RU2032345C1 - Strain of bacterium bacillus licheniformis for preparing of preparation against sunflower white rot - Google Patents

Strain of bacterium bacillus licheniformis for preparing of preparation against sunflower white rot Download PDF

Info

Publication number
RU2032345C1
RU2032345C1 SU915005211A SU5005211A RU2032345C1 RU 2032345 C1 RU2032345 C1 RU 2032345C1 SU 915005211 A SU915005211 A SU 915005211A SU 5005211 A SU5005211 A SU 5005211A RU 2032345 C1 RU2032345 C1 RU 2032345C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
strain
white rot
sunflower
bacillus licheniformis
preparing
Prior art date
Application number
SU915005211A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Л.В. Маслиенко
О.А. Лавриченко
Original Assignee
Научно-производственное объединение "Масличные культуры"
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Научно-производственное объединение "Масличные культуры" filed Critical Научно-производственное объединение "Масличные культуры"
Priority to SU915005211A priority Critical patent/RU2032345C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2032345C1 publication Critical patent/RU2032345C1/en

Links

Images

Abstract

FIELD: microbiological industry. SUBSTANCE: strain Bacillus licheniformis B-5 is isolated from sclerotia of sunflower white rot. Strain is deposited in Collection VIZR at number B-5. Strain of bacterium is grown on sterile sunflower husk, dried and milled. Obtained preparation has a titer 6·109. It is used with sticker - polyvinylpyrrolidone. EFFECT: detection of strain indicated above. 4 dwg, 5 tbl

Description

Изобретение касается защиты растений, оно относится к штаммам микроорганизмов, используемых для производства бактериальных препаратов, применяемых для борьбы с возбудителями болезней растений, а именно белой гнилью подсолнечника. The invention relates to plant protection, it relates to strains of microorganisms used for the production of bacterial preparations used to control pathogens of plants, namely the white rot of sunflower.

Известны штаммы грибов-антагонистов белой гнили подсолнечника Coniothyrium minitans, Gliocladium catenulatum, Trichoderma viridae, Penicillium vermiculatum (Talaromyces flavus), Chaetomium olivaceum (Huang H.S. Biological of sсlerotinia wilt in sunflower, Canada Agr. 1972, 24, p.12-14); Maclaren D. Z. Huang H.S. Rimmer S.P. Hyperparasitism of Sclerotinia sclerotiorum by Talaromyces flavus, Canada Journal of plant Pathology, 1986, N 8, p. 43-48;
Тихонов О.И. Маслиенко Л.В. Грибы-антагонисты склероциев белой гнили подсолнечника, Научно-технический бюллетень Всесоюзного научно-исследовательского института масличных культур, 1985 г.0 вып. IV (91), с. 25-29).
The known strains of sunflower white rot antagonist fungi Coniothyrium minitans, Gliocladium catenulatum, Trichoderma viridae, Penicillium vermiculatum (Talaromyces flavus), Chaetomium olivaceum (Huang HS Biological of sсlerotinia wilt in p. 24-14, Canada. 12, Canada) Maclaren DZ Huang HS Rimmer SP Hyperparasitism of Sclerotinia sclerotiorum by Talaromyces flavus, Canada Journal of plant Pathology, 1986, N 8, p. 43-48;
Tikhonov O.I. Maslienko L.V. Antagonists of sclerotia white rot of sunflower, Scientific and Technical Bulletin of the All-Union Scientific-Research Institute of Oilseeds, 1985 IV (91), p. 25-29).

Известны некоторые сведения о штаммах бактерий Bacillus subtilis и Bacillus cereus антагонистах белой гнили подсолнечника (Афанасьева Л.В. Скворцова И. Н. Перспектива применения бактерий против возбудителя белой гнили подсолнечника. Микробиологический метод защиты растений от вредителей, болезней и сорняков, Кишинев, "Штиинца", 1989, с. 86-91). Some information is known about the bacterial strains Bacillus subtilis and Bacillus cereus antagonists of white rot of sunflower (Afanasyeva L.V. Skvortsova I.N. Prospect for the use of bacteria against the causative agent of white rot of sunflower. Microbiological method of protecting plants from pests, diseases and weeds, Chisinau, "Stiinets ", 1989, pp. 86-91).

Известны также попытки использования бактерий Bacullus subtilis и Bacillus cereus антагонистов возбудителя белой гнили подсолнечника (Zazzerini A. Tosi L. Prove di antagonisto de aveum isolati battrini nei confronti della Scl. sclerotirum Lid de Bary, Inf. fitopatol. 1985, Vol. 35 N 1, p. 27-30). Attempts are also made to use the bacteria Bacullus subtilis and Bacillus cereus antagonists of the sunflower white rot pathogen (Zazzerini A. Tosi L. Prove di antagonisto de aveum isolati battrini nei confronti della Scl. Sclerotirum Lid de Bary, Inf. Fitopatol. 1985, Vol. 35 N 1 , p. 27-30).

Однако исследования по испытанию этих штаммов проведены на уровне лабораторных и вегетационных опытов и их эффективность не подтверждена полевыми испытаниями. However, studies to test these strains were carried out at the level of laboratory and vegetation experiments and their effectiveness has not been confirmed by field trials.

Цель изобретения выделение активного штамма бактерии-антагониста возбудителя белой гнили подсолнечника, обладающего эффективным защитным действием и расширенным спектром антигрибного влияния (пепельная гниль, фомопсис). The purpose of the invention is the selection of an active strain of the bacterium antagonist of the pathogen of white rot of sunflower, which has an effective protective effect and an expanded spectrum of antifungal effects (ashy rot, phomopsis).

Штамм Bacillus licheniformis Б-5 выделен из склероциев белой гнили подсолнечника, собранных с пораженных растений подсолнечника в опытном хозяйстве ОПХ "Круглик" НПО "Масличные культуры". The strain Bacillus licheniformis B-5 was isolated from sclerotia of white rot of sunflower collected from the affected sunflower plants in the experimental farm OPKh "Kruglik" NGO "Oilseeds".

Склероции белой гнили промывали в проточной воде, затем просушивали на фильтровальной бумаге, выдерживали 1 мин в спирте, разрезали на стерильном стекле скальпелем и раскладывали в чашки Петри с картофельно-сахарозным агаром. Чашки Петри помещали в термостат, t 25оС. При появлении бактерий вокруг склероциев их отсевали в чистые чашки Петри с картофельно-сахарозным агаром с последующей проверкой на их антагонистическую активность методом двойных культур (Huang, 1979 г.). Наиболее активным антагонистическим действием обладает штамм бактерии Б-5.White rot sclerotia was washed in running water, then dried on filter paper, kept for 1 min in alcohol, cut with sterile glass using a scalpel and laid out in Petri dishes with potato-sucrose agar. Petri dishes were placed in a thermostat, t 25 о С. When bacteria appeared around sclerotia, they were sifted out into clean Petri dishes with potato-sucrose agar, followed by double culture testing for their antagonistic activity (Huang, 1979). The most active antagonistic effect is the strain of the bacterium B-5.

Штамм Вас, licheniformis Б-5 определен в Московском государственном университете на кафедре почвенных микроорганизмов и депонирован в коллекции культур микроорганизмов Всесоюзного института защиты растений. The strain of you, licheniformis B-5, was determined at the Department of Soil Microorganisms at Moscow State University and deposited in the microorganism culture collection of the All-Union Institute for Plant Protection.

Морфологические признаки. Morphological signs.

Клетки палочковидные (1,5 х 3) х (0,6 х 0,8) мкм, споры овальные, грамположительные, подвижные, спорангии не раздуваются. The cells are rod-shaped (1.5 x 3) x (0.6 x 0.8) μm, the spores are oval, gram-positive, motile, sporangia do not swell.

Определялась способность роста бактерий Bac. licheniformis Б-5 на обычных питательных средах: картофельно-сахарозном агаре, мясопептонном бульоне и агаризиpованном сусле. Изучали рост культуры на растительных субстратах для выявления сродства к ним: ломтики картофеля, моркови, капустный агар. The growth ability of Bac bacteria was determined. licheniformis B-5 on common nutrient media: potato-sucrose agar, meat and peptone broth and agarized wort. We studied the growth of culture on plant substrates to identify affinity for them: slices of potatoes, carrots, cabbage agar.

На картофельно-сахарозном агаре колонии бактерии Bac.licheniformis Б-5 круглые, гладкие, грязно-белого цвета, растекающиеся, с неровным краем. На мясо-пептонном бульоне дает обильный рост, образует тонкую кожистую пленку белого цвета, нарастающую на стенки пробирки. На агаризированном сусле колонии грязно-белого цвета, круглые, с неровным краем. Наблюдался хороший рост на капустном агаре. На картофеле и моркови растет без их сбраживания. On the potato-sucrose agar of the colony, Bac.licheniformis B-5 bacteria are round, smooth, off-white in color, spreading, with an uneven edge. On meat-peptone broth gives abundant growth, forms a thin leathery white film, growing on the walls of the tube. On agarized wort, the colonies are off-white in color, round, with an uneven edge. There was good growth on cabbage agar. On potatoes and carrots it grows without fermentation.

Физиологические признаки. Physiological signs.

Факультативный анаэроб с температурным оптимумом 30-35оС, с оптимумом рН 6,8-7,0. Минимальная температура роста 30оС, максимальная 55оС.Facultative anaerobe with optimum temperature of 30-35 ° C, with an optimum pH of 6.8-7.0. Minimum growth temperature 30 C, maximum 55 ° C.

Отношение к углеводам: глюкозу, арабинозу и маннит расщепляет с образованием кислоты без образования газа. Attitude towards carbohydrates: glucose, arabinose and mannitol breaks down with the formation of acid without the formation of gas.

Крахмал гидролизует, желатину разжижает, молоко пептонизирует. Наблюдается рост 2,5 и 7% NaCl в декстрозном агаре. Рост культуры в присутствии казеина как единственного источника углерода и азота характеризуется повышенным спорообразованием. Морфолого-культуральные свойства штамма Bacillus licheniformis Б-5 приведены в табл.1. Starch hydrolyzes, dilutes gelatin, and milk peptones. There is an increase of 2.5 and 7% NaCl in dextrose agar. Culture growth in the presence of casein as the sole source of carbon and nitrogen is characterized by increased spore formation. The morphological and cultural properties of the strain Bacillus licheniformis B-5 are given in table 1.

Антагонистические свойства. Antagonistic properties.

Штамм Bscillus licheniformis Б-5 обладает антагонистической активностью к Sclerotinia sclerotiorum, Macrophomina faseolorum, Diaporthe helianthi, Diaporthe faseolorum. Для определения антагонистической активности штамма Bacillus licheniformis Б-5 использовали метод двойных культур (Huahg, 1979 г. ). Культуры возбудителей болезней и штамм бактерии Б-5 высевали одновременно в диаметрально-противоположные точки чашки Петри на картофельно-сахарозном агаре. Контролем служили чистые культуры бактерии и патогенов, посеянные порознь. Учет проводили через каждые трое суток в течение 10 сут культивирования. Отмечался рост патогенов и антагониста, характер их взаимодействия. The strain Bscillus licheniformis B-5 has antagonistic activity to Sclerotinia sclerotiorum, Macrophomina faseolorum, Diaporthe helianthi, Diaporthe faseolorum. To determine the antagonistic activity of the strain Bacillus licheniformis B-5, the double culture method was used (Huahg, 1979). The pathogen cultures and the B-5 bacterial strain were sown simultaneously at diametrically opposite points of the Petri dish on potato-sucrose agar. The control was pure cultures of bacteria and pathogens, seeded separately. Accounting was carried out every three days for 10 days of cultivation. Marked growth of pathogens and antagonist, the nature of their interaction.

Штамм бактерии Bac. licheniformis Б-5 развивается быстрее возбудителей болезней и образует зоны в 1-1,5 см со склеротинией и фомопсисом (фиг.1, 2) и 0,5-1 см с пепельной гнилью (фиг.3), которые сохраняются в течение месяца. Мицелий белой гнили и фомопсиса на границе зоны со штаммом бактерии чернеет, лизируется, склероции почти не образуются. The strain of bacteria Bac. licheniformis B-5 develops faster than pathogens and forms zones of 1-1.5 cm with sclerotinia and phomopsis (Fig.1, 2) and 0.5-1 cm with ashy rot (Fig.3), which last for a month . Mycelium of white rot and phomopsis at the border of the zone with the bacterial strain blackens, lyses, sclerotia is almost not formed.

П р и м е р 1. Опыт проводили в лабораторных условиях в чашках Петри. Искусственно выращенные склероции белой гнили замачивали в суспензии Bacillus licheniformis Б-5 плотностью 106 колонеообразующих единиц на 1 мл воды на 24 и 48 ч. Затем их промывали стерильной водой, просушивали на фильтровальной бумаге, разрезали и раскладывали в чашки Петри на картофельно-сахарозный агар. Контролем служили склероции без обработки бактериальной суспензией. Учет проводили через 20 дней с момента закладки опыта. Эффективным было замачивание склероциев в бактериальной суспензии на 24 и 48 ч. Гибель склероциев в этих вариантах составила 90-100% в контроле 6-14% (табл.2).PRI me R 1. The experiment was carried out in laboratory conditions in Petri dishes. Artificially grown sclerotia of white rot was soaked in a suspension of Bacillus licheniformis B-5 with a density of 10 6 colony forming units per 1 ml of water for 24 and 48 hours. Then they were washed with sterile water, dried on filter paper, cut and laid out in Petri dishes on potato-sucrose agar . The control was sclerotia without treatment with a bacterial suspension. Accounting was carried out 20 days after the bookmark experience. Soaking sclerotia in a bacterial suspension for 24 and 48 hours was effective. The death of sclerotia in these variants was 90-100% in the control of 6-14% (Table 2).

П р и м е р 2. Опыт проводили в лабораторных условиях в чашках Петpи. Семена подсолнечника обрабатывали суспензией штамма бактерии Bacillus licheniformis Б-5 плотностью 106 колонеообразующих единиц на 1 мл. Время обработки 4 ч. Затем семена промывали водой, раскладывали в чашки Петри на фильтровальную бумагу и прикладывали к ним кусочек мицелия белой гнили, выращенного на агаризованной картофельно-сахарозной среде. Контроль1 семена замачивали на 4 ч в стерильной воде и инфицировали возбудителем белой гнили. Контроль 2 семена без заражения патогеном. Фильтровальную бумагу в чашках Петри ежедневно увлажняли стерильной водой. Учет всхожести семян и поражения их возбудителем болезни проводили через 10 сут (фиг.4).PRI me R 2. The experiment was carried out in laboratory conditions in Petri dishes. Sunflower seeds were treated with a suspension of a strain of the bacterium Bacillus licheniformis B-5 with a density of 10 6 colony forming units per 1 ml. The treatment time was 4 hours. Then the seeds were washed with water, laid out in Petri dishes on filter paper and a piece of white rot mycelium grown on agarized potato-sucrose medium was applied to them. Control1 seeds were soaked for 4 hours in sterile water and infected with a white rot pathogen. Control 2 seeds without infection by the pathogen. The filter paper in Petri dishes was moistened daily with sterile water. Accounting for germination of seeds and their defeat by the causative agent of the disease was carried out after 10 days (figure 4).

Данные эксперимента приведены в табл.3. The experimental data are given in table.3.

П р и м е р 3. Опыт проводили в полевых условиях в предгорной зоне Краснодарского края, в колхозе им.ХХ Партсъезда Отрадненского р-на на фоне высокого естественного поражения посевов подсолнечника белой гнилью и в горной зоне Адыгейской области в совхозе "Даховский" при искусственном заражении патогеном (внесение склероциев в лунки при посеве). Площадь делянок 30 м2, повторность трехкратная. Сорт подсолнечника ВНИИМК 8883. Семена подсолнечника перед посевом обрабатывали порошком, изготовленным на основе штамма бактерии Bac. licheniform, выращенной на стерилизованной лузге подсолнечника с последующим высушиванием и размолом на мельнице. Титр препарата 6.109, норма расхода 10 г на 1 кг семян, с увлажнением семян 30 мл воды и прилипателем 20% ПВП (поливинил пироллидол). Контроль семена подсолнечника без обработки биопрепаратом и без внесения инфекции (на фоне естественного поражения гнилью) и с внесением инфекции (на фоне искусственного заражения патогеном). Эталон семена подсолнечника, обработанные фунгицидом. Данные эксперимента представлены в табл.4 и 5.PRI me R 3. The experiment was carried out in the field in the foothill zone of the Krasnodar Territory, on the collective farm named after XX Party Congress of the Otradnensky district against a background of high natural damage to sunflower crops with white rot and in the mountainous zone of the Adygea region at the Dakhovsky state farm at artificial infection with a pathogen (introduction of sclerotia into the wells during sowing). The plot area is 30 m 2 , the repetition is three times. Sunflower variety VNIIMK 8883. Before sowing, sunflower seeds were treated with powder made on the basis of the Bac bacterial strain. licheniform grown on a sterilized husk of sunflower, followed by drying and grinding in a mill. The titer of the drug 6 . 10 9 , the consumption rate of 10 g per 1 kg of seeds, with moistened seeds with 30 ml of water and an adhesive 20% PVP (polyvinyl pyrrolidol). Control of sunflower seeds without treatment with a biological product and without making an infection (against the background of natural rot damage) and making an infection (against the background of artificial infection with a pathogen). Standard sunflower seed treated with fungicide. The experimental data are presented in tables 4 and 5.

Результаты, приведенные в таблицах, показывают эффективное действие выделенного штамма бактерии Bacillus licheniformisБ-5 против белой гнили подсолнечника. Кроме того, указанный штамм подавляет пепельную гниль и фомопсис, т.е. обладает расширенным спектром действия. The results shown in the tables show the effective action of the isolated strain of the bacterium Bacillus licheniformis-5 against white rot of sunflower. In addition, this strain inhibits ash rot and phomopsis, i.e. has an extended spectrum of action.

Claims (1)

Штамм бактерий Bacillus licheniformis ВИЗР Б-5 для получения препарата против белой гнили подсолнечника. The bacterial strain Bacillus licheniformis VIZR B-5 to obtain a drug against white rot of sunflower.
SU915005211A 1991-07-03 1991-07-03 Strain of bacterium bacillus licheniformis for preparing of preparation against sunflower white rot RU2032345C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU915005211A RU2032345C1 (en) 1991-07-03 1991-07-03 Strain of bacterium bacillus licheniformis for preparing of preparation against sunflower white rot

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU915005211A RU2032345C1 (en) 1991-07-03 1991-07-03 Strain of bacterium bacillus licheniformis for preparing of preparation against sunflower white rot

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2032345C1 true RU2032345C1 (en) 1995-04-10

Family

ID=21586775

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU915005211A RU2032345C1 (en) 1991-07-03 1991-07-03 Strain of bacterium bacillus licheniformis for preparing of preparation against sunflower white rot

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2032345C1 (en)

Cited By (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN106801023A (en) * 2016-12-31 2017-06-06 中国农业科学院农业资源与农业区划研究所 Bacillus licheniformis Y16 and its application in soil-borne disease of crop is prevented and treated

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Сборник статей "Микробиологический метод защиты растений от вредителей, болезней и сорняков", Кишинев, 1989, 86-91. *

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
CN106801023A (en) * 2016-12-31 2017-06-06 中国农业科学院农业资源与农业区划研究所 Bacillus licheniformis Y16 and its application in soil-borne disease of crop is prevented and treated
CN106801023B (en) * 2016-12-31 2020-03-27 中国农业科学院农业资源与农业区划研究所 Bacillus licheniformis Y16 and application thereof in preventing and treating crop soil-borne diseases

Similar Documents

Publication Publication Date Title
RU2127521C1 (en) Actinomyces strain streptomyces lydicus for plant protection against fungal infection, composition for plant protection against fungal infection (variants), method of decrease of sensitivity of plant to fungal infection (variants)
JP3315142B2 (en) Processes, methods of manufacture and uses of pathogenic fungal preparations for pest control
KR100535912B1 (en) The novel bacillus amyloliquefaciens ktgb0202 and control method of plant pathogenic fungi using that
CN105557756A (en) Plant bacteriostasis method adopting bacillus methylotrophicus strain NKG-1
HU220582B1 (en) Composition and method for controlling plant diseases
CN107075459B (en) Novel bacterium belonging to the genus Bacillus and use thereof
RU2154381C2 (en) Strain of fungus nectria pityrodes montagne used as biofungicide (variants), biofungicide, method of its preparing (variants), method of inhibition of fungal infection in plants, screening method of fungicide microorganisms
Vasudeva et al. The effect of associated soil microflora on Fusarium udum Butl., the fungus causing wilt of pigeon‐pea (Cajanus cajan (L.) Millsp.)
Abdelzaher Biological control of root rot of cauliflower (caused by Pythium ultimumvar. ultimum) using selected antagonistic rhizospheric strains of Bacillus subtilis
JP3665295B2 (en) Microbial preparation for biological control using novel Trichoderma microbial strain and method for producing the same
CN116376782A (en) Bacterial strain for preventing and treating tea anthracnose and application thereof
CN115058358B (en) Salt-tolerant bacillus and application thereof
CN116694505A (en) Streptomyces crimson capable of preventing and treating clubroot and application thereof
CN115851476B (en) Rice root endophytic geobacillus cereus 258R-7 and biological preparation and application thereof
CN113278541B (en) Rice endophytic bacillus beijerinus and application thereof
RU2032345C1 (en) Strain of bacterium bacillus licheniformis for preparing of preparation against sunflower white rot
RU2307158C2 (en) Bacillus subtilus M1 STRAIN WITH FUNGICIDAL AND FUNGISTATIC ACTIVITY TO CULTURED PLANT DISEASE EXCITANTS
US5968504A (en) Fungus Gliocladium catenulatum for biological control of plant diseases
RU2121271C1 (en) Strain of bacterium pseudomonas lemoignei for preparing a preparation used for growth stimulation and plant protection from fungal phytopathogens during vegetation and at harvest storage
KR100417632B1 (en) A novel Trichoderma harzianum YC459 active against plant fungal pathogens and process for preparation of microbial pesticide thereof
CN109706082A (en) The huge Phoma cava bacterium P2 of one plant of biological and ecological methods to prevent plant disease, pests, and erosion and its application
CN116376720B (en) Chaetomium aureum and application thereof in preventing and treating tobacco leaf spot
US5434120A (en) Ustilago trichophora mycoherbicidal compositions and methods of use
RU2783426C1 (en) Bacterial strain bacillus subtilis bs2017 vkpm b-13389, growth inhibitor of phytopathogenic fungi
KR100506721B1 (en) Bacillus licheniformis N1 and microbial agent for preventing plant-pathogenic fungi containing the same