RU2083587C1 - Process for preparing triterpenic glycopeptides - Google Patents
Process for preparing triterpenic glycopeptides Download PDFInfo
- Publication number
- RU2083587C1 RU2083587C1 RU94026991A RU94026991A RU2083587C1 RU 2083587 C1 RU2083587 C1 RU 2083587C1 RU 94026991 A RU94026991 A RU 94026991A RU 94026991 A RU94026991 A RU 94026991A RU 2083587 C1 RU2083587 C1 RU 2083587C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- glycopeptides
- complex
- mmol
- solution
- mixture
- Prior art date
Links
- ZHSKTPGAOINRIB-UHFFFAOYSA-N CC(C(C(F)=C1F)O)=C(C2CC2)C1F Chemical compound CC(C(C(F)=C1F)O)=C(C2CC2)C1F ZHSKTPGAOINRIB-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 2
- QYBUKSDANHETMA-UHFFFAOYSA-N Oc(c(F)c(c(F)c1C2CC2)F)c1F Chemical compound Oc(c(F)c(c(F)c1C2CC2)F)c1F QYBUKSDANHETMA-UHFFFAOYSA-N 0.000 description 1
Landscapes
- Organic Low-Molecular-Weight Compounds And Preparation Thereof (AREA)
- Peptides Or Proteins (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к способу получения свободных тритерпеновых гликопептидов производных глицирризиновой кислоты (ГК) (I) общей формулы (II), представляющих интерес для медицины в качестве иммуномодуляторов и анти-ВИЧ средств
Известен способ получения карбокси-защищенных гликопептидов ГК, состоящий в конденсации гликозида (карбокси-компонент) с эфирами аминокислот (метиловыми и трет-бутиловыми),
взятыми в виде их гидрохлоридов (аминокомпонент) (АК) с помощью N-гидроксисукцинимида (HOSu)-N, N'-дициклогексилкарбодиимида (ДЦГК) в среде тетрагидрофурана или диоксана в присутствии триэтиламина (ТЭА) (прототип), с последовательным выдерживанием реакционной массы при температуре 0-5oC 3 ч, комнатной 6 ч, 4-8oC 12 ч с последующим взаимодействием образовавшегося трисоксисукцинимидного эфира с АК при 0-5oC и выдерживанием реакционной массы при комнатной температуре 24 ч при молярном соотношении реагентов ГК/HOSu/ДЦГК/АК/OCH= 2/10-10,4/6-6,4/6-7/9,8-10,8 ммоль, выход карбоксизащищенных гликопептидов ГК (IY) 46-86% (схема 1).The invention relates to a method for producing free triterpene glycopeptides of glycyrrhizic acid derivatives (HA) (I) of general formula (II) of interest for medicine as immunomodulators and anti-HIV agents
A known method for producing carboxy-protected glycopeptides HA, consisting in the condensation of a glycoside (carboxy component) with amino acid esters (methyl and tert-butyl),
taken in the form of their hydrochlorides (aminocomponent) (AK) using N-hydroxysuccinimide (HOSu) -N, N'-dicyclohexylcarbodiimide (DCCA) in tetrahydrofuran or dioxane in the presence of triethylamine (TEA) (prototype), with successive aging of the reaction mass at temperature 0-5 o C 3 h, room 6 h, 4-8 o C 12 h followed by the interaction of the resulting trisoxysuccinimide ether with AA at 0-5 o C and keeping the reaction mass at room temperature for 24 h at a molar ratio of HA / HOSu reagents / DTSGK / AK / OCH = 2 / 10-10.4 / 6-6.4 / 6-7 / 9.8-10.8 mmol, yield ka boksizaschischennyh glycopeptides HA (IY) 46-86% (Figure 1).
Недостатком данного способа является протекание побочной реакции образования сукцинимидоксикарбонил β аланина, что снижает выход целевых продуктов (в данном случае гликопептидов ГК):
Кроме того, основным недостатком предложенного нами ранее способа является использование в качестве реагента (аминокомпонента) эфиров аминокислот или дипептидов в виде солей (HCI), в результате чего конечным продуктом реакции являются карбоксизамещенные гликопептиды формулы (IY), содержащие фрагменты метиловых и трет-бутиловых эфиров аминокислот или дипептидов. Для получения полностью деблокированных гликопептидов формулы (II), где R-фрагменты свободных аминокислот, необходимо проведение дополнительной стадии синтеза, связанной с уделением карбоксизащитных сложноэфирных групп:
а) обработка трифторуксусной кислотой в случае трет-бутиловых эфиров;
б) щелочной гидролиз (КОН или NaOH в метаноле) в случае метиловых эфиров.The disadvantage of this method is the occurrence of a side reaction of the formation of succinimidoxycarbonyl β alanine, which reduces the yield of the target products (in this case, glycopeptides HA):
In addition, the main disadvantage of the previously proposed method is the use of amino acid esters or dipeptides in the form of salts (HCI) as a reagent (amino component), as a result of which the carboxy-substituted glycopeptides of formula (IY) containing fragments of methyl and tert-butyl ethers are the final reaction product amino acids or dipeptides. To obtain fully unlocked glycopeptides of the formula (II), where R-fragments of free amino acids, it is necessary to carry out an additional stage of synthesis associated with the carboxy-protective ester groups:
a) treatment with trifluoroacetic acid in the case of tert-butyl esters;
b) alkaline hydrolysis (KOH or NaOH in methanol) in the case of methyl esters.
Как показали наши исследования, деблокирование защищенных гликопептидов ГК, содержащих фрагменты метиловых эфиров аминокислот, путем щелочного гидролиза приводит к сложной смеси продуктов в результате расщепления гликозидных связей. При обработке трифторуксусной кислотой гликопептидов ГК, содержащих фрагменты трет-бутиловых эфиров аминокислот, выходы свободных гликопептидов составили 43-47% (примеры 8, 9). В качестве примера мы приводим две методики получения целевых гликопептидов (IVд,з) по способу-прототипу. Поэтому получение свободных тритерпеновых гликопептидов ГК формулы (II), представляющих интерес для медицины в качестве потенциальных иммуномодулирующих и антивирусных средств, пригодных для получения инъекционных форм, является актуальной задачей. В предложенном техническом решении упрощена технология получения свободных гликопептидов ГК формулы II, благодаря принципу "минимальной защиты", исключающей процесс деблокирования. As our studies have shown, the release of protected HA glycopeptides containing fragments of amino acid methyl esters by alkaline hydrolysis leads to a complex mixture of products as a result of cleavage of glycosidic bonds. When trifluoroacetic acid was treated with HA glycopeptides containing fragments of tert-butyl amino acid esters, the yields of free glycopeptides were 43-47% (examples 8, 9). As an example, we give two methods for obtaining the target glycopeptides (IVd, h) according to the prototype method. Therefore, obtaining free triterpene glycopeptides of the HA of formula (II), which are of interest to medicine as potential immunomodulating and antiviral agents suitable for the production of injectable forms, is an urgent task. The proposed technical solution simplified the technology for producing free glycopeptides of HA of formula II, due to the principle of "minimal protection", excluding the release process.
Гликопептиды ГК формулы (II) образуются в результате конденсации активированного интермедиата КГ (VI) с аминокислотами или дипептидами в среде ДМФА в присутствии 1N раствора NaOH. Для получения активированного эфира ГК (VI) (схема 2) ГК обрабатывают комплексом F (комплекс пентафторфенола с N, N'-дициклогексилкарбодиимидом состава 3: 1) (У) при 0-5oC в ДМФА. Молярное соотношение реагентов ГК /комплекс F/ аминокомпонент равно 1/3/3-4 ммоль
Способ состоит в том, что глицирризиновую кислоту (I) (1 ммоль) обрабатывают при 0 -5oC при перемешивании комплексом F (3 ммоль) в среде ДМФА в течение 1 ч, при комнатной температуре 4ч, получая активированный интермедиат (VI), который после отделения осадка N, N' -дициклогексилмочевины подвергают взаимодействию с аминокомпонентом (АК) (аминокислотами или дипептидами) формулы RNH 2, где
в среде ДМФА в присутствии 1N раствора NaOH при молярном соотношении реагентов ГК/комплекс F/AK, равном 1/3/3-4 ммоль при 0oС с последующим выдерживанием реакционной смеси при комнатной температуре в течение 24 ч. Целевые гликопептиды П (а-ж) выделяют путем разбавления реакционной смеси колодной водой и подкисления лимонной кислотой до pH≈3. Полученный осадок отфильтровывают и переосаждают из смеси хлороформ метанол (5:1) эфиром. Выход гликопептидов (П а-ж) составил 62,5-90,9% После очистки колоночной хроматографией выход продуктов составляет 44,4-57,9%
Отличия предлагаемого способа следующие.GC glycopeptides of formula (II) are formed as a result of condensation of the activated KG (VI) intermediate with amino acids or dipeptides in DMF in the presence of a 1N NaOH solution. To obtain an activated ester of HA (VI) (Scheme 2), HA is treated with complex F (a complex of pentafluorophenol with N, N'-dicyclohexylcarbodiimide with a composition of 3: 1) (Y) at 0-5 ° C in DMF. The molar ratio of HA reagents / complex F / amine component is 1/3 / 3-4 mmol
The method consists in the fact that glycyrrhizic acid (I) (1 mmol) is treated at 0 -5 o C with stirring with complex F (3 mmol) in DMF for 1 h, at room temperature for 4 h, obtaining the activated intermediate (VI), which, after separation of the precipitate, N, N '-dicyclohexylurea is reacted with an amino component (AA) (amino acids or dipeptides) of the formula RNH 2 , where
in DMF medium in the presence of a 1N NaOH solution at a molar ratio of HA / complex F / AK reagents equal to 1/3 / 3-4 mmol at 0 ° C, followed by maintaining the reaction mixture at room temperature for 24 hours. Target glycopeptides P (a g) are isolated by diluting the reaction mixture with well water and acidifying with citric acid to pH≈3. The precipitate obtained is filtered off and reprecipitated from a mixture of chloroform methanol (5: 1) with ether. The yield of glycopeptides (P a-g) was 62.5-90.9%. After purification by column chromatography, the yield of products was 44.4-57.9%
The differences of the proposed method are as follows.
1. Для активации карбоксильных групп глицирризиновой кислоты используется комплекс F (схема 2) вместе N гидроксисукцинимида (HOSu) N, N' -дициклогексилкарбодиимида (ДЦГК) в известном способе [4] (схема 1). В качестве активированного интермедиата образуется при этом трис-пентафторфениловый эфир ГК (VI). 1. To activate the carboxyl groups of glycyrrhizic acid, complex F is used (Scheme 2) together with N hydroxysuccinimide (HOSu) N, N '-dicyclohexylcarbodiimide (DCCH) in the known method [4] (Scheme 1). In this case, HA (VI) tris-pentafluorophenyl ether is formed as an activated intermediate.
2. В качестве растворителя используется N, N -диметилформамид (ДМФА). 2. The solvent used is N, N-dimethylformamide (DMF).
3. В качестве аминокомпонента (АК) используются свободные аминокислоты или дипептиды. 3. As the amino component (AK), free amino acids or dipeptides are used.
4. В качестве основания используется 1N раствор NaOH вместо третичного амина (триэтиламин) в известном способе. 4. As the base, a 1N NaOH solution is used instead of the tertiary amine (triethylamine) in the known method.
Пример 1. Трис-пентафторфениловый эфир глицирризиновой кислоты (VI). Example 1. Tris-pentafluorophenyl ester of glycyrrhizic acid (VI).
К раствору 0,82 г (1 ммоль) глицирризиновой кислоты в 30 мл диметилформамида (ДМФА) при 0oC прибавили при перемешивании 2,28 г (3 ммоль) комплекса F и перемешивали смесь при этой температуре 1 ч, при комнатной температуре (20-22oC) 4 ч. Выдерживали реакционную смесь в холодильнике (4 -8oC) в течение ночи и отфильтровывали осадок дициклогексилмочевины. Полученный раствор пентафторфенилового эфира ГК (VI) использовали в реакции конденсации с аминокомопнентами.To a solution of 0.82 g (1 mmol) of glycyrrhizic acid in 30 ml of dimethylformamide (DMF) at 0 ° C, 2.28 g (3 mmol) of complex F was added with stirring and the mixture was stirred at this temperature for 1 h at room temperature (20 -22 o C) 4 h. The reaction mixture was kept in the refrigerator (4 -8 o C) overnight and the dicyclohexylurea precipitate was filtered off. The resulting solution of HA (VI) pentafluorophenyl ether was used in the condensation reaction with amine components.
Пример 2. 3-0-2-0-[N-(β) D-глюкопиранозил уронол)- L -аланин -N-(b- D-глюкопиранозилуроноил) L -аланин} (3β, 20β), -11-оксо-30-(N-карбонил-L-аланин) -30- норолеан- 12-ен (llа). Example 2. 3-0-2-0- [N- (β) D-glucopyranosyl uronol) - L-alanine -N- (b-D-glucopyranosyluronoyl) L-alanine} (3β, 20β), -11-oxo -30- (N-carbonyl-L-alanine) -30- norolean-12-ene (lla).
К раствору 0,36 г (4 ммоль) L аланина в 10 мл I N раствора NaOH прибавили 10 мл ДМФА, охладили до 0oC и при перемешивании прибавили по каплям раствор пентафторфенилового эфира ГК (VI) (1 ммоль) в 30 мл ДМФА (пример 1), перемешивали смесь 30 мин при охлаждении и выдерживали при комнатной температуре 24 ч с периодическим перемешиванием. Разбавили реакционную смесь 200 мл холодной водой, подкислили лимонной кислотой до pH≈3. Выпавший осадок отфильтровали, промывали водой и высушили. Получили 1,03 г (99,4%) сырого гликопептида llа, который переосадили из смеси хлороформа метанола (5:1, Y/Y) эфиром. Выход 0,8 г (77,2%). Rf 0,47 (Хлороформ метанол-вода, 45:10:1); [α]
ИК-спектр, ν, см-1: 3600-3200 (OH,NH); 1720 (COOH); 1670 (C11 0); 1540 (CONH). УФ-спекр, λ
Пример 3. 3-0-{ 2-0-[N-(b-D-глюкопиранозиоуроноил)-L-валин] -N- (b-D-глюкопиранозилуроноил)-L валин} 3β, 20β-11-оксо-30-(N-карбонил -L-валин)-30-норолеан -12- ен (llб). Example 3. 3-0- {2-0- [N- (bD-glucopyranosiuronoyl) -L-valine] -N- (bD-glucopyranosyluronoyl) -L valine} 3β, 20β-11-oxo-30- (N- carbonyl-L-valine) -30-norolean-12-ene (llb).
К раствору 0,35 г (3 ммоль) L-валина в 10 мл IN раствора NaOH прибавили 10 мл ДМФА, охладили до 0oC и при перемешивании прибавили по каплям раствор 1 ммоль пентафторфенилового эфира ГК (VI)(пример 1) в 30 мл ДМФА, перемешивали смесь при 0oC 30 мин и выдержали при комнатной температуре 24 ч. Разбавили реакционную смесь 200 мл холодной водой, подкислили лимонной кислотой до pH≈ 2. Осадок отфильтровали, промыли водой и высушили. Получили 1,12 г (91,1% ) сырого гликопептида (llб), который переосадили из ацетона гексаном. Выход 0,9 г (80,4%). Rf 0,5 (хлороформ-метанол-вода, 45:10:1); [α]
Пример 4. 3-0-{2-0-[N-( b -D-глюкопиранозилураноил)-L -метионин]-N-( b -D-глюкопиранозилуроноил)-L-метионин} (3β, 20β) -II- оксо-30-(N-карбонил-L-метионин)-30-норолеан-12-ен (llв). Example 4. 3-0- {2-0- [N- (b-D-glucopyranosyluranoyl) -L-methionine] -N- (b -D-glucopyranosyluronoyl) -L-methionine} (3β, 20β) -II- oxo-30- (N-carbonyl-L-methionine) -30-norolean-12-ene (llv).
К раствору 0,58 г (4 ммоль) L-метионина в 10 мл ДМФА прибавили 10 мл 1N раствора NaOH, охладили до 0oC и при перемешивании прибавили по каплям раствор 1 ммоль пентафторфенилового эфира ГК (VI) в 30 мл ДМФА (пример 1). Перемешивали реакционную смесь при этой температуре 24 ч. Разбавили смесь 200 мл холодной воды, подкислили лимонной кислотой до pH≈3. Осадок отфильтровали, промыли водой и высушили. Получили 1,07 г (87,7%) сырого гликопептида (llв), который переосадили из смеси хлороформа метанола (5:1) эфиром. Выход 0,86 г (70,0% ), Rf 0,56 (хлороформ-метанол-вода, 45:10:1); [α]
ИК-спектр, ν, см-1 3600-3200 (OH, NH); 1715 (COOH); 1660 (C11=0); 1530 (CONH). УФ-спектр, λ
Пример 5. 3-0-{ 2-0-[N- β D-глюкопиранозилуроноил)-L-изолейцин]-N- b -D- глюкопиранозилуроноил)-L-изолейцин ( 3β, 20β )-II- оксо-30-(N-карбонил-L-изолейцин) -30- норолеан-12-ен (llг). Example 5. 3-0- {2-0- [N- β D-glucopyranosyluronoyl) -L-isoleucine] -N-b -D-glucopyranosyluronoyl) -L-isoleucine (3β, 20β) -II-oxo-30- (N-carbonyl-L-isoleucine) -30- norolean-12-ene (llg).
К раствору 0,52 г (4 ммоль) L изолейцина в 10 мл ДМФА, охлажденному до 0o, прибавили 10 мл 1N раствора NaOH и при перемешивании прибавили по каплям раствор 1 ммоль пентафторфенилового эфира ГК (VI) в 30 мл ДМФА (пример 1). Смесь перемешивали 30 мин при 0oC и выдерживали с периодическим перемешиванием при комнатной температуре 24 ч. Разбавили смесь 200 мл холодной воды, подкислили лимонной кислотой до pH≈3. Осадок отфильтровали, промыли водой и высушили. Получили 1,14 г (98,3%) гликопептида (llг), который переосадили из ацетона-гексаном. Выход 1,0 г (86,2%). Аналитический чистый образец получен с выходом 0,6 г (51,8%) колоночной хроматографией аналогично llа. Rf 0,5 (хлороформ-метанол-вода, 45:10:1). [α]
ИК-спектр, ν см-1: 3600-3200 (OH, NH); 1720 (COOH); 1660 (C11=0); 1530 (CONH). УФ-спектр, λ
IR spectrum, ν cm -1 : 3600-3200 (OH, NH); 1720 (COOH); 1660 (C 11 = 0); 1530 (CONH). UV spectrum, λ
Пример 6. 3-0-{ 2-0-[N-(b-D-глюкопиранозилуроноил)-L-глутаминовая кислота]-N-(b-D-глюкопиранозилуроноил)-L-глутаминоваякислота}-(3β, 20β)-11-оксо-30-(N-карбонил -β- глутаминовая кислота) -30- норолеан-12 ен (llд). Example 6. 3-0- {2-0- [N- (bD-glucopyranosyluronoyl) -L-glutamic acid] -N- (bD-glucopyranosyluronoyl) -L-glutamic acid} - (3β, 20β) -11-oxo- 30- (N-carbonyl-β-glutamic acid) -30- norolean-12 en (lld).
К раствору 0,59 г (4 ммоль) L глутаминовой кислоты в 10 мл ДМФА, охлажденному до 0oC, прибавили 20 мл 1N раствора NaOH и при перемешивании по каплям раствор 1 ммоль пентафторфенилового эфира ГК (VI) в 30 мл ДМФА (пример 1). Смесь выдержали с периодическим перемешиванием при комнатной температуре 24 ч и разбавили 300 мл холодной воды, подкислили лимонной кислотой до pH≈3. Осадок отфильтровали, промыли водой и высушили. Получили 1,20 г (99,1% ) сырого гликопептида (llд), который переосадили из смеси хлороформ-метанола (5: 1) эфиром. Выход 1,1 г (90,9%). Rf 0,49 (хлорофом-метанол-вода, 45:10:1). [α]
ИК-спектр, ν, см-1: 3600-3200 (OH, NH); 1710 (COOh); 1660 (C11=0); 1530 (CONH). УФ-спектр, λ
Пример 7. 3 -0-{2-O-(N- (β -D-глюкопиранозилуроноил)-глицин-L- фенилаланин] -N-(b-D-глюкопиранозилуроноил)-глицин-L-фенилаланин} (3β, 20β)-11-оксо-30-(N-карбонил -глицин-L-фенилаланин) -30- норолеан-12-ен llж). Example 7. 3 -0- {2-O- (N- (β-D-glucopyranosyluronoyl) -glycine-L-phenylalanine] -N- (bD-glucopyranosyluronoyl) -glycine-L-phenylalanine} (3β, 20β) - 11-oxo-30- (N-carbonyl-glycine-L-phenylalanine) -30- norolean-12-ene lzh).
К раствору 0,89 г (4 ммоль) глицил-L фенилаланина в 10 мл 1N NaOH, охлажденному до 0oC, прибавили 10 мл ДМФА и по каплям раствор 1 моль пентафторфенилового эфира ГК (У) в 30 мл ДМФА (пример 1). Смесь перемешивали 30 мин при 0oC и выдерживали с периодическим перемешиванием при комнатной температуре 24 ч. Смесь разбавили 300 мл холодной воды, подкислили лимонной кислотой до pH≈2-3. Выпавший осадок отфильтровали, промыли водой и высушили. Получили 1,21 г (84,0%) сырого гликопептида (llж), который переосадили из смеси хлороформа-метанола (5:1) эфиром. Выход 0,9 г (62,5%). Аналитический чистый образец получен колоночной хроматографией аналогично llа с выходом 0,64 г (44,4% ). Rf 0,45 (хлороформ-метанол-вода, 45:10:1). [α]
ИК-спектр, ν, см-1: 3600-3200 (OH, NH); 1720 (COOH); 1660 (C11=0), 1540 (CoNH). УФ спектр, λ
Пример 8. 3-0-{2-0-[N-(β)-D-глюкопиранозилуроноил) -L-изолейцина трет-бутиловый эфир] -N-(b-D- глюкопиранозилуроноил)-L -изолейцинатрет-бутиловый эфир} (3β, 20β) 11,30 диокси-30-L-изолейцина трет -бутиловый эфир -30-норолеан-12-ен (IVd). Example 8. 3-0- {2-0- [N- (β) -D-glucopyranosyluronoyl) -L-isoleucine tert-butyl ether] -N- (bD-glucopyranosyluronoyl) -L-isoleucine butyl ether} (3β , 20β) 11.30 dioxi-30-L-isoleucine tert-butyl ether -30-norolean-12-ene (IVd).
1. К раствору 1,64 г (2 ммоль) глицирризиновый кислоты в 50 мл диоксана при 0-5oC прибавили 1,2 г (10,4 ммоль )HOSu, 1,3 г (6 ммоль) ДЦГК и перемешивали при этой температуре 3 ч, при комнатной 6 ч. Выдержали смесь в течение ночи в холодильнике, отфильтровывали осадок дициклогексилмочевины и к фильтрату, охлажденному в бане со льдом, прибавили 1,5 г (6 ммоль) гидрохлорида третбутилового эфира L-изолейцина и 1,3 мл (9,5 ммоль) триэтиламина. Смесь перемешивали при охлаждении 1 ч и выдержали при комнатной температуре 24 ч. Растворитель упарили в вакууме при ≈45oC, остаток растворили в хлористом метилене (200 мл) и промыли 5% раствором лимонной кислоты, водой, 5%-ным раствором NH4OH и снова водой. Сушили над MgSO4 упарили растворитель в вакууме при ≈30oC. Получили 2,0 г (75,2%) сырого защищенного продукта (IVd), который переосадили из ацетона-гексана. Выход 1,28 г (48,1% ). Rf 0,66 (хлороформ-метанол-вода 45:10:1); 0,36 (хлороформ-спирт, 10:1). [α]
ИК-спектр; ν, см-1; 3600-3200 (OH, NH); 1740 (COOR); 1660 (C11=0); 1530 (CONH). УФ-спектр, λ
IR spectrum ν, cm -1 ; 3600-3200 (OH, NH); 1740 (COOR); 1660 (C 11 = 0); 1530 (CONH). UV spectrum, λ
Деблокирование защищенного гликопептида (IYд). Release of protected glycopeptide (IYd).
1,0 г (0,86 ммоль) защищенного гликопептида (IYд) в 20 мл CF3COOH выдержали 30 мин при 20-22oC и упарили смесь в вакууме досуха. Остаток (0,9 г) хроматографировали на колонке с силикагелем L (40/100 мкм/, элюируя смесью хлороформ метанол-вода, 200:10:1, 100:10:1, 50:10:1, 25:10:1. Смесью 50:10:1 вымывали 0,5 г (43%) гомогенного продукта (llг) в виде аморфного вещества. Rf 0,48 (хлороформ-метанол вода, 45:10:1); [α]
Пример 9. 3-0-{2-0-[N-(β-Д- глюкопиранозилуроноил)-L-валина трет-бутиловый эфир] -N-(b-Д- глюкопиранозилуроноил)-L-валина трет-бутиловый эфир} (3β, 20β) 11,30 диоксо-30-L-валина трет-бутиловый эфир-30-норолеан-12-ен (VIз). Example 9. 3-0- {2-0- [N- (β-D-glucopyranosyluronoyl) -L-valine tert-butyl ether] -N- (b-D-glucopyranosyluronoyl) -L-valine tert-butyl ether} (3β, 20β) 11.30 dioxo-30-L-valine tert-butyl ether-30-norolean-12-ene (VIc).
К раствору 1,64 г (2 ммоль) глицирризиновой кислоты в 50 мл сухого диоксана при 0-5oC прибавили 1,2 г (10,4 ммоль) HOSu 1,4 г (6,4 ммоль) ДЦГК и перемешивали смесь при этой температуре 3 ч, при комнатной (20-22oC) 6 ч. Выдержали смесь в течение ночи при 4-6oC в холодильнике, осадок дициклогексилмочевины отфильтровали, фильтрат охладили до 0-5oC и прибавили к нему 1,47 г (7 ммоль) гидрохлорида трет-бутилового эфира L-валина, 1,3 мл (9,5 ммоль) триэтиламина и перемешивали при охлаждении 1 ч, 24 ч при комнатной температуре. Растворитель упарили в вакууме, остаток растворили в хлористом метилене (200 мл) и промыли 5%-ным раствором соляной кислоты, водой, 5%-ным раствором NaHCO3, сушили MgSO4 и упарили в вакууме. Получили 1,9 г (80%) сырого гликопептида (IVз), который переосадили из ацетона гексаном. Выход защищенного гликопептида 1,2 г (48% ). Rf 0,48 (хлороформ-спирт, 7:1); [α]
ИК-спектр, ν, см-1: 3600-3200 (OH, NH); 1740 (COOP); 1670 (C 11=0); 1540 (CONH). УФ-спектр, λ
Деблокирование гликопептида (IVз). The release of glycopeptide (IV3).
1,0 г (0,8 ммоль) защищенного гликопептида в 20 мл CF3COOH перемешивали при комнатной температуре 1 ч и упарили в вакууме. Остаток растерли сухим эфиром и сушили в вакууме при 40-45oC 3 ч. Сухой остаток (0,84 г) хроматографировали на колонке с силикагелем L (40/100 мкм), элюируя смесью хлороформ-метанол-вода 100:10:1, 50:10:1, 25:10:1, 10:10:1. Смесью 50:10:1 вымывали 0,42 г (46,7%) гомогенного по ГСХ гликопептида (Пз) в виде аморфного вещества желтоватого цвета. Rf 0,5 (хлороформ метанол-вода 45:10:1), [α]
Преимущества предлагаемого способа следующие. The advantages of the proposed method are as follows.
1. В качестве аминокомпонентов (АК) в предлагаемом способе используются свободные аминокислоты и дипептиды, а не эфиры, как в способах [1] и [4] что упрощает и удешевляет процесс получения гликопептидов ГК (например, стоимость 1 г эфира аминокислоты дороже стоимости аминокислоты). 1. As the amino components (AK) in the proposed method, free amino acids and dipeptides are used, rather than esters, as in methods [1] and [4], which simplifies and cheapens the process of producing HA glycopeptides (for example, the cost of 1 g of amino acid ester is more expensive than the cost of amino acids )
2. В качестве конечных продуктов образуются свободные гликопептиды общей формулы (II) (со свободными COOH-группами), т.е. отпадает необходимость проведения стадии деблокирования [5] что также упрощает процесс получения гликопептидов ГК. 2. As the final products, free glycopeptides of the general formula (II) are formed (with free COOH groups), i.e. there is no need for a deblocking step [5], which also simplifies the process of obtaining HA glycopeptides.
3. В качестве основания в предлагаемом способе используется 1N раствор NaOH вместо третичного основания (триэтиламина) в известном способе [1, 4] что также значительно удешевляет процесс получения гликопептидов ГК. 3. As the base in the proposed method, a 1N NaOH solution is used instead of the tertiary base (triethylamine) in the known method [1, 4], which also significantly reduces the cost of the process of obtaining glycopeptides HA.
Claims (1)
где R L Ala, L Val, L Met, L Ile, L Glu, Gly L Phe
путем активации карбоксильных групп незащищенной глицирризиновой кислоты (ГК) активирующим комплексом через стадию конденсации с образованием активированного интермедиата в среде растворителя в присутствии основания с образованием гликопептидной связи в течение 24 ч, отличающийся тем, что гликозид подвергают взаимодействию с комплексом пентафторфенола N,N'-дициклогексилкарбодиимида в соотношении 3 1 (комплекс F) при 0 - 5oС в течение 1 ч, при комнатной температуре в течение 4 ч с последующим выдерживанием при 4 8oС в течение ночи и конденсацией активизированного интермедиата с аминокислотами (АК) формулы RNH2,
где R CH3CH (L Ala) (a);
в присутствии 1 н. раствора NaOH при ммолярном соотношении реагентов ГК комплекс F АК соответственно 1 3,0 3,5 3 4.A method for producing triterpene glycopeptides of glycyrrhizic acid derivatives of the general formula
where RL Ala, L Val, L Met, L Ile, L Glu, Gly L Phe
by activating the carboxyl groups of unprotected glycyrrhizic acid (HA) with an activating complex through a condensation step to form an activated intermediate in a solvent in the presence of a base to form a glycopeptide bond for 24 hours, characterized in that the glycoside is reacted with a complex of pentafluorophenol N, N'-dicyclohexylcarbodi in the ratio of 3 1 (complex F) at 0 - 5 o C for 1 h, at room temperature for 4 h, followed by aging at 4 8 o C overnight and condensation ia activated intermediate with amino acids (AK) of the formula RNH 2 ,
where R CH 3 CH (L Ala) (a);
in the presence of 1 n. NaOH solution at a molar ratio of HA reagents complex F AK respectively 1 3.0 3.5 3 4.
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU94026991A RU2083587C1 (en) | 1994-07-18 | 1994-07-18 | Process for preparing triterpenic glycopeptides |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
RU94026991A RU2083587C1 (en) | 1994-07-18 | 1994-07-18 | Process for preparing triterpenic glycopeptides |
Publications (2)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU94026991A RU94026991A (en) | 1997-05-27 |
RU2083587C1 true RU2083587C1 (en) | 1997-07-10 |
Family
ID=20158628
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
RU94026991A RU2083587C1 (en) | 1994-07-18 | 1994-07-18 | Process for preparing triterpenic glycopeptides |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2083587C1 (en) |
-
1994
- 1994-07-18 RU RU94026991A patent/RU2083587C1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Балтина Л.А., Сахаутдинова Г.М., Зарудий Ф.С., Лазарева Д.Н., Толстиков Г.А., Давыдова В.А. Хим.-фарм. журнал&- 1990, N 2, с.119 - 121. Авторское свидетельство СССР N 1625882, кл. C 07 J 53/00, 1991. Толстиков Г.А., Балтина Л.А., Кондратенко Р.М. Тезисы докладов XVI конференции по химии и технологии органических соединений серы и сернистых нефтей. - Рига: 1984, с.171. * |
Also Published As
Publication number | Publication date |
---|---|
RU94026991A (en) | 1997-05-27 |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US5116947A (en) | Process for the preparation of retro-inverso peptides and new intermediates thereof | |
EP0478729B1 (en) | Process for manufacturing aspartame from a diketopiperazine and novel intermediates and derivatives therefor | |
RU2083587C1 (en) | Process for preparing triterpenic glycopeptides | |
EP1140795B1 (en) | N-3, 3-dimethylbutyl-l-aspartic acid and esters thereof, the process of preparing the same, and the process for preparing n-[n-(3,3-dimethylbutyl)-l-alpha-aspartyl)-l-phenylalanine-1-methylester therefrom | |
Peri et al. | A highly convergent approach to O-and N-linked glycopeptides analogues | |
JPH06122697A (en) | Intermediate for production of heptanol-glu-asp-ala- amino acid immune activating drug | |
Waldmann et al. | 1, 3-Dithian-2-ylmethyl esters as two-step carboxy-protecting groups in the synthesis of N-glycopeptides | |
RU2615764C1 (en) | Method of producing glycopeptides of glycyrrhizic acid | |
Lang et al. | Chemoselectively addressable HCan building blocks in peptide synthesis: l‐homocanaline derivatives | |
US4426325A (en) | Process for the preparation of compounds containing carboxylic acid amide groups, in particular or peptides | |
CA1244008A (en) | Aspartame synthesis | |
HU221619B1 (en) | Process for synthetise peptides and intermediates thereof | |
US3891692A (en) | N-(cyclopropylalkoxycarbonyl)amino acids | |
EP0129163B1 (en) | Arphamenine and its related compounds, a process for their preparation and their use as medicaments | |
US7173107B2 (en) | Glycopeptide and preparation thereof | |
JPH0578394A (en) | Cell proliferation suppressant labeled with fucose | |
AU626608B2 (en) | A process for the preparation of tripeptides | |
RU2030422C1 (en) | Method of synthesis of carnosine | |
Tamura et al. | Preparation of 0-Aminoacyl Sugars as Enzymatically Removable Protections for Hydroxyl Groups in Carbohydrates | |
US3948971A (en) | N-protected-α-amino acid compounds | |
RU2057139C1 (en) | Method of preparing carboxy-protected glycopeptides of glycyrrhizic acid | |
US5219988A (en) | Gem-diamino derivatives and their use in the synthesis of retro-inverso peptides | |
Kinomura et al. | Syntheses of Methyl 2, 3-di-O-Glycyl-α-D-glucopyranoside and 4, 6-di-O-Glycyl-2, 3-di-O-methyl-α-D-glucopyranoside, and Removal of Aminoacyl Groups from Sugar Moieties | |
NAITHANI et al. | Synthesis of Protected Decapeptide (B21-30) of Human Insulin | |
Bouifraden et al. | Synthesis of new glycopeptides from the α-D-allofuranos-3-spiropropiolactone |