RU2074719C1 - Method of mammalian tumor cell destruction and pharmaceutical composition for mammalian tumor cells destruction - Google Patents

Method of mammalian tumor cell destruction and pharmaceutical composition for mammalian tumor cells destruction Download PDF

Info

Publication number
RU2074719C1
RU2074719C1 SU894895765A SU4895765A RU2074719C1 RU 2074719 C1 RU2074719 C1 RU 2074719C1 SU 894895765 A SU894895765 A SU 894895765A SU 4895765 A SU4895765 A SU 4895765A RU 2074719 C1 RU2074719 C1 RU 2074719C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
aryl
azide
compound
inhibitor
cells
Prior art date
Application number
SU894895765A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Филлип Холлинг Блейк
Эн Витковски Дебра
Original Assignee
Фмк Корпорейшн
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Фмк Корпорейшн filed Critical Фмк Корпорейшн
Priority claimed from PCT/US1989/005599 external-priority patent/WO1990006748A2/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2074719C1 publication Critical patent/RU2074719C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Pharmaceuticals Containing Other Organic And Inorganic Compounds (AREA)

Abstract

FIELD: medicine, oncology. SUBSTANCE: mammary tumor cells were treated by light and specific inhibitor of enzymatic conversion of protoporphyrinogen to protoporphyrin-IX catalyzed by protoporphyrin oxidase in the presence of porphyrin. Method involves the use of pharmaceutical composition containing specific inhibitor of enzymatic conversion of protoporphyrinogen to protoporphyrin-IX catalyzed by protoporphyrin oxidase. Index I50 for protoporphyrin oxidase is less 1 mcM and negative reductive-oxidizing potential is above -500 mV. EFFECT: improved method of tumor cells destruction. 11 cl, 5 tbl, 1 dwg

Description

Изобретение (один из аспектов) касается фотодинамического лечения молочной железы с опухолевыми клетками, как это делается при фотодинамическом излечении рака. The invention (one aspect) relates to the photodynamic treatment of a mammary gland with tumor cells, as is the case for the photodynamic treatment of cancer.

Известен метод введения производного гематопорфирина или смеси порфиринов, являющихся производными данного соединения, например, введение препарата "фотофрин II" (Photofrin II) в опухолевые клетки молочной железы с последующим воздействием на эти клетки светового излучения определенной длины волны с целью вызвать разрушение клеток. Данному методу фотодинамической терапии посвящена серия статей, составляющих специальный выпуск журнала Photochemistry and Photobiology, 1987, т. 46, N 5 (ниже принято сокращение P P 46 5). В этих статьях показано, что фотодинамическая терапия нашла широкое применение при лечении различных раковых заболеваний (в т.ч. рака бронхов, мочевого пузыря, пищевода, легких, кожи, органов головы и шеи, мозга, толстой кишки, а также внутриглазных и гинекологических раковых заболеваний). Утверждается, что биохимические эффекты упомянутой порфириновой фотосенсибилизации включают образование поперечных связей протеинами и в мембранах, пероксидирование липидов, подавление переноса некоторых важных метаболитов, лизис лизосомальных (lysosomal) и митохондриальных оболочек, подавление активности ряда энзимов и повышение усвоения порфиринов клетками (P P 46-5, с. 695). Порфириновый препарат вводят как правило путем инъекций (например, внутривенно или в брюшную полость); типичная доза составляет 2 мг препарата "фотофрин" на 1 кг массы тела. A known method of introducing a hematoporphyrin derivative or a mixture of porphyrins that are derivatives of this compound, for example, the introduction of the drug "Photofrin II" (Photofrin II) in breast tumor cells with subsequent exposure to these cells of light radiation of a certain wavelength in order to cause destruction of cells. This method of photodynamic therapy is the subject of a series of articles composing a special issue of the journal Photochemistry and Photobiology, 1987, v. 46, No. 5 (the abbreviation P P 46 5 is adopted below). These articles show that photodynamic therapy has found widespread use in the treatment of various cancers (including cancer of the bronchi, bladder, esophagus, lungs, skin, organs of the head and neck, brain, colon, and intraocular and gynecological cancers diseases). The biochemical effects of this porphyrin photosensitization are said to include cross-linking by proteins and membranes, lipid peroxidation, inhibition of the transfer of certain important metabolites, lysosomal and lysosomal lysosomal membranes, inhibition of the activity of a number of enzymes, and increased uptake of porphyrins by cells (PP 46-5, p. 695). Porphyrin drug is usually administered by injection (for example, intravenously or in the abdominal cavity); a typical dose is 2 mg of Photofrin per 1 kg of body weight.

Кроме того, порфириновый препарат можно включить в липосому и ввести инъекцией (например, в брюшную полость) как это указано, в частности, в статью Спайкса (Spikos) и др. "Фотодинамическое поведение порфиринов в модельных клеточных, тканевых и опухолевых системах" (Photodynamic Behavior of Porphyrins in Model Cell, Tissue and Tumor System) в сборнике "Фотодинамическая терапия опухолей и двух заболеваний (Photodynamic Therapy of Tamor and other Diceases), вышедшем под редакцией Йори (Jori) и Перриа (Perria); Падуя, изд. Libreria Progretto 1985, с. 45 53, а также в упомянутом выше спецвыпуске. In addition, the porphyrin preparation can be incorporated into the liposome and injected (for example, into the abdominal cavity) as indicated, in particular, in the article by Spikos et al. "Photodynamic behavior of porphyrins in model cellular, tissue and tumor systems" (Photodynamic Behavior of Porphyrins in Model Cell, Tissue and Tumor System) in Photodynamic Therapy of Tamor and other Diceases, edited by Jori and Perria; Padua, ed. Libreria Progretto 1985, p. 45 53, as well as in the special issue mentioned above.

В специальной литературе говорится о том, что введение фотопорфирина в такие клетки, как, например, эритроциты человека или murine клетки при лейкемии, дает заметный фотосенсибилизирующий эффект, см. соответственно: Даббелмен (Dubbleman) и др. Biochimica et Biophysica Acta, 1978, т. 511, с. 141 151; Кессель (Kessel), (Cancer Research) 1982, т. 42, N 5, с. 1703 - 1706. В статье Кесселя утверждается, что из всех испытанных фотосенсибилизирующих реагентов фотопорфирин наиболее активный. Однако когда Кессель и другие исследователи, например, Беренбаум (Berenbaum) и сотр. (см. Br. J. Cancer, 1982, т. 45, с. 571 581) делали инъекции фотопорфирина животным, заметного содержания фотопорфирина в опухолях не было обнаружено, что свидетельствует о возможном быстром уносе фотопорфирина, введенного в организм подобным образом, вследствие кровообращения. Special literature states that the introduction of photoporphyrin into cells such as, for example, human erythrocytes or murine cells in leukemia, gives a noticeable photosensitizing effect, see respectively: Dubbelman et al. Biochimica et Biophysica Acta, 1978, t 511, p. 141 151; Kessel (Kessel), (Cancer Research) 1982, v. 42, No. 5, p. 1703 - 1706. Kessel's article states that of all the photosensitizing reagents tested, photoporphyrin is the most active. However, when Kessel and other researchers, such as Berenbaum et al. (see Br. J. Cancer, 1982, v. 45, p. 571 581) injected animals with photoporphyrin, no significant photoporphyrin content was found in tumors, indicating a possible rapid ablation of photoporphyrin introduced into the body in a similar way due to blood circulation .

Также хорошо известно применение производного гематопорфирина и аналогичных препаратов для диагностирования и локализации опухолей, таких как рак мочевого пузыря или легких (см. например: P P 46 5, с. 759). The use of a hematoporphyrin derivative and similar preparations for the diagnosis and localization of tumors, such as bladder or lung cancer, is also well known (see, for example, P P 46 5, p. 759).

Активное соединение, применяющееся согласно одному из аспектов настоящего изобретения для лечения клеток в рассматриваемой фотодинамической терапии или в известных методах диагностирования и локализации опухолей, представляет собой не порфирин или же не только порфирин. The active compound used according to one aspect of the present invention for treating cells in the photodynamic therapy under consideration or in known methods for diagnosing and localizing tumors is not porphyrin or not only porphyrin.

В отличие от просто порфирина данное соединение ингибирует энзиматическое прекращение фотопорфириногена в структуре heme упомянутых клеток, вызывая тем самым образование эндогенного фотопорфирина IX в этих клетках. Авторы установили, что такие реагенты, как некоторые виды гербицидных соединений, которые подавляют энзиматическое превращение порфириногенов в хлорофилл в растительных клетках, также подавляют и энзиматическое превращение порфириногена в структуре heme клеток молочной железы. Авторы считают: упомянутое ингибирование этими реагентами, вероятно, влияет на стадию превращения фотопорфириногена в фотопорфирин IX под действием энзима (фотопорфириноген-оксидаза, ЕС 1.2.3.4) таким образом, что фотопорфириноген уже не претерпевает энзимного превращения в фотопорфирин IX нормальным путем, а вместо этого испытывает внутриклеточное окисление (например, в плазме) вне нормального энзиматического процесса (например, все оболочки органеллы), вследствие чего фотопорфирин IX накапливается в областях, где он недоступен для нормального превращения в heme, и в результате при облучении клеток светом накопившийся таким образом фотопорфирин IX вызывает эффект разрушения клеток, подобный тому, который наблюдался в случае описанной выше фотодинамической терапии. Unlike pure porphyrin, this compound inhibits the enzymatic termination of photoporphyrinogen in the heme structure of these cells, thereby causing the formation of endogenous photoporphyrin IX in these cells. The authors found that reagents such as certain types of herbicidal compounds that inhibit the enzymatic conversion of porphyrinogens to chlorophyll in plant cells also inhibit the enzymatic conversion of porphyrinogen in the heme structure of breast cells. The authors believe that the mentioned inhibition by these reagents probably affects the stage of conversion of photoporphyrinogen to photoporphyrin IX under the action of an enzyme (photoporphyrinogen oxidase, EC 1.2.3.4) so that photoporphyrinogen no longer undergoes enzymatic conversion to photoporphyrin IX in a normal way, but instead undergoes intracellular oxidation (for example, in plasma) outside the normal enzymatic process (for example, all organelle shells), as a result of which photoporphyrin IX accumulates in areas where it is not accessible to normal th conversion to heme, and as a result of the irradiation of the accumulated thus fotoporfirin IX cell light effect causes destruction of cells similar to that observed in the case of the above-described photodynamic therapy.

Отвечающие настоящему изобретению активные соединения, подавляющие энзимы, являются специфическими ингибиторами фотопорфириноген-оксидазы в том смысле, что они не функционируют как обычные энзимные яды подобно реагентам, вызывающим денатурирование или образование поперечных связей (например, подобное реагентам на основе сульфигидрила); они также не являются прежде всего такими влияющими на условия окисления препаратами, как акцепторы электронов, и, следовательно, активные соединения, предпочтительные согласно настоящему изобретению, имеют более отрицательный окислительно-восстановительный потенциал, чем 500 мВ и даже еще отрицательный окислительно-восстановительный потенциал, чем 500 мВ и даже еще отрицательный, а именно, равный 800 мВ (измеренный, например, обычным методом в подходящем для данного соединения растворителе: методом циклической вольтаметрии или же полярографическим методом). Предпочтительно также, что активное соединение не представляет собой тетрапиррол и что его показатель I50 для фотопорфироген-оксидазы составляет менее 1 мкМ, например, менее 0,3 мкМ; в частности показатель I50 составляет приблизительно 0,1, 0,03 или 0,01 мкМ даже менее.Enzyme inhibitory active compounds of the present invention are specific inhibitors of photoporphyrinogen oxidase in the sense that they do not function like ordinary enzyme poisons like reagents that cause denaturation or crosslinking (for example, like reagents based on sulfhydryl); they are also not primarily such agents that affect the oxidation conditions as electron acceptors, and therefore, the active compounds preferred according to the present invention have a more negative redox potential than 500 mV and even a negative redox potential than 500 mV and even still negative, namely equal to 800 mV (measured, for example, by the usual method in a solvent suitable for the given compound: by the method of cyclic voltametry or polarog aficheskim method). It is also preferred that the active compound is not tetrapyrrole and that its I 50 for photoporphyrogen oxidase is less than 1 μM, for example, less than 0.3 μM; in particular, the I 50 value is approximately 0.1, 0.03 or 0.01 μM even less.

Предпочтительно такое ингибирующее энзим активное соединение, которое отличается повышенной способностью разрушения плазмалеммы (Plasmalemma) растительных препаратов. Один из методов испытания данной способности описан под названием "Эксперимент по вымыванию) в статье Холлинга и Питерса (Halling and Peters); Plant Physiology, 1987, т. 84, с. 1114-6. Preferably, such an enzyme inhibitory active compound that is characterized by an increased ability to destroy the plasmalemma (Plasmalemma) of herbal preparations. One method for testing this ability is described under the title “Flushing Experiment” in a paper by Halling and Peters; Plant Physiology, 1987, v. 84, pp. 1114-6.

Согласно этому испытанию (более подробно оно описано ниже в приложении А) предпочтительные реагенты показывают по крайней мере 50%-ное общее вымывание при уровне обработки 100 мкМ, предпочтительно же при уровне обработки 1 мкМ и менее, например, при 100 нМ. Высокоактивные препараты, такие как 1-(4-хлор-2-фтор-5-пропаргилоксифенил)-3-метил-4-дифторметил-Δ2-1,2,4-триазолин-5-он или лактофен (см. ниже) показывают общее вымывание свыше 90% при концентрации 100 нМ.According to this test (described in more detail below in Appendix A), the preferred reagents show at least 50% total leaching at a treatment level of 100 μM, preferably at a treatment level of 1 μM or less, for example, at 100 nM. Highly active drugs, such as 1- (4-chloro-2-fluoro-5-propargyloxyphenyl) -3-methyl-4-difluoromethyl-Δ 2 -1,2,4-triazolin-5-one or lactophen (see below) show a total washout of over 90% at a concentration of 100 nM.

Другой методикой определения способности препарата разрушать плазмалемму растительного вещества является т.н. "Испытание на ингибирование позеленения, вызываемого световым облучением", подробнее описанное ниже в Приложении В. Эта методика предназначена для определения способности препарата подавлять позеленение отбеленной в темноте культуры микроорганизмов Clamydomonas reinhardi, y-1 (разновидность микроорганизмов aglae, которые растут в темноте, не образуя хлорофилла). При этом имеется в виду, что масса algae отбеливается благодаря наличию в ней свежих, непозеленевших клеток, но вновь образует хлорофилл на свету. Another method for determining the ability of a drug to destroy the plant plasmalemma is the so-called. "Testing the inhibition of greening caused by light irradiation", described in more detail below in Appendix B. This method is intended to determine the ability of the drug to suppress the greening of bleached in the dark cultures of microorganisms Clamydomonas reinhardi, y-1 (a type of aglae microorganisms that grow in the dark without forming chlorophyll). At the same time, it is understood that the algae mass is bleached due to the presence of fresh, green cells in it, but again forms chlorophyll in the light.

Многие из предпочтительных активных соединений, применяющихся согласно настоящему изобретению, способны подавлять позеленение, вызванное световым облучением, по крайней мере на 50% при концентрации используемого соединения 10-5 М, предпочтительное при 10-6 и менее, например, при концентрации 10-7 М. Кроме того, это соединение должно быть таким, которое в ходе указанного испытания на ингибирование позеленения образует всплывающий на поверхность продукт с максимумом светопоглощения при 405 нМ, что превышает максимум для хлорофилла, составляющий в данном системе 669 нМ; например, всплывающий продукт показывает при 405 нМ максимум, который в 2,3 или 4 раза выше максимума при 668 нМ.Many of the preferred active compounds used according to the present invention are able to suppress greening caused by light irradiation by at least 50% at a concentration of the compound used 10 -5 M, preferred at 10 -6 or less, for example, at a concentration of 10 -7 M In addition, this compound should be such that, during the test of greening inhibition, it forms a product that floats to the surface with a maximum light absorption at 405 nM, which exceeds the maximum for chlorophyll constituting d in this system is 669 nM; for example, a pop-up product shows at 405 nM a maximum that is 2.3 or 4 times higher than the maximum at 668 nM.

Среди ингибирующих энзимы активных соединений, которые можно использовать при осуществлении настоящего изобретения, есть гербициды следующих типов (А-D). Among the inhibitory enzymes of the active compounds that can be used in the practice of the present invention, there are the following types of herbicides (A-D).

А. Арил-гетероциклические гербициды общей формулы:
Ph NHet
Ph замещенный фенил, предпочтительно 2,4-дизамещенный фенил, еще предпочтительнее 2,4,5 тризамещенный фенил, а NHet 5- или 6-членное гетероциклическое кольцо (с 1 4 атомами азота в кольце) формулы:

Figure 00000002

где Q означает замыкающую группу гетероциклического кольца, а R водород или замещающую его группу. Данный класс соединений включает также препараты, которые в статье Вакабаяси (Wakabayshi) и др. (см. J. Pesticide, Sci. 1986, т. II, с. 635 460) определены как класс гербицидов на основе циклических имидов, причем на с. I этой статьи представлены следующие соединения:
Figure 00000003

Соединение I представляет собой гербицид на основе арил-оксидиазола, а именно 2-трет. -бутил-4-(2,4-дихлор-5-изопропоксифенил)-Δ2-1,3,4-оксидиазолин-5-он. Другие 2-алкил-4-(2,4,5-тризамещенный фенил)-Δ2-1,3,4-оксидиазолин-5-оны, которые можно использовать согласно настоящему изобретению, охарактеризованы, например, в патентах США N 3385862, 3836539, 3876413.A. Aryl-heterocyclic herbicides of the general formula:
Ph nhet
Ph substituted phenyl, preferably 2,4-disubstituted phenyl, even more preferably 2,4,5 trisubstituted phenyl, and NHet a 5- or 6-membered heterocyclic ring (with 1 to 4 nitrogen atoms in the ring) of the formula:
Figure 00000002

where Q means the closing group of the heterocyclic ring, and R is hydrogen or a substituent group thereof. This class of compounds also includes preparations that are defined in the article by Wakabayshi et al. (See J. Pesticide, Sci. 1986, vol. II, p. 635 460) as a class of herbicides based on cyclic imides, and on p. I of this article presents the following compounds:
Figure 00000003

Compound I is an aryl-oxydiazole-based herbicide, namely 2-tert. -butyl-4- (2,4-dichloro-5-isopropoxyphenyl) -Δ 2 -1,3,4-oxydiazolin-5-one. Other 2-alkyl-4- (2,4,5-trisubstituted phenyl) -Δ 2 -1,3,4-oxydiazolin-5-ones that can be used according to the present invention are described, for example, in US patent N 3385862, 3836539, 3876413.

Соединение II представляет собой гербицид на основе арил-тетрагидроиндазола, а именно 3-хлор-2-(4-хлор-2-фтор-5-изопропоксифенил)-4,5,6,7-тетрагидро-2Н-индазола. Compound II is an aryl-tetrahydroindazole herbicide, namely 3-chloro-2- (4-chloro-2-fluoro-5-isopropoxyphenyl) -4,5,6,7-tetrahydro-2H-indazole.

Соединения III, IV и V представляют собой гербициды на основе арил-тетрагидрофталимида. Другие арил-тетрагидрофталимиды, которые можно использовать согласно настоящему изобретению, охарактеризованы, например, в патентах США N 4431822, 4670046, 4670042, 4439229, а также в выложенной международной заявке N WO 87/07062. В двух последних источниках, кроме того, описаны другие NHet кольца, использование которых также допустимо. Примеры таких колец приведены в частности на с. 12 14 международной заявки N WO 87/07602, а также в патенте США N 4439229 (cо строки 25 на с. 4 по строку 20 на с. 5). Compounds III, IV and V are aryl-tetrahydrophthalimide-based herbicides. Other aryl tetrahydrophthalimides that can be used according to the present invention are described, for example, in US Pat. Nos. 4,431,822, 4,670,046, 4,670,042, 4,439,229, as well as in international patent application laid out WO 87/07062. The last two sources also describe other NHet rings, the use of which is also permissible. Examples of such rings are given in particular on p. 12 14 of international application N WO 87/07602, as well as in US patent N 4439229 (from line 25 on p. 4 on line 20 on p. 5).

Другими подходящими гербицидами типа Р NHet являются:
арил-триалиноны, такие, что описаны в патентах США под номерами 4318731, 4398943, 4404019, 4702945, 4705557, 4702763, 4761174, а также в международных заявках под номерами WO 85/01637, WO 85/04307, WO 87/00730, WO 87/03782, и WO 86/04481 и WO 88/01133;
арил-тетразолиноны, такие, что описаны в патенте США под номером 4734124, а также в международных заявках под номерами NN WO 85/01939 и WO 87/03873;
арил-триазиндионы, такие, что описаны в патентах США под номерами NN 4755217 и 4766233, а также в международной заявке N WO 86/00072;
арил-гидантоины, такие, что описан в патенте США под номером 4427438;
арил-уразолы, такие, что описан в патенте США N 4452981 и арил-гексагидропиридазины, такие, что описан в патенте США N 4619687.
Other suitable NHet type P herbicides are:
aryl-trialinones, such as those described in US patents nos. 4318731, 4398943, 4404019, 4702945, 4705557, 4702763, 4761174, as well as in international applications under the numbers WO 85/01637, WO 85/04307, WO 87/00730, WO 87/03782, and WO 86/04481 and WO 88/01133;
aryl-tetrazolinones, such as those described in US patent under number 4734124, as well as in international applications under the numbers NN WO 85/01939 and WO 87/03873;
aryl-triazinediones, such as those described in US patents Nos. 4,755,217 and 4,766,233, as well as in international application N WO 86/00072;
aryl hydantoins, such as those described in US Pat. No. 4,427,438;
aryl-urazoles, such as described in US Pat. No. 4,452,981; and aryl-hexahydropyridazines, such as described in US Pat. No. 4,619,687.

В. Арил-гетероциклические уретаны, такие, что описан в патенте США N 4521242. B. Aryl-heterocyclic urethanes, such as those described in US patent N 4521242.

С. Гербициды на основе простого фенилового эфира из тех, что имеют пара-гало- или пара-нитро-феноксифениловую структуру, а именно, такие, как следующие имеющиеся в продаже препараты:
5-[2-хлор-4-(трифторметил)-фенокси] -2-нитро-N-метансульфонилбензамид ("фомесафен")

Figure 00000004

Метил-5-(2,4-дихлорфенокси)-2-нитробензоат ("Бифенокс")
Figure 00000005

5-(2-(2-хлор-4-(трифторметил)-фенокси)-2-нитробензоат натрия ("Ацифлуоросфен")
Figure 00000006

2-хлор-1-(3-этокси-4-нитрофенокси)-4-трифторметилбензол ("Оксифлуорфен")
Figure 00000007

Другими подходящими и имеющимися в продаже гербицидами на основе простых дифениловых эфиров являются следующие соединения.C. Phenyl ether-based herbicides that have a para-halo or para-nitro-phenoxyphenyl structure, namely, such as the following commercially available preparations:
5- [2-chloro-4- (trifluoromethyl) phenoxy] -2-nitro-N-methanesulfonylbenzamide ("fomesafen")
Figure 00000004

Methyl 5- (2,4-dichlorophenoxy) -2-nitrobenzoate (Bifenox)
Figure 00000005

5- (2- (2-chloro-4- (trifluoromethyl) -phenoxy) -2-sodium nitrobenzoate (“Acifluorosthen”)
Figure 00000006

2-chloro-1- (3-ethoxy-4-nitrophenoxy) -4-trifluoromethylbenzene (“Oxifluorfen”)
Figure 00000007

Other suitable and commercially available diphenyl ether herbicides are the following compounds.

"Лактофен": 1-(карбоэтокси)-этил-5%(2-хлор-4-трифторметил-фенокси)-2-нитробензоат;
"Флюороглюкофен": (карбоэтокси)-метил-5-(2-хлор-4-трифторметилфенокси)-2-нитробензоат;
"Фромесофен": 5-[2-хлор-4-(трифторметил)-фенокси]-N-метил-сульфонил-2-нитробензамид;
"Хлоронитрофен": 2,4,6-трихлор-(4-нитрофенокси)-бензол;
"Хлородифен": 2-нитро-1-(4-нитрофенокси)-4-трифторметил-бензол;
"Нитрофен": 2,4-дихлор-1-(4-нитрофенокси)-бензол;
"Хлометоксифен";
4-(2,4-дихлорфенокси)-2-метокси-1-нитробензол.
"Lactofen": 1- (carboethoxy) ethyl 5% (2-chloro-4-trifluoromethyl-phenoxy) -2-nitrobenzoate;
Fluoroglucophene: (carboethoxy) methyl 5- (2-chloro-4-trifluoromethylphenoxy) -2-nitrobenzoate;
Fromesophen: 5- [2-chloro-4- (trifluoromethyl) phenoxy] -N-methyl-sulfonyl-2-nitrobenzamide;
Chloronitrophen: 2,4,6-trichloro- (4-nitrophenoxy) benzene;
Chlorodifene: 2-nitro-1- (4-nitrophenoxy) -4-trifluoromethyl-benzene;
Nitrofen: 2,4-dichloro-1- (4-nitrophenoxy) benzene;
Chlomethoxifene;
4- (2,4-dichlorophenoxy) -2-methoxy-1-nitrobenzene.

Кроме того, еще одним подходящим простым дифениловым эфиром является оксим-О-ацетат 5-(2-хлор-4-трифторметилфенокси)-2-нитроацетофенона. In addition, another suitable diphenyl ether is 5- (2-chloro-4-trifluoromethylphenoxy) -2-nitroacetophenone oxime-O-acetate.

1. Гербициды на основе арил-пиразолов, таких, что описаны в патентах США NN 4563210, 4496390 и 4459150, а также в выложенной заявке Германии N 3530327 А1. 1. Herbicides based on aryl-pyrazoles, such as those described in US patents NN 4563210, 4496390 and 4459150, as well as in German patent application laid out N 3530327 A1.

Figure 00000008

где хb кислород или сера, а Рh имеет смысл, указанный выше; данные соединения описаны в Европейской патентной заявке под N 273417, а также в каталоге Derwtnt Abstracts (см. N 87-040749).
Figure 00000008

where x b is oxygen or sulfur, and Ph has the meaning indicated above; these compounds are described in European patent application N 273417, as well as in the Derwtnt Abstracts catalog (see N 87-040749).

Лечение активными соединениями, отвечающими настоящему изобретению, можно осуществлять посредством инъекций как внутривенно, так и в брюшную полость. Активное соединение можно использовать в виде стерильной композиции, представляющей собой реагент, растворенный или диспергированный в фармацевтически приемлемом носителе, например, в водном изотоническом растворе, таком как соленая вода (0,9% NaCl) или же подсоленый буферный раствор Далбекко (Dulbecco) c концентрацией порядка 2,5 мг/мл. Или же активное соединение может быть включено в липосомальную систему, такую, что можно получить в фосфолипидной среде аналогично тому, как это описано на с. 1659 - 1660 справочника Kemington,s Pharmacentical Science, 17-е издание фирмы "Мак паблишинг Кo" (Mack Publishing Co). Например, аналогично рецептуре, которую описали Йори и сотр. (см. Br. J. Cancer, 1983, т. 48, с. 307), можно растворить 51,6 мг дипальмитоилдифосфатидилхолина в 10 мл 1 мМ раствора реагента в смеси хлороформа с метиловым спиртом (объемное соотношение 9:1) c последующим удалением растворителя (после предварительного тщательного перемешивания) под вакуумом при 30oC, получая в результате твердое вещество, которое можно вновь перевести во взвешенное состояние в 10 мл 0,01 М фосфатного буферного раствора с величиной рН 7,4, содержащего 150 мМ NaCl, c последующей ультразвуковой обработкой замутненного раствора при 50oС в течение 30 мин.Treatment with the active compounds of the present invention can be carried out by injection both intravenously and into the abdominal cavity. The active compound can be used in the form of a sterile composition, which is a reagent dissolved or dispersed in a pharmaceutically acceptable carrier, for example, in an aqueous isotonic solution, such as salt water (0.9% NaCl) or saline Dulbecco buffer solution (concentration about 2.5 mg / ml. Alternatively, the active compound may be incorporated into the liposome system, such that it can be prepared in a phospholipid medium in the same way as described on page 1659 - 1660 directory Kemington, s Pharmacentical Science, 17th Edition company "Mack Publishing K o" (Mack Publishing C o) . For example, similar to the recipe described by Yori et al. (see Br. J. Cancer, 1983, v. 48, p. 307), 51.6 mg of dipalmitoyl diphosphatidylcholine can be dissolved in 10 ml of a 1 mM reagent solution in a mixture of chloroform with methyl alcohol (volume ratio 9: 1), followed by removal solvent (after thorough thorough mixing) under vacuum at 30 o C, resulting in a solid that can be re-suspended in 10 ml of 0.01 M phosphate buffer solution with a pH value of 7.4, containing 150 mm NaCl, s followed by sonication turbid solution at 50 o C for 30 mi .

Ингибирующие энзимы реагенты, которые можно использовать при осуществлении настоящего изобретения, допускается соединять или связывать с подходящими моноклональными антителами, специфически воздействующими на опухоли (МАВs), с использованием техники связывания, хорошо известной специалистам в данной области в качестве средства доставки реагента, ингибирующего энзимы, к конкретному участку, пораженному опухолью. Enzyme inhibitory reagents that can be used in the practice of the present invention are allowed to be coupled or bound to suitable monoclonal antibodies specifically targeting tumors (MABs) using a binding technique well known to those skilled in the art as a means of delivering an enzyme inhibiting reagent to specific area affected by the tumor.

Ингибирующие энзимы активные соединения, применяющиеся согласно настоящему изобретению, можно также вводить простым назначением путем глотания, предпочтительно в разбавленном виде вместе с фармацевтически приемлемым носителем, в также посредством добавления их к пище, как это показано ниже в примере 6. The enzyme-inhibiting active compounds used according to the present invention can also be administered by simple administration by swallowing, preferably in a diluted form, together with a pharmaceutically acceptable carrier, and also by adding them to food, as shown below in Example 6.

Желательно, в особенности при назначении препарата через глотание, применять ингибирующие энзимы реагенты, представляющие собой растворимые в воде соли или же кислотные соединения, образующие растворимые в воде соли натрия или калия, то-есть такие, как сульфамид того вида, который описан в Международных заявках N WO 87/037873 (например, реагент бс в приведенном ниже примере 6), а также N WO 85/001939, N WO 87/037873 или его водорастворимая соль, либо соответствующая карбоновая кислота или ее водорастворимая соль, например, натриевая соль, известная под названием "Ацифлуорфен". It is advisable, especially when administering the drug by swallowing, to use enzyme inhibiting reagents, which are water-soluble salts or acidic compounds that form water-soluble sodium or potassium salts, i.e., such as sulfamide of the kind described in International applications N WO 87/037873 (e.g., BS reagent in Example 6 below), as well as N WO 85/001939, N WO 87/037873 or a water-soluble salt thereof, or a corresponding carboxylic acid or a water-soluble salt thereof, for example, a sodium salt known under called eat "acifluorfen."

Допускается включение ингибирующих экзимы активных соединений, используемых согласно настоящему изобретению, в обычные фармацевтические препараты, такие как таблетки (например, прессованные таблетки, на которые можно нанести сахарную пасту и/или сироп), свечи, капсулы (например, твердые желатиновые капсулы), суспензии, растворы, порошки или ампулы. В таких препаратах активный компонент может находиться в смеси с фармацевтически приемлемым твердым или жидким носителем, который по желанию может быть пищевым продуктом. Например, это может быть твердый продукт, быть пищевым продуктом. Например, это может быть твердый продукт, такой как кукурузный крахмал, или жидкий разбавитель, такой как вода или пищевое либо минеральное масло, или же растворитель диметилсульфоксид и т.п. Можно применять смеси ингибирующих энзимы активных компонентов, например, смесь активного компонента 6с, указанного ниже в примере 6, с "Ацифлуорфеном", в приблизительно равных количествах. Назначаемую дозировку можно определить обычным экспериментальным путем, хорошо известным специалистам в данной области, по методике эксперимента, описанной для препарата "фотофрин" (Photophcin) в статье Даферти "фотодинамическая терапия (ФДТ) злокачественных опухолей", см. СRC Сritical Reirews в издании Oncology/Hemotology, 1984, т. 2, вып. 2, с. 83 116. The excimes of the active compounds used according to the present invention may be included in the usual pharmaceutical preparations, such as tablets (for example, compressed tablets, on which sugar paste and / or syrup can be applied), suppositories, capsules (for example, hard gelatine capsules), suspensions solutions, powders or ampoules. In such preparations, the active component may be mixed with a pharmaceutically acceptable solid or liquid carrier, which may be a food product if desired. For example, it can be a solid product, be a food product. For example, it may be a solid product, such as corn starch, or a liquid diluent, such as water or edible or mineral oil, or a solvent, dimethyl sulfoxide and the like. Mixtures of inhibitory enzymes of the active components can be used, for example, a mixture of the active component 6c shown in Example 6 below with “Acifluorfen” in approximately equal amounts. The prescribed dosage can be determined by the usual experimental method, well known to specialists in this field, by the experimental procedure described for the Photophrin preparation in the Dafferty article “Photodynamic Therapy (PDT) of Malignant Tumors”, see CRC Critical Reirews in Oncology / Hemotology, 1984, vol. 2, no. 2, p. 83 116.

Ниже с целью иллюстрирования настоящего изобретения приведены следующие примеры. The following examples are provided below to illustrate the present invention.

П р и м е р 1. Клетки НеLа (линия опухолевых клеток человека, обычно используемых при исследовании опухолей, выведенная из банка культур American Type Cneture Collection), находящиеся в фазе логарифмического роста (выращенные при 37oС в течение 5 сут в однолитровых фальконовских колбах для тканевых культур) подвергали промывке в солевом фосфатном буферном растворе (СФБР). Далее к ним добавляли 0,25%-ный раствор трипсина в 2 мл СФБР. Через несколько минут препарат осторожно извлекали из колбы и помещали в стакан, содержащий 100 мл 25 мМ раствора HEPES в "минимальном эфирном носителе" (Minimum Essential Medium) с добавлением к МЕМ 10% (сб.доли) неактивированной телячьей сыворотки. 1,1 мл 200 мМ раствора глутамина в 0,85%-ном солевом растворе, а также 11000 единиц пенициллина на 11000 мкг стрептомицина.PRI me R 1. HeLa cells (a line of human tumor cells commonly used in the study of tumors, derived from the American Type Cneture Collection culture bank), located in the phase of logarithmic growth (grown at 37 o C for 5 days in one-liter Falcon tissue culture flasks) were washed in saline phosphate buffered saline (SBS). Next, a 0.25% solution of trypsin in 2 ml of SFBR was added to them. After a few minutes, the preparation was carefully removed from the flask and placed in a beaker containing 100 ml of a 25 mM HEPES solution in a “Minimum Essential Medium” supplemented with 10% (fractional fraction) of inactive calf serum to MEM. 1.1 ml of a 200 mM glutamine solution in 0.85% saline, as well as 11,000 units of penicillin per 11,000 μg of streptomycin.

Полученную в результате клеточную культуру, вновь переведенную во взвешенное состояние, помещали порциями по 5,0 мл в фальконовские колбы для тканевых культур вместимостью 50 мл и (за исключением контрольной пробы) смешивали с лекарственным активным соединением. Указанные порции далее выдерживали в темноте при 37oС в течение 3 сут. После этого культуру клеток извлекали и подвергали экстрагированию при зеленом свете следующим образом.The resulting cell culture, reconverted to suspension, was placed in 5.0 ml portions in 50 ml Falcon tissue culture flasks and (with the exception of the control sample) mixed with the drug active compound. These portions were further kept in the dark at 37 o C for 3 days. After that, the cell culture was extracted and subjected to extraction under green light as follows.

Клетки поднимали со дна колб добавлением по 0,8 мл 0,25%-ного раствора трипсина в СФБР. После инкубационного выращивания в темноте в течение 1 ч клетки и среду извлекали из колб, помещали в круглодонные пробирки для центрифугирования и подвергали двум циклам замораживания оттаивания с целью разрушения клеток и обеспечения возможности экстрагирования. Cells were raised from the bottom of the flasks by adding 0.8 ml of a 0.25% solution of trypsin in SFBR. After incubation in the dark for 1 h, the cells and medium were removed from the flasks, placed in round-bottom centrifugation tubes, and subjected to two thawing freezing cycles to destroy the cells and allow extraction.

Исследование клеточных взвесей после данной разрушающей операции не выявило неповрежденных клеток. Затем в каждую пробирку добавляли по 10 мл ацетона со свойствами основания (90% ацетона 10% 0,1Н NH OH), после чего пробирки подвергали центрифугированию для удаления протеина и кусочков клеток. Во всплывающее на поверхность вещество добавляли по 50 мл воды, а затем по 0,5 мл насыщенного водного раствора NaCl. Далее регулировали рН до величины 6,8 введением по каплям 2 М раствора KH2PO4. Затем заполняли колонку типа С8 BakerPrep ацетоно-водным экстрактом. Колонки просушивали и каждую промывали 2 мл воды. Тетранирролы вымывали смесью СН4OH:H2O при соотношении 90 10, взятой в объемном количестве 2 х 1,5 мл. После этого экстракты были подвергнуты количественному определению на спектрофлуорометре.The study of cell suspensions after this destructive operation did not reveal intact cells. Then, 10 ml of acetone with the properties of a base (90% acetone 10% 0.1N NH OH) was added to each tube, after which the tubes were centrifuged to remove protein and pieces of cells. 50 ml of water and then 0.5 ml of a saturated aqueous solution of NaCl were added to the substance that floated to the surface. The pH was then adjusted to a value of 6.8 by dropwise adding a 2 M KH 2 PO 4 solution. The BakerPrep type C8 column was then filled with acetone-water extract. The columns were dried and each washed with 2 ml of water. Tetranyrroles were washed with a mixture of CH 4 OH: H 2 O at a ratio of 90 10 taken in a volume of 2 x 1.5 ml. After that, the extracts were quantified on a spectrofluorometer.

В рассматриваемом эксперименте были использованы следующие лекарственные активные соединения. In the experiment under consideration, the following drug active compounds were used.

А. 5-аминолевулиновая кислота, известная как промежуточный продукт при синтезе тепрапирролов. A. 5-aminolevulinic acid, known as an intermediate in the synthesis of terapyrroles.

Активное соединение А было поставлено в виде стерилизованного фильтрованием А было поставлено в виде стерилизованного фильтрованием 250 мМ водного раствора (рН 6,5). Активные соединения В, С, I и Е были поставлены в виде 50 мМ раствора в ацетоне. Ацетон добавляли также в контрольную пробу, с тем чтобы концентрация в ней составила 0,2% (об. доли). В клеточные культуры вводили такие количества указанных активных компонентов, которые обеспечивали бы концентрации, приведенные ниже в табл. 1. В этой же таблице представлены количества полученного протопорфирина IX тетрапиррола (Proto IX). Active compound A was supplied as sterilized by filtration. A was delivered as a sterilized by filtration of a 250 mM aqueous solution (pH 6.5). Active compounds B, C, I and E were delivered as a 50 mM solution in acetone. Acetone was also added to the control sample so that the concentration in it was 0.2% (v / v). In cell cultures were introduced such quantities of these active components that would provide the concentrations shown below in table. 1. The same table shows the amounts of protoporphyrin IX tetrapyrrole obtained (Proto IX).

Figure 00000009

П р и м е р 2. Клетки Нe La в логарифмической фазе роста выращивали в течение 6 сут. в шести однолитровых фальконовских колбах для тканевых культур при 37oС, после чего промывали фосфатным буферным солевым раствором (ФБСР). Далее туда добавляли 0,25% -ный раствор трипсина в СФБР и через несколько минут клетки осторожно извлекали и помещали в стаканы, содержащие по 110 мл 25 мМ раствора HEPES в минимально-эфирной среде (МЕМ) с добавлением 10% (об. доли) неактивированной телячьей сыворотки, 1,1 мл 200 мМ раствора глутамина в 0,85% солевом растворе, а также 11 000 единиц пенициллина на 11 000 мкг стрептомицина.
Figure 00000009

EXAMPLE 2. He La cells in the logarithmic growth phase were grown for 6 days. in six one-liter Falcon flasks for tissue cultures at 37 o C, and then washed with phosphate buffered saline (PBS). Then, a 0.25% solution of trypsin in SFBR was added thereto and after a few minutes the cells were carefully removed and placed in beakers containing 110 ml of a 25 mM HEPES solution in minimally ether medium (MEM) with the addition of 10% (v / v) non-activated calf serum, 1.1 ml of a 200 mM solution of glutamine in 0.85% saline, and 11,000 units of penicillin per 11,000 μg of streptomycin.

Культуру клеток, вновь переведенную во взвешенное состояние, помещали равными порциями по 5,0 мл каждая во фальконовские колбы для тканевых культур вместимостью по 50 мл содержащие, либо не содержащие гербицид, и проводили инкубационную обработку в темноте при 37oС в течение 4 сут причем аналогично примеру 1 гербицид вводили в разбавленный ацетоновый раствор. Ацетон также добавляли и контрольным пробам для обеспечения в них концентрации ацетона 0,2% (сб. доли). Количество гербицида было таким, чтобы обеспечить концентрации, указанные ниже в табл. 2.The cell culture, reconverted to suspension, was placed in equal portions of 5.0 ml each in Falcon flasks for tissue cultures with a capacity of 50 ml containing or not containing a herbicide, and incubation was performed in the dark at 37 ° C for 4 days; analogously to example 1, the herbicide was introduced into a dilute acetone solution. Acetone was also added to control samples to provide 0.2% acetone concentration (sb). The amount of herbicide was such as to provide the concentrations indicated below in table. 2.

Для обработки использовали следующие активные компоненты:
В. Как в примере 1
С. Как в примере 1
F. Гербицид формулы:

Figure 00000010

Экстрагирование проводили следующим образом. Среду из каждой колбы помещали в стеклянные круглодонные пробирки, причем клетки, прилипшие к донцам фальконовских колб освобождали добавлением 0,5 мл 0,25% -ного раствора трипсина в СФБР и после выдерживания в течение нескольких минут при 37oС указанную культуру клеток сливали из колб и воссоединяли с клеточной средой.The following active components were used for processing:
B. As in example 1
C. As in example 1
F. Herbicide of the formula:
Figure 00000010

Extraction was carried out as follows. The medium from each flask was placed in round-bottom glass tubes, and the cells adhering to the bottoms of the Falcon flasks were released by adding 0.5 ml of a 0.25% trypsin solution in SFBR and, after standing for several minutes at 37 ° C, the indicated cell culture was poured from flasks and reunited with the cell medium.

Далее от каждой клеточной суспензии отбирали равные порции по 100 мкл с целью определения плотности клеточной культуры. Оставшиеся 5,4 мл суспензии клеточной культуры далее были подвергнуты ультразвуковой обработке в течение 30 мин для разрушения клеток. Then, equal portions of 100 μl were taken from each cell suspension in order to determine the density of the cell culture. The remaining 5.4 ml of cell culture suspension was then sonicated for 30 min to destroy the cells.

Затем в каждую пробирку вводили по 10 мл ацетона с основной реакцией (90% ацетона 10% NH4OH), после чего пробирки подвергали центрифугированию с целью удаления протеина и обрывков клеточной ткани. Во всплывающее на поверхность вещество добавляли 5 мл воды, а затем 0,5 мл насыщенного водного раствора NaCl. После этого величину рН добавляли до 6,8, добавляя по каплям 2 М раствор КН2РО4.Then, 10 ml of acetone was introduced into each tube with the main reaction (90% acetone 10% NH 4 OH), after which the tubes were centrifuged to remove protein and scraps of cell tissue. 5 ml of water and then 0.5 ml of a saturated aqueous solution of NaCl were added to the substance floating onto the surface. After this, the pH value was added to 6.8, adding dropwise a 2 M solution of KH 2 PO 4 .

Далее продукт экстрагировали из среды вода-ацетон, загружая в колонку С8 Вакер Р ер. Колонку сначала подсушивали, а затем 3 мл смеси метилового спирта с водой (90 10). Аналогично примеру 1 все упомянутые операции экстрагирования были проведены в условиях, по существу полностью исключающих возбуждение протопорфирина IX под действием света, а именно, при зеленом свете или в темноте, например, в сосудах с белым покрытием. Затем на спектрофлуорометре СРЕХ определяли параметры флуоресценции экстрактов. Количественные показатели накопления пропорпорфирина (Proto IX) устанавливали при помощи найденных заранее коэффициентов затухания. Результаты представлены ниже в табл. 2. Next, the product was extracted from water-acetone medium, loading into a C8 column Wacker Rer. The column was first dried, and then 3 ml of a mixture of methyl alcohol with water (90 10). Analogously to example 1, all the extraction operations mentioned above were carried out under conditions essentially excluding the excitation of protoporphyrin IX under the influence of light, namely, in green light or in the dark, for example, in white coated vessels. Then, the fluorescence parameters of the extracts were determined on a CPEX spectrofluorometer. Quantitative indicators of the proportional porphyrin accumulation (Proto IX) were determined using the attenuation coefficients found in advance. The results are presented below in table. 2.

Другой аспект настоящего изобретения касается получения протопорфирина IX (ниже Proto IX). В соответствии с этим осуществляли гетеротрофическое выращивание микроорганизмов algaе относящихся к классу эвкариотов, в темноте (или же при освещении, не вызывающем возбуждения Proto IX) в среде, содержащей описанное выше активное соединение, ингибирующее энзиматическое превращение протопорфириногена в Proto IX. Среду или микроорганизмы algae, или же и то и другое вместе далее обрабатывали с целью экстрагирования Proto IX и его отделения от хлорофилла, каротиноидов, обрывкой клеточных тканей и т.п. Разделение можно осуществлять любым обычным способом, например, посредством жидкофазной хроматографии, включая жидкостную хроматографию с обращением фазы, или же посредством растворения растворителем, а также осаждением Proto IX путем его перевода в хелатное соединение с металлом, например, железом, цинком или магнием с последующим (по желанию) регенерированием Proto IX, как это делается по известной методике обработки хелата разбавленной кислотой. Another aspect of the present invention relates to the preparation of protoporphyrin IX (below Proto IX). In accordance with this, heterotrophic cultivation of algae microorganisms belonging to the eucaryotic class was carried out in the dark (or under illumination that does not cause Proto IX excitation) in a medium containing the active compound described above that inhibits the enzymatic conversion of protoporphyrinogen into Proto IX. The algae medium or microorganisms, or both, were further processed to extract Proto IX and separate it from chlorophyll, carotenoids, scraps of cell tissue, etc. The separation can be carried out by any conventional method, for example, by means of liquid phase chromatography, including phase reversed liquid chromatography, or by dissolving with a solvent, and also precipitating Proto IX by converting it into a chelate compound with a metal, for example, iron, zinc or magnesium, followed by ( optionally by regeneration of Proto IX, as is done according to the known method of treating a chelate with dilute acid.

Операции на всех стадиях разделения проводят при освещении, не вызывающем возбуждения Proto IX, например, при зеленом свете, как это описано в приложении А, озаглавленном "Обработка в темноте", или же в полной темноте. Хелат железа нечувствителен к свету, так что работа на свету при использовании этого соединения допустима в большей степени. Operations at all stages of separation are carried out under illumination that does not cause Proto IX excitation, for example, in green light, as described in Appendix A, entitled “Processing in the dark”, or in complete darkness. The iron chelate is insensitive to light, so working in the light when using this compound is more permissible.

Микроорганизмы algaе предпочтительнее выращивать в виде суспензии клеточной культуры при температурах 15 30oC. Концентрация ингибирующего активного соединения может, например, составлять от 10-5 до 10-7 М. Примерами приемлемых микроорганизмов algae являются: Scenedesmus sp. Chlamydomonas reinhardi, Englena sp. Bumilleriopsis diliformis
П р и м е р 3. Культуры микроорганизма Clamydomonas reinhardi (дикая разновидность) выращивали в резервуаре из нержавеющей стали, вмещающем, например, 300 л с использованием описанной ниже культивационной среды (табл.А). К культуре добавляли раствор 1-(карбоэтокси)-этил-5-(2-хлор-4-трифторметилфенокси)-2-нитробензоата (т.н. "Лактофан") технический фенилэфирный гербицид) в ацетоне с целью обеспечения концентрации активного компонента 10-5 М и конечной концентрации ацетона, равной 0,1% Смесь оставляли в покое для выращивания в ней микроорганизмов при 25oС на 4 7 сут при осторожном механическом перемешивании и/или аэрировании.
Algae microorganisms are preferably grown as a cell culture suspension at temperatures of 15-30 ° C. The concentration of the inhibitory active compound may, for example, be from 10 -5 to 10 -7 M. Examples of suitable algae microorganisms are: Scenedesmus sp. Chlamydomonas reinhardi, Englena sp. Bumilleriopsis diliformis
Example 3. Cultures of the microorganism Clamydomonas reinhardi (wild variety) were grown in a stainless steel tank containing, for example, 300 l using the cultivation medium described below (Table A). A solution of 1- (carboethoxy) ethyl 5- (2-chloro-4-trifluoromethylphenoxy) -2-nitrobenzoate (the so-called "Lactophan") technical phenylether herbicide in acetone was added to the culture to ensure the concentration of the active component 10 - 5 M and a final concentration of acetone equal to 0.1%. The mixture was left alone to grow microorganisms in it at 25 ° C for 4-7 days with careful mechanical stirring and / or aeration.

Продолжая выполнять операции в темноте, содержимое резервуара отфильтровывали, фильтрат подвергали анализу на предмет обнаружения в нем протопорфирина IX. Continuing to perform operations in the dark, the contents of the tank were filtered off, the filtrate was analyzed for the detection of protoporphyrin IX in it.

Один из методов анализа с целью обнаружения фотопорфирина IX заключался в фильтровании содержимого реакционного резервуара (находящегося все это время в темноте) и в добавлении ацетона к фильтрату. Затем данную смесь подвергали экстрагированию петролейным эфиром. После этого водно-ацетоновую среду подвергали экстрагированию диэтиловым эфиром, который потом удаляли из осадка выпариванием. Этот осадок растворяли в метиловом спирте и подвергали хроматографии с обращением фазы с целью получения фотопорфирина IX. Кроме того, возможно было применение и методики обнаружения данного соединения, описанной в примерах 1 и 2. One of the analysis methods for detecting photoporphyrin IX was to filter the contents of the reaction tank (which had been in the dark all this time) and to add acetone to the filtrate. Then this mixture was subjected to extraction with petroleum ether. After that, the aqueous acetone medium was subjected to extraction with diethyl ether, which was then removed from the precipitate by evaporation. This precipitate was dissolved in methyl alcohol and subjected to phase reversal chromatography to obtain photoporphyrin IX. In addition, it was possible to use and methods of detection of this compound described in examples 1 and 2.

Альтернативой применению микроорганизмов Clamydomonas reinhardi является применение культуры Scendesmus sp. выращенной на вышеуказанной среде, в которой ацетат натрия заменен глюкозой. An alternative to the use of the microorganisms Clamydomonas reinhardi is the use of a Scendesmus sp. grown on the above medium in which sodium acetate is replaced by glucose.

П р и м е р 4. Данный пример аналогичен примеру 3 за исключением того, что вместо "Лактофена" применяют 1-(4-хлор-2-фтор-5-пропаргилоксифенил)-3-метил-4-дифторметил-Δ2-1,2,4-триазолин-5-он.PRI me R 4. This example is similar to example 3 except that instead of "Lactofen" is used 1- (4-chloro-2-fluoro-5-propargyloxyphenyl) -3-methyl-4-difluoromethyl-Δ 2 - 1,2,4-triazolin-5-one.

П р и м е р 5. Определение показателя I50
Протопорфириноген IX (Протоген IX)
Поставщиком препарата Proto IX была фирма "Порфирин продактс" (Porphyrin Products), г. Логэн, шт. Юта, США. Этот препарат выделили в чистом виде и описали Фюслер и сотр. (Т.Р. Fuesler et al. Plant Physiol, 1981, т. 67, с. 246 249). Свежий протоген IX получали восстановлением Proto IX с использованием Na/H амальгамы, как это описали Джекобс и Джакобс (N.J. Jacobs and J. M. Jacobs: Enzyme, 1982, т. 28, с. 206 219), работавшие с очищенным Proto IX с концентрацией 300 мкмМ.
PRI me R 5. The definition of indicator I 50
Protoporphyrinogen IX (Protogen IX)
The supplier of the drug Proto IX was the company "Porphyrin Products" (Porphyrin Products), Loghen, pc. Utah, USA. This drug was isolated in pure form and described by Füsler et al. (T.P. Fuesler et al. Plant Physiol, 1981, v. 67, p. 246 249). Fresh protogen IX was obtained by reducing Proto IX using an Na / H amalgam, as described by Jacobs and Jacobs (NJ Jacobs and JM Jacobs: Enzyme, 1982, v. 28, p. 206 219), working with purified Proto IX at a concentration of 300 μM .

Растительный материал
Огуречную рассаду (Cacumis saturis L. сорт Wisconsin SMR18) выращивали в затемненной рассадной камере на вермикулите, смоченном жидким фирменным удобрением (9-45-15). Рассаду выращивали при 25oС и при относительной влажности воздуха 80 90% Рассаду освещали прерывистым светом дозированной интенсивности 25 мк Е/м2.c (РAR) от управляемого электронным таймером источника света Bright Stick фирмы "Дженерал Электрик" из расчета I мин освещения в течение 60-минутного цикла. Таким образом была получена растительная ткань, обладающая способностью ускоренного синтеза хлорофилла при сведении к минимуму количеств резервного крахмала и уровней первоначального хлорофилла.
Plant material
Cucumber seedlings (Cacumis saturis L. cultivar Wisconsin SMR18) were grown in a darkened seedling chamber on vermiculite moistened with liquid branded fertilizer (9-45-15). Seedlings were grown at 25 ° C and at a relative humidity of 80 to 90%. Seedlings were illuminated with intermittent light of a dosed intensity of 25 µU / m 2 .c (RAR) from a General Electric Bright Stick light source controlled by an electronic timer based on the calculation of I min illumination in over a 60 minute cycle. Thus, plant tissue was obtained that has the ability to accelerate the synthesis of chlorophyll while minimizing the amount of reserve starch and the levels of the initial chlorophyll.

Изолирование хлоропластов
Выделяющиеся хлоропласты были изолированы методом, который описали Фюслер (Т. Р. Fuesler) и сотр. (см. Plant Physiol. 1984, т. 75, с. 662 664) за исключением того, что на конечной стадии очистки пластициды центрифугировали через 40%-ную (об. доли), а не через 45%-ную прокладку из материала Pe r co II. Затем хлоропласты были вновь переведены во взвешенное состояние в буферном растворе для проб, содержащем 0,5 М маннитола, 20 мкМ TES, 10 мкМ HEPES, 1 мкМ этилендиаминтетрауксусной кислоты, 1 мкМ мg Cl2, 1% (масс/объем) альбумина бычьей сыворотки и 1 мкМ дитиоэритритола при рН 7,7 и итоговом содержании протеина 2 мг/л.
Chloroplast isolation
The released chloroplasts were isolated by the method described by Füsler (T. R. Fuesler) et al. (see Plant Physiol. 1984, v. 75, p. 662,664) except that at the final stage of purification, the plasticides were centrifuged through 40% (v / v), rather than through a 45% pad of Pe material r co II. Then, the chloroplasts were resuspended in the sample buffer containing 0.5 M mannitol, 20 μM TES, 10 μM HEPES, 1 μM ethylenediaminetetraacetic acid, 1 μM mg Cl 2 , 1% (w / v) bovine serum albumin and 1 μM dithioerythritol at pH 7.7 and a total protein content of 2 mg / L.

Пробы протопорфириноген-оксидазы
Пробы были выведены так, что это описали Джакобс и Джакобс (J.M. Jacobs and N.J. Jacobs: Arch. Biochem. Biophys. 1984, т. 229, с. 312 319). Образцы (по 0,2 мл) суспензии хлоропластов были подвергнуты предварительной инкубационной обработке в темноте в течение 15 мин при различных концентрациях ациофлуорфен-метила (АFM) или при концентрации ацетона 0,2% (об. доли) в случае контрольной пробы. Затем 50 мкл свежеприготовленного препарата Protogen с концентрацией около 15 нМ вводили в суспензию с целью инициирования реакции. Завершалась подготовка проб введением 2,75 мл фторометрического средства, которое предложили Джакобс и Джекобс (J.M. Jacobs and N.J. Jacobs: Enzyme), 1982, т. 28, с. 206 219), содержащего 1% (сб. доли) твин-20 (монолаурат полиоксиэтиленсорбитана), 50 мМ трис-НСl, и 1 мМ этилендиаминтетрауксусной кислоты при рН 8,5, причем 1 мМ дитиоэритритола был замещен 5 мМ глутатиона. Затем взвеси анализировали методом прямого чтения на спектрофлуоротетре SPEX Fluorolog 2, оснащенном лицевым индикатором флуорасценции для замутненных биологических образцов. Количество образовавшегося Proto IX определяли по стандартной кривой графика зависимости между количественной эмиссией Proto IX при 630 нм и возбуждением при 400 нм, причем данная кривая были получена для чистого Proto IX во флуорометрической среде.
Samples of protoporphyrinogen oxidase
Samples were drawn so that it was described by Jacobs and Jacobs (JM Jacobs and NJ Jacobs: Arch. Biochem. Biophys. 1984, v. 229, p. 312 319). Samples (0.2 ml each) of the suspension of chloroplasts were pre-incubated in the dark for 15 minutes at various concentrations of aciofluorfenmethyl (AFM) or at an acetone concentration of 0.2% (v / v) in the case of a control sample. Then, 50 μl of a freshly prepared Protogen preparation with a concentration of about 15 nM was introduced into the suspension in order to initiate the reaction. The sample preparation was completed by the introduction of 2.75 ml of a fluorometric agent, which was proposed by Jacobs and Jacobs (JM Jacobs and NJ Jacobs: Enzyme), 1982, v. 28, p. 206 219) containing 1% (sb) of tween-20 (polyoxyethylene sorbitan monolaurate), 50 mM Tris-HCl, and 1 mM ethylenediaminetetraacetic acid at pH 8.5, with 1 mM dithioerythritol being substituted with 5 mM glutathione. Suspensions were then analyzed by direct reading on a SPEX Fluorolog 2 spectrofluoroteter equipped with a facial fluorescence indicator for turbid biological samples. The amount of Proto IX formed was determined by the standard curve of the graph between the quantitative emission of Proto IX at 630 nm and excitation at 400 nm, and this curve was obtained for pure Proto IX in a fluorometric medium.

Для количественного определения степени неэнзиматического окисления до Proto IX в описанной выше пробе приготовили точно такую же пробу за исключением того, что вместо суспензии активных хлоропластов использовали суспензию, в которой хлоропласты были переведены в неактивное состояние нагреванием при 85oС в течение 15 мин. Вычитание количества Proto IX, полученного таким образом, из его количества, полученного в присутствии активных хлоропластов как раз и дает количество Proto IX, которое образовалось энзиматическим путем. Результаты представлены графически на чертеже, где LSD - наименьшее значащее различие (общепринятое обозначение). Чертеж показывает, что показатель I50 (концентрация, обеспечивающая 50%-ное ингибирование) составляет менее 0,1 мкМ, например, около 0,03 мкМ.To quantify the degree of non-enzymatic oxidation to Proto IX in the sample described above, the exact same sample was prepared, except that instead of a suspension of active chloroplasts, a suspension was used in which the chloroplasts were turned into an inactive state by heating at 85 ° C for 15 minutes. Subtracting the amount of Proto IX obtained in this way from its amount obtained in the presence of active chloroplasts gives the amount of Proto IX, which was formed enzymatically. The results are presented graphically in the drawing, where LSD is the smallest significant difference (common designation). The drawing shows that the indicator I 50 (concentration that provides 50% inhibition) is less than 0.1 μm, for example, about 0.03 μm.

Испытание на влияние 10 мкМ AFM на энзиматическое превращение Proto IX в магнезиальный Proto IX в суспензии хлоропласта (в присутствии АТР) не показало никакого ингибирующего влияния AFM на это превращение. Testing for the effect of 10 μM AFM on the enzymatic conversion of Proto IX to magnesian Proto IX in a chloroplast suspension (in the presence of ATP) showed no inhibitory effect of AFM on this conversion.

П р и м е р 6. Согласно данному примеру ингибирующие энзимы активные компоненты были добавлены в пищу мышей, являющихся носителями опухолей, тогда как в пищу нескольких контрольных мышей никаких препаратов не добавляли. После этого мышей умерщвляли и извлекали их почки, кишечники, надпочечники, печень и опухоли, подвергнув их затем анализу на содержание Proto IX. Были использованы следующие ингибирующие энзимы активные соединения. PRI me R 6. According to this example, inhibitory enzymes active components were added to the food of mice that are carriers of tumors, while the food of several control mice were not added. After this, the mice were sacrificed and their kidneys, intestines, adrenal glands, liver and tumors were removed, and then subjected to analysis for the content of Proto IX. The following enzyme inhibitory active compounds were used.

В частности опыты проводили на мышах линии DBA/2 На, которым в нулевой день в правое плечо вводили инъекцией подкожный опухолевый препарат SMT-F. Далее в первый день мыши получали специальную пищу для грызунов:
Purina Rodent Chow 5001 Mash без добавок. Далее на вторые десятые сутки мыши получали ту же пищу с добавкой испытуемого ингибирующего энзим активного соединения в количестве 2 промилле (контрольные животные получали такую же пищу, но без добавок). Добавку вводили в пищу путем перемешивания с небольшим количеством раствора испытуемого активного соединения в ацетоне. Далее мышей умерщвляли на десятые сутки за исключением мыши, обработанной активным соединением, обозначенным как 6j: эту мышь умерщвляли на седьмые сутки. Ткани животных оставляли на охлаждение на ночь при 4oС, а затем удаляли влаги промокательной бумагой и определяли массу каждого образца ткани. Далее из тканей готовили гомогенную суспензию в 5 мл (в случае тканей кишечника и печени 10 мл) смеси ацетона и 0,1 н NH4OH, взятых в объемном соотношении 9: 1. Затем гомогенный препараты были центрифугированы при 1500 г и всплывшие на поверхность вещества были подвергнуты анализу на спектрофлуорометре SPEX FA112. Для Proto IX оптимальными являются возбуждение при 400 нм и эмиссия при длине волны 630 нм. Накопление Proto IX определяли по числу флуоресцентных вспышек в секунду на 1 г ткани. Результаты представлены ниже в табл. 3 (для каждого препарата значения являются средними для пары мышей за исключением испытаний с использованием активных соединений 6f, 6h, 6i и 6j, когда для испытаний брали только одну мышь).
In particular, experiments were performed on mice of the DBA / 2 Na line, which, on day zero, were injected with a subcutaneous tumor preparation SMT-F in the right shoulder. Then, on the first day, the mice received special food for rodents:
Purina Rodent Chow 5001 Mash without additives. Then, on the second tenth day, the mice received the same food with the addition of the test enzyme inhibitory active compound in the amount of 2 ppm (control animals received the same food, but without additives). The additive was introduced into food by mixing with a small amount of a solution of the test active compound in acetone. Then, the mice were killed on the tenth day with the exception of the mouse treated with the active compound designated as 6j: this mouse was killed on the seventh day. Animal tissue was allowed to cool overnight at 4 ° C. , and then moisture was removed with blotting paper and the weight of each tissue sample was determined. Next, a homogeneous suspension of 5 ml (in the case of intestinal and liver tissues 10 ml) of a mixture of acetone and 0.1 n NH 4 OH taken in a volume ratio of 9: 1 was prepared from tissues. Then, the homogeneous preparations were centrifuged at 1500 g and surfaced to the surface substances were analyzed on a SPEX FA112 spectrofluorometer. For Proto IX, excitation at 400 nm and emission at a wavelength of 630 nm are optimal. The accumulation of Proto IX was determined by the number of fluorescent flashes per second per 1 g of tissue. The results are presented below in table. 3 (for each preparation, the values are average for a pair of mice, with the exception of tests using the active compounds 6f, 6h, 6i, and 6j, when only one mouse was taken for testing).

Figure 00000011

Указанные данные в табл. 4 числа соответствуют концентрациям Proto IX в соответствующих тканях. Единица измерения: ультраграммы (уг) Proto IX на 1 г ткани.
Figure 00000011

The indicated data in table. 4 numbers correspond to the concentrations of Proto IX in the corresponding tissues. Unit of measurement: Ultramograms (ug) of Proto IX per 1 g of tissue.

В цитированной выше статье Даферти (Doupherty) приведено значение 3,6 уг/г для концентрации порфирина в опухоли того же вида МТ-F после инъекции 10 мг/кг гематопорфирина мышам той же линии 1 ВА/2 На. В другой научной публикации авторов Моан и сотр. (Moan et al: P P 46 5, c. 713 721, см. прим. на рис. 2 на стр. 716) указано, что в случае опухолей типа СН/Tif (концентрацию порфирина порядка 12 уг/г, обеспечиваемую инъекцией в брюшную полость мышам линии DBA/Н2 фотофрина II (Photofrin II) в количестве 25 мг/кг, широко применяют для придания чувствительности к свету при фотодинамическом лечении и диагностировании раковых заболеваний. In the Doupherty article cited above, a value of 3.6 ug / g is given for the concentration of porphyrin in a tumor of the same type of MT-F after injection of 10 mg / kg of hematoporphyrin to mice of the same line of 1 VA / 2 Na. In another scientific publication by Moan et al. (Moan et al: PP 46 5, p. 713 721, see note in Fig. 2 on p. 716) it is indicated that in the case of CH / Tif type tumors (a porphyrin concentration of the order of 12 ug / g provided by injection into the abdominal the cavity of mice of the DBA / H2 line of Photofrin II (Photofrin II) in an amount of 25 mg / kg, is widely used to give sensitivity to light in photodynamic treatment and diagnosis of cancer.

Мыши поедали следующие суммарные количества пищи, содержащей активное соединение: 6а) 22 и 36 г; 6b) 37 и 35 г; 6с) 25 и 22 г; 6d) 41 и 32 г; 6е) 40 и 44 г; 6f) 27 г; 6g) 33 и 40 г; 6h) 36 г; 6i) 10 г; 6j) 20 г. Mice ate the following total amounts of food containing the active compound: 6a) 22 and 36 g; 6b) 37 and 35 g; 6c) 25 and 22 g; 6d) 41 and 32 g; 6e) 40 and 44 g; 6f) 27 g; 6g) 33 and 40 g; 6h) 36 g; 6i) 10 g; 6j) 20 g.

При проведении экспериментов, описанных в данном примере 6, на животных, не являющихся носителями опухолей, выполнялась нижеследующая последовательность операцией с использованием (если не оговорено иное) активного соединения, которое в данном примере имеет обозначение 6с. When conducting the experiments described in this example 6 on animals that are not carriers of tumors, the following sequence was performed using the operation, unless otherwise specified, of the active compound, which in this example is designated 6c.

а) В результате определения показателя LD50 активного соединения он оказался свыше 2600 мг/кг (то есть мг активного соединения на 1 кг массы тела) для крыс, когда этот показатель определяли через 14 дней после однократного поедания животным порции кукурузного масла, содержащего 15% активного соединения, и свыше 700 мг/кг для мышей, когда данный показатель определяли через 14 дней после однократного поедания животным порции того же масла, содержащего 5% активного соединения.a) As a result of determining the LD 50 value of the active compound, it turned out to be over 2600 mg / kg (i.e. mg of active compound per 1 kg of body weight) for rats, when this indicator was determined 14 days after a single meal of animals containing 15% corn oil active compound, and more than 700 mg / kg for mice, when this indicator was determined 14 days after a single meal of animals eating a portion of the same oil containing 5% of the active compound.

б) При испытаниях составов для инъекций в брюшную полость, не содержащих активного соединения, была установлена способность мышей переносить инъекции при дозе 0,5 мл смеси равных долей диметилсульфоксида и воды. b) When testing compositions for injection into the abdominal cavity that do not contain an active compound, the ability of mice to tolerate injections at a dose of 0.5 ml of a mixture of equal proportions of dimethyl sulfoxide and water was established.

в) При испытаниях активного соединения, вводимого инъекцией в брюшную полость в составе смеси содержащей 60% кукурузного масла и 40% диметилсульфоксида, было установлено, что мыши способны переносить дозу 100 мг/кг. c) When testing the active compound, injected into the abdominal cavity in a mixture containing 60% corn oil and 40% dimethyl sulfoxide, it was found that mice are able to tolerate a dose of 100 mg / kg.

г) На мышах были проведены следующие эксперименты:
1) Ежедневное скармливание дозы 50 мг/кг (с использованием 1%-ного раствора активного соединения в ацетоне) на протяжении 8 дней.
d) The following experiments were performed on mice:
1) Daily feeding doses of 50 mg / kg (using a 1% solution of the active compound in acetone) for 8 days.

2) ежедневное введение инъекцией в брюшную полость дозы 50 мг/кг на протяжении 8 дней с использованием 1%-ной дисперсии активного соединения в минеральном масле, приготовленной растворением активного соединения в капле диметилсульфоксида и смешиванием полученного раствора с минеральным маслом;
3) ежедневное местное нанесение на кожу дозы 50 мг/кг на протяжении 8 дней с использованием 1%-ного раствора в диметилсульфоксиде,
4) кормление на протяжении 8 дней стандартной пищей с добавкой активного соединения в количестве 2 промилле от массы пищи;
5) ежедневные внутривенные инъекции дозы 50 мг/кг на протяжении 4 дней с использованием 2%-ного раствора в диметилсульфоксиде.
2) daily injection of a dose of 50 mg / kg into the abdominal cavity for 8 days using a 1% dispersion of the active compound in mineral oil prepared by dissolving the active compound in a drop of dimethyl sulfoxide and mixing the resulting solution with mineral oil;
3) daily topical application to the skin of a dose of 50 mg / kg for 8 days using a 1% solution in dimethyl sulfoxide,
4) feeding for 8 days with standard food with the addition of the active compound in the amount of 2 ppm of the mass of food;
5) daily intravenous injection of a dose of 50 mg / kg for 4 days using a 2% solution in dimethyl sulfoxide.

Затем мышей, взятых для экспериментов, умерщвляли, и определяли накопление Proto IX в их тканях. Then, the mice taken for the experiments were euthanized and the accumulation of Proto IX in their tissues was determined.

В другом эксперименте самца крысы линии Fischer 344 на протяжении 24 дней кормили пищей, содержащей 5 промилле активного соединения 6с, после чего животное умерщвляли. В тканях этой крысы было замечено повышение уровней содержания Proto IX по сравнению с контрольным животным, причем заметное повышение этих уровней наблюдалось в тканях почки, кишечника, желудка и головка мозга, тогда как в тканях мышц отмечено лишь некоторое повышение уровня. In another experiment, a male Fischer 344 rat was fed food containing 5 ppm of active compound 6c for 24 days, after which the animal was sacrificed. In the tissues of this rat, an increase in the levels of Proto IX was observed compared with the control animal, and a noticeable increase in these levels was observed in the tissues of the kidney, intestines, stomach and head of the brain, while in the muscle tissues there was only a slight increase in the level.

При проведении описанных выше экспериментов на крысах и мышах животных содержали при стандартном режиме совещания: 12 ч освещения и 12 ч темноты. When conducting the above experiments on rats and mice, animals were kept in a standard mode of meeting: 12 hours of light and 12 hours of darkness.

П р и м е р 7. При проведении серий экспериментов согласно примерам 1 и 2 культуры клеток НеL а инкубировали в присутствии перечисленных ниже различных лекарственных активных соединений с концентрацией 100 уМ. Приведенные после каждого обозначения лекарственного активного соединения показатели в показывают увеличение количества Proto IX, образующегося в присутствии данного лекарственного активного соединения, по отношению к тому количеству, которое образуется в контрольном образце в том же эксперименте. PRI me R 7. When conducting a series of experiments according to examples 1 and 2, cultures of HeL a cells were incubated in the presence of the following various drug active compounds with a concentration of 100 uM. The indicators c after each designation of the drug active compound show an increase in the amount of Proto IX formed in the presence of the drug active compound relative to the amount that is formed in the control sample in the same experiment.

Использованные активные соединения из примера 6 показали следующие значения: 6а) 337% 6b) 366% 6c) 297% 6d) 1200% 6e) 1210% 6f) 280% 6g) 326% 6h) 431% 6i) 544% 6j) 469% формулы других активных соединений и соответствующие процентные значения для них приведены ниже. The active compounds of Example 6 used the following values: 6a) 337% 6b) 366% 6c) 297% 6d) 1200% 6e) 1210% 6f) 280% 6g) 326% 6h) 431% 6i) 544% 6j) 469% the formulas of other active compounds and the corresponding percentage values for them are given below.

Figure 00000012

П р и м е р 8. В данном примере ингибирующее энзимы активное соединение 6с из примера 6 скармливали крысам с привитыми опухолями, после чего опухолевую зону облучали светом, вызывая тем самым рассасывание опухоли.
Figure 00000012

Example 8. In this example, the enzyme inhibitory active compound 6c of Example 6 was fed to rats with inoculated tumors, after which the tumor area was irradiated with light, thereby causing the tumor to resorb.

В частности трем крысам линии Sprague-Dawley массой в среднем по 120 г на период в 6 дней был назначен рацион питания с добавкой активного соединения в количестве 2 промилле. На третьи сутки на правую заднюю конечность каждой крысы имплантировали хондросаркому посредством инъекции 0,3 мл суспензии опухолевых клеток (1 миллион опухолевых клеток). На 6-е сутки правую заднюю конечность каждой крысы обривали для удаления волосяного покрова и измеряли размеры каждой опухоли. Далее область, пораженную опухолью, и окрестные участки кожи облучали нетепловыми дозами света с длиной волны 630 нм при плотности потока энергии 270 Дж/см2. На следующий день оказалось, что две крысы в заметной степени избавились от своих опухолей (то есть масса опухоли более не прощупывалась), а у третьей опухоль почти совершенно рассосалась. У всех крыс окружавшие опухоль участки кожной и мышечной тканей слегка побелели и казались как бы набухшими, но в значительно меньшей степени, нежели это имеет место в фотодинамической терапии с использованием препарата Photofrin II.In particular, three Sprague-Dawley rats weighing an average of 120 g for a period of 6 days were assigned a diet with the addition of the active compound in an amount of 2 ppm. On the third day, chondrosarcoma was implanted on the right hind limb of each rat by injection of 0.3 ml of a suspension of tumor cells (1 million tumor cells). On the 6th day, the right hind limb of each rat was shaved to remove hair and the size of each tumor was measured. Further, the area affected by the tumor and the surrounding areas of the skin were irradiated with non-thermal doses of light with a wavelength of 630 nm at an energy flux density of 270 J / cm 2 . The next day, it turned out that two rats to a noticeable degree got rid of their tumors (that is, the mass of the tumor was no longer felt), and in the third the tumor almost completely resolved. In all rats, the areas of the skin and muscle tissue surrounding the tumor were slightly whitened and seemed to be swollen, but to a much lesser extent than is the case in photodynamic therapy using Photofrin II.

Приложение А. Appendix A.

Испытание на определение процентного показателя вымывания
В ходе испытания на определение процентного показателя вымывания применяли семядоли, собранные из проращенной в темноте огуречной рассады. На первой стадии массу семядолей обрабатывали в темноте водным раствором (в присутствии буферного соединения), содержащим сахар с радиоактивными мечеными атомами. Далее измеряли количество сахара, усвоенного семядолями, по описанной ниже методике расчета. Затем всю массу семядолей делили на две порции. Одну из этих порций обрабатывали в темноте водным раствором (в присутствии буферного соединения), содержащим испытуемое соединение, а другую точно так же обрабатывали в темноте тем же раствором, но без испытуемого соединения (контрольная проба). Замоченные в указанных водных растворах семядоли далее облучали светом в течение 16 ч после чего их отделяли от водных растворов, в которых методом измерения и расчета определяли содержание вещества с радиоактивными мечеными атомами. Полученные результаты были затем представлены в виде процентного показателя вымывания (ППВ), рассчитываемого по формуле:
ППВ (Sт Sc)/s
где S, Sт и Sc соответственно количества распадов (на одну семядолю) вещества с радиоактивными мечеными атомами: а) в этом веществе, усвоенном семядолями во время их первоначальной обработки, б) в водном растворе, содержащем испытуемое соединение, после облучения светом и в) в контрольном водном растворе после облучения светом.
Leach Percentage Test
In the test to determine the percentage of leaching, cotyledons collected from cucumber seedlings germinated in the dark were used. In the first stage, the mass of cotyledons was treated in the dark with an aqueous solution (in the presence of a buffer compound) containing sugar with radioactive labeled atoms. Next, the amount of sugar assimilated by the cotyledons was measured according to the calculation procedure described below. Then the whole mass of cotyledons was divided into two portions. One of these portions was treated in the dark with an aqueous solution (in the presence of a buffer compound) containing the test compound, and the other was similarly treated in the dark with the same solution, but without the test compound (control sample). The cotyledons soaked in the indicated aqueous solutions were then irradiated with light for 16 hours, after which they were separated from the aqueous solutions, in which the content of a substance with radioactive labeled atoms was determined by measurement and calculation. The results were then presented as a percentage leaching rate (PPV), calculated by the formula:
PPV (St Sc) / s
where S, S t and S c, respectively, the number of decays (per cotyledon) of a substance with radioactive labeled atoms: a) in this substance absorbed by the cotyledons during their initial treatment, b) in an aqueous solution containing the test compound, after exposure to light and c) in a control aqueous solution after exposure to light.

Более подробно использованные материалы, а также условия проведения испытания на определение процентного показателя вымывания охарактеризованы ниже. The materials used in more detail, as well as the conditions of the test to determine the percentage of leaching, are described below.

Растительный материал
В вермикулите, смоченном имеющимся в продаже удобрением 9-45-15, были проращены семена огурца Cocumis sativus L. сорт Wisconsin SMR 18, из которых в инкубационной камере при 25oС и относительной влажности воздуха 80 90% выращивали в темноте рассаду. Спустя 5 сут с момента высева из-под бледных, выращенных в темноте ростков рассады собирали семядоли и промывали их в 1,0 мМ растворе CaCl2. Все эти операции проводили при зеленом свете.
Plant material
In vermiculite moistened with commercially available fertilizer 9-45-15, seeds of cucumber Cocumis sativus L. cultivar Wisconsin SMR 18 were germinated, of which seedlings were grown in the dark in an incubation chamber at 25 ° C and a relative humidity of 80 ° C. After 5 days from sowing, seedlings were collected from under pale sprouted seedlings grown in the dark and washed in a 1.0 mM CaCl 2 solution. All these operations were carried out under green light.

Буферный раствор
Раствор содержит 1 мМ КСl, 1 мМ СаСl2, 2,0 мМ фосфата калия и отрегулирован до рН 6,5 (как и при использовании NaOH).
Buffer solution
The solution contains 1 mm KCl, 1 mm CaCl 2 , 2.0 mm potassium phosphate and adjusted to a pH of 6.5 (as with NaOH).

Сахар с радиоактивными меченными атомами
Эта разновидность сахара представляет собой 3-0-метил-3-[u-14С]-глюкозу со специфической активностью 10,9 ГБк/мМ; поставщик: фирма "Амершэм Корп." (Amersham Corp.), г. Арлингтон хайтс, шт. Иллинойс, США.
Labeled Atom Sugar
This type of sugar is 3-0-methyl-3- [u-14C] -glucose with a specific activity of 10.9 GBq / mm; supplier: Amersham Corp. (Amersham Corp.), Arlington Heights, pc. Illinois, USA

Первоначальная обработка
180 230 штук промытых семядолей вводили в широкогорлую эрленмейеровскую колбу вместимостью 250 мл с пробкой из вспененного полиуретана, содержащую 50 мл буферного раствора, куда добавляли также сахар с радиоактивными мечеными атомами в количестве, обеспечивающем его концентрацию в растворе, равную 600 нМ. Колбу подвергали встряхиванию в темноте на вращающемся устройстве в течение 24 ч при 125 мин-1. Затем семядоли выгружали на сито из найлона и подвергали 3-кратной промывке порциями 1 мМ раствора СаСl2 по 20 мл каждая. Усвоение сахара с радиоактивными мечеными атомами определяли, растворяя 3 образца по 5 шт. семядолей каждый в растворителе тканей (марка NCS, производство фирмы "Амершэм Корп.") и подсчитывали итоговое истощение на спектрометре жидкостной сцинтилляции.
Initial processing
180,230 washed cotyledons were introduced into a 250 ml wide-necked Erlenmeyer flask with a polyurethane foam stopper containing 50 ml of buffer solution, to which sugar with radioactive labeled atoms was also added in an amount ensuring its concentration in the solution of 600 nM. The flask was shaken in the dark on a rotating device for 24 hours at 125 min -1 . Then the cotyledons were discharged onto a sieve from nylon and washed 3 times with portions of 1 mM CaCl 2 solution of 20 ml each. The assimilation of sugar with radioactive labeled atoms was determined by dissolving 3 samples of 5 pcs. cotyledons each in a tissue solvent (NCS brand, manufactured by Amersham Corp.) and the resulting depletion was calculated on a liquid scintillation spectrometer.

Было установлено, что эти эксперименты на истощение эквивалентны аналогичному определению, осуществляемому путем сжигания отобранных проб семядолей в самоокислителе. It was found that these depletion experiments are equivalent to a similar determination made by burning selected cotyledon samples in a self-oxidizing agent.

Обработка с использованием испытуемого соединения, а также контрольная обработка. Processing using the test compound, as well as control processing.

Пять шт. семядолей оставляли плавать неосевой стороной вверх на поверхности буферного раствора, налитого в количестве 3 мл в пластмассовую чашку Петри диаметром 35 мм с крышкой. Затем туда вводили испытуемое соединение (в виде его раствора в ацетоне) в количестве, обеспечивающем заданную концентрацию (о которой сказано выше) испытуемого соединения в буферном растворе. Содержание ацетона в буферном растворе составляло 0,1% (об. доли) как в контрольной пробе, так и в растворе, содержащем испытуемое соединение. Далее плавающие семядоли в течение 16 ч совершали круговое движение в водовороте, образующемся в результате встряхивания чашек с частотой 90 мин-1 на поверхности вращающегося встряхивающего устройства.Five Pieces the cotyledons were left to float non-axis side up on the surface of the buffer solution, poured in an amount of 3 ml into a plastic Petri dish with a diameter of 35 mm with a lid. Then the test compound (in the form of its solution in acetone) was introduced therein in an amount providing a predetermined concentration (as mentioned above) of the test compound in the buffer solution. The acetone content in the buffer solution was 0.1% (v / v) both in the control sample and in the solution containing the test compound. Then, the floating cotyledons made a circular motion in a whirlpool for 16 hours, which was formed as a result of shaking the cups with a frequency of 90 min –1 on the surface of the rotating shaking device.

Облучение светом
Чашки Петри с семядолями, плавающими на поверхности растворов, облучали в течение 16 ч светом четырех флуоресцентных ламп GE F20Т12-CW при заданной интенсивности 150 мкЕ/м2 в спектральной области фотосинтеза (СОФС), причем упомянутую интенсивность измеряли на поверхности семядолей, в то время как чашки подвергались непрерывному встряхиванию.
Light exposure
Petri dishes with cotyledons floating on the surface of the solutions were irradiated for 16 hours with the light of four GE F20T12-CW fluorescent lamps at a given intensity of 150 μE / m 2 in the spectral region of photosynthesis (SOFS), and the mentioned intensity was measured on the surface of cotyledons, at that time how the cups were continuously shaken.

Измерение количества находящегося в жидкости вещества с радиоактивными мечеными атомами. Measurement of the amount of substance in a liquid with radioactive labeled atoms.

Всю жидкость отбирали от семядолей и затем определяли число распадов на спектрометре жидкостной сцинтилляции. All liquid was taken from the cotyledons and then the number of decays was determined on a liquid scintillation spectrometer.

Т е м н о т а. TEMNOTA.

Все виды обработки до стадии облучения светом выполняли в темноте или при зеленом свете флуоресцентного источника, то есть при свете прошедшем сквозь зеленый отсекающий пластмассовый светофильтр, пропускающий свет с длинами волн 450 600 нм. All types of processing before the stage of irradiation with light was performed in the dark or under green light of a fluorescent source, that is, when the light passed through a green cut-off plastic filter, transmitting light with wavelengths of 450 600 nm.

Приложение В. Appendix B.

Концентрат смеси, содержащей следы металла
Н3ВО3 100 mg/L
ZnSO4•7H2O 100 mg/L
MnSO4•4H2O 40 mg/L
COCl2•6H2O 20 mg/L
NaMoO4•2H2O 20 mg/L
CuSO4 4 mg/L
Среду А для культур готовили, добавляя к среде М 10%-ный водный раствор ацетата натрия с концентрацией 7,5 х 10-3 М в количестве 10 мл/л.
Concentrate of trace metal
H 3 BO 3 100 mg / L
ZnSO 4 • 7H 2 O 100 mg / L
MnSO 4 • 4H 2 O 40 mg / L
COCl 2 • 6H 2 O 20 mg / L
NaMoO 4 • 2H 2 O 20 mg / L
CuSO 4 4 mg / L
Medium A for cultures was prepared by adding to the medium M 10% aqueous solution of sodium acetate with a concentration of 7.5 x 10 -3 M in an amount of 10 ml / l.

Все компоненты вводили в дистиллированную воду в порядке, указанном выше, после чего осуществляли их обработку в автоклаве под давлением 15 фунт/дюйм 2 в течение 15 мин.All components were introduced in distilled water in the order indicated above, followed by their treatment in the autoclave under a pressure of 15 lb / in2 for 15 minutes.

Запас консервированного препарата для выращивания культур под действием света
Законсервированные культуры клеток у-1 аксенически переводили в жидкие культуры на среде А или М, предпочтительно на среде А, в эрленмейеровских колбах, закрытых полиуретановыми пробками, при 25oС в условиях цикла 14 ч освещения и 10 ч темноты. Консервированные культуры подвергали инкубированию (без дополнительного аэрирования) на вращающихся встряхивающих устройствах, работающих с частотой 125 мин-1. Интенсивность освещения на уровне слоя культуры составляла 120 мкЕ/м2.с (СРФС). В этих условиях культуры находятся в режиме полусинхронного роста до тех пор, пока они не перейдут в стационарную фазу содержащую (2 4) х 106 клеток в 1 мл.
The stock of canned preparation for growing crops under the influence of light
Preserved U-1 cell cultures were axenically transferred to liquid cultures on medium A or M, preferably on medium A, in Erlenmeyer flasks closed with polyurethane plugs, at 25 ° C. under a cycle of 14 hours of light and 10 hours of darkness. Canned cultures were incubated (without additional aeration) on rotating shaking devices operating at a frequency of 125 min -1 . The illumination intensity at the level of the culture layer was 120 μE / m 2 .s (SRFS). Under these conditions, the cultures are in semi-synchronous growth mode until they go into the stationary phase containing (2 4) x 10 6 cells in 1 ml.

Выращивание культур в отсутствие света (культуры, выращиваемые в темноте)
Клетки, находящиеся в стационарной фазе культивирования из законсервированной культуры, выращенные на свете в количестве 7,5 мл, переносили в эрленмейеровскую колбу, содержащую 750 мл среды А. Клетки подвергали инкубированию в темноте при аэрировании через заглубленную аэрационную трубку при температуре 25oС в течение 3 4 сут. За это время данная культура клеток у-1 должна была протерпеть 7 8 клеточных делений, утрачивая весь видимый хлорофилл, при концентрации клеток (2 3) х 106 шт/мл.
Growing crops in the absence of light (crops grown in the dark)
Cells in the stationary phase of cultivation from a canned culture grown in the world in an amount of 7.5 ml were transferred to an Erlenmeyer flask containing 750 ml of medium A. Cells were incubated in the dark by aeration through a buried aeration tube at a temperature of 25 o C for 3 4 days. During this time, this culture of u-1 cells had to undergo 7 8 cell divisions, losing all visible chlorophyll, at a cell concentration of (2 3) x 10 6 pcs / ml.

Приготовление клеток для использования в пробных испытаниях
Клетки отбирали из свежеприготовленной культуры в количестве 750 мл выращенной в темноте, посредством центрифугирования из малых оборотах (около 2000 мин-1) при 20oC в течение приблизительно 5 мин. Эти клетки осторожно переводили опять в состояние суспензии в 50 мл среды А. В пробе данной суспензии (около 0,25 мл) определяли подвижность клеток, а после закрепления 1% -ным водным раствором глутаральдегида подсчитывали число клеток в 1 мл. Обычно число клеток составляет 5 х 107 шт./мл. Порции культуры клеток по 1 мл содержащие по 107 шт. клеток, помещали в испытательные сосуды, например в фальконовские тарелки с 24-мя лунками, предназначенные для клеточных культур. На этой стадии клетки весьма подвижны и окрашены в желтый цвет.
Preparation of cells for trial use
Cells were taken from a freshly prepared culture in an amount of 750 ml grown in the dark by centrifugation from low revolutions (about 2000 min -1 ) at 20 ° C for about 5 minutes. These cells were carefully transferred again to a suspension state in 50 ml of medium A. Cell motility was determined in a sample of this suspension (about 0.25 ml), and after fixing with a 1% aqueous solution of glutaraldehyde, the number of cells in 1 ml was counted. Typically, the number of cells is 5 x 10 7 units / ml. Portions of cell culture 1 ml each containing 10 7 pcs. cells, were placed in test vessels, for example, in 24-well Falcon plates intended for cell cultures. At this stage, the cells are very mobile and stained yellow.

Испытуемое соединение растворяли в подходящем растворителе, например, в ацетоне, этиловом спирте, диметилсульфоксиде или в воде (предпочтительно в ацетоне) для обеспечения концентрации, 1000-кратно превышающей конечную. В каждую пару лунок при помощи микрошприца вместимостью 5 или 10 мкл вводили по 1 мкл упомянутого испытуемого раствора. На каждой тарелке для клеточных культур готовили 4 контрольные лунки аналогично тому, как это описано выше, но при отсутствии испытуемого соединения. Тарелки для клеточных культур накрывали прозрачными пластмассовыми крышками и помещали на 13 16 ч в камеру выращивания при температуре 25oС и интенсивности освещения 70 90 мкЕ/кв.м.с. Если содержимое испытательных лунок желтело, то его извлекали так, как это описано ниже в п. "Оценка результатов". Если же содержимое испытательных лунок оказывалось прозрачным или бледно-зеленым, то его перед извлечением помещали на вращающееся встряхивающее устройство, работающее с частотой 125 мин-1, и в течение 2 ч облучали светом при интенсивности около 600 мкЕ/м2.с.The test compound was dissolved in a suitable solvent, for example, acetone, ethyl alcohol, dimethyl sulfoxide or water (preferably acetone) to provide a concentration 1000 times the final. In each pair of holes, using a microsyringe with a capacity of 5 or 10 μl, 1 μl of the test solution was introduced. On each plate for cell cultures were prepared 4 control wells in the same way as described above, but in the absence of the test compound. Plates for cell cultures were covered with transparent plastic covers and placed for 13 16 hours in a growth chamber at a temperature of 25 ° C and an illumination intensity of 70 90 μE / sq.m. If the contents of the test wells turned yellow, then they were removed as described below in p. "Evaluation of the results." If the contents of the test holes turned out to be transparent or pale green, then they were placed on a rotating shaking device operating at a frequency of 125 min -1 before being removed and irradiated with light at an intensity of about 600 μE / m 2 for 2 hours.

Оценка результатов
В каждую испытательную лунку вводили 250 мкл 10%-ного водного раствора додецилсульфата натрия и 1 мл метилового спирта, после чего содержимое лунки тщательно перемешивали. Полученные смеси выдерживали в темноте в течение 3 4 ч. Тарелки с клеточными культурами обрабатывали на центрифуге на малых оборотах (около 2000 мин-1) при комнатной температуре в течение 5 мин. Всплывающее на поверхность вещество снимали и анализировали на спектрофотометре "Бекман" (Beckman), 35-я модель в интервале длин волн 350 500 нм (на наличие протопорфирина IX, для которого в системе с упомянутым растворителем характерен как пик поглощения хлорофилла при 668 нм), а также при 720 нм, для того чтобы использовать фоновое показание мутности.
Evaluation of the results
250 μl of a 10% aqueous solution of sodium dodecyl sulfate and 1 ml of methyl alcohol were injected into each test well, after which the contents of the well were mixed well. The resulting mixtures were kept in the dark for 3–4 h. Plates with cell cultures were centrifuged at a low speed (about 2000 min –1 ) at room temperature for 5 min. The substance floating onto the surface was removed and analyzed on a Beckman spectrophotometer, the 35th model in the wavelength range of 350–500 nm (for the presence of protoporphyrin IX, which is characterized in the system with the mentioned solvent as a peak of chlorophyll absorption at 668 nm), as well as at 720 nm, in order to use the background turbidity reading.

Анализ данных
Для каждой лунки вычитанием значения при 720 нм из значения при 668 нм получали показатель позеленения. Соответствующие величины являются средними для каждой концентрации испытуемого соединения, а также для контрольной пробы. Процентный показатель ингибирования находят по формуле: Q 100 x (1 k), где k отношение среднего значения показателя озеленения для данной конкретной концентрации к среднему значению показателя позеленения контрольной пробы.
Data analysis
For each well, by subtracting the value at 720 nm from the value at 668 nm, a green indicator was obtained. The corresponding values are average for each concentration of the test compound, as well as for the control sample. The percentage inhibition is found by the formula: Q 100 x (1 k), where k is the ratio of the average value of the greening index for this particular concentration to the average value of the greening index of the control sample.

Claims (10)

1. Способ разрушения опухолевых клеток млекопитающих путем воздействия на них светом в присутствии порфирина, отличающийся тем, что перед обработкой светом клетки обрабатывают специфическим ингибитором энзиматического превращения протопорфириногена в протопорфирин IX под действием протопорфирин-оксидазы. 1. A method of destroying mammalian tumor cells by exposing them to light in the presence of porphyrin, characterized in that the cells are treated with a specific inhibitor of the enzymatic conversion of protoporphyrinogen to protoporphyrin IX under the action of protoporphyrin oxidase before light treatment. 2. Способ по п.1, отличающийся тем, что из ингибиторов используют или арилтриазолинон, или арилтетразолинон, или арилтриазиндион, или арилоксидиазол, или арилтетрагидроиндазол, или арилтетрагидрофталимид, или арилгидантоин, или арилуразол, или арилгексагидропиридазин, или арил гетероциклический уретан, или феноксифениловое соединение, или арилпиразол, или соединение формул
Figure 00000013

Figure 00000014

где Xb О или S;
Ph замещенный фенил.
2. A method according to claim 1, characterized in that the inhibitors are used or aryl triazolinone or ariltetrazolinon or ariltriazindion or ariloksidiazol or ariltetragidroindazol or ariltetragidroftalimid or arilgidantoin or arilurazol or arilgeksagidropiridazin or aryl heterocyclic urethane, or fenoksifenilovoe compound or arylpyrazole or a compound of the formulas
Figure 00000013

Figure 00000014

where X b O or S;
Ph substituted phenyl.
3. Способ по п.2, отличающийся тем, что ингибитором является растворимая в воде соль или кислое соединение, натриевая соль которого растворима в воде. 3. The method according to claim 2, characterized in that the inhibitor is a water-soluble salt or an acidic compound, the sodium salt of which is soluble in water. 4. Способ по пп. 1 3, отличающийся тем, что ингибитор содержит арильную группу, заместитель которой является кислой группой сульфониламида или ее растворимой в воде солью. 4. The method according to PP. 1 to 3, characterized in that the inhibitor contains an aryl group, the substituent of which is the acid group of the sulfonylamide or its salt soluble in water. 5. Способ по пп. 1 4, отличающийся тем, что в качестве ингибитора используют соединение формулы
Figure 00000015

6. Способ по п.1, отличающийся тем, что обработку клеток проводят посредством орального введения ингибитора.
5. The method according to PP. 1 to 4, characterized in that as the inhibitor use a compound of the formula
Figure 00000015

6. The method according to claim 1, characterized in that the processing of cells is carried out by oral administration of an inhibitor.
7. Фармацевтическая композиция для разрушения опухолевых клеток млекопитающих, содержащая биологически активное соединение и фармацевтически приемлемый носитель, отличающаяся тем, что в качестве биологически активного соединения композиция содержит специфический ингибитор ферментативного превращения протопорфириногена в протопорфирин IX протопорфирин-оксидазой, имеющей показатель 150 для протопорфирин-оксидазы менее 1 мкм или обладающей отрицательным окислительно-восстановительным потенциалом более чем 500 Мв.7. A pharmaceutical composition for the destruction of mammalian tumor cells, containing a biologically active compound and a pharmaceutically acceptable carrier, characterized in that the composition contains a specific inhibitor of the enzymatic conversion of protoporphyrinogen to protoporphyrin IX with protoporphyrin oxidase having a rate of 50 for protoporphyrin oxidase less than 1 μm or having a negative redox potential of more than 500 MW. 8. Композиция по п.7, отличающаяся тем, что из ингибиторов используют или арилтриазолинон, или арилтетразолинон, или арилтриазиндион, или арилоксидиазол или арилтетрагидроиндазол, или арилтетрагидрофталимид, или арилгидантоин, или арилуразол, или арилгексагидропиридазин, или арил гетероциклический уретан, или феноксифениловое соединение, или арилпиразол, или соединение формул
Figure 00000016

Figure 00000017

где Хb O или S;
Ph замещенный фенил.
8. The composition according to claim 7, characterized in that the inhibitors use either aryl triazolinone, or aryl tetrazolinone, or aryl triazinedione, or aryloxy diazole or aryl tetrahydroindazole, or aryl tetrahydrophthalimide, or aryl hydrazole, or aryl azheryl idryl, phenyl or aryl iride aryl iride or aryl azide or aryl iride aryl or aryl iride aryl or aryl iride aryl or aryl iride aryl or aryl azide or aryl azide or aryl azide or aryl azide or aryl azide or aryl azide or aryl aryl azide or aryl azide or aryl aryl azide or aryl azide or aryl azide are or or arylpyrazole, or a compound of the formulas
Figure 00000016

Figure 00000017

where X b O or S;
Ph substituted phenyl.
9. Композиция по п.8, отличающаяся тем, что ингибитором является растворимая в воде соль или кислое соединение, натриевая соль которого растворима в воде. 9. The composition of claim 8, wherein the inhibitor is a water-soluble salt or an acidic compound, the sodium salt of which is soluble in water. 10. Композиция по пп. 7 9, отличающаяся тем, что ингибитор содержит арильную группу, заместитель которой является кислой группой сульфонамида или ее растворимой в воде солью. 10. The composition according to paragraphs. 7 to 9, characterized in that the inhibitor contains an aryl group, the substituent of which is the acid group of the sulfonamide or its water-soluble salt. 11. Композиция по п.10, отличающаяся тем, что ингибитором является соединение формулы
Figure 00000018
я
11. The composition of claim 10, wherein the inhibitor is a compound of the formula
Figure 00000018
I am
SU894895765A 1988-12-12 1989-12-08 Method of mammalian tumor cell destruction and pharmaceutical composition for mammalian tumor cells destruction RU2074719C1 (en)

Applications Claiming Priority (5)

Application Number Priority Date Filing Date Title
US28515188A 1988-12-12 1988-12-12
US285151 1988-12-12
US33500789A 1989-04-07 1989-04-07
US335007 1989-04-07
PCT/US1989/005599 WO1990006748A2 (en) 1988-12-12 1989-12-08 Use of certain herbicides in cancer treatment and production of protoporphyrin ix

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2074719C1 true RU2074719C1 (en) 1997-03-10

Family

ID=26963013

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU894895765A RU2074719C1 (en) 1988-12-12 1989-12-08 Method of mammalian tumor cell destruction and pharmaceutical composition for mammalian tumor cells destruction

Country Status (2)

Country Link
MD (1) MD861G2 (en)
RU (1) RU2074719C1 (en)

Families Citing this family (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
MD4534C1 (en) * 2017-03-03 2018-06-30 Сергей Чербарь Seal with blocable rotor for metrological instruments

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Wakabayashi et al. J.Pestide Sci, 1986, p. 635-460. Photochemistry and Photobidogy, 1987, v.46, N 5. *

Also Published As

Publication number Publication date
MD861F2 (en) 1997-10-31
MD861G2 (en) 1998-10-31

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US5407808A (en) Method and composition for photodynamic treatment and detection of tumors
KR930003116B1 (en) Pharmacentical composition for cancer treatment
US5298502A (en) Method and composition for photodynamic treatment and detection of tumors
Bocci et al. Ozonation of human blood induces a remarkable upregulation of heme oxygenase‐1 and heat stress protein‐70
Spikes Photodynamic reactions in photomedicine
Bhuyan et al. Amizol-induced cataract and inhibition of lens catalase in rabbit
Morliere et al. Photosensitization by porphyrins delivered to L cell fibroblasts by human serum low density lipoproteins. A microspectrofluorometric study
RU2074719C1 (en) Method of mammalian tumor cell destruction and pharmaceutical composition for mammalian tumor cells destruction
Jori et al. Time dependence of hematoporphyrin distribution in selected tissues of normal rats and in ascites hepatoma
Gibson et al. Is δ‐Aminolevulinic Acid Dehydratase Rate Limiting in Heme Biosynthesis Following Exposure of Cells to δ‐Aminolevulinic Acid?¶
CS176291A3 (en) Pharmaceutical
Hegedus et al. Studies on Rheomelanins: I.—The Formation of Rheomelanins in Human Blood Plasma from Catecholamines, from L-Dopa and from Some of Their Derivatives
Giese Photosensitization of organisms, with special reference to natural photosensitizers
Celik et al. Effects of indoleacetic acid and kinetin on lipid peroxidation levels in various rat tissues
Krieg et al. Structurally modified trimethine thiacarbocyanine dyes: Effect of N-alkyl substituents on antineoplastic behavior
LT3997B (en) Process for preparing protoporphyrins and use thereof
HRP930762A2 (en) Preparation and use of porphyrin
Kimura et al. The role of lipid peroxidation on the development of photosensitive syndrome by pheophorbide a
Sebij et al. Medical compliance. Analysis of trends in research
CN113620935A (en) Pyrone compound and preparation method and application thereof
CN1171552A (en) Use of porphyrins
Buckman Studies on Delta-Aminolevulinic Acid (ALA) in Lead-Poisoned and Tumor Bearing Animals
Garnett Biochemical aspects of chronic hyperoxia in mammals
Fauve Symposiurn on free radicaIs
Colares et al. Action of melatonin and physical exercise on the liver of cirrhotic rats: Study of oxidative stress and the inflammatory process