RU2102763C1 - Set for detection of tuberculosis mycobacteria by fluorescence method - Google Patents

Set for detection of tuberculosis mycobacteria by fluorescence method Download PDF

Info

Publication number
RU2102763C1
RU2102763C1 RU93011591A RU93011591A RU2102763C1 RU 2102763 C1 RU2102763 C1 RU 2102763C1 RU 93011591 A RU93011591 A RU 93011591A RU 93011591 A RU93011591 A RU 93011591A RU 2102763 C1 RU2102763 C1 RU 2102763C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
rhodamine
laser
auramine
diethylaminophenoxazonium
diethylaminobenzo
Prior art date
Application number
RU93011591A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU93011591A (en
Inventor
В.И. Алексеева
В.А. Аникин
О.Л. Калия
Н.В. Казанкова
Н.А. Кузнецова
Е.А. Лукьянец
Л.Е. Маринина
М.М. Малошенко
Л.П. Саввина
Т.Б. Селезнева
Л.К. Сливка
Н.М. Улитина
Original Assignee
Товарищество с ограниченной ответственностью Научно-производственная фирма "БЭТА"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Товарищество с ограниченной ответственностью Научно-производственная фирма "БЭТА" filed Critical Товарищество с ограниченной ответственностью Научно-производственная фирма "БЭТА"
Priority to RU93011591A priority Critical patent/RU2102763C1/en
Publication of RU93011591A publication Critical patent/RU93011591A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2102763C1 publication Critical patent/RU2102763C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)

Abstract

FIELD: microbiology, medicine. SUBSTANCE: set consists of staining mixture including auramine of laser purity and rhodamine C or rhodamine 4C of laser purity taken at mass ratio = (12:1)-(25:1), respectively, and background suppressing agent which includes phenoxazine dye - 3,6-diethylaminophenoxazonium perchlorate or 3,6-diethylaminophenoxazonium zinc salt, or 5-amino-9-diethylaminobenzo[a] phenoxazonium acetate, or 5-amino-9-diethylaminobenzo[a]phenoxazonium isobutyrate of laser purity. Diagnostical set ensures to detect small and ultrasmall mycobacterium forms, cell division of both typical and morphologically alternated mycobacteria. EFFECT: enhanced effectiveness of set. 1 tbl

Description

Изобретение относится к микробиологии. Может быть использовано в научных исследованиях, а также в практике здравоохранения, ветеринарии для выявления микобактерий туберкулеза. The invention relates to microbiology. It can be used in scientific research, as well as in the practice of healthcare, veterinary medicine to detect mycobacterium tuberculosis.

Известны флуоресцентные красители для диагностики кислотоустойчивых микобактерий и включающие следующие флуорохромы и гасители фона: Аурамин О - перманганат калия [1] Аурамин О акридиновый оранжевый [2] Аурамин О - Родамин В перманганат калия [3]
Прототип: наиболее близок к предлагаемому комплекс реагентов для окраски микобактерий по ВОУ [4] водный раствор красящей смеси, включающей аурамин О
родамин С и водный раствор гасителя фона метиленового синего.
Known fluorescent dyes for the diagnosis of acid-resistant mycobacteria and including the following fluorochromes and background dampers: Auramine O - potassium permanganate [1] Auramine O acridine orange [2] Auramine O - Rhodamine B potassium permanganate [3]
Prototype: the closest to the proposed complex of reagents for staining mycobacteria according to HEU [4] an aqueous solution of a coloring mixture, including auramine O
rhodamine C and an aqueous solution of a methylene blue background quencher.

Вышеназванные в качестве аналогов и прототипа комплексы флуорохромов пригодны для выявления типичных микобактерий, однако они имеют следующие недостатки. Аналоги [1, 2, 3] характеризуются недостаточной избирательностью. В связи с тем, что в условиях интенсивной химиотерапии и других воздействий микобактерии претерпевают существенные морфологические и метаболические изменения, многие палочковидные микробные клетки не адсорбируют в достаточной мере флуорохромы или обесцвечиваются при дифференциации смесью спирта и соляной кислоты. Кроме того, зернистые формы, отдельные L-варианты микобактерий не адсорбируют традиционно применяемые флуорохромы в той степени, которая обеспечивает их микроскопическое и микрофотографическое выявление. The complexes of fluorochromes mentioned above as analogues and prototype are suitable for detecting typical mycobacteria, however, they have the following disadvantages. Analogs [1, 2, 3] are characterized by insufficient selectivity. Due to the fact that under conditions of intensive chemotherapy and other influences, mycobacteria undergo significant morphological and metabolic changes, many rod-shaped microbial cells do not adsorb fluorochromes sufficiently or become discolored upon differentiation with a mixture of alcohol and hydrochloric acid. In addition, granular forms, individual L-variants of mycobacteria do not adsorb traditionally used fluorochromes to the extent that they provide microscopic and microphotographic detection.

К недостаткам прототипа относятся: невозможность выявления ультрамелких (<0,2 мкм) форм микобактерий клетки. Помимо этого используемый в прототипе в качестве гасителя фона метиленовый голубой (КДМ) снижает специфическое свечение, не обеспечивает контрастного изображения нетуберкулезных микроорганизмов грибковой флоры клеток бронхиального эпителия. The disadvantages of the prototype include: the inability to detect ultrafine (<0.2 μm) forms of mycobacteria cells. In addition, methylene blue (KDM) used in the prototype as a background quencher reduces the specific glow, does not provide a contrast image of non-tuberculous microorganisms of the fungal flora of bronchial epithelial cells.

Цель изобретения создание набора красителей, позволяющих повысить избирательность, специфическое свечение, обеспечить надежную выявляемость морфологически измененных форм (зернистых, ультрамелких, L-форм), а также обнаруживать мелкоструктурные элементы возбудителя на ранних стадиях нормального деления микобактериальной клетки. The purpose of the invention is the creation of a set of dyes that can increase selectivity, specific luminescence, ensure reliable detection of morphologically altered forms (granular, ultrafine, L-forms), as well as detect fine-grained pathogen elements in the early stages of normal division of mycobacterial cells.

Поставленная цель достигается тем, что используют набор красителей, содержащий в качестве красящей смеси аурамин и родамин С лазерной чистоты или аурамин и родамин 4С лазерной чистоты, а в качестве гасителя фона используют следующие феноксазиновые красители: перхлорат 3,6-диэтиламинофеноксазония (оксазин-1 перхлорат, OH-120) или цинковую соль 3,6-диэтиламинофеноксазония (оксазин-1 цинковая соль, OH-121) или ацетат 5-амино-9-диэтиламинобензо/а/феноксазония (нильский синий ацетат, OH-111) или изобутират 5-амино-9-диэтиламинобензо/а/феноксазония (нильский синий изобутират, OH-112) лазерной чистоты в виде водных растворов при следующих соотношениях компонентов, г/л:
Аурамин 0,5 5,0
Родамин С или 4С 0,02 0,4
Дистиллированная вода Остальное до 1 л
Гаситель фона: оксазин-1 перхлорат или оксазин-1 цинковая соль, или нильский синий ацетат, или нильский синий изобутират 0,01 0,6
Дистиллированная вода Остальное до 1 л
К предлагаемым красителям наряду с обычными требованиями химической чистоты предъявляли требования "лазерной чистоты", принятые для люминесцирующих генерирующих красителей [5] При этом в красителях контролировали содержание примесей, поглощающих в области люминесценции, путем измерения коэффициента молярной экстинкции на фиксированной для каждого красителя длине волны (εк) аналогично описанному в [5]
Аурамин (МА-1) получали сплавлением 80 г хлористого цинка, 80 г хлористого аммония, 80 г кетона Михлера при 200oC и постоянном перемешивании в течение 24 ч. Плав охлаждали, растирали, перемешивали с 800 мл воды, фильтровали. Краситель, выпавший из фильтрата после высаливания его хлоридом натрия, фильтровали, сушили. Аурамин лазерной чистоты имеет в этаноле спектральные характеристики: λ gjuk& макс. 431±3 нм; ε431 (0,30±0,03)•105 л/моль•см; ε500 не более 50 л/моль•см.
This goal is achieved by using a set of dyes containing laser-grade auramine and rhodamine C as a coloring mixture or laser-grade auramine and rhodamine 4C, and the following phenoxazine dyes are used as a background quencher: 3,6-diethylaminophenoxazonium perchlorate (oxazine-1 perchlorate , OH-120) or the zinc salt of 3,6-diethylaminophenoxazonium (oxazin-1 zinc salt, OH-121) or 5-amino-9-diethylaminobenzo / a acetate / phenoxazonium (Nile blue acetate, OH-111) or 5- isobutyrate amino-9-diethylaminobenzo / a / phenoxazonium (Nile blue isobutyrate, OH-112) of laser purity in the form of aqueous solutions at the following component ratios, g / l:
Auramine 0.5 5.0
Rhodamine C or 4C 0.02 0.4
Distilled water The rest is up to 1 liter
Background quencher: oxazine-1 perchlorate or oxazine-1 zinc salt, or Nile blue acetate, or Nile blue isobutyrate 0.01 0.6
Distilled water The rest is up to 1 liter
Along with the usual requirements for chemical purity, the proposed dyes were presented with the “laser purity” requirements adopted for luminescent generating dyes [5]. The dyes were used to control the content of impurities absorbing in the luminescence region by measuring the molar extinction coefficient at a wavelength fixed for each dye ( ε j) similar to that described in [5]
Auramine (MA-1) was obtained by fusion of 80 g of zinc chloride, 80 g of ammonium chloride, 80 g of Michler ketone at 200 ° C and constant stirring for 24 hours. The melt was cooled, triturated, stirred with 800 ml of water, filtered. The dye precipitated from the filtrate after salting out with sodium chloride was filtered and dried. Auramin of laser purity has spectral characteristics in ethanol: λ gjuk & Max. 431 ± 3 nm; ε 431 (0.30 ± 0.03) • 10 5 l / mol • cm; ε 500 no more than 50 l / mol • cm.

Родамин С (PH-55) и родамин 4С (PH-56) получали из соответствующих технических красителей путем очистки переосаждением из водно-спиртового раствора соляной кислотой. Родамин С и родамин 4С лазерной чистоты имеют в этаноле: λ gjuk& макс. 554±3 нм; ε554 (1,10±0,15)•105 л/моль•см; ε630 не более 40 л/моль•см.Rhodamine C (PH-55) and rhodamine 4C (PH-56) were obtained from the corresponding technical dyes by purification by reprecipitation from a water-alcohol solution with hydrochloric acid. Rhodamine C and rhodamine 4C of laser purity have in ethanol: λ gjuk & Max. 554 ± 3 nm; ε 554 (1.10 ± 0.15) • 10 5 l / mol • cm; ε 630 no more than 40 l / mol • cm.

5-Амино-9-диэтиламинобензо/а/феноксазоний ацетат (нильский синий ацетат, OH-111) получали из 0,5 г основания нильского синего в 50 мл толуола с добавлением 0,1 г уксусной кислоты. Раствор охлаждали, выпавший краситель отфильтровывали, промывали петролейным эфиром, сушили. 5-Амино-9-диэтиламинобензо/а/феноксазоний изобутират (нильский синий изобутират, OH-112) получали аналогично из 0,2 г основания нильского синего и 0,05 г изомасляной кислоты. Нильский синий ацетат и нильский синий изобутират лазерной чистоты имеют в этаноле: λ погл. макс. 628±4 нм; ε628 (0,651±0,03)•105 л/моль•см; ε730 не более 65 л/моль•см.5-amino-9-diethylaminobenzo / a / phenoxazonium acetate (Nile blue acetate, OH-111) was prepared from 0.5 g of Nile blue base in 50 ml of toluene with the addition of 0.1 g of acetic acid. The solution was cooled, the precipitated dye was filtered off, washed with petroleum ether, and dried. 5-amino-9-diethylaminobenzo / a / phenoxazonium isobutyrate (Nile blue isobutyrate, OH-112) was prepared similarly from 0.2 g of Nile blue base and 0.05 g of isobutyric acid. Nile blue acetate and Nile blue isobutyrate of laser purity have in ethanol: λ sweep Max. 628 ± 4 nm; ε 628 (0.651 ± 0.03) • 10 5 l / mol • cm; ε 730 no more than 65 l / mol • cm.

Перхлорат 3,6-диэтиламинофеноксазония (оксазин-1 перхлорат, OH-120) и цинковую соль 3,6-диэтиламинофеноксазония (оксазин-1 цинковая соль, OH-121) получали из 5,4 г м-диэтиламиноанизола, 6,3 мл конц. соляной кислоты и 6,3 мл спирта. К этой смеси при перемешивании и охлаждении льдом с солью до 0 - 3oC прибавляли раствор 3,2 г нитрата натрия в 6,3 мл воды, перемешивали 1 ч и прибавляли порциями к кипящему раствору 4,3 г м-диэтиламинофенола в 8,6 мл спирта, перемешивали 15 мин, добавляли 8 мл хлорной кислоты (для OH-120) или 8 г хлористого цинка (для OH-121), выпавший краситель отфильтровывали, а затем очищали перекристаллизацией из этанола. Оксазин-1 перхлорат и оксазин-1 цинковая соль лазерной чистоты имеют в этаноле: λ погл. макс. 645±4 нм; ε645 (1,20±0,15)•105 л/моль•см; ε750 не более 300 л/моль•см.3,6-Diethylaminophenoxazonium perchlorate (oxazin-1 perchlorate, OH-120) and the 3,6-diethylaminophenoxazonium perchlorate (oxazin-1 zinc salt, OH-121) were obtained from 5.4 g of m-diethylaminoanisole, 6.3 ml of conc . hydrochloric acid and 6.3 ml of alcohol. To this mixture, with stirring and cooling with ice and salt to 0-3 ° C, a solution of 3.2 g of sodium nitrate in 6.3 ml of water was added, stirred for 1 h and 4.3 g of m-diethylaminophenol in 8 were added portionwise to a boiling solution. 6 ml of alcohol, stirred for 15 minutes, 8 ml of perchloric acid (for OH-120) or 8 g of zinc chloride (for OH-121) were added, the precipitated dye was filtered off and then purified by recrystallization from ethanol. Oxazin-1 perchlorate and oxazin-1 zinc salt of laser purity have in ethanol: λ sweep Max. 645 ± 4 nm; ε 645 (1.20 ± 0.15) • 10 5 l / mol • cm; ε 750 no more than 300 l / mol • cm.

Сущность изобретения поясняется примерами и таблицей. The invention is illustrated by examples and table.

Пример 1. Example 1

Готовят 2 водных раствора красителей. Первый раствор представляет собой водный раствор красящей смеси из аурамина и родамина С, содержащий 5 г/л первого их них и 0,4 г/л второго красителя. Второй раствор содержит 0,6 г оксазина-1 цинковой соли (OH-121) в 1 л воды (таблица, пример 1). Prepare 2 aqueous solutions of dyes. The first solution is an aqueous solution of a coloring mixture of auramine and rhodamine C, containing 5 g / l of the first of them and 0.4 g / l of the second dye. The second solution contains 0.6 g of oxazine-1 zinc salt (OH-121) in 1 liter of water (table, example 1).

Фиксированные в сухожаровом шкафу мазки (75oC, 2 ч) заливают раствором красящей смеси аурамин-родамин на 30 мин. Затем промывают дистиллированной водой, обесцвечивают 3%-ным солянокислым спиртом в течение 3 5 мин, докрашивают раствором гасителя фона оксазина в течение 10 15 с. Мазки высушивают, микроскопируют в ультрафиолетовом свете в микроскопе с объективом 40x, окуляры 4x или 5x. Микобактерии туберкулеза и их зернистые и ультрамелкие варианты окрашиваются в оранжево-рубиновый цвет, шарообразные варианты L-формы окрашиваются в апельсиново-желтый цвет.Smears (75 o C, 2 h), fixed in a dry oven, are poured with a solution of the coloring mixture auramine-rhodamine for 30 minutes. Then it is washed with distilled water, decolorized with 3% hydrochloric acid alcohol for 3-5 minutes, and stained with a solution of a background quencher of oxazine for 10-15 seconds. The smears are dried, microscopted under ultraviolet light under a 40 x objective microscope, 4 x or 5 x eyepieces. Mycobacterium tuberculosis and their granular and ultrafine variants are stained in orange-ruby color, spherical L-shaped variants are stained in orange-yellow color.

При обработке диагностического материала щелочами и щелочными детергентами для выравнивания pH к 1 мл посевного осадка добавляют 0,1 мл 5%-ного раствора соляной кислоты. При обработке диагностического материала 1%-ным раствором соляной кислоты для выравнивания pH к 1 мл посевного осадка добавляется 0,1 мл 40%-ного раствора KOH. When processing the diagnostic material with alkalis and alkaline detergents, 0.1 ml of a 5% hydrochloric acid solution is added to 1 ml of inoculum to equalize the pH. When processing the diagnostic material with a 1% hydrochloric acid solution, 0.1 ml of a 40% KOH solution is added to 1 ml of inoculum to equalize the pH.

Примеры 2 19. Водные растворы готовили аналогичным образом и испытывали по аналогичной примеру 1 методике. Состав компонентов, их соотношение и результаты испытаний представлены в таблице. Examples 2 19. Aqueous solutions were prepared in a similar manner and tested according to a similar procedure to Example 1. The composition of the components, their ratio and test results are presented in the table.

Как видно из таблицы, использование водных растворов красящей смеси, состоящей из аурамина и родамина С или аурамина и родамина 4С лазерной чистоты, а в качестве гасителя фона использование водных растворов цинковой соли оксазина-1 или перхлората оксазина-1, или ацетата нильского синего, или изобутирата нильского синего лазерной чистоты в представленных соотношениях (примеры 1 18) позволяют обнаружить по сравнению с прототипом (пример 19) мелкие и ультрамелкие формы микобактерий туберкулеза, а также обнаружить деление микробной клетки. As can be seen from the table, the use of aqueous solutions of a coloring mixture consisting of auramine and rhodamine C or auramine and rhodamine 4C of laser purity, and as a quencher, the use of aqueous solutions of zinc salt of oxazine-1 or oxazine-1 perchlorate, or Nile blue acetate, or isobutyrate of Nile blue laser purity in the presented ratios (examples 1–18) make it possible to detect small and ultrafine forms of tuberculosis mycobacteria, as well as to detect microbial cell division, in comparison with the prototype (example 19).

Таким образом, предлагаемый набор красителей для диагностики туберкулеза позволяет выявлять мелкие и ультрамелкие (<0,2 мкм ) формы микобактерий, обнаруживать деление микробной клетки, существенно расширить возможности флуоресцентного метода выявления не только типичных, но и морфологически измененных микобактерий, создать оптимальные возможности для микроскопирования и микрофотографирования возбудителя туберкулеза. Thus, the proposed set of dyes for the diagnosis of tuberculosis makes it possible to detect small and ultrafine (<0.2 μm) forms of mycobacteria, detect microbial cell division, significantly expand the capabilities of the fluorescent method for detecting not only typical but also morphologically altered mycobacteria, and create optimal microscopic possibilities and microphotographs of the causative agent of tuberculosis.

Источники информации
1. Blaiz E. B. Weiser O.L. Tull A.H. Mycrobacteriology Laboratory Methods. Lab. Report. US Army Medical Research and Nutrion Laboratory. Denver. 1969. 235 P.
Sources of information
1. Blaiz EB Weiser OL Tull AH Mycrobacteriology Laboratory Methods. Lab. Report. US Army Medical Research and Nutrion Laboratory. Denver 1969. 235 P.

2. Smithwick R.W. David H.L. Acridin orange as a fluorescent counterstein with the auramine acid-fast stein. Tubercle. 1971. N 52. P. 226 - 231. 2. Smithwick R.W. David H.L. Acridin orange as a fluorescent counterstein with the auramine acid-fast stein. Tubercle. 1971. N 52. P. 226 - 231.

3. Traunt I.P. Brett W.A. Thomas W. Fluorescence microscopy of rtubercle bacilli steined with auramine and rhodamine. Henry Ford Hosp. Med. Bull. 1962. N 10. P. 3287 296. 3. Traunt I.P. Brett W.A. Thomas W. Fluorescence microscopy of rtubercle bacilli steined with auramine and rhodamine. Henry Ford Hosp. Med. Bull. 1962. N 10. P. 3287 296.

4. Современные методы лабораторной диагностики туберкулеза. Методические рекомендации. М. 1992, с. 7 9. 4. Modern methods of laboratory diagnosis of tuberculosis. Guidelines. M. 1992, p. 7 9.

5. Дудкин В.С. Коган Б.Я. Галов А.П. Саввина Л.П. Тез.докл. III Всесоюз. конф. "Лазеры на основе сложных органических соединений и их применение". Ужгород, 1980, с. 177 179. 5. Dudkin V.S. Kogan B.Ya. Galov A.P. Savvina L.P. Thesis Doc. III All-Union. conf. "Lasers based on complex organic compounds and their application." Uzhhorod, 1980, p. 177 179.

Claims (1)

Набор для флуоресцентного выявления микобактерий туберкулеза, включающий красящую смесь из аурамина и родамина и гаситель фона, отличающийся тем, что красящая смесь содержит аурамин лазерной чистоты, из родаминов родамин C или родамин 4C лазерной чистоты, взятые в массовом соотношении 12 1 25 1 соответственно, а в качестве гасителя фона феноксазиновой краситель перхлорат 3,6-диэтиламинофеноксазония, или цинковую соль 3,6-диэтиламинофеноксазония, или ацетат 5-амино-9-диэтиламинобензо(а)феноксазония, или изобутират 5-амино-9-диэтиламинобензо(а)феноксазония лазерной чистоты. A kit for fluorescent detection of tuberculosis mycobacteria, including a coloring mixture of auramine and rhodamine and a background quencher, characterized in that the coloring mixture contains laser-grade auramine, rhodamine C or rhodamine 4C laser-grade, taken in a mass ratio of 12 1 25 1, respectively, and 3,6-diethylaminophenoxazonium perchlorate, or 3,6-diethylaminophenoxazonium zinc salt, or 5-amino-9-diethylaminobenzo (a) phenoxazonium acetate, or 5-amino-9-diethylaminobenzo (a) isobutyrate Laser oksazoniya purity.
RU93011591A 1993-03-03 1993-03-03 Set for detection of tuberculosis mycobacteria by fluorescence method RU2102763C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU93011591A RU2102763C1 (en) 1993-03-03 1993-03-03 Set for detection of tuberculosis mycobacteria by fluorescence method

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU93011591A RU2102763C1 (en) 1993-03-03 1993-03-03 Set for detection of tuberculosis mycobacteria by fluorescence method

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU93011591A RU93011591A (en) 1996-08-20
RU2102763C1 true RU2102763C1 (en) 1998-01-20

Family

ID=20138181

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU93011591A RU2102763C1 (en) 1993-03-03 1993-03-03 Set for detection of tuberculosis mycobacteria by fluorescence method

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2102763C1 (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Современные методы лабораторной диагностики туберкулеза. Методические рекомендации. - М.: 1992, с. 7 - 9. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Bright et al. Fluorescence ratio imaging microscopy
Cordes et al. Mechanisms and advancement of antifading agents for fluorescence microscopy and single-molecule spectroscopy
EP1208160B1 (en) Red-emitting [8,9]benzophenoxazine nucleic acid dyes and methods for their use
US5314805A (en) Dual-fluorescence cell viability assay using ethidium homodimer and calcein AM
Kronvall et al. Differential staining of bacteria in clinical specimens using acridine orange buffered at low pH
DE60016898T2 (en) PHTHALAMID LANTHANIDE COMPLEXES FOR USE AS LUMINESCENCE MARKERS
CA1211349A (en) Composition, analytical element and method for the detection of bacteria
JP3039594B2 (en) Staining reagent and method of use
Weiss et al. Surface-enhanced Raman spectroscopy of microorganisms: limitations and applicability on the single-cell level
Petit et al. Assessment of fluorochromes for cellular structure and function studies by flow cytometry
KR101846491B1 (en) Method of analysing a cell or other biological material containing a nucleic acid
EP0014929A1 (en) Diagnostic means, process for its preparation and its use in determining leucocytes in body fluids
CN110982870B (en) Microbial multiple fluorescence staining solution and application thereof
US5437980A (en) Phenanthridium dye staining of nucleic acids in living cells
Humphreys et al. Determination of the viability of Trichomonas vaginalis using flow cytometry
US5445946A (en) Intravacuolar stains for yeast and other fungi
EP1668162B1 (en) Detection of immobilized nucleic acid
GB2074340A (en) Fluorescent Nucleic Acid Stains
US7083982B2 (en) Helium-neon excitable reticulocyte dyes derivable from halolepidines
CA1284932C (en) Biological and analytical uses of phenalenone and benzphenalenone compounds
Thompson et al. Zinc biosensing with multiphoton excitation using carbonic anhydrase and improved fluorophores
RU2102763C1 (en) Set for detection of tuberculosis mycobacteria by fluorescence method
Latt et al. Energy transfer-enhanced chromosome banding. An overview
Fazii et al. Differential fluorescent staining method for detection of bacteria in blood cultures, cerebrospinal fluid and other clinical specimens
Guiot et al. Molecular dynamics of biological probes by fluorescence correlation microscopy with two-photon excitation