RU2055535C1 - Method for elimination of bone tissue defect - Google Patents

Method for elimination of bone tissue defect Download PDF

Info

Publication number
RU2055535C1
RU2055535C1 RU93048621A RU93048621A RU2055535C1 RU 2055535 C1 RU2055535 C1 RU 2055535C1 RU 93048621 A RU93048621 A RU 93048621A RU 93048621 A RU93048621 A RU 93048621A RU 2055535 C1 RU2055535 C1 RU 2055535C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
bone marrow
bone tissue
defect
bone
tissue defect
Prior art date
Application number
RU93048621A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU93048621A (en
Inventor
Ирина Николаевна Ивасенко
Original Assignee
Ирина Николаевна Ивасенко
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Ирина Николаевна Ивасенко filed Critical Ирина Николаевна Ивасенко
Priority to RU93048621A priority Critical patent/RU2055535C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2055535C1 publication Critical patent/RU2055535C1/en
Publication of RU93048621A publication Critical patent/RU93048621A/en

Links

Abstract

FIELD: medicine. SUBSTANCE: method for elimination of bone tissue defect includes filling of defect with temporary biological prosthesis containing osteogenous medullary members impregnated with estrogen in dose of 0.5 mg/kg. EFFECT: higher efficiency in treatment of patient's ill with bone tissue defect.

Description

Изобретение относится к медицине, а именно к травматологии и ортопедии, к хирургической стоматологии, и может быть использовано при лечении больных с поражением остеогенной (костной) ткани. The invention relates to medicine, namely to traumatology and orthopedics, to surgical dentistry, and can be used in the treatment of patients with osteogenic (bone) tissue damage.

Известен способ устранения дефектов костной ткани, при котором используют имплантат, содержащий оболочку из пористого сетчатого материала и гидроксилаппатитный протезный наполнитель, этот имплантат используют при альвеолярном наращивании кости. A known method of eliminating defects in bone tissue, in which an implant is used, containing a shell of a porous mesh material and a hydroxylappatite prosthetic filler, this implant is used for alveolar bone growth.

Известен также способ устранения дефекта костной ткани путем его заполнения материалом, содержащим коллаген и деминерализованные костные частицы, в который, кроме того, могут быть введены дополнительные добавки. Способ используется в поврежденных костях, испытывающих напряжение, или там, где важно сохранение специфической формы имплантата. Данный способ принят за прототип. There is also known a method of eliminating a bone defect by filling it with a material containing collagen and demineralized bone particles, in which, in addition, additional additives can be introduced. The method is used in damaged bones undergoing stress, or where it is important to preserve the specific shape of the implant. This method is adopted as a prototype.

Однако известные способы имеют ряд существенных недостатков: в протез вводятся вещества, являющиеся индукторами, а не стимуляторами остеогенеза; отсутствует субстрат для стимуляции остеогенеза; использование коллагена в качестве одного из веществ, вводимых в протез, недостаточно (протез должен быть полностью из коллагеновой губки). However, the known methods have a number of significant disadvantages: substances that are inducers and not stimulators of osteogenesis are introduced into the prosthesis; there is no substrate for stimulating osteogenesis; the use of collagen as one of the substances introduced into the prosthesis is not enough (the prosthesis must be completely from a collagen sponge).

Задачей изобретения является создание способа устранения дефекта костной ткани, обеспечивающего зарастание дефекта собственной остеогенной тканью. The objective of the invention is to provide a method for eliminating a defect in bone tissue, ensuring the defect is overgrown with its own osteogenic tissue.

Поставленная задача решается тем, что в известном способе устранения дефекта костной ткани, включающим его заполнение биологическим протезом, содержатся остеогенные костномозговые элементы, стимулированные физиологической дозой эстрогена. The problem is solved in that in the known method of eliminating a bone defect, including filling it with a biological prosthesis, osteogenic bone marrow elements stimulated by a physiological dose of estrogen are contained.

Способ основан на обнаруженном автором свойстве остеогенных клеток-предшественников костного мозга пролиферировать под воздействием физиологических доз эстрогена, обеспечивая заполнение дефекта собственной остеогенной тканью. The method is based on the property discovered by the author of osteogenic bone marrow progenitor cells to proliferate under the influence of physiological doses of estrogen, ensuring that the defect is filled with its own osteogenic tissue.

Способ осуществляется следующим образом. The method is as follows.

Биопротез, выполненный из коллагеновой губки и имеющий форму устраняемого дефекта, пропитывают костномозговыми элементами. Для стимуляции остеогенеза в биопротез вводят физиологическую дозу эстрогена. Биопротезом заполняют дефект, рану соответствующим образом обрабатывают и фиксируют. A bioprosthesis made of a collagen sponge and having the form of a defect to be removed is impregnated with bone marrow elements. To stimulate osteogenesis, a physiological dose of estrogen is introduced into the bioprosthesis. The defect is filled with a bioprosthesis, the wound is treated and fixed accordingly.

По мере встречного роста остеогенной ткани, формирующееся остеогенными костномозговыми элементами и собственно эндостальными клетками с поверхности оставшихся костей, дефект зарастает собственной остеогенной тканью. Контроль образующейся ткани осуществляется рентгенологически. As the osteogenic tissue grows counterclockwise, which is formed by osteogenic bone marrow elements and the endostral cells proper from the surface of the remaining bones, the defect overgrows with its own osteogenic tissue. The control of the resulting tissue is carried out radiologically.

Биопротез из коллагеновой губки рассасывается практически полностью через 14-30 дней в зависимости от величины устраняемого дефекта. При этом коллагеновая губка позволяет легко формировать биопротез заранее заданной формы, пропитывать его костномозговыми элементами и эстрогенами, одновременно задерживая их вымывание из протеза вплоть до начала функционирования остеогенных костномозговых клеток-предшественников. Для придания физической прочности коллагеновая губка может быть предварительно обработана, например, декальцинированным костным матриксом, гидроксилаппатитом и другими индукторами остеогенеза. A bioprosthesis from a collagen sponge resolves almost completely after 14-30 days, depending on the size of the defect to be repaired. At the same time, a collagen sponge makes it possible to easily form a bioprosthesis of a predetermined shape, to impregnate it with bone marrow elements and estrogens, while delaying their leaching from the prosthesis until the functioning of osteogenic bone marrow progenitor cells begins. To give physical strength, the collagen sponge can be pre-treated, for example, with decalcified bone matrix, hydroxylappatite and other osteogenesis inducers.

Для исследования влияния эстрогена на ткани костного мозга и возможности использования коллагеновой губки в качестве носителя костномозговых элементов применяли метод гетеротопной трансплантации костного мозга и авторадиографический метод с 3Н-тимидином.To study the effect of estrogen on bone marrow tissue and the possibility of using a collagen sponge as a carrier of bone marrow elements, the method of heterotopic bone marrow transplantation and autoradiography with 3 H-thymidine were used.

В работе использовали 540 мышей-самцов С57В1хСВА, которые были разделены на 2 серии: животным I серии имплантировали костный мозг, выделенный из медуллярной полости бедренной кости под соединительнотканную капсулу почки сингенных реципиентов; животным II серии аналогично имплантировали костный мозг в коллагеновой губке. Половине животных каждой серии вводили эстрон в дозе 0,5 мг/кг веса животного. Другая половина животных получала инъекции оливкового масла. Животных умерщвляли после 1, 4 и 6 еженедельных инъекций эстрогена. За час до забоя животным вводили 3Н-тимидин.We used 540 male mice C 57 B1xCBA, which were divided into 2 series: animals of the I series were implanted with bone marrow isolated from the medullary cavity of the femur under the connective tissue capsule of the kidney of syngeneic recipients; animals of the II series similarly implanted bone marrow in a collagen sponge. Half of the animals in each series was administered estrone at a dose of 0.5 mg / kg of animal weight. The other half of the animals received injections of olive oil. Animals were sacrificed after 1, 4, and 6 weekly injections of estrogen. An hour before slaughter, animals were injected with 3 N-thymidine.

Морфологически оценивали изменения, происходящие под влиянием эстрона и связанные с использованием коллагеновой губки, а также определяли вес костной капсулы образовавшегося очага гетеротопного кроветворения и вес бедренной кости животных, количество миелокариоцитов в исследуемых костномозговых органах. Кроме того, оценивали пролиферативную активность тканей костного мозга по индексу меченых ядер и митотической активности костномозговых элементов. The changes occurring under the influence of estrone and associated with the use of a collagen sponge were morphologically evaluated, and the weight of the bone capsule of the resulting heterotopic hematopoiesis and the weight of the femur of animals, the number of myelocaryocytes in the studied bone marrow organs were determined. In addition, the proliferative activity of bone marrow tissue was evaluated by the index of labeled nuclei and mitotic activity of bone marrow elements.

Полученные в работе данные позволяют сказать, что под действием эстрона в костном мозге выделены остеогенные клетки-предшественники, стимулируя которые добились полного зарастания костномозговой полости остеогенной тканью. The data obtained in the work allow us to say that under the action of estrone in the bone marrow osteogenic progenitor cells were isolated, stimulating which achieved complete overgrowth of the bone marrow cavity with osteogenic tissue.

Использование коллагеновой губки практически не изменяло морфологической картины и исследуемых показателей костного мозга. Через 14 суток после имплантации костного мозга в коллагеновой губке не наблюдали изменения морфологической картины, по сравнению с имплантацией одного костного мозга, коллагеновая губка к этому времени практически исчезает. Предлагаемый способ иллюстрируется следующим экспериментальным материалом. The use of a collagen sponge practically did not change the morphological picture and the studied parameters of the bone marrow. 14 days after implantation of the bone marrow in the collagen sponge, no changes in the morphological picture were observed, as compared to implantation of one bone marrow, the collagen sponge practically disappears by this time. The proposed method is illustrated by the following experimental material.

В опыт было взято 30 крыс "Вистар", у которых извлекали нижний центральный резец для формирования естественного тоннеля на протяжении 2/3 губчатой кости нижней челюсти, открывая, таким образом, свободный доступ в образовавшийся тоннель костномозговых элементов, находящихся в полостях губчатой кости нижней челюсти крыс. Животные были разделены на 2 группы. Животным 1 группы вводили в тоннель коллагеновую губку, предварительно смоченную масляным раствором физиологической дозы эстрона (0,5 мг/кг). Thirty Wistar rats were taken from the experiment, the lower central incisor was removed to form a natural tunnel along 2/3 of the cancellous bone of the lower jaw, thus opening free access to the resulting tunnel of bone marrow elements located in the cavities of the cancellous bone of the lower jaw rats. Animals were divided into 2 groups. Group 1 animals were injected with a collagen sponge pre-moistened with an oil solution of a physiological dose of estrone (0.5 mg / kg).

Оказалось, что введение эстрона подопытным животным уже на 14 сутки исследования приводило к усилению репаративного остеогенеза в нижней челюсти животных и на 30 сут эксперимента полость заполнялась остеогенной тканью, тогда как аналогичная картина отмечалась без использования эстрона лишь на 60 сут эксперимента. It turned out that administration of estrone to experimental animals already on the 14th day of the study led to increased reparative osteogenesis in the lower jaw of the animals and on the 30th day of the experiment the cavity was filled with osteogenic tissue, while a similar pattern was observed without estrone only on the 60th day of the experiment.

Нужно отметить, что пропитывание пористой губки, заполнявшей тоннель в нижней челюсти, костномозговыми элементами, приводило к более равномерному распределению их по всей длине тоннеля и задерживало вымывание костномозговых клеток из полости тоннеля. It should be noted that the impregnation of the porous sponge filling the tunnel in the lower jaw with bone marrow elements led to a more even distribution along the entire length of the tunnel and delayed the leaching of bone marrow cells from the tunnel cavity.

Claims (1)

СПОСОБ УСТРАНЕНИЯ ДЕФЕКТА КОСТНОЙ ТКАНИ путем заполнения его биологическим протезом на основе коллагена, отличающийся тем, что в качестве основы используют гемостатическую коллагеновую губку, на которую наносят аутогенный костный мозг и пропитывают ее эстрогеном в дозе 0,5 мг/кг. METHOD FOR ELIMINATING BONE TISSUE DEFECT by filling it with a collagen-based biological prosthesis, characterized in that a hemostatic collagen sponge is used as a base on which autologous bone marrow is applied and soaked in estrogen at a dose of 0.5 mg / kg.
RU93048621A 1993-10-20 1993-10-20 Method for elimination of bone tissue defect RU2055535C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU93048621A RU2055535C1 (en) 1993-10-20 1993-10-20 Method for elimination of bone tissue defect

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU93048621A RU2055535C1 (en) 1993-10-20 1993-10-20 Method for elimination of bone tissue defect

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2055535C1 true RU2055535C1 (en) 1996-03-10
RU93048621A RU93048621A (en) 1996-11-10

Family

ID=20148422

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU93048621A RU2055535C1 (en) 1993-10-20 1993-10-20 Method for elimination of bone tissue defect

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2055535C1 (en)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2463012C1 (en) * 2011-07-19 2012-10-10 Федеральное государственное учреждение "Саратовский научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации (ФГУ "СарНИИТО" Минздравсоцразвития России) Method of plasty of defects of long tubular bones
RU2620018C1 (en) * 2016-01-20 2017-05-22 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение ""Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского" Method for elimination of bone defect with bone-replacing material

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Международная заявка N 89/04646, кл. A 61K 35/28, 01.06.89. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2463012C1 (en) * 2011-07-19 2012-10-10 Федеральное государственное учреждение "Саратовский научно-исследовательский институт травматологии и ортопедии" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации (ФГУ "СарНИИТО" Минздравсоцразвития России) Method of plasty of defects of long tubular bones
RU2620018C1 (en) * 2016-01-20 2017-05-22 Федеральное государственное бюджетное научное учреждение ""Российский научный центр хирургии имени академика Б.В. Петровского" Method for elimination of bone defect with bone-replacing material

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Jensen et al. Vertical Guided Bone-Graft Augmentation in a New Canine Mandibular Model.
Leonetti et al. Localized maxillary ridge augmentation with a block allograft for dental implant placement
US5294446A (en) Composition and method of promoting hard tissue healing
Xu et al. Grafting of deproteinized bone particles inhibits bone resorption after maxillary sinus floor elevation
Terheyden et al. Mandibular reconstruction with prefabricated vascularized bone grafts using recombinant human osteogenic protein-1: an experimental study in miniature pigs. Part II: transplantation
Mulliken et al. Induced osteogenesis—the biological principle and clinical applications
Terheyden et al. Mandibular reconstruction in miniature pigs with prefabricated vascularized bone grafts using recombinant human osteogenic protein-1: a preliminary study
Lew et al. Repair of craniofacial defects with hydroxyapatite cement
AU2002362932A1 (en) Remodeling of tissues and organs
Ahn et al. Effect of guided bone regeneration with or without pericardium bioabsorbable membrane on bone formation
Di Bella et al. Osteogenic protein-1 associated with mesenchymal stem cells promote bone allograft integration
KR101524774B1 (en) bone grafting material using autogenous teeth and a manufacturing method thereof
Oda et al. Ectopic bone formation by biphasic calcium phosphate (BCP) combined with recombinant human bone morphogenetic protein-2 (rhBMP-2)
Maniatis et al. Origin of osteogenic precursor cells in extramedullary marrow implants
Katanec et al. Use of recombinant human bone morphogenetic protein (rhBMP2) in bilateral alveolar ridge augmentation: case report
Bubalo et al. The use of collagen membranes in guided tissue regeneration
Baadsgaard et al. Muscle-pedicle bone grafts: an experimental study
Alam et al. Prefabricated vascularized bone flap: a tissue transformation technique for bone reconstruction
Plenk et al. Experimental bridging of osseous defects in rats by the implantation of Kiel bone containing fresh autologous marrow
Luczyszyn et al. Histologic analysis of the acellular dermal matrix graft incorporation process: a pilot study in dogs.
RU2055535C1 (en) Method for elimination of bone tissue defect
Nade Stimulating osteogenesis
RU2317088C1 (en) Osteoinducing material (variants)
Nettelblad et al. Molded vascularized osteoneogenesis: A preliminary study in rabbits
Newman et al. The effect of calcified bone matrix on the osteogenic potential of hematopoietic marrow