RU2041716C1 - Method for obtaining myelopid - Google Patents

Method for obtaining myelopid Download PDF

Info

Publication number
RU2041716C1
RU2041716C1 RU93001102A RU93001102A RU2041716C1 RU 2041716 C1 RU2041716 C1 RU 2041716C1 RU 93001102 A RU93001102 A RU 93001102A RU 93001102 A RU93001102 A RU 93001102A RU 2041716 C1 RU2041716 C1 RU 2041716C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
myelopid
temperature
lyophilization
sephadex
supernatant
Prior art date
Application number
RU93001102A
Other languages
Russian (ru)
Other versions
RU93001102A (en
Inventor
Рэм Викторович Петров
Августа Алексеевна Михайлова
Людмила Алексеевна Захарова
Родион Николаевич Степаненко
Сергей Викторович Сорокин
Игорь Викторович Красильников
Михаил Валентинович Буданов
Original Assignee
Рэм Викторович Петров
Августа Алексеевна Михайлова
Людмила Алексеевна Захарова
Родион Николаевич Степаненко
Сергей Викторович Сорокин
Игорь Викторович Красильников
Михаил Валентинович Буданов
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Рэм Викторович Петров, Августа Алексеевна Михайлова, Людмила Алексеевна Захарова, Родион Николаевич Степаненко, Сергей Викторович Сорокин, Игорь Викторович Красильников, Михаил Валентинович Буданов filed Critical Рэм Викторович Петров
Priority to RU93001102A priority Critical patent/RU2041716C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2041716C1 publication Critical patent/RU2041716C1/en
Publication of RU93001102A publication Critical patent/RU93001102A/en

Links

Images

Landscapes

  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: medicine. SUBSTANCE: method involves culturing pig spinal cord cells in nutrient medium, separating supernatant by centrifuging, exposing it to ultrafiltration on membranes having 10 000 Dalton permeability threshold at a temperature from 4 C to the room temperature, concentrating by means of lyophilization, performing gel filtration chromatography with G-25 Sephadex. The separated fractions of 600-3000 Dalton molecular mass are repeatedly concentrated by means of lyophilization. EFFECT: higher immunostimulating activity; lowered therapeutic doses. 2 tbl

Description

Изобретение относится к медицине, а именно к иммунологии и может быть использовано в производстве иммунологически активного препарата миелопида. The invention relates to medicine, namely to immunology and can be used in the production of an immunologically active drug myelopid.

Описан способ получения миелопида, ранее известного как стимулятор антителопродуцентов, путем выделения клеток из костного мозга свиньи, их культивирования в питательной среде, отделения супернатанта центрифугированием, концентрирования и выделения целевого продукта гельхроматографией на колонке, заполненной сефадексом G-50. Фракции, элюированные в области выхода цитохрома G с молекулярной массой около 13000 Da, концентрируют лиофилизацией. A method for producing myelopid, formerly known as a stimulator of antibody producers, is described by isolating cells from a pig’s bone marrow, culturing them in a nutrient medium, separating the supernatant by centrifugation, concentrating and isolating the target product by gel chromatography on a column filled with Sephadex G-50. Fractions eluted in the exit region of cytochrome G with a molecular weight of about 13,000 Da are concentrated by lyophilization.

Известен также способ получения миелопида путем культивирования клеток костного мозга в питательной среде, отделения супернатанта центрифугированием, концентрирования, гельфильтрации концентрированного супернатанта на колонке с сефадексом G-25, отбора фракций с мол.массой 1000-2000 и обессоливание на колонке с сефадексом С-10. Готовый продукт высушивают лиофилизацией. There is also known a method for producing myelopid by culturing bone marrow cells in a nutrient medium, separating the supernatant by centrifugation, concentration, gel filtration of the concentrated supernatant on a Sephadex G-25 column, selecting fractions with a molar mass of 1000-2000 and desalting on a Sephadex C-10 column. The finished product is dried by lyophilization.

Недостатком известных способов является небольшой выход препарата (из 1 кг незачищенных костей, 1,0.1010 клеток костного мозга получают 25-30 доз препарата) и его низкая удельная активность. Миелопид стандартизировали так, чтобы 1 доза препарата содержала 3 мг белка, определенного методом Лоури. Индекс стимуляции составлял не менее 1,6 при концентрации препарата 50 мкг/мл.A disadvantage of the known methods is the small yield of the drug (from 1 kg of uncleaned bones, 1.0 . 10 10 bone marrow cells receive 25-30 doses of the drug) and its low specific activity. Myelopid was standardized so that 1 dose of the drug contained 3 mg of protein determined by the Lowry method. The stimulation index was at least 1.6 at a drug concentration of 50 μg / ml.

Цель изобретения повышение иммуностимулирующей активности миелопида. The purpose of the invention is an increase in the immunostimulating activity of myelopid.

Поставленная цель достигается тем, что клетки костного мозга свиней культивируют в питательной среде, супернатант отделяют центрифугированием, подвергают ультрафильтрации на мембранах с порогом проницаемости 10.000 Da при температуре от +4оС до комнатной, затем концентрируют лиофилизацией, проводят гель-хроматографию на сефадексе G-25, отобранные фракции с молекулярной массой 600-3000 Da повторно концентрируют лиофилизацией.The goal is achieved in that the bone marrow cells of pigs cultured in a culture medium, the supernatant was separated by centrifugation and subjected to an ultrafiltration on membranes with 10.000 Da threshold permeability at a temperature from about 4 C to room temperature, then concentrated by lyophilization, is performed by gel chromatography on Sephadex G- 25, selected fractions with a molecular weight of 600-3000 Da are re-concentrated by lyophilization.

Отличительным приреалом способа является то, что выделение целевого продукта проводят ультрафильтрацией на мембранах с порогом проницаемости 10.000 Da при температуре от +4оС до комнатной.Prirealom distinguishing method is that the isolation of the desired product is carried out by ultrafiltration on membranes with 10.000 Da threshold permeability at a temperature from about 4 C to room temperature.

Более подробно способ осуществляют следующим путем. In more detail, the method is carried out in the following way.

Костный мозг из реберных костей свиней после их измельчения вымывают встряхиванием в термостатируемом шейкере при 37оС в течение 1 ч в бессывороточной питательной среде 199. Далее клетки отмывают двукратным центрифугированием и помещают в среду для культивирования. Среда для культивирования готовится на основе 199 среды. Культивирование осуществляют в термостатируемом шейкере или в роллерной установке при 37оС в течение 20 ч. Супернатант отделяют от клеточной массы центрифугированием при температуре +4оС со скоростью 8000 об/мин в течение 20 мин.Bone marrow from swine rib bones after they are washed grinding shaking thermostatic shaker at 37 ° C for 1 h in serum free medium 199. Next, the cells were washed twice by centrifugation and placed in a culture medium. The culture medium is prepared based on 199 medium. Cultivation was carried out in a thermostated shaker or spinner apparatus at 37 ° C for 20 hours. The supernatant was separated from the cell mass by centrifugation at + 4 ° C at a speed of 8000 rev / min for 20 min.

Полученный супернатант культуры клеток костного мозга подвергают ультрафильтрации на кассетах фирмы "Миллипор" с порогом проницаемости 10000 Da при температуре от +4оС до комнатной и избыточном давлении на входе системы 0,5 атм. Полученный на выходе стерильный ультрафильтрат лиофилизируют при температуре (-30)-0оС. Сухой лиофилизированный продукт растворяют в стерильной апирогенной воде, центрифугируют, осветленный концентрат подвергают микрофильтрации, а затем гель-хроматографии на колонке, заполненной сефадексом G-25, отобранные фракции с молекулярной массой 600-3000 Da повторно подвергают лиофилизации. Из 1 кг сырья (1,0х1010 клеток) получают 250-300 доз препарата.The resultant culture supernatant was subjected to bone marrow cells ultrafiltration cassettes company "Millipore" with a threshold of 10,000 Da permeability at a temperature from about 4 C to room temperature and excess pressure system at the inlet 0.5 atm. The sterile ultrafiltrate obtained at the outlet is lyophilized at a temperature of (-30) -0 о С. The dry lyophilized product is dissolved in sterile pyrogen-free water, centrifuged, the clarified concentrate is subjected to microfiltration, and then gel chromatography on a column filled with Sephadex G-25, selected fractions with molecular weight 600-3000 Da re-subjected to lyophilization. From 1 kg of raw materials (1.0x10 10 cells) receive 250-300 doses of the drug.

Проверка заявленного технического решения на соответствие его критерию "Изобретательский уровень" показала, что ни в патентной ни в научно-технический литературе не обнаружено совокупности признаков, приведенной в формуле изобретения. Checking the claimed technical solution for compliance with its criterion of "Inventive step" showed that neither in the patent nor in the scientific and technical literature found the totality of the features given in the claims.

Ниже приводятся конкретные примеры исполнения способа и анализа биологических свойств миелопида. The following are specific examples of the method and analysis of the biological properties of myelopid.

П р и м е р 1. 25 кг зачищенных реберных костей свиней измельчают в стерильных условиях. К гомогенизату добавляют 3 литра стерильной 199 среды. Суспензию встряхивают на шейкере при 37оС в течение 1 ч для вымывания клеток костного мозга. Фильтрацией отделяют содержащий клетки супернатант объемом 3 л. Клетки дважды отмывают центрифугированием 199 средой при температуре +4оС. Полученные клетки объемом 50 мл (15-25.1010) заливают 25 л и 199 среды, доводя концентрацию клеток до 1010 клеток/литр и инкубируют в течение 20 ч при 37оС. Клетки отделяют центрифугированием при 5000 об/мин при температуре +4оС. Супернатант объемом 25 л подвергают ультрафильтрации на мембранах фирмы "Millipor" проницаемостью 10.000 дальтон при давлении не более 0,5 атм и температуре +4оС. Полученный фильтрат объемом 23 л лиофильно высушивают при температуре (-30оС)-0оС. Сухой продукт растворяют при +4оС в 350 мл апирогенной стерильной воды в течение 30 мин при интенсивном перемешивании. Нерастворившийся осадок отделяют центрифугированием при 8000 об/мин при +4оС в течение 20 мин. Супернатант объемом 300 мл стерильно фильтруют на фильтре с диаметром пор 0,2 мкм и наносят на колонку с сефадексом G-25 размером 10х100 см. Гель-хроматографию проводят в стерильных условиях при +4оС, используя в качестве элюата 10 mМ фосфатный буфер рН 7,00, отбирая фракцию с мол. массой, соответствующей 2000 Da. Концентрацию миелопида в полученном элюате доводят до 0,1-0,2 мг/мл добавлением стерильного 10 mМ фосфатного буфера рН 7,0. Раствор миелопида стерильно фильтруют через фильтр с диаметром пор 0,2 мкм, разливают во флаконы по 3 мл и лиофильно высушивают при температуре (-30)-0оС.PRI me R 1. 25 kg of cleaned rib bones of pigs are crushed under sterile conditions. 3 liters of sterile 199 medium are added to the homogenizate. The suspension was shaken on a shaker at 37 ° C for 1 hour to wash out bone marrow cells. 3 l of cell-containing supernatant was separated by filtration. Cells were washed twice with medium 199 by centrifugation at + 4 ° C. The cells obtained 50 ml (15-25. October 10) is poured 25 liters of medium and 199, bringing the cell concentration to 10 10-cell / liter and incubated for 20 hours at 37 о С. Cells are separated by centrifugation at 5000 rpm at a temperature of + 4 о С. The supernatant of 25 l is ultrafiltered on Millipor membranes with a permeability of 10,000 daltons at a pressure of not more than 0.5 atm and a temperature of + 4 о С. volume of 23 l freeze-dried at (-30 ° C) -0 ° C. The dry product is stretched oryayut at 4 ° C in 350 ml of pyrogen-free sterile water for 30 min with vigorous stirring. The insoluble precipitate is separated by centrifugation at 8000 rev / min at 4 ° C for 20 min. The supernatant of 300 ml was sterile filtered on a filter with a pore diameter of 0.2 microns, and applied to a column of Sephadex G-25 size 10h100 cm. Gel chromatography is carried out under sterile conditions at 4 ° C, using as an eluate of 10 mM phosphate buffer pH 7.00, selecting a fraction with a mol. mass corresponding to 2000 Da. The concentration of myelopid in the resulting eluate was adjusted to 0.1-0.2 mg / ml by adding sterile 10 mM phosphate buffer pH 7.0. The myelopid solution is sterile filtered through a filter with a pore diameter of 0.2 μm, poured into 3 ml vials and freeze-dried at a temperature of (-30) -0 о С.

Выход продукта составляет 300 доз препарата с содержанием белка по Лоури 0,3-0,6 мг/дозу. Коэффициент стимуляции составляет при этом 1,9. The product yield is 300 doses of the drug with a Lowry protein content of 0.3-0.6 mg / dose. The stimulation coefficient is 1.9.

П р и м е р 2. Способ осуществляют аналогично описанному в примере 1, но проводят ультрафильтрацию на мембранах с порогом проницаемости 10000 Da при комнатной температуре. PRI me R 2. The method is carried out similarly to that described in example 1, but carry out ultrafiltration on membranes with a permeability threshold of 10,000 Da at room temperature.

Выход миелопида 350 доз (из 1010 клеток костного мозга) с коэффициентом стимуляции 1,8.The output of myelopid is 350 doses (from 10 10 bone marrow cells) with a stimulation coefficient of 1.8.

П р и м е р 3. Эффект стимуляции антителообразования оценивают на пике иммунного ответа к эритроцитам барана in vitro, добавляя тестируемый материал в культуру клеток лимфатических узлов, полученных от мышей на четвертые сутки после иммунизации. PRI me R 3. The effect of stimulation of antibody formation is assessed at the peak of the immune response to ram red blood cells in vitro, adding test material to the cell culture of lymph nodes obtained from mice on the fourth day after immunization.

Коэффициент стимуляции рассчитывают как отношение количества антителообразующих клеток (АОК) в культуре с тестируемым образцом к количеству АОК в контрольной культуре. The stimulation coefficient is calculated as the ratio of the number of antibody-forming cells (AOK) in the culture with the test sample to the number of AOK in the control culture.

Антителостимулирующий эффект миелопида, полученного известным и предложенным способами, приведен в табл.1. The anti-stimulating effect of myelopid obtained by known and proposed methods is shown in table 1.

Из данных табл.1 следует, что миелопид, полученный предложенным способом, имеет в 100 раз большую удельную активность. From the data of table 1 it follows that the myelopid obtained by the proposed method has a 100 times greater specific activity.

Антителостимулирующий эффект миелопида при разных температурах процесса ультрафильтрации приведен в табл.2. The anti-stimulating effect of myelopid at different temperatures of the ultrafiltration process is given in Table 2.

Проведение процесса ультрафильтрации при температуре выше комнатной или ниже +4оС приводит к снижению выхода и потере активности препарата.Conducting ultrafiltration process at a temperature above room temperature or below 4 ° C leads to reduction in yield and loss of activity of the drug.

Миелопид, полученный по предлагаемому способу, имеет в 100 раз большую удельную иммуностимулирующую активность, что позволяет снизить дозу вводимого препарата при лечении и из одного и того же количества клеток костного мозга получать в 10 раз больше доз. Myelopid obtained by the proposed method has a 100 times greater specific immunostimulating activity, which allows to reduce the dose of the drug administered during treatment and to receive 10 times more doses from the same number of bone marrow cells.

Claims (1)

СПОСОБ ПОЛУЧЕНИЯ МИЕЛОПИДА путем приготовления суспензии клеток костного мозга свиньи, их инкубирования в питательной среде, отделения супернатанта с последующим выделением целевого продукта, отличающийся тем, что целевой продукт дополнительно очищают ультрафильтрацией на мембранах с порогом проницаемости 10 000 D а при температуре от +4oС до комнатной и гельфильтрацией на сефадексе G 25, и отбирают фракцию с молекулярной массой 600 3 000 Dа.METHOD FOR PRODUCING MYELOPID by preparing a suspension of pig bone marrow cells, incubating them in a nutrient medium, separating the supernatant with subsequent isolation of the target product, characterized in that the target product is further purified by ultrafiltration on membranes with a permeability threshold of 10,000 D and at a temperature of +4 o С to room temperature and by gel filtration on Sephadex G 25, and a fraction with a molecular weight of 600 3,000 Da was taken.
RU93001102A 1993-01-05 1993-01-05 Method for obtaining myelopid RU2041716C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU93001102A RU2041716C1 (en) 1993-01-05 1993-01-05 Method for obtaining myelopid

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
RU93001102A RU2041716C1 (en) 1993-01-05 1993-01-05 Method for obtaining myelopid

Publications (2)

Publication Number Publication Date
RU2041716C1 true RU2041716C1 (en) 1995-08-20
RU93001102A RU93001102A (en) 1996-11-10

Family

ID=20135379

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
RU93001102A RU2041716C1 (en) 1993-01-05 1993-01-05 Method for obtaining myelopid

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2041716C1 (en)

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2522250C2 (en) * 2012-09-24 2014-07-10 Игорь Викторович Опутин Method of obtaining personal medication for treatment of diabetes, personal preparation obtained by said method, method of treating diabetes by said preparation
RU2553334C2 (en) * 2013-07-23 2015-06-10 Федеральное Государственное Бюджетное Образовательное Учреждение Высшего Профессионального Образования Дальневосточный Государственный Аграрный Университет Method of extracting proteins from bone marrow cells
RU2630302C1 (en) * 2016-11-02 2017-09-06 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Государственный научный центр "Институт иммунологии" Федерального медико-биологического агентства России Method for purification of recombinant protein containing myelopeptides sequences

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Авторское свидетельство СССР N 1005790, кл. A 61K 39/00, 1982. *

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
RU2522250C2 (en) * 2012-09-24 2014-07-10 Игорь Викторович Опутин Method of obtaining personal medication for treatment of diabetes, personal preparation obtained by said method, method of treating diabetes by said preparation
RU2553334C2 (en) * 2013-07-23 2015-06-10 Федеральное Государственное Бюджетное Образовательное Учреждение Высшего Профессионального Образования Дальневосточный Государственный Аграрный Университет Method of extracting proteins from bone marrow cells
RU2630302C1 (en) * 2016-11-02 2017-09-06 Федеральное государственное бюджетное учреждение "Государственный научный центр "Институт иммунологии" Федерального медико-биологического агентства России Method for purification of recombinant protein containing myelopeptides sequences

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4465624A (en) Process for producing erythropoietin
US4565784A (en) Hydrogels capable of supporting cell growth
JPH11505512A (en) Method for preparing macrophages, and kits and compositions therefor
JPH0789950B2 (en) Method for producing protein having immunological cross-reactivity with diphtheria toxin
JP2538224B2 (en) Purification of pertussis antigen
EP0221748A2 (en) A process for the production of human antibodies
US5106743A (en) Hydrogels capable of supporting cell growth
US3105012A (en) Antigen products and means for producing the same
JPH0331691B2 (en)
EP0407037A1 (en) Process for removing bacterial endotoxin from gram-negative polysaccharides
RU2041716C1 (en) Method for obtaining myelopid
RU2089216C1 (en) Method of removing endotoxin from the strain bordetella pertussis cultural fluid phase i
GB2121053A (en) Production of interleukin and its analogous immune regulating factors
US4189535A (en) Serum cell growth promoting materials
US4661447A (en) Regulatory glycoprotein for immune response and the use there of in the production of T-cell growth factor
US4681844A (en) Process for producing an Interleukin-1 preparation
US4752578A (en) Collagenase inducing factor
SU1493260A1 (en) Method of producing cultural antigen from truchinella spiralis
US4558011A (en) Method for preparation of pure hepatitis B surface antigen from human plasma
CA1239104A (en) Method for the purification of lpf-ha
CN114149973B (en) Composition for inducing H22 cells to express calreticulin and method for producing calreticulin by using composition
JP2648088B2 (en) Preparation method of phycoerythrin from oshikenori and kosulinori
SU686733A1 (en) Method of obtaining monoclonal immunoglobuline
SU1477741A1 (en) Method of producing hydrogenase
SU1750690A1 (en) Method for preparation of escherichia coli conjugated enterotoxin