RU2075082C1 - Method of determination of bacterial toxin activity - Google Patents

Method of determination of bacterial toxin activity Download PDF

Info

Publication number
RU2075082C1
RU2075082C1 SU5063179A RU2075082C1 RU 2075082 C1 RU2075082 C1 RU 2075082C1 SU 5063179 A SU5063179 A SU 5063179A RU 2075082 C1 RU2075082 C1 RU 2075082C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
activity
toxin
bacteria
luminescence
determination
Prior art date
Application number
Other languages
Russian (ru)
Inventor
В.М. Поляков
С.И. Текутьев
И.Т. Андрусенко
А.П. Шепелев
А.Ю. Антипов
Original Assignee
Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии и паразитологии Госкомсанэпиднадзора
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии и паразитологии Госкомсанэпиднадзора filed Critical Ростовский научно-исследовательский институт микробиологии и паразитологии Госкомсанэпиднадзора
Priority to SU5063179 priority Critical patent/RU2075082C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2075082C1 publication Critical patent/RU2075082C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

FIELD: medicine, microbiology, toxicology. SUBSTANCE: method involves treatment of luminescent bacteria with exotoxins at different dilutions and their activity is determined by bacteria luminosity inhibition degree after 30 min (not less) of incubation of bacteria with toxin. EFFECT: simplified method, decreased study time. 9 tbl

Description

Изобретение относится к области микробиологии и может быть использовано при производстве бактериальных токсинов и антитоксинов, а также в научно-исследовательской работе. The invention relates to the field of microbiology and can be used in the production of bacterial toxins and antitoxins, as well as in research work.

Известен способ определения активности экзотоксинов на модели 10-дневных крольчат (Datta N.K. Habbu M.K. Experimental cholera in Infant Rabbits anethed for chemotherapentic Investigation. -Br. J. Pharmacol, 1955, v. 10, p. 153). Недостатками способа являются: невозможность определить количество титруемого токсина, длительность получения ответа (2-е суток) высокая стоимость исследования. A known method for determining the activity of exotoxins in a 10-day-old rabbit model (Datta N.K. Habbu M.K. Experimental cholera in Infant Rabbits anethed for chemotherapentic Investigation. -Br. J. Pharmacol, 1955, v. 10, p. 153). The disadvantages of the method are: the inability to determine the amount of titrated toxin, the duration of the response (2 days), the high cost of the study.

Известен способ определения токсина на лигированных петлях подвздошной кишки взрослых кроликов (Burrous W. Musteiris C.M. Cholera infection and toxin in the rabbit ilal loop. J. Infct. Dis. 1966, v. 116, p. 183). Метод достаточно информативный, однако дорогостоящий, сложный в исполнении ответ через 18 часов. A known method for determining toxin on ligated ileal loops of adult rabbits (Burrous W. Musteiris C. M. Cholera infection and toxin in the rabbit ilal loop. J. Infct. Dis. 1966, v. 116, p. 183). The method is quite informative, but expensive, difficult to execute in 18 hours.

Известен способ определения активности токсина синдрома токсического шока стафилококков на модели кроликов при внутривенном введении (Reeves M.W. Arko R.V. Chandler F.W. et al. Affinity purification of staphylococcal toxic shook syndrome toxin and pathologic effects in rabbits. Infect. Immun. 1986, v. 51, p. 431 439). Способ дорогостоящий, трудный в исполнении. A known method for determining the activity of the toxin of the syndrome of toxic shock of staphylococci in a rabbit model with intravenous administration (Reeves MW Arko RV Chandler FW et al. Affinity purification of staphylococcal toxic shook syndrome toxin and pathologic effects in rabbits. Infect. Immun. 1986, v. 51, p, . 431 439). The method is expensive, difficult to implement.

Известен способ титрования токсина при внутрикожном введении взрослым кроликам (Croug S. P. Yamamoto K. Takeda et al. Production of cholera like enterotoxin by vibrio cholera non-01 strain isolated from the environment. - In: Proc. Cholera Res. Symp. Honolulu, Hawaii, 1965 Washington 1965, p. 153). Способ прост в исполнении, однако требует дорогостоящих животных, время получения ответа 18 часов. A known method for titration of toxin for intradermal administration to adult rabbits (Croug SP Yamamoto K. Takeda et al. Production of cholera like enterotoxin by vibrio cholera non-01 strain isolated from the environment. - In: Proc. Cholera Res. Symp. Honolulu, Hawaii, 1965 Washington 1965, p. 153). The method is simple to implement, but requires expensive animals, the response time is 18 hours.

Для упрощения, удешевления способа и сокращения времени исследования на люминесцирующие бактерии воздействуют экзотоксинами и определяют активность токсинов по степени ингибирования свечения бактерий. To simplify, reduce the cost of the method and reduce the study time, luminescent bacteria are exposed to exotoxins and the activity of toxins is determined by the degree of inhibition of bacterial luminescence.

Изобретение иллюстpируется следующими примерами. The invention is illustrated by the following examples.

Пример 1. В пробирку, содержащую исследуемый очищенный концентрированный экзотоксин холерного вибриона, выпускаемого Саратовским институтом "Микроб" серия 4, в количестве 0,1 мл вносят смесь, состоящую из 0,8 мл 2% NaCl и 0,1 мл раствора люминесцирующих бактерий (количество бактерий предусмотрено инструкцией и входит в набор "Эколюм", выпускаемый СП БиоХимМак, предназначенный для определения содержания химических соединений, характерных для промышленных сбросов в окружающую среду). Смесь инкубируют в течение 30 мин при t 37oC. Контролем служат: холероген, нейтрализованный антихолерогенной сывороткой производства Саратовского института "Микроб" серия 2 с титром 3000 АЕ; холероген, разрушенный двухчасовым кипячением; а также физраствор, в котором разводят люминесцирующие бактерии.Example 1. In a test tube containing the studied purified concentrated cholera vibrio exotoxin manufactured by the Microbe Saratov Institute series 4, in a quantity of 0.1 ml make a mixture consisting of 0.8 ml of 2% NaCl and 0.1 ml of a solution of luminescent bacteria ( the number of bacteria is provided for by the instruction and is included in the “Ekolyum” kit, produced by the BioChemMack joint venture, designed to determine the content of chemical compounds characteristic of industrial discharges into the environment). The mixture is incubated for 30 min at t 37 o C. The control are: cholerogen neutralized by anticholeogenic serum manufactured by the Saratov Institute "Microbe" series 2 with a titer of 3000 AE; cholerogen destroyed by two-hour boiling; as well as saline, in which luminescent bacteria are diluted.

Параллельно активность токсина и контролей проверяют на моделях изолированной петли кишечника взрослых кроликов и в кожной пробе Крейга. In parallel, the activity of the toxin and controls is checked on models of an isolated intestinal loop of adult rabbits and in Craig's skin test.

Содержимое пробирок переносят в кюветы и регистрируют интенсивность свечения на хемилюминометре ПХЛ-1. Результаты исследования представлены в табл. 1. The contents of the tubes are transferred into cuvettes and the luminosity is recorded on a chemiluminometer PHL-1. The results of the study are presented in table. one.

Таким образом, очищенный концентрированный токсин активностью 1600 АЕ кишечных единиц и 5600 АЕ в пробе Крейга подавляет свечение бактерий. Thus, a purified concentrated toxin with an activity of 1600 AE of intestinal units and 5600 AE in Craig's sample inhibits the luminescence of bacteria.

Пример 2. В пробирку, содержащую 0,1 мл частично очищенного концентрированного экзотоксина, выпускаемого Саратовским институтом "Микроб" серия 6, добавляют в количестве 0,1 мл смесь, состоящую из 0,8 мл 2% NaCl и 0,1 мл раствора люминесцирующих бактерий. Смесь инкубируют в течение 30 мин при t 37oC. Контролями являются: холероген, нейтрализованный антихолерогенной сывороткой производства Саратовского института "Микроб" серия 2 с титром 3000 АЕ; холероген, разрушенный двухчасовым кипячением; а также физ. раствор. Параллельно активность токсина и контролей проверяют на моделях изолированной петли кишечника взрослых кроликов и в кожной пробе Крейга. Пробы переносят в кюветы и регистрируют интенсиность свечения на хемилюминометре ПХЛ-1. Результаты исследований представлены в табл.2. Табл.2 свидетельствует о том, что менее активные токсины также подавляют свечение бактерий.Example 2. In a test tube containing 0.1 ml of partially purified concentrated exotoxin produced by the Saratov Institute "Microbe" series 6, add in an amount of 0.1 ml a mixture consisting of 0.8 ml of 2% NaCl and 0.1 ml of a luminescent solution bacteria. The mixture is incubated for 30 min at t 37 o C. The controls are: cholerogen neutralized with anticholeogenic serum produced by the Saratov Institute "Microbe" series 2 with a titer of 3000 AE; cholerogen destroyed by two-hour boiling; as well as physical solution. In parallel, the activity of the toxin and controls is checked on models of an isolated intestinal loop of adult rabbits and in Craig's skin test. Samples are transferred to cuvettes and the intensity of luminescence is recorded on a chemiluminometer PHL-1. The research results are presented in table.2. Table 2 indicates that less active toxins also inhibit the luminescence of bacteria.

Пример 3. В пробирку, содержащую неочищенный концентрированный экзотоксин, в количестве 0,1 м вносят cмесь, состоящую из 0,8 мл 2% NaCl и 0,1 мл люминесцирующих бактерий. Смесь инкубируют в течение 30 мин при t - 37oC. Контролями служат холероген, нейтрализованный антихолерогенной сывороткой, производства Саратовского института "Микроб" серия 2 с титром 3000 АЕ, холероген, разрушенный двухчасовым кипячением, а также физ. раствор. Параллельно активность токсина контролируют в биопробах. Результаты исследований представлены в табл.3.Example 3. In a test tube containing crude concentrated exotoxin, in a quantity of 0.1 m make a mixture consisting of 0.8 ml of 2% NaCl and 0.1 ml of luminescent bacteria. The mixture is incubated for 30 min at t - 37 o C. The controls are cholerogen neutralized by anticholeogenic serum, manufactured by the Saratov Institute "Microbe" series 2 with a titer of 3000 AE, cholerogen destroyed by two-hour boiling, as well as physical. solution. In parallel, the activity of the toxin is monitored in biological samples. The research results are presented in table.3.

Из табл. 3 видно, что неочищенный концентрированный холероген также подавляет свечение бактерий. From the table. Figure 3 shows that crude concentrated cholerogen also inhibits the luminescence of bacteria.

Пример 4. В пробирку, содержащую активную надосадочную жидкость токсинообразующего штамма V. Cholrae 569 В в количестве 0,1 мл вносят смесь, состоящую из 0,8 мл 2% NaCl и 0,1 мл люминесцирующих бактерий. Активная надосадочная жидкость была получена методом Burrows W. Musteikis G.M. Cholera infection and toxin in the rabbit ileal loop. J. Infect. Dis. 1966, v. 116, p. 183. Cмесь инкубируют в течение 30 мин при t 37oC. Контролями служат активная надосадочная жидкость в смеси с антихолерогенной сывороткой производства Саратовского института "Микроб" серия 2 с титром 3000 АЕ и кипяченная в течение 2-х часов активная надосадочная жидкость. Результаты представлены в табл.4.Example 4. In a test tube containing the active supernatant of the toxin-forming strain V. Cholrae 569 B in a quantity of 0.1 ml make a mixture consisting of 0.8 ml of 2% NaCl and 0.1 ml of luminescent bacteria. Active supernatant was obtained by the method of Burrows W. Musteikis GM Cholera infection and toxin in the rabbit ileal loop. J. Infect. Dis. 1966, v. 116, p. 183. The mixture is incubated for 30 min at t 37 o C. The controls are active supernatant mixed with anticholeogenic serum produced by the Saratov Institute “Microbe” series 2 with a titer of 3000 AU and the active supernatant boiled for 2 hours. The results are presented in table 4.

Пример 5. Предлагаемым способом определяют активность нескольких серий очищенного и частично очищенного токсинов холерных вибрионов. Контролем служит активность, определяемая методом Крейга (см. табл.5). Example 5. The proposed method determines the activity of several series of purified and partially purified toxins of cholera vibrios. The control is the activity determined by the Craig method (see table 5).

Таким образом, независимо от очистки препарата прослеживается четкое совпадение результатов, получаемых предлагаемым способом и стандартым способом на животных. Thus, regardless of the purification of the drug, there is a clear coincidence of the results obtained by the proposed method and the standard method for animals.

Пример 6. Изучение активности экзотоксина токсического шока (ЭТШ). Example 6. The study of the activity of toxic shock exotoxin (ETS).

В пробирку, содержащую 0,1 мл ЭТШ вносят смесь, состоящую из 0,8 мл 2% NaCl и 0,1 мл люминесцирующих бактерий. Смесь инкубируют при t 37oC. Контролем служит ЭТШ в смеси с антитоксической сывороткой (полученной по методу Текутьева С.И. Карницкой Н.В. Изучение ЭТШ, выделенного из штамма S. aureus FRI-1169. Сб. Бактериальные токсины. Юрмала 1989, т. 2, с. 130-131).Результаты исследований представлены в табл.6.A mixture consisting of 0.8 ml of 2% NaCl and 0.1 ml of luminescent bacteria is added to a test tube containing 0.1 ml of ETS. The mixture is incubated at t 37 o C. The control is ETSh mixed with antitoxic serum (obtained by the method of Tekutiev, SI Karnitskaya NV. Study of ETS isolated from strain S. aureus FRI-1169. Sat. Bacterial toxins. Jurmala 1989 , v. 2, pp. 130-131). The results of the research are presented in table.6.

Данные табл. 6 свидетельствуют о том, что ЭТШ подавляет свечение бактерий. The data table. 6 indicate that ETS inhibits the luminescence of bacteria.

Пример 7. Описанным выше способом определяют возможность нейтрализации ЭТШ специфической антитоксичной сывороткой. Результаты определений представлены в табл.7. Они свидетельствуют о том, что специфическая сыворотка нейтрализует действие ЭТШ. Таким образом, предлагаемый способ позволяет определять активность не только холерогена, но и других токсинов. Example 7. The method described above determines the possibility of neutralizing ETS with specific antitoxic serum. The results of the determinations are presented in table.7. They indicate that specific serum neutralizes the effect of ETS. Thus, the proposed method allows to determine the activity of not only cholerogen, but also other toxins.

Оптимальной оказалась экспозиция 60 мин. Более длительное воздействие нецелесообразно, а менее длительное не дает достоверных результатов (см.табл.8). The optimal exposure was 60 minutes. A longer exposure is impractical, and a shorter one does not give reliable results (see table 8).

Пример 8. С целью подтверждения специфичности реакции проводились опыты с эндотоксинами клебсиелл и холерного вибриона, а также другими биологически активными веществами. Example 8. In order to confirm the specificity of the reaction, experiments were carried out with endotoxins of Klebsiella and cholera vibrio, as well as other biologically active substances.

В пробирку, содержащую 0,1 мл раствора вещества, вносят смесь, состоящую из 0,8 мл 2% NaCl и 0,1 мл раствора люминесцирующих бактерий. Смесь инкубируют в течение 60 мин при t 37oC. Результаты исследований представлены в табл.9.In a test tube containing 0.1 ml of a solution of the substance, make a mixture consisting of 0.8 ml of 2% NaCl and 0.1 ml of a solution of luminescent bacteria. The mixture was incubated for 60 min at t 37 o C. The results of the studies are presented in table.9.

Из табл.9 видно, что подавление свечения является специфичным свойством экзотоксинов, поскольку другие биологически активные вещества белковой и липополисахаридной природы не инкубирует свечение, а в некоторых случаях его стимулирует. From table 9 it is seen that suppression of luminescence is a specific property of exotoxins, since other biologically active substances of protein and lipopolysaccharide nature do not incubate luminescence, and in some cases it stimulates.

Таким образом, предлагаемый способ прост в исполнении, дешев и позволяет получить ответ в течение 1 1,6 часов. Thus, the proposed method is simple to implement, cheap and allows you to get an answer within 1 1.6 hours.

Claims (1)

Способ определения активности бактериальных токсинов, включающий воздействие исследуемым токсином в разных разведениях на биологический объект с последующей оценкой результата воздействия, отличающийся тем, что в качестве объекта воздействия используют люминесцирующие бактерии, входящие в набор "Эколюм" (БиоХимМак), при этом осуществляют инкубацию исследуемого токсина с люминесцирующими бактериями в течение не менее 30 мин, оценку активности проводят до степени ингибирования свечения бактерии. A method for determining the activity of bacterial toxins, including exposure to the studied toxin in different dilutions on a biological object, followed by evaluation of the result of the exposure, characterized in that the luminescent bacteria included in the Ekolyum kit (BioChemMac) are used as the object of exposure, and the studied toxin is incubated with luminescent bacteria for at least 30 minutes, an assessment of activity is carried out to the degree of inhibition of luminescence of the bacterium.
SU5063179 1992-09-24 1992-09-24 Method of determination of bacterial toxin activity RU2075082C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU5063179 RU2075082C1 (en) 1992-09-24 1992-09-24 Method of determination of bacterial toxin activity

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU5063179 RU2075082C1 (en) 1992-09-24 1992-09-24 Method of determination of bacterial toxin activity

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2075082C1 true RU2075082C1 (en) 1997-03-10

Family

ID=21613755

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU5063179 RU2075082C1 (en) 1992-09-24 1992-09-24 Method of determination of bacterial toxin activity

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2075082C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103424401A (en) * 2013-08-22 2013-12-04 四川省中医药科学院 Biological testing method for quickly testing comprehensive toxicity of herba houttuyniae injection

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Proc. Cholera Res. Symp., Honolulu, Hawaii, 1965, Washington, 1965, p.153 *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN103424401A (en) * 2013-08-22 2013-12-04 四川省中医药科学院 Biological testing method for quickly testing comprehensive toxicity of herba houttuyniae injection
CN103424401B (en) * 2013-08-22 2016-02-17 四川省中医药科学院 A kind of biological test method of quick detection houttuynia cordata injection comprehensive toxicity

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Karch et al. Growth of Escherichia coli in the presence of trimethoprim-sulfamethoxazole facilitates detection of Shiga-like toxin producing strains by colony blot assay
Lamanna The Most Poisonous Poison: What do we know about the toxin of botulism? What are the problems to be solved?
Simberkoff et al. Absence of detectable bactericidal and opsonic activities in normal and infected human cerebrospinal fluids: a regional host defense deficiency
Thakker et al. Staphylococcus aureus serotype 5 capsular polysaccharide is antiphagocytic and enhances bacterial virulence in a murine bacteremia model
George et al. Diarrhea and colitis associated with antimicrobial therapy in man and animals
Sparling Bacterial virulence and pathogenesis: an overview
Courtney et al. Serum opacity factor (SOF) of Streptococcus pyogenes evokes antibodies that opsonize homologous and heterologous SOF-positive serotypes of group A streptococci
Vaara et al. An outer membrane-disorganizing peptide PMBN sensitizes E. coli strains to serum bactericidal action.
Kothary et al. Purification and characterization of enterotoxigenic El Tor-like hemolysin produced by Vibrio fluvialis
Graham et al. Urease, gastric ammonium/ammonia, and Helicobacter pylori—the past, the present, and recommendations for future research
Sheoran et al. Stx2-specific human monoclonal antibodies protect mice against lethal infection with Escherichia coli expressing Stx2 variants
Hansen et al. Serum resistance is correlated with encapsulation of avian strains of Pasteurella multocida
May et al. Contribution of Escherichia coli alpha-hemolysin to bacterial virulence and to intraperitoneal alterations in peritonitis
Neill et al. Oligonucleotide probes for detection and differentiation of Staphylococcus aureus strains containing genes for enterotoxins A, B, and C and toxic shock syndrome toxin 1
Hoffmann et al. Contradictory roles for antibody and complement in the interaction of Brucella abortus with its host
Larrie-Bagha et al. Passive immunization by recombinant ferric enterobactin protein (FepA) from Escherichia coli O157
Borriello Pathogenesis of Clostridium difficile infection of the gut
Kudva et al. The Escherichia coli O157: H7 cattle immunoproteome includes outer membrane protein A (OmpA), a modulator of adherence to bovine rectoanal junction squamous epithelial (RSE) cells
Reed Serum factors capable of opsonizing Shigella for phagocytosis by polymorphonuclear neutrophils.
Hu et al. A mutant of staphylococcal enterotoxin C devoid of bacterial superantigenic activity elicits a Th2 immune response for protection against Staphylococcus aureus infection
Clark et al. Plesiomonas and human disease
Jiwa Enterotoxigenicity, hemagglutination and cell-surface hydrophobicity in Aeromonas hydrophila, A. sobria and A. salmonicida
Moreno et al. Immunological properties of monoclonal antibodies specific for meningococcal polysaccharides: the protective capacity of IgM antibodies specific for polysaccharide group B
RU2075082C1 (en) Method of determination of bacterial toxin activity
Majury et al. The effect of Pasteurella haemolytica A1 leukotoxic culture supernate on the in vitro proliferative response of bovine lymphocytes