RU2095082C1 - Vaccine for helminthiasis control - Google Patents

Vaccine for helminthiasis control Download PDF

Info

Publication number
RU2095082C1
RU2095082C1 RU96114608A RU96114608A RU2095082C1 RU 2095082 C1 RU2095082 C1 RU 2095082C1 RU 96114608 A RU96114608 A RU 96114608A RU 96114608 A RU96114608 A RU 96114608A RU 2095082 C1 RU2095082 C1 RU 2095082C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
vaccine
conjugate
protein
polyoxidonium
carried out
Prior art date
Application number
RU96114608A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU96114608A (en
Inventor
Равшан Иноятович Атауллаханов
Аркадий Васильевич Некрасов
Наталья Григорьевна Пучкова
Рэм Викторович Петров
Рахим Мусаевич Хаитов
Original Assignee
Равшан Иноятович Атауллаханов
Аркадий Васильевич Некрасов
Наталья Григорьевна Пучкова
Рэм Викторович Петров
Рахим Мусаевич Хаитов
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Равшан Иноятович Атауллаханов, Аркадий Васильевич Некрасов, Наталья Григорьевна Пучкова, Рэм Викторович Петров, Рахим Мусаевич Хаитов filed Critical Равшан Иноятович Атауллаханов
Priority to RU96114608A priority Critical patent/RU2095082C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2095082C1 publication Critical patent/RU2095082C1/en
Publication of RU96114608A publication Critical patent/RU96114608A/en

Links

Images

Abstract

FIELD: biotechnology, helminthology. SUBSTANCE: vaccine is a conjugate of immunostimulating carrier with protective antigen. Protective antigen: protein isolated from connective tissues and showing hyalurosno-lyase activity, its molecular mass is 63000 Da, isoelectric point - at 5.7. Mass ratio of antigen and carrier = 1:(1-10). Vaccine can contain adjuvant, for example, polyaxidonium, muramyldipeptide, aluminium hydroxide. Vaccine is used for prophylaxis and treatment of different helminthiasis forms in human and animals. EFFECT: enhanced effectiveness of vaccine. 3 cl

Description

Изобретение относится к биотехнологии и может быть использовано для профилактики и лечения различных гельминтозов животных и человека. The invention relates to biotechnology and can be used for the prevention and treatment of various helminthiases of animals and humans.

В настоящее время основным методом борьбы с гельминтами является применение химиотерапевтических препаратов антигельминтиков, таких, как нилверм, ринтал, панапурм и др. Однако установлено, что антигельминтики высокотоксичны, вызывают иммуносупрессию, требуется многократная обработка, отмечается также развитие устойчивости паразитов к применяемым химиопрепаратам. Вакцинация снимает вопросы многократности обработок, резистентности паразитов к используемым препаратам, безопасности применения. Currently, the main method of combating helminths is the use of chemotherapeutic drugs of anthelmintics, such as nilverm, rintal, panapurm, etc. However, it has been established that anthelmintics are highly toxic, cause immunosuppression, repeated treatment is required, and the development of parasite resistance to the chemotherapy used is also noted. Vaccination removes the questions of multiple treatments, the resistance of parasites to the drugs used, and the safety of use.

Известны способы получения инактивированных, генноинженерных и живых вакцин против гельминтозов (1,2,3). Недостатками таких вакцин является их высокая реактогенность, низкая иммуногенность, трудоемкость процесса получения, а также вероятность заражения вакцинирующим материалом, генноинженерных низкая иммуногенность. Кроме того, вакцины малоэффективны, эффект их узкоспецифичен и направлен только против определенного паразита. Known methods for producing inactivated, genetically engineered and live vaccines against helminthiases (1,2,3). The disadvantages of such vaccines are their high reactogenicity, low immunogenicity, the complexity of the production process, as well as the likelihood of infection with vaccinating material, genetically engineered low immunogenicity. In addition, vaccines are ineffective, their effect is highly specific and is directed only against a specific parasite.

Известна конъюгированная вакцина против гельминтозов на основе экдистероида и белковой макромолекулы. Недостатком указанной вакцины является низкая эффективность, использование в качестве макромолекулярного носителя белка, вызывающего при введении в организм ряд побочных иммунопатологических эффектов (4). Known conjugate vaccine against helminthiases based on ecdysteroid and protein macromolecule. The disadvantage of this vaccine is its low efficiency, the use of a protein as a macromolecular carrier that causes a number of side immunopathological effects when introduced into the body (4).

Наиболее близким аналогом является вакцина для профилактики гельминтозов, содержащая конъюгат протективного антигена гиалуронидазу мол.м. 63 КД с иммуностимулирующим носителем общей формулы:

Figure 00000001

где:
q (0,2-0,35)n
z (0,4-0,65)n
m (0-0,4)n
n 200-2000.The closest analogue is a vaccine for the prevention of helminthiasis containing a conjugate of the protective antigen hyaluronidase mol.m. 63 CD with an immunostimulating carrier of the general formula:
Figure 00000001

Where:
q (0.2-0.35) n
z (0.4-0.65) n
m (0-0.4) n
n 200-2000.

Кроме того, известная вакцина дополнительно содержит адъювант, например гидроокись алюминия, мурамилдипептид и/или синпол (полиоксидоний) (5). In addition, the known vaccine further comprises an adjuvant, for example, aluminum hydroxide, muramyl dipeptide and / or synpole (polyoxidonium) (5).

Однако известная вакцина обладает нежелательными побочными эффектами, обусловленными низкой скоростью биодеструкции и выведения из организма. Кроме того, получение препарата с заранее заданной структурой и свойствами затруднено, поскольку синтез проводится в неконтролируемых условиях. However, the known vaccine has undesirable side effects due to the low rate of biodegradation and excretion from the body. In addition, obtaining a drug with a predetermined structure and properties is difficult, since the synthesis is carried out under uncontrolled conditions.

Технический результат, получаемый при реализации изобретения, состоит в повышении эффективности и безопасности вакцины за счет снижения ее токсичности, а также получения возможности контролируемого синтеза препарата с заданными структурой и свойствами. The technical result obtained by the implementation of the invention is to increase the efficiency and safety of the vaccine by reducing its toxicity, as well as the possibility of controlled synthesis of the drug with the desired structure and properties.

Сущность изобретения заключается в следующем. The invention consists in the following.

Вакцина против гельминтозов, содержащая конъюгат иммуностимулирующего носителя с протективным антигеном, содержит в качестве протективного антигена белок, выделенный из структур соединительных тканей, обладающий гиалурозно-лиазной активностью и характеризующийся мол.м. 63000 Д, изоэлектрической точкой 5,7, имеет массовое соотношение антиген-носитель 1:1-10 и общую формулу:

Figure 00000002

где
R протективный антиген
n 200-2000 количество элементарных звеньев
q (0,1-0,35) количество алкилированных звеньев,
z (0,4-0,7) количество окисленных групп.The helminthiosis vaccine containing the conjugate of an immunostimulating carrier with a protective antigen contains as a protective antigen a protein isolated from the structures of connective tissues, which has hyaluronic lyase activity and is characterized by a mol.m. 63000 D, an isoelectric point of 5.7, has a mass ratio of carrier antigen 1: 1-10 and the general formula:
Figure 00000002

Where
R protective antigen
n 200-2000 the number of elementary links
q (0.1-0.35) the number of alkylated units,
z (0.4-0.7) the number of oxidized groups.

Описанный белок полипептид с молекулярной массой 63000 (П-63) является общим для различных форм гельминтов и его аминокислотный состав (первичная последовательность) протективного антигена был исследован и описан в известном источнике (6). The described protein polypeptide with a molecular weight of 63000 (P-63) is common to various forms of helminths and its amino acid composition (primary sequence) of the protective antigen has been studied and described in a well-known source (6).

Источником для выделения белка П-63 могут служить, например, личиночные формы гельминтов Dictyocaulus filaria, Fasciola hepatica, Haemonchus contorius. The source for the isolation of P-63 protein can be, for example, the larval forms of helminths Dictyocaulus filaria, Fasciola hepatica, Haemonchus contorius.

Белок выделяют путем измельчения исходного биоматериала, экстракции раствором уксусной кислоты (pH 4,5-4,7), отделения экстракта центрифугированием, концентрации экстракта методом ультрафильтрации, осаждения балластов белков, очистки целевого продукта методом хроматографии и лиофильное высушивание. Protein is isolated by grinding the original biomaterial, extraction with a solution of acetic acid (pH 4.5-4.7), separation of the extract by centrifugation, concentration of the extract by ultrafiltration, precipitation of protein ballasts, purification of the target product by chromatography and freeze drying.

В качестве иммуностимулирующего носителя используют полиоксидоний - синтетический высокомолекулярный сополимер N-оксида 1,4-этиленпиперазина и N-карбоксиэтил-1,4-этиленпиперазиний бромида. Polyoxidonium, a synthetic high molecular weight copolymer of 1,4-ethylene piperazine N-oxide and N-carboxyethyl-1,4-ethylene piperazinium bromide, is used as an immunostimulating carrier.

Описываемые в изобретении параметры структуры полиоксидония: n - количество элементарных звеньев, q количество алкилированных звеньев, z - количество окисленных групп определяют иммунобиологические свойства препарата в целом (эффективность воздействия, токсичность и безопасность применения). The polyoxidonium structure parameters described in the invention: n is the number of elementary units, q is the number of alkylated units, z is the number of oxidized groups determine the immunobiological properties of the drug as a whole (exposure efficiency, toxicity and safety of use).

Установлено, что эффективность препарата возрастает при повышении молекулярной массы. Используемые значения q (0,1-0,35) обеспечивают достаточную степень связывания и низкие токсические свойства даже при высоких молекулярных массах. Количество окисленных групп (z=0,4-0,7) обеспечивает снижение токсичности и регулирует скорость метаболизма и выведения препарата из организма. It was found that the effectiveness of the drug increases with increasing molecular weight. The used q values (0.1-0.35) provide a sufficient degree of binding and low toxicity even at high molecular weights. The number of oxidized groups (z = 0.4-0.7) provides a reduction in toxicity and regulates the metabolic rate and excretion of the drug from the body.

Механизм защиты против гельминтозов, формирующийся в организме после иммунизации предлагаемой вакциной, связан как с воздействием на один из ключевых факторов патогенности на ранних стадиях развития гельминта, так и на процессы жизнедеятельности зрелого гельминта. The mechanism of protection against helminthiasis, which forms in the body after immunization with the proposed vaccine, is associated with both the effect on one of the key pathogenicity factors in the early stages of helminth development and the vital processes of a mature helminth.

Белок П-63 является слабым иммуногеном, не вызывающим в организме заметный антительный ответ. В результате конъюгирования с иммуностимулирующим носителем полиоксидонием, способным в составе конъюгата вызывать существенное повышение антительного ответа к протективному антигену, образуются соединения, вызывающие в организме высокий антительный ответ против белка П-63, что обеспечивает высокую эффективность, стабильность и пролонгирование действия вакцины. Protein P-63 is a weak immunogen that does not cause a noticeable antibody response in the body. As a result of conjugation with a polyoxidonium immunostimulating carrier capable of causing a significant increase in the antibody response to the protective antigen in the conjugate, compounds are formed that cause a high antibody response against the P-63 protein in the body, which ensures high efficiency, stability and prolongation of the vaccine.

Усиление антительного ответа и протективной активности конъюгированной вакцины может быть достигнуто с помощью введения добавок различных природных и синтетических адъювантов в оптимальных иммуностимулирующих дозах. Strengthening the antibody response and protective activity of the conjugate vaccine can be achieved by introducing additives of various natural and synthetic adjuvants in optimal immunostimulating doses.

Конъюгированную вакцину получают путем ковалентного связывания протективного белкового антигена П-63 с высокомолекулярным иммуностимулирующим носителем полиоксидонием азидным методом или методом активированных эфиров, в результате чего образуется ковалентная амидная связь между молекулами полимерного носителя и молекулами белкового антигена. Описываемый синтез проводится в контролируемых условиях и дает возможность получить препарат с заранее заданной структурой и соотношением белок-полимер. A conjugated vaccine is obtained by covalently binding the protective protein antigen P-63 to a high molecular weight immunostimulating carrier with the polyoxidonium azide method or the activated ester method, resulting in the formation of a covalent amide bond between the molecules of the polymer carrier and the protein antigen molecules. The described synthesis is carried out under controlled conditions and makes it possible to obtain a drug with a predetermined structure and protein-polymer ratio.

Использование азидного метода требует тщательного соблюдения условий реакции температура 0-2oC, pH 8,0-8,5, соотношение полимер-антиген 1:3-1:5, продолжительность реакции 12 ч. При проведении реакции в строго контролируемых условиях указанный способ конъюгации позволяет полностью избежать межмолекулярных и внутримолекулярных сшивок, сохранить антигенные детерминанты и получить конъюгаты с высоким выходом. При использовании метода активированных эфиров получение полимер-антигенной вакцины проводят в две стадии, первая стадия синтез сукцинимидного эфира полиоксидония, вторая стадия заключается в проведении реакции конъюгации между активированной формы полиоксидония и антигеном П-63.The use of the azide method requires careful observance of the reaction conditions, temperature 0-2 o C, pH 8.0-8.5, polymer-antigen ratio 1: 3-1: 5, reaction time 12 hours. When carrying out the reaction under strictly controlled conditions, this method conjugation allows you to completely avoid intermolecular and intramolecular crosslinking, preserve antigenic determinants and get conjugates in high yield. When using the method of activated esters, the preparation of the polymer-antigenic vaccine is carried out in two stages, the first stage is the synthesis of the polyoxidonium succinimide ester, the second stage is the conjugation reaction between the activated form of the polyoxidonium and P-63 antigen.

Выделение конъюгата осуществляют хроматографическим методом, анализ конъюгатов проводят методами электрофореза в ПААГ, флуоресцентной спектроскопии. Isolation of the conjugate is carried out by chromatographic method, the analysis of conjugates is carried out by electrophoresis in SDS page, fluorescence spectroscopy.

Введение адъювантов в состав конъюгированной вакцины проводят добавлением адъювантов к конъюгированной вакцине в водном растворе при pH 6,5-7,45 с последующим выявлением путем лиофелизации. Количество добавляемого адъюванта зависит от его оптимальной дозы для человека или конкретного вида животных. Способ позволяет сохранить эффективность вакцины при низком содержании высокомолекулярного носителя, что уменьшает затраты на производство вакцины. The introduction of adjuvants in the conjugate vaccine is carried out by adding adjuvants to the conjugate vaccine in an aqueous solution at a pH of 6.5-7.45, followed by lyophilization. The amount of adjuvant added depends on its optimal dose for humans or a particular animal species. The method allows to maintain the effectiveness of the vaccine with a low content of high molecular weight carrier, which reduces the cost of production of the vaccine.

Для пояснения изобретения ниже приводятся конкретные примеры получения гельминтной вакцины различными способами и анализа протективных свойств вакцины. To illustrate the invention, specific examples of the preparation of a helminth vaccine by various methods and analysis of the protective properties of the vaccine are given below.

Пример 1. Получение конъюгата полиоксидония с белком П-63 с использованием азидного метода конъюгации проводится в две стадии. Первая стадия получение гидразида полиоксидония. Example 1. Obtaining a conjugate of polyoxidonium protein P-63 using the azide conjugation method is carried out in two stages. The first stage is the preparation of polyoxidonium hydrazide.

500 мг полиоксидония (n=2000; q=0,1; z=0,7) растворяют в 25 мл метилового спирта. При температуре 20oC добавляют 0,2 мл (2•10-3 М) гидразин гидрата. Реакцию ведут в течение 24 ч. Метанол отгоняют на роторном испарителе, остаток растворяют в воде и проводят эфирную экстракцию. Выделяют продукт методом ультрафильтрации на полых волокнах (система "Amikon") с последующей лиофилизацией.500 mg of polyoxidonium (n = 2000; q = 0.1; z = 0.7) is dissolved in 25 ml of methyl alcohol. At a temperature of 20 o C add 0.2 ml (2 • 10 -3 M) hydrazine hydrate. The reaction is carried out for 24 hours. Methanol is distilled off on a rotary evaporator, the residue is dissolved in water and ether extraction is carried out. The product is isolated by ultrafiltration on hollow fibers (Amikon system), followed by lyophilization.

Содержание гидразидных групп определяют стандартным методом титрования первичных аминогрупп 2,4,6-тринитробензолсульфокислотой. The content of hydrazide groups is determined by the standard method of titration of primary amino groups with 2,4,6-trinitrobenzenesulfonic acid.

Вторая стадия получение конъюгата по реакции конденсации гидразида полиоксидония с белком П-63. 100 мг гидразида полиоксидония растворяют в 4 мл 1н. HCl). Раствор охлаждают до 0-2oC. Затем при перемешивании и охлаждении добавляют 1,15 мл 3%-ного раствора нитрита натрия. Через 15 мин доводят pH раствора до 8,5 добавлением 2н. NaOH. Раствор 12 мг белка П-63 в 10 мл 0,05 М фосфатного буфера pH 8,5 добавляют к раствору активированного полиоксидония. Поддерживают pH реакционной смеси равным 8,5 добавлением 2н. NaOH. Реакция продолжается в течение 12 ч при перемешивании и охлаждении (0-2oC). Для выделения и очистки конъюгата реакционную смесь наносят на колонку (2,6х90), заполненную биогелем P 100, в качестве элюента используют фосфатный буфер 0,05 М pH 7,5, содержащий 0,05 М NaCl. Выход конъюгата контролируют с помощью проточного спетрофотометра при 226 нм. Определение содержания белка и анализ конъюгата проводят методом флуоресцентной спектроскопии, электрофореза в ПААГ. В 1 мг препарата содержится 0,10 мг белка П-63.The second stage is the preparation of a conjugate by the condensation reaction of polyoxidonium hydrazide with protein P-63. 100 mg of polyoxidonium hydrazide is dissolved in 4 ml of 1N. HCl). The solution was cooled to 0-2 ° C. Then, with stirring and cooling, 1.15 ml of a 3% sodium nitrite solution was added. After 15 minutes, the pH of the solution was adjusted to 8.5 by the addition of 2N. NaOH. A solution of 12 mg of P-63 protein in 10 ml of 0.05 M phosphate buffer pH 8.5 is added to the activated polyoxidonium solution. The pH of the reaction mixture was maintained at 8.5 by the addition of 2N. NaOH. The reaction continues for 12 hours with stirring and cooling (0-2 o C). To isolate and purify the conjugate, the reaction mixture was applied to a column (2.6 × 90) filled with P 100 biogel; a 0.05 M pH 7.5 phosphate buffer containing 0.05 M NaCl was used as an eluent. The conjugate yield is monitored using a flow spectrophotometer at 226 nm. Determination of protein content and analysis of the conjugate is carried out by fluorescence spectroscopy, electrophoresis in SDS page. 1 mg of the drug contains 0.10 mg of P-63 protein.

Пример 2. Получение конъюгата полиоксидония (мол.м. 25000, n=200, q=0,1, z=0,7) с белком П 63 приводят аналогично описанному в примере 1. Соотношение полимер-белок в реакционной смеси составляет 1:5, pH при проведении конденсации поддерживается равным 8. В 1 мг препарата содержится 0,15 мг белка П 63. Example 2. Obtaining a conjugate of polyoxidonium (molecular mass 25000, n = 200, q = 0.1, z = 0.7) with protein P 63 lead similarly to that described in example 1. The ratio of polymer to protein in the reaction mixture is 1: 5, the pH during the condensation is maintained equal to 8. 1 mg of the drug contains 0.15 mg of protein P 63.

Пример 3. Получение конъюгата полиоксидония с белком П 63 методом активированных эфиров проводят в две стадии. Example 3. Obtaining a conjugate of polyoxidonium protein P 63 by the method of activated esters is carried out in two stages.

Первая стадия получение сукционимидного эфира полиоксидония. The first step is the preparation of a succimide polyoxidonium ester.

100 мг полиоксидония (n=800; q=0,1; z=0,7), содержащего 0,30 ммоль COOH-групп, суспендируют в 4 мл диметилформамида, добавляют при перемешивании 77,2 мг (0,30 ммоль) дициклогексидкарбодиимида и 36 мг (0,30 ммоль) N-гидроксисукцинимида. Реакцию проводят при перемешивании и охлаждении (2-4oC) в течение 24 ч. Для очистки осадок многократно промывают диоксаном, эфиром и ацетоном, высушивают в вакуумном сушильном шкафу. Отсутствие низкомолекулярных примесей проверяют методом тонкослойной хроматографии на пластинах "Силуфол" в системе н-бутиловый спирт-вода-уксусная кислота 4:1:1. Содержание активированных групп определяют стандартным методом (pH 8,5, 0,1 М водный раствор NH3, 259 нм, коэффициент экстинкции 9700); содержание активированных групп составляет 9•10-4 молей на 1 г полимера.100 mg of polyoxidonium (n = 800; q = 0.1; z = 0.7) containing 0.30 mmol of COOH groups is suspended in 4 ml of dimethylformamide, 77.2 mg (0.30 mmol) of dicyclohexidecarbodiimide are added with stirring and 36 mg (0.30 mmol) of N-hydroxysuccinimide. The reaction is carried out with stirring and cooling (2-4 ° C.) for 24 hours. For purification, the precipitate is washed many times with dioxane, ether and acetone, and dried in a vacuum oven. The absence of low molecular weight impurities is checked by thin-layer chromatography on Silufol plates in a 4: 1: 1 n-butyl alcohol-water-acetic acid system. The content of activated groups is determined by a standard method (pH 8.5, 0.1 M aqueous solution of NH 3 , 259 nm, extinction coefficient 9700); the content of activated groups is 9 • 10 -4 moles per 1 g of polymer.

Вторая стадия проведение конъюгации. 100 мг активированного полиоксидония растворяют в 10 мл фосфатного буфера pH 6,0 0,05 М. При перемешивании и охлаждении добавляют раствор 15 мг белка П 63 в 12 мл фосфатного буфера 0,05 М pH 7,5. Реакцию конденсации проводят в течение 18 ч при 0oC. После окончания реакции конъюгат выделяют хроматографическим методом, как описано в примере 1. Анализ конъюгата проводят аналогично описанному в примере 1.The second stage is the conjugation. 100 mg of activated polyoxidonium is dissolved in 10 ml of phosphate buffer pH 6.0 0.05 M. With stirring and cooling, a solution of 15 mg of protein P 63 in 12 ml of phosphate buffer 0.05 M pH 7.5 is added. The condensation reaction is carried out for 18 h at 0 o C. After the reaction, the conjugate is isolated by chromatographic method, as described in example 1. The analysis of the conjugate is carried out similarly to that described in example 1.

В 1 мг препарата содержится 0,1 мг белка П 63. 1 mg of the drug contains 0.1 mg of protein P 63.

Пример 4. Получение конъюгата полиоксидония с белком П 63 проводят аналогично описанному в примере 3. Соотношение полимер-белок в реакционной смеси составляет 1:2. Example 4. Obtaining a conjugate of polyoxidonium with protein P 63 is carried out similarly to that described in example 3. The ratio of polymer to protein in the reaction mixture is 1: 2.

В 1 мг препарата содержится 0,5 мг белка П 63. 1 mg of the drug contains 0.5 mg of protein P 63.

Пример 5. Получение комплексной вакцины. Example 5. Obtaining a complex vaccine.

Получение и выделение конъюгата полиоксидония с белком П 63 проводят аналогично описанному в примере 1. Соотношение полимербелок в реакционной смеси составляет 1:1, содержание полиоксидония 5 мг, белка П 63 5 мг. Затем к раствору очищенного конъюгата добавляют водный раствор адъюванта полиоксидония в количестве 40 мг. Раствор лиофилизуют, содержание белка определяют, как указано в примере 1. В 1 мг препарата содержится 0,1 мг белка. The preparation and isolation of the conjugate of polyoxidonium with protein P 63 is carried out similarly to that described in example 1. The ratio of polymer proteins in the reaction mixture is 1: 1, the content of polyoxidonium 5 mg, protein P 63 5 mg. An aqueous solution of polyoxidonium adjuvant in an amount of 40 mg is then added to the solution of the purified conjugate. The solution is lyophilized, the protein content is determined as described in example 1. 1 mg of the preparation contains 0.1 mg of protein.

Пример 6. Получение комплексной вакцины/
Получение комплексной вакцины проводят аналогично описанному в примере 5.
Example 6. Obtaining a complex vaccine /
Obtaining a complex vaccine is carried out similarly to that described in example 5.

Получение и выделение конъюгата полиоксидония с белком П 63 проводят аналогично описанному в примере 3. В качестве адъюванта используют полиоксидоний в количестве 200 мг. The preparation and isolation of the conjugate of polyoxidonium with protein P 63 is carried out similarly to that described in example 3. As an adjuvant, polyoxidonium in an amount of 200 mg is used.

Пример 7. Получение комплексной вакцины. Example 7. Obtaining a complex vaccine.

Получение комплексной вакцины проводят аналогично описанному в примере 5. Obtaining a complex vaccine is carried out similarly to that described in example 5.

Получение и выделение конъюгата полиоксидония с белком П-63 проводят аналогично описанному в примере 1. В качестве адъюванта используют полиоксидоний в количестве 200 мг. The preparation and isolation of the conjugate of polyoxidonium with protein P-63 is carried out similarly to that described in example 1. As an adjuvant, polyoxidonium in an amount of 200 mg is used.

Пример 8. Получение комплексной вакцины. Example 8. Obtaining a complex vaccine.

Получение комплексной вакцины проводят аналогично описанному в примере 5, в качестве адъюванта используют ГМДП (производное мурамилдипептида) в количестве 10 мг. Obtaining a complex vaccine is carried out similarly to that described in example 5, as adjuvant use GMDP (derivative of muramyl dipeptide) in an amount of 10 mg.

Пример 9. Получение комплексной вакцины. Получение комплексной вакцины проводят аналогично описанному в примере 5, в качестве адъюванта используют гидроокись алюминия в количестве, необходимом для стимуляции иммунного ответа. Example 9. Obtaining a complex vaccine. Obtaining a complex vaccine is carried out similarly to that described in example 5, aluminum hydroxide in the amount necessary to stimulate the immune response is used as an adjuvant.

Пример 10. Испытание эффективности вакцины для профилактики эхинококкозов проведены на 45 собаках. Препараты, полученные согласно примерам 1 и 5, вводят дважды с интервалом 21 день. Через 14 дней после второй иммунизации животных заражают перорально протосколексами эхинококков в дозе 30000 протосколексов на животное. На 30-й день после заражения животных забивают и определяют количество гельминтов в кишечнике. Результаты эксперимента представлены в табл. 1. Example 10. A test of the effectiveness of the vaccine for the prevention of echinococcosis was carried out on 45 dogs. The preparations obtained according to examples 1 and 5 are administered twice with an interval of 21 days. 14 days after the second immunization, the animals are orally infected with echinococcus protoscolexes at a dose of 30,000 protoscolexes per animal. On the 30th day after infection, the animals are killed and the number of helminths in the intestine is determined. The experimental results are presented in table. one.

Оценку острой токсичности препарата (ЛД50) во всех случаях проводили по стандартной методике, изложенной в Сборнике инструкций, утвержденном приказом Минздрава СССР от 13.01.83 N 31, с. 76.Assessment of the acute toxicity of the drug (LD 50 ) in all cases was carried out according to the standard method described in the collection of instructions, approved by order of the USSR Ministry of Health of 13.01.83 N 31, p. 76.

Острая токсичность препаратов, полученных согласно примерам 1 и 5, составляет 2000 мг/кг массы животного. The acute toxicity of the preparations obtained according to examples 1 and 5 is 2000 mg / kg of animal weight.

Пример 11. Испытания проводили на Украинской НИВС на 12 собаках. Собакам, разделенным на 4 группы, вводили препарат, полученный, как описано в примере 2. Example 11. The tests were carried out at the Ukrainian NIVS on 12 dogs. Dogs, divided into 4 groups, were administered the drug obtained as described in example 2.

В первой группе собак иммунизируют дважды в дозе 5 мг на животное. Собак второй группы вакцинируют дважды в дозе 10 мг. Собакам третьей группы первую иммунизацию проводят в дозе 5 мг, вторую в дозе 10 мг. Четвертая группа сложит контролем. In the first group of dogs, they are immunized twice at a dose of 5 mg per animal. Dogs of the second group are vaccinated twice at a dose of 10 mg. For dogs of the third group, the first immunization is carried out at a dose of 5 mg, the second at a dose of 10 mg. The fourth group will add control.

На 14-й день после второй иммунизации собак заражают протосколексами эхинококков в дозе 5000 на животное. On the 14th day after the second immunization, the dogs are infected with echinococcus protoscolexes at a dose of 5000 per animal.

Через 35 дней после заражения животных забивают и определяют количество гельминтов. Результаты следующие: 1 группа 1-2 гельминта на животное, 2 группа 6-12, 3 группа 2-3, контрольная группа 1574-2510 гельминтов на животное. Установлена оптимальная доза препарата 5 мг на голову, что совпадает с результатом эксперимента, описанного в примере 1. При этом острая токсичность ЛД50 составила 2500 мг/кг массы животного.35 days after infection, the animals are killed and the number of helminths is determined. The results are as follows: 1 group 1-2 helminths per animal, 2 group 6-12, 3 group 2-3, control group 1574-2510 helminths per animal. The optimal dose of the drug was 5 mg per head, which coincides with the result of the experiment described in example 1. In this case, the acute toxicity of LD 50 was 2500 mg / kg of animal weight.

Пример 12. Испытание протективных свойств препарата при фасциолезе проводят на ягнятах 3-4- месячного возраста. Препарат, полученный как описано в примере 3, вводят дважды внутримышечно с интервалом в 21 день. В течение пастбищного периода (май-январь) за животными ведутся наблюдения, периодически исследуют фекалии на наличие яиц фасциол. В конце пастбищного периода животных забивают и подсчитывают количество фасциол в печени. Результаты эксперимента приведены в табл. 2. ЛД50 500 мг/кг.Example 12. The test of the protective properties of the drug with fascioliasis is carried out on lambs 3-4 months of age. The drug, obtained as described in example 3, is administered twice intramuscularly with an interval of 21 days. During the pasture period (May-January), animals are monitored, feces are periodically examined for the presence of fasciolus eggs. At the end of the grazing period, the animals are killed and the amount of fasciol in the liver is counted. The results of the experiment are given in table. 2. LD 50 500 mg / kg.

Пример 13. Для сравнительного изучения протективных свойств различных серий препарата, полученных согласно примерам 1, 5, 6 и 7, проводят испытание на 60 ягнятах текущего года рождения. За месяц до выгона на пастбище проводят двухкратную вакцинацию ягнят согласно схеме, указанной в табл. 3. Example 13. For a comparative study of the protective properties of various series of the drug obtained according to examples 1, 5, 6 and 7, a test is conducted on 60 lambs of the current year of birth. One month before the pasture, the lambs are vaccinated twice in accordance with the scheme indicated in the table. 3.

Инвазия проводилась на 14 день после вторичной вакцинации в дозе 50 адолескариев на голову. Затем животные были отправлены на пастбище, неблагополочное по фасциолезу. Результаты копрологического исследования, проведенного через 10 мес. выявили наличие лишь отдельных яиц фасциол в I, III, IV, V группах и полное отсутствие таковых у животных во II группе. В контрольной группе в печени каждого животного определяли 30-42 фасциол. The invasion was carried out on day 14 after a secondary vaccination at a dose of 50 adolescaria per head. Then the animals were sent to a pasture, non-fragmental for fascioliasis. The results of a coprological study conducted after 10 months. revealed the presence of only individual fasciolus eggs in groups I, III, IV, V and the complete absence thereof in animals in group II. In the control group, 30-42 fasciol was determined in the liver of each animal.

Пример 14. Протективные свойства Пр-1 при дактиокаулезе испытывались на телятах текущего года рождения. Животных иммунизировали дважды с интервалом в 21 день. Example 14. The protective properties of Pr-1 in dactiocauliasis were tested on calves of the current year of birth. Animals were immunized twice with an interval of 21 days.

Через 14 дней после вторичной иммунизации телят заражали личинками диктиоакул в дозе 500 на животное. На 30-й день животных забивали и определяли количество гельминтов в кишечнике. Результаты представлены в табл. 4. 14 days after secondary immunization, the calves were infected with 500 larvae of dictioacula larvae per animal. On day 30, the animals were sacrificed and the number of helminths in the intestine was determined. The results are presented in table. 4.

Пример 15. Протективные свойства вакцины, полученной согласно примеру 1, были проведены в производственных условиях на 11000 ягнят пастбищного содержания. Example 15. The protective properties of the vaccine obtained according to example 1 were carried out under production conditions for 11,000 lambs of pasture.

За 45 дней до выгона на пастбище вакцина вводилась дважды в дозе 5 мг на голову ягнятам первого месяца жизни. Интервал между вакцинами составил 21 день. 45 days before the pasture, the vaccine was administered twice at a dose of 5 mg per head to the lambs of the first month of life. The interval between vaccines was 21 days.

Через год после вакцинации при забое 1127 ягнят лишь у 6 животных были обнаружены 3-4 ценуры. Не было обнаружено ни диктиоакул, ни эхинококков, ни фасциол. Экстенсивность инвазии невакцинированных животных составила 80-100%
Пример 16. Протективные свойства вакцины, полученной, как описано в примере 1, были проверены в производственных условиях на 11700 ягнят пастбищного содержания.
A year after vaccination, in slaughter of 1127 lambs, only 3-4 animals were found in only 6 animals. No dictioacles, no echinococci, nor fasciol were found. The invasion rate of unvaccinated animals was 80-100%
Example 16. The protective properties of the vaccine obtained as described in example 1 were tested under production conditions for 11700 lambs of pasture.

Вакцина вводилась дважды в дозе 5 мг на голову ягнятам в возрасте 20-30 дней за 45 дней до выгона на пастбище. Интервал между вакцинациями составил 21 день. The vaccine was administered twice in a dose of 5 mg per head to lambs aged 20-30 days 45 days before pasture in the pasture. The interval between vaccinations was 21 days.

Через 7 мес после вакцинации при забое 5000 ягнят лишь у 25 животных были обнаружены 1-3 диктиокаулы. Не было обнаружено ни эхинококков, ни фасциол. Экстенсивность инвазии невакцинированных животных составила 90-100%
Пример 17. Протективные свойства вакцины, полученной, как описано в примерах 8 и 9, были проверены 20 коровах.
7 months after vaccination, when slaughtering 5000 lambs, only 1-3 animals were found 1-3 dictiocaula. No echinococci or fasciol were found. The invasion rate of unvaccinated animals was 90-100%
Example 17. The protective properties of the vaccine obtained as described in examples 8 and 9 were tested in 20 cows.

Вакцина вводилась дважды в дозе 30 мг на голову с интервалом между вакцинациями в 21 день. Через 14 дней после второй вакцинации животных заражали личинками диктиокаул в дозе 500 на голову. Через 30 дней был проведен забой животных и определено количество гельминтов в кишечнике. Результаты представлены в табл. 5. The vaccine was administered twice at a dose of 30 mg per head with an interval between vaccinations of 21 days. 14 days after the second vaccination, the animals were infected with larvae of dictiocaula at a dose of 500 per head. After 30 days, the animals were slaughtered and the number of helminths in the intestine was determined. The results are presented in table. 5.

Пример 18. Лечебные свойства вакцины, полученной согласно примеру 1, были проверены на 45 овцах. Перед иммунизацией животных заражают перорально протосколексами эфинококков в дозе 30000 протосколексов на животное. На 30-й день после заражения у животных определяют количество гельминтов в кишечнике. Вакцину вводят в дозе 5 мг на голову пятикратно или десятикратно с интервалом между введениями 3 дня. Через 14 дней после последней иммунизации животных забивают и определяют количество гельминтов в кишечнике. Результаты эксперимента представлены в табл. 6. Example 18. The therapeutic properties of the vaccine obtained according to example 1 were tested on 45 sheep. Before immunization, animals are infected orally with protoscolexes of efinococcus at a dose of 30,000 protoscolexes per animal. On the 30th day after infection in animals, the number of helminths in the intestine is determined. The vaccine is administered at a dose of 5 mg per head five or ten times with an interval between administrations of 3 days. 14 days after the last immunization, the animals are killed and the number of helminths in the intestine is determined. The experimental results are presented in table. 6.

Пример 19. Лечебные свойства вакцины, полученной, как описано в примере 1, были проверены в производственных условиях на 500 овец пастбищного содержания. Example 19. The therapeutic properties of the vaccine obtained as described in example 1 were tested under production conditions for 500 grazing sheep.

Вакцина вводилась пятикратно в курсовой дозе 50 мг на голову. Интервал между введениями вакцины составил 3 дня. The vaccine was administered five times in a course dose of 50 mg per head. The interval between vaccine administrations was 3 days.

Через 7 мес после вакцинации при забое 3000 овец лишь у 50 животных были обнаружены 2-5 диктиокаулы. Не было обнаружено ни эхинококков, ни фасциол. Экстенсивность инвазии невакцинированных животных составила 90-100%
Источники информации принятые во внимание:
1. Анакина Ю.Г. Иммуннопрофилактика эндопаразитарных болезней животных. М. ВНИИТЭИагропром, 1990 г. 54 с.
7 months after vaccination, when 3,000 sheep were slaughtered, only 2-5 dictiocauls were found in only 50 animals. No echinococci or fasciol were found. The invasion rate of unvaccinated animals was 90-100%
Sources of information taken into account:
1. Anakina Yu.G. Immunoprophylaxis of endoparasitic animal diseases. M. VNIITEIagroprom, 1990 54 p.

2. Шишков В.П. "Иммунология и современные проблемы ветеринарии. Проблемы ветеринарной иммунологии". ВАСХНИЛ, Агропромиздат, 1985 г. с. 3. 2. Shishkov V.P. "Immunology and current problems of veterinary medicine. Problems of veterinary immunology." VASKHNIL, Agropromizdat, 1985 p. 3.

3. Conto Alarcon C. et al. "Ensayo de vaccination contra babesia bovis utilizando antigenos procedentes de cultivo in vitro". Tech. pec. en Mexico, 1982, N 43, p. 43. 3. Conto Alarcon C. et al. "Ensayo de vaccination contra babesia bovis utilizando antigenos procedentes de cultivo in vitro." Tech. pec. en Mexico, 1982, N 43, p. 43.

4. Патент Великобритании N 2037163, кл. A 61 K 39/00, 1983
6. Wayne L. et al. Jnfection and Jmmunity 1989, p. 533 539.
4. UK patent N 2037163, CL A 61 K 39/00, 1983
6. Wayne L. et al. Jnfection and Jmmunity 1989, p. 533 539.

5. WO, заявка 95/07100, кл. A 61 K 39/00, 1995. 5. WO application 95/07100, cl. A 61 K 39/00, 1995.

Claims (3)

1. Вакцина против гельминтозов, содержащая конъюгат иммуностимулирующего носителя с протективным антигеном, отличающаяся тем, что она представляет собой конъюгат общей формулы
Figure 00000003

где n 200 2000 количество элементарных звеньев;
q 0,1 0,35 количество алкилированных звеньев;
z 0,4 0,7 количество окисленных групп;
R протективный антиген, представляющий собой белок, выделенный из структур соединительных тканей, обладающий гиалурозно-лиазной активностью и характеризующийся мол.м. 63000 Д, изоэлектрической точкой 5,7,
при массовом соотношении антигена и носителя 1 1 10.
1. A vaccine against helminthiases containing a conjugate of an immunostimulating carrier with a protective antigen, characterized in that it is a conjugate of the General formula
Figure 00000003

where n 200 2000 the number of elementary links;
q 0.1 0.35 the number of alkylated units;
z 0.4 0.7 the number of oxidized groups;
R is a protective antigen, which is a protein isolated from the structures of connective tissues, having hyaluronic-lyase activity and is characterized by a mol.m. 63000 D, isoelectric point 5.7,
when the mass ratio of antigen and carrier 1 1 10.
2. Вакцина по п.1, отличающаяся тем, что она дополнительно содержит адъювант. 2. The vaccine according to claim 1, characterized in that it further comprises an adjuvant. 3. Вакцина по п.2, отличающаяся тем, что из адъювантов она содержит полиоксидоний, и/или мурамилдипептид, и/или гидроокись алюминия. 3. The vaccine according to claim 2, characterized in that it contains polyoxidonium and / or muramyl dipeptide and / or aluminum hydroxide from the adjuvants.
RU96114608A 1996-08-02 1996-08-02 Vaccine for helminthiasis control RU2095082C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU96114608A RU2095082C1 (en) 1996-08-02 1996-08-02 Vaccine for helminthiasis control

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU96114608A RU2095082C1 (en) 1996-08-02 1996-08-02 Vaccine for helminthiasis control

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2095082C1 true RU2095082C1 (en) 1997-11-10
RU96114608A RU96114608A (en) 1998-09-20

Family

ID=20183513

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU96114608A RU2095082C1 (en) 1996-08-02 1996-08-02 Vaccine for helminthiasis control

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2095082C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2562703C1 (en) * 2014-11-07 2015-09-10 ФАНО России Федеральное государственное бюджетное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт фундаментальной и прикладной паразитологии животных и растений им. К.И. Скрябина (ФГБНУ "ВНИИП им. К.И. Скрябина") Method of preventing muscular stage of trichinellosis

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
1. Даугалиева Э.Х. и др. Специфическая профилактика эхинококкоза, фасциолеза, диктиокаулеза. Тезисы докладов Всесоюзной научно-технической конференции "Современные проблемы иммунологии, биотехнологии, генной и клеточной инженерии в ветеринарной медицине. 10 - 12 октября 1990 г. - Нижний Новгород - М.: 1990, с.39. 2. Wayne L. et al. Jnfection and Jmmunity. - 1989, p.533 - 539. 3. WO, заявка, 95/07100, кл.A 61K 3/00, 1995. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2562703C1 (en) * 2014-11-07 2015-09-10 ФАНО России Федеральное государственное бюджетное научное учреждение Всероссийский научно-исследовательский институт фундаментальной и прикладной паразитологии животных и растений им. К.И. Скрябина (ФГБНУ "ВНИИП им. К.И. Скрябина") Method of preventing muscular stage of trichinellosis

Similar Documents

Publication Publication Date Title
JPH06500772A (en) Improved vaccine composition
JPS58126815A (en) Antigen gene vaccine, its manufacture and its use
US9017699B2 (en) Adjuvancy and immune potentiating properties of natural products of Onchocerca volvulus
EP0003833B2 (en) Antigen derivatives, process for their preparation, pharmaceutical compositions containing them
US4567041A (en) Mutant strain of Listeria monocytogenes and its use in production of IgM antibodies and as an immunotherapeutic agent
DE69534382T2 (en) PEPTIDES, USED AS SUPPORT IN IMMUNOGENIC CONSTRUCTS SUITABLE IN THE DEVELOPMENT OF SYNTHETIC VACCINES
JP2534032B2 (en) Immune modulator and method for producing the same
EP0287206A1 (en) Vaccine against pasteurella
RU2095082C1 (en) Vaccine for helminthiasis control
JP2003506034A (en) New strategies for carbohydrate-based therapeutic vaccines
AU696748B2 (en) Compounds for the prevention and treatment of helminth infections
Outteridge High and low responsiveness to vaccines in farm animals
CA2356452A1 (en) Compositions and methods for reducing or preventing fertilization in fish and birds
RU2021817C1 (en) Method of preparing of vaccine against cholera
RU2021816C1 (en) Method of preparing of vaccine against cholera
CN109651504B (en) Swainsonine antigen and preparation method thereof
BR102019021511A2 (en) Production method of toxocara canis recombinant proteins, targeted as a vaccine to control canine toxocariasis
WO1995009650A1 (en) Albumin-conjugated tumour cell-free extracts, antigenic compositions comprising the same, related antibodies, and uses thereof
AU9608498A (en) Compounds for the prevention and treatment of helminth infections
MXPA06014880A (en) Adjuvancy and immune potentiating properties of natural products of onchocerca volvulus

Legal Events

Date Code Title Description
MM4A The patent is invalid due to non-payment of fees

Effective date: 20140803