibiotic biosynthesis.

Известны, например, способы отбора продуктивных штаммов-продуцентов стрептомицина и олеандомицина, которые основаны на корреляции морфологических признаков (спорообразование, пигментация и т.п.) с продуктивностью [4,5] . Known, for example, are methods of selecting productive strains producing streptomycin and oleandomycin, which are based on the correlation of morphological characters (spore formation, pigmentation, etc.) with productivity [4,5].

Однако эти способы оказались относительно малоэффективными для отбора высокопродуктивных штаммов [3]. However, these methods were relatively ineffective for the selection of highly productive strains [3].

Ближайшим аналогом способа отбора штаммов-продуцентов окситетрациклина является способ основанный на отборе антибиотикообразующих вариантов по признакам морфологии, пигментации и споруляции колоний и чувствительности их к окситетрациклину [6]. Однако данный способ пригоден лишь для отбора продуктивных клонов из популяции того или иного штамма, но не для селекции высокопродуктивных мутантов. The closest analogue to the method of selection of strains producing oxytetracycline is a method based on the selection of antibiotic-forming variants based on the morphology, pigmentation and sporulation of the colonies and their sensitivity to oxytetracycline [6]. However, this method is suitable only for the selection of productive clones from a population of a particular strain, but not for the selection of highly productive mutants.

Цель изобретения - изыскать штамм-продуцент окситетрациклина, характеризующийся повышенным уровнем антибиотикообразования, и разработать более быстрый метод отбора высокопродуктивных штаммов. The purpose of the invention is to find a producer strain of oxytetracycline, characterized by an increased level of antibiotic formation, and to develop a faster method for the selection of highly productive strains.

Экспериментальным путем было установлено, что существует явная зависимость между чувствительностью штаммов культуры Streptomyces rimosus к ингибирующему действию L-серина на биосинтез окситетрациклина и интенсивностью антибиотикообразования при отсутствии этой аминокислоты в питательной среде. Иными словами, чем сильнее L-серин подавляет биосинтез окситетрациклина у конкретного штамма Streptomyces rimosus, тем более высок уровень биосинтеза окситетрациклина у этого штамма на обычно используемых питательных средах, не содержащих этой аминокислоты, что подтверждается, в частности, данными табл.1. It was experimentally established that there is a clear correlation between the sensitivity of strains of Streptomyces rimosus culture to the inhibitory effect of L-serine on the biosynthesis of oxytetracycline and the intensity of antibiotic formation in the absence of this amino acid in the nutrient medium. In other words, the stronger L-serine inhibits the biosynthesis of oxytetracycline in a particular strain of Streptomyces rimosus, the higher the biosynthesis of oxytetracycline in this strain on commonly used nutrient media that do not contain this amino acid, which is confirmed, in particular, by the data in Table 1.

Примечание к табл.1. Ферментацию проводили в условиях, описанных далее в примере 1. Накопление антибиотика в присутствии L-серина показано в процентах от уровня биосинтеза окситетрациклина каждым штаммом в отсутствии L-серина. Длительность ферментации в синтетической среде составляла 3 сут., в комплексной среде в присутствии L-серина - 3 сут., в отсутствии L-серина - 9 сут. Синтетическая среда имела следующий состав (г/л): глюкоза (40,0). сульфат аммония (4, 0), гидролизат казеина (1,0), дрожжевой экстракт (0,5), двузамещенный фосфат калия (0,5), сульфат магния (0,5), карбонат кальция (3,0), дистиллированная вода (остальное). Состав комплексной среды приведен в примере 2. Для штамма R83 приведены литературные данные [2]. Note to table 1. Fermentation was carried out under the conditions described below in example 1. The accumulation of the antibiotic in the presence of L-serine is shown as a percentage of the level of oxytetracycline biosynthesis by each strain in the absence of L-serine. The duration of fermentation in a synthetic medium was 3 days., In a complex medium in the presence of L-serine - 3 days. In the absence of L-serine - 9 days. The synthetic medium had the following composition (g / l): glucose (40.0). ammonium sulfate (4.0), casein hydrolyzate (1.0), yeast extract (0.5), disubstituted potassium phosphate (0.5), magnesium sulfate (0.5), calcium carbonate (3.0), distilled water (rest). The composition of the complex medium is shown in example 2. For strain R83, published data [2].

Предложенный способ отбора высокопродуктивных штаммов-продуцентов окситетрациклина вида Streptomyces rimosus состоит в том, что исходный штамм высевают на плотную стандартную агаризованную среду и отбирают спонтанные устойчивые к канамицину мутанты, у которых модифицирована регуляция биосинтеза окситетрациклина. The proposed method for selecting highly productive oxytetracycline producing strains of the Streptomyces rimosus species consists in plating the initial strain on a dense standard agar medium and selecting spontaneous kanamycin-resistant mutants that modify the regulation of oxytetracycline biosynthesis.

Из выделенных устойчивых к канамицину мутантов в свою очередь отбирают варианты, у которых биосинтез окситетрациклина в жидкой среде в наибольшей степени подавляется L-серином. Of the isolated kanamycin-resistant mutants, in turn, variants are selected in which the biosynthesis of oxytetracycline in a liquid medium is most suppressed by L-serine.

В результате селекционируют штаммы-продуценты, обладающие высоким уровнем биосинтеза окситетрациклина. As a result, producer strains with a high level of oxytetracycline biosynthesis are selected.

При осуществлении предложенного способа был селекционирован штамм Streptomyces rimosus M-1, резистентный к канамицину в концентрации 30 мг/л, у которого уровень биосинтеза окситетрациклина подавлялся на 50- 60% в присутствии L-серина в концентрации 50 мг/л. In the implementation of the proposed method, a strain of Streptomyces rimosus M-1, resistant to kanamycin at a concentration of 30 mg / l, in which the level of oxytetracycline biosynthesis was suppressed by 50-60% in the presence of L-serine at a concentration of 50 mg / l was selected.

Продуктивность окситетрациклина у селекционированного штамма составляет в среднем 18,5 г/л при периодической ферментации на обычных питательных средах в течение 9 сут. The productivity of oxytetracycline in the selected strain averages 18.5 g / l with periodic fermentation on ordinary nutrient media for 9 days.

При последовательных пересевах через каждые 2 мес. на плотной среде СР-6 в течение 1 года селекционированный штамм сохранял основные морфологические и физиологические признаки, в частности устойчивость к канамицину, чувствительность к L-серину, а также уровень антибиотикообразования. With successive transfers every 2 months. on solid CP-6 medium, for 1 year, the selected strain retained the main morphological and physiological characteristics, in particular, resistance to kanamycin, sensitivity to L-serine, and the level of antibiotic formation.

По основным признакам штамм Streptomyces rimosus M-1 не отличается от типичных представителей этого вида и имеет следующие характеристики. According to the main characteristics, the strain of Streptomyces rimosus M-1 does not differ from typical representatives of this species and has the following characteristics.

Морфологические признаки
Спороносцы прямые, иногда изогнутые на конце, моноподиально ветвящиеся; споры овальные.
Morphological features
Spore-carriers are straight, sometimes bent at the end, monopodially branching; spores are oval.

При росте на агаризованных средах при температуре 28-29oC в течение 12 сут имеет следующие морфологические признаки.With growth on agarized media at a temperature of 28-29 o C for 12 days has the following morphological characteristics.

Среда с кукурузным экстрактом СР-6. Колонии округлые, плоские, радиально складчатые, диаметром 6-8 мм. Воздушный мицелий развит хорошо, в центре колонии темно-серого цвета, а по краям светло- серого. Субстратный мицелий коричневого цвета. Medium with corn extract CP-6. The colonies are rounded, flat, radially folded, with a diameter of 6-8 mm. Aerial mycelium is well developed, in the center of the colony is dark gray, and along the edges of light gray. Brown substrate mycelium.

Гороховая среда. Колонии округлые, слегка выпуклые, радиально складчатые с небольшим кратером, диаметром 6-7 мм. Воздушный мицелий темно-коричневый. Центр колонии спорулирующий, край (ободок) неспорулирующий. Pea environment. The colonies are rounded, slightly convex, radially folded with a small crater, with a diameter of 6-7 mm. Aerial mycelium is dark brown. The center of the colony is sporulating, the edge (rim) is non-sporulating.

Овсяная среда. Колонии округлые, слегка приподнятые, с кратером диаметром 6-7 мм. Воздушный мицелий в центре колонии серого цвета, неспорулирующий по краям. Субстратный мицелий темно-коричневый со светло-коричневым ободком. Oatmeal environment. The colonies are rounded, slightly raised, with a crater with a diameter of 6-7 mm. Aerial mycelium in the center of the colony is gray, non-sporulating at the edges. The substrate mycelium is dark brown with a light brown rim.

Среда Ваксмана. Колонии округлые, плоские, в центре небольшая выпуклость диаметром 2-3 мм. Воздушный мицелий отсутствует. Субстратный мицелий желтого цвета. Waxman’s environment. The colonies are rounded, flat, in the center a small bulge with a diameter of 2-3 mm. Aerial mycelium is absent. The substrate mycelium is yellow.

Среда Чапека. Колонии пленчатые, диаметром 4-5 мм. Воздушный мицелий темно-коричневый со светлым ободком. Субстратный мицелий светло-коричневый. Wednesday Chapek. The colonies are membranous, with a diameter of 4-5 mm. Aerial mycelium is dark brown with a light rim. The substrate mycelium is light brown.

Среда Гаузе-1 (с глюкозой). Колонии пленчатые, в центре коричневого цвета, по краям бесцветные, диаметром 2-3 мм. Воздушный мицелий отсутствует. Субстратный мицелий светло-коричневый с желтым ободком. Gauze-1 medium (with glucose). The colonies are membranous, in the center brown, colorless at the edges, with a diameter of 2-3 mm. Aerial mycelium is absent. The substrate mycelium is light brown with a yellow rim.

Среда Гаузе-2 (с крахмалом). Колонии округлые, плоские, с точечным кратером, диаметром 2-3 мм. Воздушный мицелий развит слабо. Субстратный мицелий темно-коричневого цвета. Wednesday Gause-2 (with starch). The colonies are rounded, flat, with a point crater, with a diameter of 2-3 mm. Aerial mycelium is poorly developed. The substrate mycelium is dark brown.

Среда Гаузе-2. Колонии округлые, слегка выпуклые, радиально- складчатые, с кратером диаметром 6-7 мм. Воздушный мицелий темно- серого цвета со светло-серым ободком. Субстратный мицелий темно- коричневый. Wednesday Gauze-2. The colonies are rounded, slightly convex, radially folded, with a crater with a diameter of 6-7 mm. Aerial mycelium is dark gray with a light gray rim. The substrate mycelium is dark brown.

Физиолого-биохимические свойства
Сбраживает глюкозу, мальтозу, фруктозу, маннит, сорбит, инозит, арабинозу, слабо - ксилозу, не сбраживает сахарозу, лактозу, дульцит.
Physiological and biochemical properties
It ferments glucose, maltose, fructose, mannitol, sorbitol, inositol, arabinose, weakly xylose, does not ferment sucrose, lactose, dulcite.

Реакция на инверсию сахарозы отрицательная. The reaction to sucrose inversion is negative.

Крахмал гидролизует интенсивно. Starch hydrolyzes intensively.

Желатину разжижает на 4 сут. Thin gelatin for 4 days.

Молоко пептонизирует на 6 сут. Milk peptones for 6 days.

Нитраты не восстанавливает. Nitrate does not recover.

Накопление окситетрациклина при культивировании в обычных условиях составляет 18,0 - 19,0 г/л. The accumulation of oxytetracycline during cultivation under ordinary conditions is 18.0 - 19.0 g / l.

Штамм депонирован во Всероссийской коллекции промышленных микроорганизмов под регистрационным номером ВКПМ S-1512. The strain is deposited in the All-Russian collection of industrial microorganisms under registration number VKPM S-1512.

Пример 1. Исходный штамм Streptomyces rimosus ВНИИА 1525, высевают на плотную стандартную агаризованную среду, содержащую (г/л): крахмал (30,0), кукурузный экстракт (10,0), сульфат аммония (4,0), мел (5,0), хлористый натрий (5,0), воду водопроводную (до 1 л) и 30 мг/л канамицина, после чего отбирают спонтанные мутанты, устойчивые к канамицину. Example 1. The original strain of Streptomyces rimosus VNIIA 1525, seeded on a dense standard agar medium containing (g / l): starch (30.0), corn extract (10.0), ammonium sulfate (4.0), chalk (5 , 0), sodium chloride (5.0), tap water (up to 1 l) and 30 mg / l kanamycin, after which spontaneous mutants resistant to kanamycin are selected.

Из выделенных 97 устойчивых к канамицину мутантов в свою очередь отбирают варианты, у которых биосинтез окситетрациклина в жидкой среде следующего состава (г/л): глюкоза (40,0), сульфат аммония (4,0), гидролизат казеина (1,0), дрожжевой экстракт (0,5), двузамещенный фосфат калия (0,5), сульфат магния (0,5), карбонат кальция (3,0), дистиллированная вода (остальное), дополненной L-серином в концентрации 50 мг/л, в наибольшей степени подавляется L-серином. Эффект ингибирования биосинтеза окситетрациклина констатируют на 3 сут. культивирования каждого штамма на среде, содержащей и не содержащей L-серин. Of the selected 97 kanamycin-resistant mutants, in turn, variants are selected in which the biosynthesis of oxytetracycline in a liquid medium of the following composition (g / l): glucose (40.0), ammonium sulfate (4.0), casein hydrolyzate (1.0) , yeast extract (0.5), disubstituted potassium phosphate (0.5), magnesium sulfate (0.5), calcium carbonate (3.0), distilled water (rest) supplemented with L-serine at a concentration of 50 mg / l , is most suppressed by L-serine. The effect of inhibiting the biosynthesis of oxytetracycline was observed for 3 days. culturing each strain on medium containing and not containing L-serine.

Было отобрано 3 варианта, степень ингибирования биосинтеза окситетрациклина у которых L-серином составляла 50-60%. Three options were selected, the degree of inhibition of the biosynthesis of oxytetracycline in which L-serine was 50-60%.

У отобранных вариантов была проверена способность к биосинтезу окситетрациклина в оптимальных условиях на ферментационной среде следующего состава (г/л): кукурузная мука (120,0), кукурузный экстракт (14,0 по сухому весу), сульфат аммония (14,0), мел (14,0), хлористый кобальт (0,0003), масло соевое (20,0), водопроводная вода (до 1 л). The selected options were tested for the ability to biosynthesize oxytetracycline under optimal conditions on a fermentation medium of the following composition (g / l): corn flour (120.0), corn extract (14.0 by dry weight), ammonium sulfate (14.0), chalk (14.0), cobalt chloride (0.0003), soybean oil (20.0), tap water (up to 1 l).

Продуцирующая активность селекционированных вариантов культуры Streptomyces rimosus см. в табл.2. The producing activity of the selected culture variants of Streptomyces rimosus, see table 2.

Примечание к табл. 2. Степень ингибирования биосинтеза определяли в синтетической среде, а продуктивность - в комплексной. Note to table 2. The degree of inhibition of biosynthesis was determined in a synthetic medium, and productivity in a complex.

Таким образом, были выделены 3 штамма Streptomyces rimosus, в том числе M-1, биосинтетическая активность которых заметно превышала таковую у исходного штамма. Thus, 3 strains of Streptomyces rimosus were isolated, including M-1, the biosynthetic activity of which was significantly higher than that of the original strain.

При этом в результате предварительного отбора по признаку чувствительности к ингибированию биосинтеза окситетрациклина L-серином общий объем и длительность исследования значительно сократились: принятый способ выявления высокоактивных продуцентов окситетрациклина потребовал бы культивирования не 3, а 97 устойчивых к канамицину штаммов в течение 9 сут. Moreover, as a result of preliminary selection on the basis of sensitivity to the inhibition of oxytetracycline biosynthesis by L-serine, the total volume and duration of the study were significantly reduced: the accepted method for identifying highly active producers of oxytetracycline would require culturing not 3, but 97 strains resistant to kanamycin for 9 days.

Пример 2. Суспензией культуры штамма Streptomyces rimosus M-1, выросшей на агаризованной среде СР-6, засевают посевную среду следующего состава (г/л): крахмал (30,0), кукурузный экстракт (10,0), сульфат аммония (4, 0), мел (5, 0), хлористый натрий (5, 0), вода водопроводная (до 1 л). Значение pH среды составляет 7,1. Инокулят выращивают при температуре 28-29oC в колбах емкостью 750 мл, заполненных 50 мл среды, на круговой качалке в течение 48 ч.Example 2. A suspension of culture of a strain of Streptomyces rimosus M-1, grown on agar medium CP-6, seeded inoculum medium of the following composition (g / l): starch (30.0), corn extract (10.0), ammonium sulfate (4 , 0), chalk (5, 0), sodium chloride (5, 0), tap water (up to 1 l). The pH of the medium is 7.1. The inoculum is grown at a temperature of 28-29 o C in flasks with a capacity of 750 ml, filled with 50 ml of medium, on a circular shaker for 48 hours

Инокулятом в количестве 5 об.% засевают ферментационную среду следующего состава (г/л): кукурузная мука (120,0), кукурузный экстракт (14,0 по сухому весу), сульфат аммония (14,0), мел (14,0), хлористый кобальт (0,0003), масло соевое (20,0), вода водопроводная (до 1 л). Значение pH среды составляет 7,1. Ферментацию проводят при температуре 28-29oC в колбах емкостью 750 мл, заполненных 50 мл среды, на круговой качалке (230-240 об/мин) в течение 9 сут.An inoculum in an amount of 5 vol.% Is seeded with a fermentation medium of the following composition (g / l): corn flour (120.0), corn extract (14.0 by dry weight), ammonium sulfate (14.0), chalk (14.0 ), cobalt chloride (0.0003), soybean oil (20.0), tap water (up to 1 liter). The pH of the medium is 7.1. Fermentation is carried out at a temperature of 28-29 o C in flasks with a capacity of 750 ml, filled with 50 ml of medium, on a circular shaker (230-240 rpm) for 9 days.

Через 3 сут. ферментации в среду вносят соевое масло из расчета 2% от объема культуральной жидкости. After 3 days. soybean oil is added to the fermentation medium at the rate of 2% of the volume of the culture fluid.

Содержание окситетрациклина в культуральной жидкости составляет 18,9 г/л. The oxytetracycline content in the culture fluid is 18.9 g / l.

Таким образом, приведенные примеры подтверждают практическую осуществимость изобретения и его преимущества перед известными техническими решениями. Thus, the above examples confirm the practical feasibility of the invention and its advantages over the known technical solutions.

В патентной и доступной научно-технической литературе не обнаружено сведений о том, что известна связь между уровнем биосинтеза окситетрациклина у штаммов Streptomyces rimosus и их чувствительностью к ингибирующему антибиотикообразование действию L-серина. Не обнаружено также и описание в доступных источниках информации штамма-продуцента окситетрациклина, идентичного предложенному. In the patent and available scientific and technical literature, no information was found that a connection is known between the level of oxytetracycline biosynthesis in Streptomyces rimosus strains and their sensitivity to the antibiotic-inhibiting effect of L-serine. No description was also found in accessible sources of information of the producer strain of oxytetracycline identical to the one proposed.

Следовательно предложение соответствует всем требованиям, предъявляемым к изобретению. Therefore, the proposal meets all the requirements for the invention.

Источники информации
1. Патент ГДР N 205.930, M. кл. C 12 P 15/20, 1982.
Sources of information
1. Patent GDR N 205.930, M. cl. C 12 P 15/20, 1982.

2. Parada l. L. Grown Inhibition of Streptomyces species by L-serine and Its effect on tetracycline biosynthesis.- "Appl. Environ. MIcrobiol", 1982, Vol. 41, N 3, р. 366-370,
3. Алиханян C. И. Селекция промышленных микроорганизмов".- М.: Наука, 1968.
2. Parada l. L. Grown Inhibition of Streptomyces species by L-serine and Its effect on tetracycline biosynthesis .- "Appl. Environ. MIcrobiol", 1982, Vol. 41, N 3, p. 366-370,
3. Alikhanyan C. I. Selection of industrial microorganisms ".- M .: Nauka, 1968.

4. Waksman S.A., Harris D.A. Streptomycin-producing capability of different strains of Str.griseus.- "Proc. Soc. Exp.Biol. a. Med.", 1949, Vol. 71, р. 232. 4. Waksman S.A., Harris D.A. Streptomycin-producing capability of different strains of Str.griseus.- "Proc. Soc. Exp. Biol. A. Med.", 1949, Vol. 71, p. 232.

5. Жданова Н. И., Алиханян С. И. Действие стабилизирующего отбора в селекции продуцента олеандомицина. - "Известия АН СССР, серия биологическая", 1965, N 1, с. 138,
6. Gravius B. et al. Genetic instability and strain degeneration in Str. rimosus. - "Appl. Environ. Microbiol. ", 1993, vol.59, N 7, p.2220-2228. (прототип).
5. Zhdanova N. I., Alikhanyan S. I. The effect of stabilizing selection in the selection of the producer of oleandomycin. - "Proceedings of the USSR Academy of Sciences, biological series", 1965, N 1, p. 138,
6. Gravius B. et al. Genetic instability and strain degeneration in Str. rimosus. - "Appl. Environ. Microbiol.", 1993, vol. 59, No. 7, p. 2220-2228. (prototype).

Claims (2)

1. Способ отбора высокопродуктивного штамма - продуцента окситетрациклина, отличающийся тем, что культивируют штамм - продуцент вида Streptomyces rimosus на плотной питательной среде с канамицином, отбирают канамицинустойчивые мутанты и после их культивирования на жидкой питательной среде с L-серином отбирают варианты, биосинтез окситетрациклина у которых подавляется L-серином. 1. A method for selecting a highly productive strain - producer of oxytetracycline, characterized in that the producer strain of the species Streptomyces rimosus is cultured on a solid nutrient medium with kanamycin, kanamycin-resistant mutants are selected and, after their cultivation on a liquid nutrient medium with L-serine, variants are selected whose biosynthesis of oxytetracycline suppressed by L-serine. 2. Штамм Streptomyces rimosus ВКПМ S-1512 - продуцент окситетрациклина. 2. The strain Streptomyces rimosus VKPM S-1512 - producer of oxytetracycline.
RU95120904A 1995-12-05 1995-12-05 Method of selection of high-producing strain - a producer of oxytetracycline and the strain streptomyces rimosus - a producer of oxytetracycline RU2110576C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU95120904A RU2110576C1 (en) 1995-12-05 1995-12-05 Method of selection of high-producing strain - a producer of oxytetracycline and the strain streptomyces rimosus - a producer of oxytetracycline

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU95120904A RU2110576C1 (en) 1995-12-05 1995-12-05 Method of selection of high-producing strain - a producer of oxytetracycline and the strain streptomyces rimosus - a producer of oxytetracycline

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU95120904A RU95120904A (en) 1998-03-10
RU2110576C1 true RU2110576C1 (en) 1998-05-10

Family

ID=20174602

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU95120904A RU2110576C1 (en) 1995-12-05 1995-12-05 Method of selection of high-producing strain - a producer of oxytetracycline and the strain streptomyces rimosus - a producer of oxytetracycline

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2110576C1 (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Appl. Environ.Microbid., 1993, v.59, N 7, p. 2220 - 2228. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Balagurunathan et al. L-Glutaminase producing actinomycetes from marine sediments–selective isolation, semi quantitative assay and characterization of potential strain
Morishita et al. Genetic basis of nutritional requirements in Lactobacillus casei
EP1320595B1 (en) Production process of surfactin
WO2007136824A1 (en) High-yield bacitracin-producing microorganism
JPS60244295A (en) Production of (+)- trans-cyclopropane carboxylic acid
KR0150465B1 (en) Process for producing amino acids
RU2110576C1 (en) Method of selection of high-producing strain - a producer of oxytetracycline and the strain streptomyces rimosus - a producer of oxytetracycline
US4681850A (en) Phenylalanine ammonia lyase-producing microbial cells
JPH04228065A (en) Preparation of l-(-)-carnitine from crotonbetain
EP0054311B1 (en) Process for producing l-glutamic acid
EP0482908A2 (en) Process for producing streptovaricin
KR880002417B1 (en) Method of producing guandsine
Rajnisz et al. Characterization and Optimization of Biosynthesis of Bioactive Secondary Metabolites Produced by sp. 8812
CN116004750B (en) Method for producing angustin by using erwinia persicae
CN113913343B (en) Burkholderia thailand, application and fermentation method thereof
RU2696029C1 (en) STRAIN OF STREPTOMYCES IAKYRUS Re6 VKPM Ac-2084 - PRODUCER OF ANTIBIOTIC NIBOMYCIN
US4757015A (en) Phenylalanine ammonia lyase-producing strains
SU644833A1 (en) 85 escherichia coli strain as producer of l-aspartic acid
Haneda et al. Stabilization of adenosine-producing mutants derived from Bacillus sp. No. 1043
KR0146493B1 (en) Process for producing l-alanine by fermentation
RU2281332C2 (en) Saccharopolyspora erythraea C-77 STRAIN AS PRODUCER OF ANTIBIOTIC ERYTHROMYCIN
KR100671081B1 (en) Microorganism producing inosine and process of preparing 5'-inosinic acid using same
Kawahara et al. Effect of glycine betaine on the sucrose catabolism of an L-lysine producing mutant of Brevibacterium lactofermentum
GB2056985A (en) Antibiotic em4940
SU1406156A1 (en) Strain of aerococcus viridans bacteria for producing clones with oxidase and reductase activity

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20091206