RU2102763C1 - Set for detection of tuberculosis mycobacteria by fluorescence method - Google Patents
Set for detection of tuberculosis mycobacteria by fluorescence method Download PDFInfo
- Publication number
- RU2102763C1 RU2102763C1 RU93011591A RU93011591A RU2102763C1 RU 2102763 C1 RU2102763 C1 RU 2102763C1 RU 93011591 A RU93011591 A RU 93011591A RU 93011591 A RU93011591 A RU 93011591A RU 2102763 C1 RU2102763 C1 RU 2102763C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- rhodamine
- laser
- auramine
- diethylaminophenoxazonium
- diethylaminobenzo
- Prior art date
Links
Images
Landscapes
- Investigating Or Analysing Biological Materials (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к микробиологии. Может быть использовано в научных исследованиях, а также в практике здравоохранения, ветеринарии для выявления микобактерий туберкулеза. The invention relates to microbiology. It can be used in scientific research, as well as in the practice of healthcare, veterinary medicine to detect mycobacterium tuberculosis.
Известны флуоресцентные красители для диагностики кислотоустойчивых микобактерий и включающие следующие флуорохромы и гасители фона: Аурамин О - перманганат калия [1] Аурамин О акридиновый оранжевый [2] Аурамин О - Родамин В перманганат калия [3]
Прототип: наиболее близок к предлагаемому комплекс реагентов для окраски микобактерий по ВОУ [4] водный раствор красящей смеси, включающей аурамин О
родамин С и водный раствор гасителя фона метиленового синего.Known fluorescent dyes for the diagnosis of acid-resistant mycobacteria and including the following fluorochromes and background dampers: Auramine O - potassium permanganate [1] Auramine O acridine orange [2] Auramine O - Rhodamine B potassium permanganate [3]
Prototype: the closest to the proposed complex of reagents for staining mycobacteria according to HEU [4] an aqueous solution of a coloring mixture, including auramine O
rhodamine C and an aqueous solution of a methylene blue background quencher.
Вышеназванные в качестве аналогов и прототипа комплексы флуорохромов пригодны для выявления типичных микобактерий, однако они имеют следующие недостатки. Аналоги [1, 2, 3] характеризуются недостаточной избирательностью. В связи с тем, что в условиях интенсивной химиотерапии и других воздействий микобактерии претерпевают существенные морфологические и метаболические изменения, многие палочковидные микробные клетки не адсорбируют в достаточной мере флуорохромы или обесцвечиваются при дифференциации смесью спирта и соляной кислоты. Кроме того, зернистые формы, отдельные L-варианты микобактерий не адсорбируют традиционно применяемые флуорохромы в той степени, которая обеспечивает их микроскопическое и микрофотографическое выявление. The complexes of fluorochromes mentioned above as analogues and prototype are suitable for detecting typical mycobacteria, however, they have the following disadvantages. Analogs [1, 2, 3] are characterized by insufficient selectivity. Due to the fact that under conditions of intensive chemotherapy and other influences, mycobacteria undergo significant morphological and metabolic changes, many rod-shaped microbial cells do not adsorb fluorochromes sufficiently or become discolored upon differentiation with a mixture of alcohol and hydrochloric acid. In addition, granular forms, individual L-variants of mycobacteria do not adsorb traditionally used fluorochromes to the extent that they provide microscopic and microphotographic detection.
К недостаткам прототипа относятся: невозможность выявления ультрамелких (<0,2 мкм) форм микобактерий клетки. Помимо этого используемый в прототипе в качестве гасителя фона метиленовый голубой (КДМ) снижает специфическое свечение, не обеспечивает контрастного изображения нетуберкулезных микроорганизмов грибковой флоры клеток бронхиального эпителия. The disadvantages of the prototype include: the inability to detect ultrafine (<0.2 μm) forms of mycobacteria cells. In addition, methylene blue (KDM) used in the prototype as a background quencher reduces the specific glow, does not provide a contrast image of non-tuberculous microorganisms of the fungal flora of bronchial epithelial cells.
Цель изобретения создание набора красителей, позволяющих повысить избирательность, специфическое свечение, обеспечить надежную выявляемость морфологически измененных форм (зернистых, ультрамелких, L-форм), а также обнаруживать мелкоструктурные элементы возбудителя на ранних стадиях нормального деления микобактериальной клетки. The purpose of the invention is the creation of a set of dyes that can increase selectivity, specific luminescence, ensure reliable detection of morphologically altered forms (granular, ultrafine, L-forms), as well as detect fine-grained pathogen elements in the early stages of normal division of mycobacterial cells.
Поставленная цель достигается тем, что используют набор красителей, содержащий в качестве красящей смеси аурамин и родамин С лазерной чистоты или аурамин и родамин 4С лазерной чистоты, а в качестве гасителя фона используют следующие феноксазиновые красители: перхлорат 3,6-диэтиламинофеноксазония (оксазин-1 перхлорат, OH-120) или цинковую соль 3,6-диэтиламинофеноксазония (оксазин-1 цинковая соль, OH-121) или ацетат 5-амино-9-диэтиламинобензо/а/феноксазония (нильский синий ацетат, OH-111) или изобутират 5-амино-9-диэтиламинобензо/а/феноксазония (нильский синий изобутират, OH-112) лазерной чистоты в виде водных растворов при следующих соотношениях компонентов, г/л:
Аурамин 0,5 5,0
Родамин С или 4С 0,02 0,4
Дистиллированная вода Остальное до 1 л
Гаситель фона: оксазин-1 перхлорат или оксазин-1 цинковая соль, или нильский синий ацетат, или нильский синий изобутират 0,01 0,6
Дистиллированная вода Остальное до 1 л
К предлагаемым красителям наряду с обычными требованиями химической чистоты предъявляли требования "лазерной чистоты", принятые для люминесцирующих генерирующих красителей [5] При этом в красителях контролировали содержание примесей, поглощающих в области люминесценции, путем измерения коэффициента молярной экстинкции на фиксированной для каждого красителя длине волны (εк) аналогично описанному в [5]
Аурамин (МА-1) получали сплавлением 80 г хлористого цинка, 80 г хлористого аммония, 80 г кетона Михлера при 200oC и постоянном перемешивании в течение 24 ч. Плав охлаждали, растирали, перемешивали с 800 мл воды, фильтровали. Краситель, выпавший из фильтрата после высаливания его хлоридом натрия, фильтровали, сушили. Аурамин лазерной чистоты имеет в этаноле спектральные характеристики: λ
Auramine 0.5 5.0
Rhodamine C or 4C 0.02 0.4
Distilled water The rest is up to 1 liter
Background quencher: oxazine-1 perchlorate or oxazine-1 zinc salt, or Nile blue acetate, or Nile blue isobutyrate 0.01 0.6
Distilled water The rest is up to 1 liter
Along with the usual requirements for chemical purity, the proposed dyes were presented with the “laser purity” requirements adopted for luminescent generating dyes [5]. The dyes were used to control the content of impurities absorbing in the luminescence region by measuring the molar extinction coefficient at a wavelength fixed for each dye ( ε j) similar to that described in [5]
Auramine (MA-1) was obtained by fusion of 80 g of zinc chloride, 80 g of ammonium chloride, 80 g of Michler ketone at 200 ° C and constant stirring for 24 hours. The melt was cooled, triturated, stirred with 800 ml of water, filtered. The dye precipitated from the filtrate after salting out with sodium chloride was filtered and dried. Auramin of laser purity has spectral characteristics in ethanol: λ
Родамин С (PH-55) и родамин 4С (PH-56) получали из соответствующих технических красителей путем очистки переосаждением из водно-спиртового раствора соляной кислотой. Родамин С и родамин 4С лазерной чистоты имеют в этаноле: λ
5-Амино-9-диэтиламинобензо/а/феноксазоний ацетат (нильский синий ацетат, OH-111) получали из 0,5 г основания нильского синего в 50 мл толуола с добавлением 0,1 г уксусной кислоты. Раствор охлаждали, выпавший краситель отфильтровывали, промывали петролейным эфиром, сушили. 5-Амино-9-диэтиламинобензо/а/феноксазоний изобутират (нильский синий изобутират, OH-112) получали аналогично из 0,2 г основания нильского синего и 0,05 г изомасляной кислоты. Нильский синий ацетат и нильский синий изобутират лазерной чистоты имеют в этаноле: λ
Перхлорат 3,6-диэтиламинофеноксазония (оксазин-1 перхлорат, OH-120) и цинковую соль 3,6-диэтиламинофеноксазония (оксазин-1 цинковая соль, OH-121) получали из 5,4 г м-диэтиламиноанизола, 6,3 мл конц. соляной кислоты и 6,3 мл спирта. К этой смеси при перемешивании и охлаждении льдом с солью до 0 - 3oC прибавляли раствор 3,2 г нитрата натрия в 6,3 мл воды, перемешивали 1 ч и прибавляли порциями к кипящему раствору 4,3 г м-диэтиламинофенола в 8,6 мл спирта, перемешивали 15 мин, добавляли 8 мл хлорной кислоты (для OH-120) или 8 г хлористого цинка (для OH-121), выпавший краситель отфильтровывали, а затем очищали перекристаллизацией из этанола. Оксазин-1 перхлорат и оксазин-1 цинковая соль лазерной чистоты имеют в этаноле: λ
Сущность изобретения поясняется примерами и таблицей. The invention is illustrated by examples and table.
Пример 1. Example 1
Готовят 2 водных раствора красителей. Первый раствор представляет собой водный раствор красящей смеси из аурамина и родамина С, содержащий 5 г/л первого их них и 0,4 г/л второго красителя. Второй раствор содержит 0,6 г оксазина-1 цинковой соли (OH-121) в 1 л воды (таблица, пример 1). Prepare 2 aqueous solutions of dyes. The first solution is an aqueous solution of a coloring mixture of auramine and rhodamine C, containing 5 g / l of the first of them and 0.4 g / l of the second dye. The second solution contains 0.6 g of oxazine-1 zinc salt (OH-121) in 1 liter of water (table, example 1).
Фиксированные в сухожаровом шкафу мазки (75oC, 2 ч) заливают раствором красящей смеси аурамин-родамин на 30 мин. Затем промывают дистиллированной водой, обесцвечивают 3%-ным солянокислым спиртом в течение 3 5 мин, докрашивают раствором гасителя фона оксазина в течение 10 15 с. Мазки высушивают, микроскопируют в ультрафиолетовом свете в микроскопе с объективом 40x, окуляры 4x или 5x. Микобактерии туберкулеза и их зернистые и ультрамелкие варианты окрашиваются в оранжево-рубиновый цвет, шарообразные варианты L-формы окрашиваются в апельсиново-желтый цвет.Smears (75 o C, 2 h), fixed in a dry oven, are poured with a solution of the coloring mixture auramine-rhodamine for 30 minutes. Then it is washed with distilled water, decolorized with 3% hydrochloric acid alcohol for 3-5 minutes, and stained with a solution of a background quencher of oxazine for 10-15 seconds. The smears are dried, microscopted under ultraviolet light under a 40 x objective microscope, 4 x or 5 x eyepieces. Mycobacterium tuberculosis and their granular and ultrafine variants are stained in orange-ruby color, spherical L-shaped variants are stained in orange-yellow color.
При обработке диагностического материала щелочами и щелочными детергентами для выравнивания pH к 1 мл посевного осадка добавляют 0,1 мл 5%-ного раствора соляной кислоты. При обработке диагностического материала 1%-ным раствором соляной кислоты для выравнивания pH к 1 мл посевного осадка добавляется 0,1 мл 40%-ного раствора KOH. When processing the diagnostic material with alkalis and alkaline detergents, 0.1 ml of a 5% hydrochloric acid solution is added to 1 ml of inoculum to equalize the pH. When processing the diagnostic material with a 1% hydrochloric acid solution, 0.1 ml of a 40% KOH solution is added to 1 ml of inoculum to equalize the pH.
Примеры 2 19. Водные растворы готовили аналогичным образом и испытывали по аналогичной примеру 1 методике. Состав компонентов, их соотношение и результаты испытаний представлены в таблице. Examples 2 19. Aqueous solutions were prepared in a similar manner and tested according to a similar procedure to Example 1. The composition of the components, their ratio and test results are presented in the table.
Как видно из таблицы, использование водных растворов красящей смеси, состоящей из аурамина и родамина С или аурамина и родамина 4С лазерной чистоты, а в качестве гасителя фона использование водных растворов цинковой соли оксазина-1 или перхлората оксазина-1, или ацетата нильского синего, или изобутирата нильского синего лазерной чистоты в представленных соотношениях (примеры 1 18) позволяют обнаружить по сравнению с прототипом (пример 19) мелкие и ультрамелкие формы микобактерий туберкулеза, а также обнаружить деление микробной клетки. As can be seen from the table, the use of aqueous solutions of a coloring mixture consisting of auramine and rhodamine C or auramine and rhodamine 4C of laser purity, and as a quencher, the use of aqueous solutions of zinc salt of oxazine-1 or oxazine-1 perchlorate, or Nile blue acetate, or isobutyrate of Nile blue laser purity in the presented ratios (examples 1–18) make it possible to detect small and ultrafine forms of tuberculosis mycobacteria, as well as to detect microbial cell division, in comparison with the prototype (example 19).
Таким образом, предлагаемый набор красителей для диагностики туберкулеза позволяет выявлять мелкие и ультрамелкие (<0,2 мкм ) формы микобактерий, обнаруживать деление микробной клетки, существенно расширить возможности флуоресцентного метода выявления не только типичных, но и морфологически измененных микобактерий, создать оптимальные возможности для микроскопирования и микрофотографирования возбудителя туберкулеза. Thus, the proposed set of dyes for the diagnosis of tuberculosis makes it possible to detect small and ultrafine (<0.2 μm) forms of mycobacteria, detect microbial cell division, significantly expand the capabilities of the fluorescent method for detecting not only typical but also morphologically altered mycobacteria, and create optimal microscopic possibilities and microphotographs of the causative agent of tuberculosis.
Источники информации
1. Blaiz E. B. Weiser O.L. Tull A.H. Mycrobacteriology Laboratory Methods. Lab. Report. US Army Medical Research and Nutrion Laboratory. Denver. 1969. 235 P.Sources of information
1. Blaiz EB Weiser OL Tull AH Mycrobacteriology Laboratory Methods. Lab. Report. US Army Medical Research and Nutrion Laboratory. Denver 1969. 235 P.
2. Smithwick R.W. David H.L. Acridin orange as a fluorescent counterstein with the auramine acid-fast stein. Tubercle. 1971. N 52. P. 226 - 231. 2. Smithwick R.W. David H.L. Acridin orange as a fluorescent counterstein with the auramine acid-fast stein. Tubercle. 1971. N 52. P. 226 - 231.
3. Traunt I.P. Brett W.A. Thomas W. Fluorescence microscopy of rtubercle bacilli steined with auramine and rhodamine. Henry Ford Hosp. Med. Bull. 1962. N 10. P. 3287 296. 3. Traunt I.P. Brett W.A. Thomas W. Fluorescence microscopy of rtubercle bacilli steined with auramine and rhodamine. Henry Ford Hosp. Med. Bull. 1962.
4. Современные методы лабораторной диагностики туберкулеза. Методические рекомендации. М. 1992, с. 7 9. 4. Modern methods of laboratory diagnosis of tuberculosis. Guidelines. M. 1992, p. 7 9.
5. Дудкин В.С. Коган Б.Я. Галов А.П. Саввина Л.П. Тез.докл. III Всесоюз. конф. "Лазеры на основе сложных органических соединений и их применение". Ужгород, 1980, с. 177 179. 5. Dudkin V.S. Kogan B.Ya. Galov A.P. Savvina L.P. Thesis Doc. III All-Union. conf. "Lasers based on complex organic compounds and their application." Uzhhorod, 1980, p. 177 179.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU93011591A RU2102763C1 (en) | 1993-03-03 | 1993-03-03 | Set for detection of tuberculosis mycobacteria by fluorescence method |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU93011591A RU2102763C1 (en) | 1993-03-03 | 1993-03-03 | Set for detection of tuberculosis mycobacteria by fluorescence method |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU93011591A RU93011591A (en) | 1996-08-20 |
RU2102763C1 true RU2102763C1 (en) | 1998-01-20 |
Family
ID=20138181
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU93011591A RU2102763C1 (en) | 1993-03-03 | 1993-03-03 | Set for detection of tuberculosis mycobacteria by fluorescence method |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2102763C1 (en) |
-
1993
- 1993-03-03 RU RU93011591A patent/RU2102763C1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Современные методы лабораторной диагностики туберкулеза. Методические рекомендации. - М.: 1992, с. 7 - 9. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Bright et al. | Fluorescence ratio imaging microscopy | |
Cordes et al. | Mechanisms and advancement of antifading agents for fluorescence microscopy and single-molecule spectroscopy | |
EP1208160B1 (en) | Red-emitting [8,9]benzophenoxazine nucleic acid dyes and methods for their use | |
US5314805A (en) | Dual-fluorescence cell viability assay using ethidium homodimer and calcein AM | |
Kronvall et al. | Differential staining of bacteria in clinical specimens using acridine orange buffered at low pH | |
DE60016898T2 (en) | PHTHALAMID LANTHANIDE COMPLEXES FOR USE AS LUMINESCENCE MARKERS | |
CA1211349A (en) | Composition, analytical element and method for the detection of bacteria | |
JP3039594B2 (en) | Staining reagent and method of use | |
Weiss et al. | Surface-enhanced Raman spectroscopy of microorganisms: limitations and applicability on the single-cell level | |
Petit et al. | Assessment of fluorochromes for cellular structure and function studies by flow cytometry | |
KR101846491B1 (en) | Method of analysing a cell or other biological material containing a nucleic acid | |
EP0014929A1 (en) | Diagnostic means, process for its preparation and its use in determining leucocytes in body fluids | |
CN110982870B (en) | Microbial multiple fluorescence staining solution and application thereof | |
US5437980A (en) | Phenanthridium dye staining of nucleic acids in living cells | |
Humphreys et al. | Determination of the viability of Trichomonas vaginalis using flow cytometry | |
US5445946A (en) | Intravacuolar stains for yeast and other fungi | |
EP1668162B1 (en) | Detection of immobilized nucleic acid | |
GB2074340A (en) | Fluorescent Nucleic Acid Stains | |
US7083982B2 (en) | Helium-neon excitable reticulocyte dyes derivable from halolepidines | |
CA1284932C (en) | Biological and analytical uses of phenalenone and benzphenalenone compounds | |
Thompson et al. | Zinc biosensing with multiphoton excitation using carbonic anhydrase and improved fluorophores | |
RU2102763C1 (en) | Set for detection of tuberculosis mycobacteria by fluorescence method | |
Latt et al. | Energy transfer-enhanced chromosome banding. An overview | |
Fazii et al. | Differential fluorescent staining method for detection of bacteria in blood cultures, cerebrospinal fluid and other clinical specimens | |
Guiot et al. | Molecular dynamics of biological probes by fluorescence correlation microscopy with two-photon excitation |