RU2092854C1 - Способ получения биомагносорбента - Google Patents

Способ получения биомагносорбента Download PDF

Info

Publication number
RU2092854C1
RU2092854C1 RU94028197A RU94028197A RU2092854C1 RU 2092854 C1 RU2092854 C1 RU 2092854C1 RU 94028197 A RU94028197 A RU 94028197A RU 94028197 A RU94028197 A RU 94028197A RU 2092854 C1 RU2092854 C1 RU 2092854C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
biomaterial
sublimated
magnetic
solution
carrier
Prior art date
Application number
RU94028197A
Other languages
English (en)
Other versions
RU94028197A (ru
Inventor
С.М. Кальной
В.И. Гончаров
Original Assignee
Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт filed Critical Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт
Priority to RU94028197A priority Critical patent/RU2092854C1/ru
Publication of RU94028197A publication Critical patent/RU94028197A/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2092854C1 publication Critical patent/RU2092854C1/ru

Links

Abstract

Назначение: изобретение относится к получению материалов для клинических и иммунологических исследований и может быть использовано в производстве биомагносорбентов. Сущность : сублимированный биоматериал выдерживают в 25-37 %-м растворе сульфата железа в течение 30-50 часов, затем сублимируют и выдерживают в 15-25 %-м растворе аммиака в течение 30-50 часов и снова сублимируют. При этом обе жидкостные обработки проводят при комнатной температуре, а соотношение носителя и обрабатывающей жидкости соблюдают равным 1: 1-2. 1 ил.

Description

Изобретение относится к получению материалов для клинических и иммунологических исследований и может быть использовано в производстве биомагносорбентов с носителем, представляющим собой биологическую клетку.
Изобретением решается задача получения сорбентов с магнитными свойствами, пригодных для проведения иммуносорбционных исследований с высокой степенью стабильности и повышенной сорбционной способностью по отношению к биологическим препаратам.
В настоящее время для выделения и концентрирования антигенного материала, в том числе бактериальных клеток, широко применяются иммуносорбционные методы. Новым этапом усовершенствования этих методов является разработка и применение сорбентов с магнитными свойствами, применение которых позволяет проводить анализы загрязненных проб, а также ускорять исследования, требующие многократной сепарации сорбентов из жидкой фазы.
По своей структуре магнитные сорбенты могут быть простыми, состоящими лишь из магнитного порошка или гранул, на поверхности которых иммобилизован лиганд, и сложными, представляющими собой полимерную основу, в которую фиксирован магнитный материал, с последующей иммобилизацией на ней лиганда. (В. Г. Пушкарь, В.И. Ефременко и др. Приготовление и применение магнитных сорбентов для изучения антигенов микроорганизмов. Ж. микробиологии эпидемиологии и иммунобиологии, N 12, 1985 г. с. 30-34; В.И. Ефременко, В.П. Пушкарь и др. Получение и применение магнитных сорбентов в методах иммуноанализа микроорганизмов. Ж. микробиологии эпидемиологии и иммунобиологии, N 12, 1989 г. с. 100-105; Приготовление и применение магнитных сорбентов для изучения антигенов микроорганизмов. Методические рекомендации. Волгоград, 1984 г.)
В этих работах представлены известные способы получения магнитных сорбентов, в том числе и с биоспецифическими свойствами.
Введение магнитного материала в полимерные гранулы осуществляют методами эмульсионной полимеризации или внедрением в пористые структуры хроматографических гелей мелких магнитных частиц ферромагнитной жидкости. При этом необходима предварительная подготовка магнитного материала, а именно получение частиц определенных размеров (0,5-3 мкм), придание частицам гидрофильных свойств путем их обработки агарозой или ацетоном с последующей фосфатизацией.
Иммобилизацию лигандов на магнитных носителях проводят либо путем адсорбции за счет гидрофобных и электростатистических взаимодействий, либо путем ковалентной связи.
Адсорбционный способ иммобилизации прост по выполнению, требует минимального количества лиганда, однако такие сорбенты имеют малую емкость и теряют специфическую активность в процессе хранения из-за непрочной связи лиганда с носителем.
Ковалентная связь обеспечивает прочное присоединение лигандов за счет наличия на поверхности сорбентов реакционно-функциональных групп. Такие группы на поверхности сорбентов получают предварительной активацией носителя при условиях, обеспечивающих сохранность функциональных групп лигандов. В основном для активации поверхности носителя используют реакции с образованием амидной связи, например, обработка глутаровым альдегидом. Однако закрепление активирующего агента на поверхности носителя недостаточно прочно, так как глутаровый альдегид гидрализуется в водной среде, что приводит к снижению стабильности сорбента в биоспецифических процессах.
После процесса иммобилизации лиганда на поверхности активированного глутаровым альдегидом носителя требуется блокирование оставшихся альдегидных групп путем обработки сорбента аминосодержащимися препаратами (лизин, глюкозамин, альбумин и др.) и промывки фосфатно-солевым буфером.
Таким образом, известные способы получения магноиммуносорбентов являются сложными и многоступенчатыми, так как требуют специальной подготовки магнитного материала, введения его в гранулы носителя, активацию поверхности носителя с целью образования на его поверхности реакционно-функциональных групп, иммобилизацию лиганда и не обеспечивают достаточной степени намагничивания частиц и прочности закрепления лиганда на поверхности сорбента.
Наиболее близким по существу к заявляемому изобретению является способ получения магнитных носителей на основе эритроцитов (Ю.Н. Данилов и др. Концентрирование магнитных носителей на основе эритроцитов в сосудистом русле. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. N 12, 1985 г. с. 701-702.)
Способ включает подготовку магнитного материала, представляющего собой стабилизированный декстрином коллоид магнетита с размерами частиц 10-40 нм, который получали осаждением из солей хлорного и хлористого железа в присутствии декстрина.
Эритроциты подвергали гипотоническому лизису в присутствии магнитного материала с последующим восстановлением целостности мембран.
Полученные таким образом магнитные эритроциты фиксировали глутаровым альдегидом, суспендировали и инкубировали в растворе сывороточного альбумина и использовали в терапии для локализации действия препарата.
В принципе, магнитные эритроциты, полученные по этому способу, могут использоваться как биомагносорбенты для проведения иммунологических исследований более эффективно, чем магноиммуносорбенты, так как имеют стандартные размеры и являются носителями биологической природы, что исключает необходимость подготовки поверхности носителя с целью образования на ней реакционно-функциональных групп для иммобилизации лиганда.
Недостатком прототипа является сложность технологии получения биомагносорбента, обусловленная необходимостью предварительной подготовки магнитного материала с определенными размерами частиц, необходимостью разрушения мембраны носителя методом гипотонического лизиса для адсорбции магнитного материала с последующим ее восстановлением. В свою очередь разрушение мембраны приводит к изменению клеточной структуры биоматериала, следствием чего является снижение стабильности и сорбционных свойств носителя.
Целью изобретения является упрощение технологии получения биомагносорбента при сохранении его клеточной структуры за счет создания условий образования магнитных частиц в структуре носителя и исключения операций разрушения и восстановления мембраны, а также предварительной подготовки биоматериала, создание возможности целенаправленного синтеза различных биомагносорбентов в зависимости от специфики иммунологического исследования за счет использования в качестве носителя соответствующего биоматериала.
Поставленная цель достигается тем, что сублимированный биоматериал, например, эритроциты, микробные клетки чумного вакцинного штамма и др. выдерживают в течение 30-50 ч в 25-37-м растворе сульфата железа, сублимируют и выдерживают в течение 30-50 ч в 15-25-м растворе аммиака и снова сублимируют. При этом обе жидкостные обработки проводят при комнатной температуре, а соотношение носителя и обрабатывающей жидкости составляет 1:1-2.
Сущность изобретения заключается в осуществлении синтеза ферромагнетика в самом биоматериале с сохранением его клеточной структуры. Трехкратное последовательное сублимирование самого биоматериала, после выдерживания его в железосодержащих растворах и окончательное сублимирование после обработки аммиаком и образования в структуре биоматериала оксидов железа обеспечивают сохранение его клеточной структуры и сорбционных свойств.
Выдерживание сублимированного материала в растворе железа и растворе аммиака при определенных концентрациях и времени обработки обеспечивают образование в структуре носителя оксидов железа и придание носителю магнитных свойств.
Проведение жидкостной обработки при комнатной температуре, а также соблюдение заявляемых соотношений биоматериала и обрабатывающей жидкости позволяет сохранить структуру и свойства биоматериала, а следовательно, достигнуть достаточную степень стабильности и сорбционных свойств биомагносорбента.
Обработкой гелей предлагаемым способом не реализуется, так как гели не выдерживают высоких концентраций сульфата железа, то есть образование оксидов железа требует значительного увеличения времени обработки аммиаком, кроме того, сублимирование и высушивание гелей приводит к нарушению их структуры.
Необходимость и достаточность заявляемых концентраций сульфата железа подтверждается зависимостью изменения скорости оседания содержащих оксиды эритроцитов от количества последних синтезированных в биоматериале при насыщении различными концентрациями соли железа, показанной на чертеже где по оси абсцисс представлены значения концентраций сульфата железа, а по оси ординат скорость оседания обработанных эритроцитов.
Пример 1. К 2 мл 15% х сублимированных эритроцитов добавляли 2 мл 25%- го раствора соли FeSO4•7H2O, который готовили на физ-растворе и экспозировали 30 ч при 20oC. Суспензию эритроцитов сублимировали и вносили 2 мл 15% го раствора аммиака экспозировали в течение 30 ч при температуре 20oC, затем снова сублимировали. Сухие эритроциты помещали в магнитное поле, под действием которого отмечали их перемещение по поверхности алюминиевой фольги.
Пример 2. К 1 мл сублимированных микробных клеток чумного вакционного штамма J. pestis EV плотностью 5•1010мк/мл добавляли 1 мл 30% го раствора соли FeSO4•7H2O, который готовили на физ-растворе и экспозировали 40 ч при 20oC. Суспензию эритроцитов сублимировали и вносили 2,5 мл 25% раствора аммиака, экспозировали в течение 50 часов при 20oC и снова сублимировали.
Пример 3. К 2 мл сублимированных 15-х эритроцитов добавляли 2,5 мл 37-го раствора соли FeSO2•7H2O, который который готовили на физрастворе и экспозировали 50 ч при 20oC. Суспензию эритроцитов судлимировали и вносили 2,5 мг 25-го раствора аммиака, экспозировали в течение 50 ч при 20oC и снова сублимировали. Сухие клетки помещали в магнитное поле, под действием которого отмечали их перемещение по поверхности алюминиевой фольги.
Пpимеp 3. К 2 мл сублимиpованных 15-х эpитpоцитов добавляли 2,5 мл 37-го pаствоpа соли FeSO4•7H2O, котоpый готовили на физpаствоpе и экспозиpовали 50 ч пpи 20oC. Суспензию эpитpоцитов сублимиpовали и вносили 2,5 мл 25 -го pаствоpа аммиака, экспозиpовали в течение 50 ч пpи 20oC и снова сублимиpовали. Сухие эpитpоциты помещали в магнитное поле, под действием котоpого отмечали их пеpемещение по повеpхности алюминиевой фольги.
Как показали экспериментальные исследования, уменьшение времени выдерживания биоматериала в железосодержащем и растворе аммиака менее 30 ч приводит к недостаточному количеству образовавшихся внутри клетки оксидов железа, что снижает степень намагничивания.
При увеличении времени насыщения клеток железосодержащим и раствором аммиака более 50 ч происходит окисление и разрушение биоматериала.
Снижение концентрации железосодержащего раствора ниже 25 приводит к недостаточному насыщению материала, что снижает степень намагничивания клеток.
Повышение концентрации железосодержащего раствора более 37 невозможно, так как при нормальных условиях наступает насыщение раствора.
При снижении концентрации аммиака ниже 15 происходит недостаточное образование оксидов железа в материале.
Повышение концентрации аммиака выше 25 нецелесообразно, так как в заявленных пределах происходит синтез оксидов железа в сорбенте.
При снижении соотношения носителя и обрабатывающей жидкости менее, чем 1:1 материал не полностью пропитывается раствором, увеличение содержания раствора более, чем 1:2 приводит к нарушению структуры биоматериала за счет образования оксидов на наружных мембранах.
Таким образом, изобретение практически осуществимо, его использование позволит организовать серийный выпуск биомагносорбентов для различных иммунологических и клинических исследований, предлагаемая технология получения значительно проще и надежнее по сравнению с известными способами.

Claims (1)

  1. Способ получения биомагносорбента, включающий введение ферромагнетика в биоматериал, отличающийся тем, что биоматериал предварительно сублимируют, введение ферромагнетика в биоматериал осуществляют путем выдерживания его в 25 37%-ном растворе сульфата железа в течение 30 50 ч с последующим сублимированием и выдерживанием его в 15 25%-ном растворе аммиака в течение 30 50 ч с окончательным сублимированием, при этом обе жидкостные обработки сублимированного материала проводят при комнатной температуре, а соотношение биоматериала и пропитывающих его растворов соблюдают 1 1 2 соответственно.
RU94028197A 1994-07-27 1994-07-27 Способ получения биомагносорбента RU2092854C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU94028197A RU2092854C1 (ru) 1994-07-27 1994-07-27 Способ получения биомагносорбента

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU94028197A RU2092854C1 (ru) 1994-07-27 1994-07-27 Способ получения биомагносорбента

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU94028197A RU94028197A (ru) 1996-10-27
RU2092854C1 true RU2092854C1 (ru) 1997-10-10

Family

ID=20159005

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU94028197A RU2092854C1 (ru) 1994-07-27 1994-07-27 Способ получения биомагносорбента

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2092854C1 (ru)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2652231C1 (ru) * 2017-02-02 2018-04-25 Федеральное казённое учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Способ получения стандартного образца магнитного сорбента для конструирования медицинских иммунобиологических препаратов

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Данилов Ю.Н. и др. Концентрирование магнитных носителей на основе эритроцитов в сосудистом русле. Бюллетень экспериментальной биологии и медицины. - 1985, N 12, с.701 и 702. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2652231C1 (ru) * 2017-02-02 2018-04-25 Федеральное казённое учреждение здравоохранения Ставропольский научно-исследовательский противочумный институт Федеральной службы по надзору в сфере защиты прав потребителей и благополучия человека Способ получения стандартного образца магнитного сорбента для конструирования медицинских иммунобиологических препаратов

Also Published As

Publication number Publication date
RU94028197A (ru) 1996-10-27

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4169804A (en) Magnetically responsive composite microparticle
US4335094A (en) Magnetic polymer particles
US4464165A (en) Material and method for removing immunoglobulins from whole blood
US7601134B2 (en) Separation
US4920061A (en) Biological magnetic colloids
Denizli et al. DNA-immobilized polyhydroxyethylmethacrylate microbeads for affinity sorption of human immunoglobulin G and anti-DNA antibodies
EP0007932B1 (en) Magnetic polymer particles
JPS59192958A (ja) 表面がグラフト化された粒子状支持体及びその製法並びに該支持体を含むアフイニテイクロマトグラフイ用吸着体及びその生物学的使用
Akkaya et al. Concanavalin A immobilized magnetic poly (glycidyl methacrylate) beads for antibody purification
RU2092854C1 (ru) Способ получения биомагносорбента
Chang Encapsulation of enzymes, cell contents, cells, vaccines, antigens, antiserum, cofactors, hormones, and proteins
US3843444A (en) Membrane separation process
US3873684A (en) Sensitized cell for use in the passive agglutination and method of preparing the same
US4409330A (en) Material and method for removing immunoglobulins from whole blood
JP4178107B2 (ja) ポリマー粒子の調製
Zhang et al. Novel method for bilirubin removal from human plasma within modified polytetrafluoroethylene capillary
JPS6119103A (ja) 磁性粒子
EP0543988B1 (en) Process for producing magnetically responsive polymer particles and application thereof
Houwen et al. Isolation of hepatitis B surface antigen (HBsAg) by affinity chromatography on antibody-coated immunoadsorbents
Ugelstad et al. Biomedical applications of monodisperse magnetic polymer particles
RU2246968C2 (ru) Способ получения магноиммуносорбента для обнаружения бактериальных антигенов
RU2271540C2 (ru) Способ получения биомагноиммуносорбента для обнаружения бактериальных антигенов (варианты)
Blais et al. Extraction of Salmonella antigens in non-sedimentable forms for enzyme immunoassay
AU2008201015B2 (en) Improved separation
RU2366958C2 (ru) Способ очистки крови от антител к тиреоидным гормонам с помощью иммобилизированного гранулированного магнитоуправляемого препарата