RU2084523C1 - Method of preparing the nutrient medium for human blood lymphocytes culturing - Google Patents

Method of preparing the nutrient medium for human blood lymphocytes culturing Download PDF

Info

Publication number
RU2084523C1
RU2084523C1 RU93047591A RU93047591A RU2084523C1 RU 2084523 C1 RU2084523 C1 RU 2084523C1 RU 93047591 A RU93047591 A RU 93047591A RU 93047591 A RU93047591 A RU 93047591A RU 2084523 C1 RU2084523 C1 RU 2084523C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
medium
preparing
nutrient medium
human blood
blood lymphocytes
Prior art date
Application number
RU93047591A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU93047591A (en
Inventor
И.В. Фролова
Н.А. Мазуркова
Г.П. Трошкова
Л.П. Камший
И.А. Гинзбург
Original Assignee
Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор" filed Critical Государственный научный центр вирусологии и биотехнологии "Вектор"
Priority to RU93047591A priority Critical patent/RU2084523C1/en
Publication of RU93047591A publication Critical patent/RU93047591A/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2084523C1 publication Critical patent/RU2084523C1/en

Links

Landscapes

  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

FIELD: biotechnology. SUBSTANCE: nutrient medium has medium RPMI-1640 with HEPES-buffer, cattle serum blood, 3% L-glutamine solution with antibiotics and phytohemagglutinin. The obtained dissolved mixture is sterilized by filtration through diaphragms (pore diameter is 0.22 mcm), dosed in small bottle and subjected for lyophilic drying. Invention provides culturing the human blood lymphocytes at mitotic index = 30, not less, preparing the medium that is stable for prolonged period. Medium is used for diagnostic studies of chromosomal anomalies. EFFECT: improved method of preparing, enhanced quality of medium, simplified using. 2 cl

Description

Предлагаемое техническое решение относится к биотехнологии и касается способа получения питательной среды для культивирования лимфоцитов крови человека в диагностических исследованиях хромосомных аномалий. The proposed technical solution relates to biotechnology and relates to a method of obtaining a nutrient medium for the cultivation of human blood lymphocytes in diagnostic studies of chromosomal abnormalities.

Известны выпускаемые фирмами Difco(USA), Gibco (Great Britain) диагностические наборы для исследования человеческих хромосом, основным недостатком которых является необходимость перед использованием дозировать отдельные входящие в состав набора реагенты, что требует асептических условий и значительных затрат времени, а также дефицитность этих компонентов. Diagnostic kits for the study of human chromosomes produced by the firms Difco (USA), Gibco (Great Britain) are known, the main disadvantage of which is the need to dose the individual reagents that are part of the kit before use, which requires aseptic conditions and a significant investment of time, as well as the scarcity of these components.

Чаще всего в медицинской практике при исследовании хромосомных аномалий у человека лимфоциты крови культивируют в питательных средах, которые перед введением пробы крови готовят каждый раз, смешивая исходные компоненты по прописям известных зарубежных фирм [1] Кроме характерных для диагностических наборов, основным недостатком такого способа получения сред является невоспроизводимость результатов хромосомного анализа. Известны также питательные среды стандартного изготовления для культивирования клеток крови человека [2] и животных [3] описанные в аналогах, однако без введения в их состав митогена, весьма лабильного в жидкой среде. Эти среды не пригодны для культивирования лимфоцитов крови с целью выделения препарата хромосом и последующих диагностических исследований. Most often in medical practice, when studying chromosomal abnormalities in humans, blood lymphocytes are cultured in nutrient media, which are prepared each time before the introduction of a blood sample, mixing the starting components according to the prescriptions of well-known foreign companies [1] In addition to characteristic for diagnostic kits, the main disadvantage of this method of obtaining media is the irreproducibility of the results of chromosome analysis. Nutrient media of standard manufacture for the cultivation of human blood cells [2] and animals [3] are described in analogues, however, without introducing into their composition mitogen, which is very labile in a liquid medium. These media are not suitable for the cultivation of blood lymphocytes in order to isolate the chromosome preparation and subsequent diagnostic studies.

Задачей предлагаемого изобретения является создание готовой формы стандартной по составу питательной среды, обеспечивающей культивирование лимфоцитов крови человека с митотическим индексом не ниже 30, стабильной в течение продолжительного срока, удобной для использования в медицинской практике в любых условиях, в т.ч. и полевых. The objective of the invention is the creation of a finished form of a standard composition of a nutrient medium that ensures the cultivation of human blood lymphocytes with a mitotic index of at least 30, stable for a long period, convenient for use in medical practice in any conditions, including and field.

Для решения этой задачи питательную среду для культивирования лимфоцитов крови человека, в состав которой входит питательная среда RPM1-1640 с HEPES-буфером, сыворотка крови крупного рогатого скота (КРС), раствор 3%-ной массовой доли L-глутамина с антибиотиками, согласно изобретению, на стадии смешения исходных компонентов до полного их растворения дополнительно вводят фитогемагглютинин, полученную растворенную смесь стерилизуют фильтрацией через мембраны с диаметром пор 0,22 ммк, дозируют во флаконы и лиофильно высушивают при следующем соотношении исходных составляющих:
Питательная среда RPM1-1640 с HEPES 3,0 3,5 мл (3,027 мл)
Раствор 3% -ной массовой доли L-глутамина с антибиотиками 0,06 0,08 мл (0,072 мл)
Фитогемагглютинин 0,04 0,15 мг
Сыворотка крови КРС 0,3 0,9 мл (0,865 мл)
При использовании 1 дозы сухой стерильной среды, полученной из 4 мл растворенной смеси, вносят во флакон со средой 4 мл стерильной деионизованной воды (удельное сопротивление 10 18 МОм) и 0,4 мл крови человека и, используя флакон как ферментатор, культивируют лимфоциты при (37±0,1)oC в течение 72 ч. Характер роста лимфоцитов крови стандартная суспензия.
To solve this problem, a nutrient medium for the cultivation of human blood lymphocytes, which includes a nutrient medium RPM1-1640 with HEPES buffer, serum of cattle (cattle), a solution of a 3% mass fraction of L-glutamine with antibiotics, according to the invention , at the stage of mixing the starting components, phytohemagglutinin is additionally introduced until they are completely dissolved, the resulting dissolved mixture is sterilized by filtration through membranes with a pore diameter of 0.22 mmk, metered into vials and freeze-dried in the following ratio tion of the initial components:
Culture medium RPM1-1640 with HEPES 3.0 3.5 ml (3.027 ml)
A solution of a 3% mass fraction of L-glutamine with antibiotics 0.06 0.08 ml (0.072 ml)
Phytohemagglutinin 0.04 0.15 mg
Serum of cattle 0.3 0.9 ml (0.865 ml)
When using 1 dose of dry sterile medium obtained from 4 ml of a dissolved mixture, 4 ml of sterile deionized water (resistivity 10 18 MΩ) and 0.4 ml of human blood are introduced into a vial with medium and, using the vial as an fermenter, lymphocytes are cultured at ( 37 ± 0,1) o C for 72 hours. The nature of the growth of blood lymphocytes standard suspension.

В 1 л раствора 3%-ный массовой доли L-глутамина с антибиотиками содержится 30,0 г L-глутамина, 2,5 г канамицина сульфата, 5,0 г стрептамицина сульфата, 5•106 ед. активности безнзилпенциллина натриевой соли.In 1 l of the solution, a 3% mass fraction of L-glutamine with antibiotics contains 30.0 g of L-glutamine, 2.5 g of kanamycin sulfate, 5.0 g of streptamycin sulfate, 5 • 10 6 units. activity of benzylpencillin sodium salt.

Поскольку культивирование лимфоцитов стимулируется входящим в состав среды лабильным митогеном ФГА, который в оптимальных концентрациях способствует делению лимфоцитов, а в повышенных подавляет рост и вызывает деструкцию лимфоцитов, перед составлением среды контролируют митотическую активность ФГА путем введения его в образцы среды в различной концентрации от 0,01 до 0,04 мкг/мл и определения митотического индекса для образцов крови одного и того же человека. Since the cultivation of lymphocytes is stimulated by the labile PHA mitogen, which at optimal concentrations promotes the division of lymphocytes, and in elevated ones inhibits growth and causes destruction of lymphocytes, before the preparation of the medium, mitotic activity of PHA is controlled by introducing it into samples of the medium at various concentrations from 0.01 up to 0.04 μg / ml and determination of the mitotic index for blood samples of the same person.

Количественное содержание компонентов среды меньше указанной границы обеспечивает митотический индекс менее 30. Количественное содержание компонентов среды больше указанных в предлагаемом составе приводит к деструкции лимфоцитов. The quantitative content of the components of the environment less than the specified boundary provides a mitotic index of less than 30. The quantitative content of the components of the environment greater than those specified in the proposed composition leads to the destruction of lymphocytes.

Наименьшее количество ФГА, которое обеспечивает не менее 30 митотических пластинок на 1000 клеток культуры, является оптимальным для данной серии среды. The smallest amount of PHA, which provides at least 30 mitotic plates per 1000 culture cells, is optimal for this series of medium.

Предлагаемое техническое решение поясняется следующими примерами. The proposed technical solution is illustrated by the following examples.

Пример 1. Example 1

В реактор загружают 1260 мл питательной среды RPM1-1640, содержащей 5,8 г HEPES-буфера, добавляют 125 мл жидкой стерильной сыворотки крови КРС, 30 мл 3% -ного раствора L-глутамина, содержащего бензилпенициллина натриевую соль в концентрации 90 ед/мл, канамицина сульфат 0,045 мг/мк, стрептомицина сульфат 0,09 мг/мл и 17 мг ФГА, растворенного в (15±1) мл стерильной деионизованной воды. Содержимое реактора перемешивают в течение 15 20 мин до полного растворения и подвергают стерилизующей фильтрации через мембраны с диаметром пор 0,22 мкм с одновременным дозированием во флаконы по (4,0±0,1) мл, охлаждают в сублимационной камере до температуры минус 45oC в течение 10 12 ч и лиофильно высушивают в течение 48 ч. Получают 410 -420 флаконов сухой питательной среды, пригодной для культивирования лимфоцитов крови человека.1260 ml of RPM1-1640 nutrient medium containing 5.8 g of HEPES buffer are loaded into the reactor, 125 ml of sterile liquid cattle serum, 30 ml of a 3% solution of L-glutamine containing benzylpenicillin sodium salt are added at a concentration of 90 u / ml , kanamycin sulfate 0.045 mg / µ, streptomycin sulfate 0.09 mg / ml and 17 mg PHA dissolved in (15 ± 1) ml of sterile deionized water. The contents of the reactor are mixed for 15 to 20 minutes until they are completely dissolved and subjected to sterilizing filtration through membranes with a pore diameter of 0.22 μm with simultaneous dosing of (4.0 ± 0.1) ml into vials, cooled in a sublimation chamber to a temperature of minus 45 o C for 10 12 hours and freeze-dried for 48 hours. Receive 410 -420 bottles of dry nutrient medium suitable for the cultivation of human blood lymphocytes.

Пример 2. Example 2

В реактор загружают 1260 мл питательной среды RPM1-1640, содержащей 7,5 г HEPES-буфера, добавляют 375 мл жидкой стерильной сыворотки крови КРС, 30 мл 3%-ного раствора L-глутамина, содержащего антибиотики в концентрации (см. пример 1) и 60 мг ФГА, растворенного в (15±1) мл стерильной деионизованной воды. Далее см. пример 1. 1260 ml of RPM1-1640 nutrient medium containing 7.5 g of HEPES buffer are loaded into the reactor, 375 ml of sterile liquid blood serum of cattle, 30 ml of a 3% solution of L-glutamine containing antibiotics in concentration are added (see example 1) and 60 mg of PHA dissolved in (15 ± 1) ml of sterile deionized water. Further see example 1.

Пример 3. Example 3

Контроль пригодности среды для культивирования осуществляют путем внесения в асептических условиях во флаконы с сухой средой 4 мл стерильной деионизованной воды и 0,4 мл свежеотобранной от пациента периферической крови. Культивируют при (37±1)oC в течение 72 ч, после чего останавливают клеточное деление на стадии метафазы добавлением к культуральной суспензии 0,22 мл раствора колхицина с концентрацией 0,00004 мг/мл. Клетки лимфоцитов выделяют центрифугированием. Число метафазных пластинок определяют нанесением пробы на предметное стекло. После высушивания и окрашивания красителем Гимза-Романовского определяют митотический индекс, который должен составлять 30 и более.The suitability of the cultivation medium is monitored by introducing aseptically 4 ml of sterile deionized water and 0.4 ml of freshly collected peripheral blood into vials of dry medium. Cultivate at (37 ± 1) o C for 72 h, after which the cell division is stopped at the metaphase stage by adding 0.22 ml of colchicine solution with a concentration of 0.00004 mg / ml to the culture suspension. Lymphocyte cells are isolated by centrifugation. The number of metaphase plates is determined by applying a sample to a glass slide. After drying and staining with Giemsa-Romanovsky dye, the mitotic index is determined, which should be 30 or more.

Анализ экспериментальных данных показывает, что предлагаемая среда в отличие от известных аналогов вместо фетальной сыворотки содержит более доступную и дешевую сыворотку крови КРС, выпускаемую согласно ФС 42 246 ВС - 87, изготовленную из отечественных компонентов среды RPM1-1640 (ФС42-365 ВС•91), не содержит гепарина. Предлагаемая среда удобна для использования в медицинской практике в любых условиях, в т.ч. и полевых. An analysis of experimental data shows that the proposed medium, in contrast to the known analogues, instead of fetal serum, contains more affordable and cheaper cattle blood serum produced according to FS 42 246 BC - 87, made from domestic components of RPM1-1640 medium (FS42-365 BC • 91) does not contain heparin. The proposed environment is convenient for use in medical practice in any conditions, including and field.

Литература
The Catalogue for Cell Cultue and Cell Biology, p. 77-80, фирма Cibco BRL.
Literature
The Catalog for Cell Cultue and Cell Biology, p. 77-80, Cibco BRL.

2. Авторское свидетельство СССР N1678830, кл.C 12 N 5/18, C 12 P 21/08, 1989. 2. USSR author's certificate N1678830, class C 12 N 5/18, C 12 P 21/08, 1989.

3. Авторское свидетельство СССР N1576562, кл.C 12 N 5/00, 1988.0 3. USSR author's certificate N1576562, class C 12 N 5/00, 1988.0

Claims (1)

1. Способ получения питательной среды для культивирования лимфоцитов крови человека путем смешивания стандартной питательной среды с сывороткой крови, антибиотиками и ФГА, отличающийся тем, что среда дополнительно содержит L-глутамин, из стандартных питательных сред RPMI-1640 на Hepes буфере, из сывороток крови сыворотку крупного рогатого скота, после чего полученную смесь стерилизуют, дозируют и лиофильно высушивают при следующем соотношении исходных компонентов:
Питательная среда RPMI-1640 3,0 3,5 мл
Hepes-буфер 14 18 мг
Раствор 3%-ной массовой доли L-глутамина с антибиотиками 0,06 0,08 мл
Фитогемагглютинин 0,04 0,15 мг
Сыворотка крови крупного рогатого скота 0,3 0,9 мл
2. Способ по п.1, отличающийся тем, что среду стерилизуют фильтрацией через мембраны с диаметром пор 0,22 мкм, а дозирование осуществляют по 4 мл.
1. A method of obtaining a nutrient medium for the cultivation of human blood lymphocytes by mixing a standard nutrient medium with blood serum, antibiotics and PHA, characterized in that the medium additionally contains L-glutamine, from standard nutrient media RPMI-1640 on Hepes buffer, from blood serum cattle, after which the resulting mixture is sterilized, dosed and freeze-dried in the following ratio of the starting components:
Culture medium RPMI-1640 3.0 3.5 ml
Hepes buffer 14 18 mg
A solution of a 3% mass fraction of L-glutamine with antibiotics 0.06 0.08 ml
Phytohemagglutinin 0.04 0.15 mg
Cattle blood serum 0.3 0.9 ml
2. The method according to claim 1, characterized in that the medium is sterilized by filtration through membranes with a pore diameter of 0.22 μm, and dosing is carried out in 4 ml.
RU93047591A 1993-10-06 1993-10-06 Method of preparing the nutrient medium for human blood lymphocytes culturing RU2084523C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU93047591A RU2084523C1 (en) 1993-10-06 1993-10-06 Method of preparing the nutrient medium for human blood lymphocytes culturing

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU93047591A RU2084523C1 (en) 1993-10-06 1993-10-06 Method of preparing the nutrient medium for human blood lymphocytes culturing

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU93047591A RU93047591A (en) 1996-06-20
RU2084523C1 true RU2084523C1 (en) 1997-07-20

Family

ID=20148203

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU93047591A RU2084523C1 (en) 1993-10-06 1993-10-06 Method of preparing the nutrient medium for human blood lymphocytes culturing

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2084523C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2003055508A1 (en) * 2001-12-21 2003-07-10 Essentys Ab Composition for the treatment of renal failure or gastric dysfunction of e.g. premature or neonatal mammals

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
The Cataloque for Cell Culture and Cell Biology, p.77-80, фирма Gibco BRL. Moorhead P.S. et al. Chromosome preparation of leukocytes cultur from man peripherol blood. Exptl. Cell Res. 1960, 20, N 3, p. 613-616. *

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2003055508A1 (en) * 2001-12-21 2003-07-10 Essentys Ab Composition for the treatment of renal failure or gastric dysfunction of e.g. premature or neonatal mammals

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Pike et al. Human bone marrow colony growth in agar‐gel
Afzelius Electron microscopy on the basophilic structures of the sea urchin egg
Avery et al. Studies on the chemical nature of the substance inducing transformation of pneumococcal types. Inductions of transformation by a desoxyribonucleic acid fraction isolated from pneumococcus type III.
Foxall et al. Continuous perfusion of mammalian cells embedded in agarose gel threads
CN106754681B (en) A kind of platelet rich plasma and preparation method and application
CN109430252A (en) A kind of stem cell cryopreserving liquid and preparation method thereof
Vandenbark et al. Inhibition of lymphocyte transformation by a naturally occurring metabolite: 5′-methylthioadenosine
Britt et al. Protein accumulation in early chick embryos grown under different conditions of explantation
Pauly et al. Whole blood microculture assay of human lymphocyte function
Maurer et al. Colony growth of mouse bone marrow cells in agar contained in glass capillaries
Goldstein et al. Some biological and physicochemical properties of blue-green algal virus LPP-1
Hiraki et al. The method of tissue culture (mainly of the bone marrow) and a simple method of observing living tissue
Spielvogel et al. Mononuclear cell stimulation of fibroblast collagen synthesis
RU2084523C1 (en) Method of preparing the nutrient medium for human blood lymphocytes culturing
JPH04507199A (en) Methods and apparatus for performing cytotoxicity assays on tumor cells
US3072538A (en) Isolation of bacteria
Peters Preparation of large quantities of pure bovine lymphocytes and a monolayer technique for lymphocyte cultivation
Parker et al. NUTRITION OF ANIMAL CELLS IN TISSUE CULTURE: VII. USE OF REPLICATE CELL CULTURES IN THE EVALUATION OF SYNTHETIC MEDIA
Zakai et al. Fusion of erythrocytes and other cells with retention of erythrocyte cytoplasm: Nuclear activation in chicken erythrocyte-melanoma heterokaryons
Raina et al. Comparative metabolic studies on normal and neoplastic rat liver
Wollman et al. Muscle fiber formation in vitro is delayed by low power laser irradiation
Turi et al. Systems approach to study of solute transport across membranes using suspension cultures of mammalian cells II: Experimental procedures and uptake studies with cholesterol
Lowenhaupt et al. A quantitative method to measure human platelet chemotaxis using indium-111-oxine-labeled gel-filtered platelets
McGee Jr et al. A new capillary tube system for measuring the uptake and release of materials from cultured cells
Inada et al. Fibrin membrane endowed with biological function. III. Fixing living cells in fibrin gel without impairing their functions