RU2028156C1 - Method of immunosorbent preparing for diagnosis of cytomegaloviral infection - Google Patents

Method of immunosorbent preparing for diagnosis of cytomegaloviral infection Download PDF

Info

Publication number
RU2028156C1
RU2028156C1 SU4912446A RU2028156C1 RU 2028156 C1 RU2028156 C1 RU 2028156C1 SU 4912446 A SU4912446 A SU 4912446A RU 2028156 C1 RU2028156 C1 RU 2028156C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
infection
immunosorbent
cmv
virus
antibodies
Prior art date
Application number
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Н.Н. Мальцева
А.А. Згурский
Л.К. Эбралидзе
Original Assignee
Научно-исследовательский институт вирусных препаратов РАМН
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Научно-исследовательский институт вирусных препаратов РАМН filed Critical Научно-исследовательский институт вирусных препаратов РАМН
Priority to SU4912446 priority Critical patent/RU2028156C1/en
Application granted granted Critical
Publication of RU2028156C1 publication Critical patent/RU2028156C1/en

Links

Images

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)

Abstract

FIELD: medicine. SUBSTANCE: monolayer of cell cultures is infected with cytomegalovirus, virus is incubated for 48-72 h. Then nuclear fraction containing "early" cytomegaloviral proteins is isolated from virus-infected cells. This nuclear fraction is used as an antigen for immunosorbent preparing on polystyrene 96-well plates. Method is used for diagnosis of "current" cytomegaloviral infection using enzymoimmunoassay. EFFECT: development of method for immunosorbent preparing indicated above. 2 tbl

Description

Изобретение относится к медицине и касается диагностики цитомегаловирусной (ЦМВ) инфекции, что имеет большое значение. The invention relates to medicine and for the diagnosis of cytomegalovirus (CMV) infection, which is of great importance.

Известно, что ЦМВ - представитель герпесовирусов - способен вызывать как острое, так и латентное заболевание. У 80% людей первичное инфицирование вирусом происходит в первые 2-3 года жизни, при этом в 95% случаев отсутствуют какие-либо клинические симптомы. Однако перенесенная инфекция сопровождается выработкой вирусспецифических антител, которые сохраняются в течение практически всей жизни человека (т.н. "анамнестические" антитела). В период латентного состояния ЦМВ-инфекции выделение вируса во внешнюю среду не происходит, но гуморальные "анамнестические" антитела могут определяться в различных серологических реакциях. It is known that CMV - a representative of herpes viruses - is capable of causing both acute and latent disease. In 80% of people, primary infection with the virus occurs in the first 2-3 years of life, while in 95% of cases there are no clinical symptoms. However, the transmitted infection is accompanied by the development of virus-specific antibodies, which persist throughout almost the entire life of a person (the so-called "anamnestic" antibodies). During the latent state of CMV infection, virus is not released into the environment, but humoral "anamnestic" antibodies can be detected in various serological reactions.

При нарушении иммунного статуса ранее инфицированного ЦМВ человека вирус начинает активно реплицироваться, и его можно обнаружить в различных биологических жидкостях (крови, моче, слюне и др.). В ответ на репликацию вируса в организме начинают синтезироваться специфические антитела к так называемым "ранним" вирусным белкам (белкам, нарабатывающимся в течение 24-72 ч после инфицирования ЦМВ или его реактивации) (Landini, Michelson, 1988). Обнаружение антител к "ранним" белкам свидетельствует о "текущей" в данный момент инфекции и имеет важное значение для правильного введения больных с врожденными и приобретенными иммунодефицитами (СПИД, внутриутробная инфекция, трансплантация органов). In case of violation of the immune status of a previously infected human CMV, the virus begins to actively replicate, and it can be detected in various biological fluids (blood, urine, saliva, etc.). In response to virus replication, specific antibodies to the so-called “early” viral proteins (proteins that develop within 24-72 hours after infection with CMV or its reactivation) begin to be synthesized in the body (Landini, Michelson, 1988). Detection of antibodies to “early” proteins indicates a “current” infection at the moment and is important for the correct administration of patients with congenital and acquired immunodeficiencies (AIDS, intrauterine infection, organ transplantation).

Для диагностики ЦМВ-инфекции используется вирусологический метод выделения возбудителя в чувствительной культуре клеток с последующей идентификацией выделенного изолята методом иммунофлюоресценции с моноклональными антителами (Drew, 1988; Swenson, Kaplan, 1987; Gleaves et al., 1984). Недостаток этого метода является его длительность (подтверждение диагноза можно получить только на 20-30 день после взятия образца крови или мочи у заболевшего) и его трудоемкость. To diagnose CMV infection, the virological method of isolating the pathogen in a sensitive cell culture is used, followed by identification of the isolated isolate by immunofluorescence with monoclonal antibodies (Drew, 1988; Swenson, Kaplan, 1987; Gleaves et al., 1984). The disadvantage of this method is its duration (confirmation of the diagnosis can be obtained only 20-30 days after taking a sample of blood or urine from the patient) and its complexity.

Серологическая диагностика при ЦМВ-инфекции имеет ограниченное применение, так как ввиду латентного характера ее течения факт обнаружения антител не свидетельствует о текущей инфекции. Даже использование различных методов, основанных на выявлении вирусспецифических иммуноглобулинов класса М, в случае рецидивирующей инфекции не обеспечивает получения достоверных результатов, ибо рецидив не во всех случаях сопровождается образованием антител этого класса (Doers еt al., 1985). Serological diagnosis of CMV infection is of limited use, since due to the latent nature of its course, the fact of detection of antibodies does not indicate a current infection. Even the use of various methods based on the detection of virus-specific immunoglobulins of class M in the case of a recurrent infection does not provide reliable results, because relapse is not always accompanied by the formation of antibodies of this class (Doers et al., 1985).

Наиболее близким к предлагаемому методу является выявление антител к ЦМВ в сыворотках людей в иммуноферментном анализе (Аbbott СMV total АA ЕIА). Иммуносорбентом в таких тест-системах являются антигены, выделенные из инфицированных культур клеток на высоте развития цитопатического эффекта. Closest to the proposed method is the detection of antibodies to CMV in human sera in an enzyme-linked immunosorbent assay (Abbott CMV total AA EIA). The immunosorbent in such test systems are antigens isolated from infected cell cultures at the height of the development of the cytopathic effect.

Недостатком указанного метода является невозможность проведения диагностики ЦMВ-инфекции, так как эта тест-система не позволяет дифференцировать "анамнестические" антитела от синтезируемых в данный период времени антител, нарабатывающихся в ответ на заражение вирусом или реактивацию латентного вируса. The disadvantage of this method is the inability to diagnose CMV infection, since this test system does not allow differentiating "anamnestic" antibodies from the antibodies synthesized in a given period of time, which are produced in response to virus infection or reactivation of a latent virus.

Целью данного изобретения является разработка способа приготовления иммуносорбента для диагностики "текущей" инфекции ЦМВ c помощью иммуноферментного анализа (ИФА). Поставленная цель достигается тем, что из ядерной фракции клеток, инфицированных ЦМВ, через 48-72 ч после их инфицирования выделяют вирусспецифические "ранние" белки, которые адсорбируют в лунках 96-луночных полистироловых пластин. The aim of this invention is to develop a method of preparing an immunosorbent for the diagnosis of "current" CMV infection using enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). This goal is achieved by the fact that from the nuclear fraction of cells infected with CMV, 48–72 hours after their infection, virus-specific “early” proteins are isolated that adsorb in the wells of 96-well polystyrene plates.

П р и м е р 1. Заражают перевиваемую линию клеток фибробластов эмбриона человека цитомегаловирусом, штамм АD-169, который был получен из Американской коллекции вирусов и в настоящее время поддерживается в лаборатории диагностики вирусных инфекций НИИ вирусных препаратов Российской АМН СССР. Через 48-72 ч после заражения проводят выделение ядерной фракции клеток. Для этого инфицированные вирусом клетки отделяют от стекла раствором трипсина и однократно промывают фосфатно-буферным раствором рН 7.4 (ФСБ). Осадок клеток, разведенный в дважды дистиллированной воде, содержащей 2% фетальной телячьей сыворотки, инкубируют в течение 15 минут в ледяной бане. Затем добавляют равный объем 1% раствора неионного детергента (NP-40) и полученную смесь гомогенизируют в гомогенизаторе Даунса. Ядра отделяют от цитоплазматических осколков центрифугированием через 22,5% раствор Ficoll 400, приготовленного на ФСБ, рН 7,4, при 1800 g в течение 15 мин при 4oС. Осадок однократно промывают ФСБ, рН 7,4, ресуспендируют в том же буфере и обрабатывают ультразвуком (три цикла по 30 с с интервалом между циклами в 1 мин.). Полученный "ядерный" антиген, содержащий ранние белки ЦМВ, осветляют центрифугированием при 8000 g в течение 20 мин.Example 1. The transplanted cell line of human embryo fibroblasts is infected with cytomegalovirus strain AD-169, which was obtained from the American Virus Collection and is currently maintained at the Laboratory for Diagnosing Viral Infections, Research Institute of Viral Preparations, Russian Academy of Medical Sciences. 48-72 hours after infection, the nuclear fraction of the cells is isolated. For this, virus-infected cells are separated from the glass with a trypsin solution and washed once with a phosphate-buffered solution of pH 7.4 (FSB). The cell pellet diluted in twice distilled water containing 2% fetal calf serum was incubated for 15 minutes in an ice bath. An equal volume of a 1% solution of non-ionic detergent (NP-40) is then added and the resulting mixture is homogenized in a Downes homogenizer. The nuclei are separated from the cytoplasmic fragments by centrifugation through a 22.5% Ficoll 400 solution prepared on PBS, pH 7.4, at 1800 g for 15 min at 4 o C. The pellet is washed once with PBS, pH 7.4, resuspended in the same buffer and treated with ultrasound (three cycles of 30 s with an interval between cycles of 1 min.). The resulting "nuclear" antigen containing the early CMV proteins is clarified by centrifugation at 8000 g for 20 minutes.

Для получения иммуносорбента в лунки нечетных рядов (А, С, Е, G) полистироловых 96-луночных микротитровальных пластин вносят по 100 мкл (0,1 мл. ) вирусного антигена, в концентрации не менее 1 мкг на лунку. В лунки четных рядов (B,D,G,H) вносят по 100 мкл контрольного антигена, выделенного из незараженной культуры клеток тем же способом, что и вирусный антиген. To obtain the immunosorbent, in the wells of odd rows (A, C, E, G) of polystyrene 96-well microtiter plates, 100 μl (0.1 ml) of the viral antigen is added at a concentration of at least 1 μg per well. In the even-row wells (B, D, G, H), 100 μl of the control antigen, isolated from an uninfected cell culture, was added in the same manner as the viral antigen.

Пластины, закрытые крышками, инкубируют при 4-10oС в течение 18-20 ч. После 3-кратного промывания дистиллированной водой, содержащей 2% твина-20, пластины с нагруженными антигенами хранят при 4-10oC до использования. Срок хранения иммуносорбента - 6 мес.The plates covered with lids are incubated at 4-10 ° C for 18-20 hours. After washing 3 times with distilled water containing 2% Tween-20, the plates with loaded antigens are stored at 4-10 ° C until use. The shelf life of the immunosorbent is 6 months.

П р и м е р 2. Для получения препарата "ранних" белков используют ту же культуру клеток, что описана в примере 1, инфицированную штаммом "Дов-90", выделенным из мочи больного ЦМВ-инфекцией. Штамм "Дов-90" хранятся в музее НИИ вирусных препаратов. Все этапы приготовления иммуносорбента и его контроля проводят в соответствии с описанным в примере 1. PRI me R 2. To obtain the drug "early" proteins using the same cell culture as described in example 1, infected with strain Dov-90, isolated from the urine of a patient with CMV infection. The strain "Dov-90" is stored in the museum of the Research Institute of Viral Preparations. All stages of the preparation of the immunosorbent and its control are carried out as described in example 1.

П р и м е р 3. Для приготовления твердофазного иммуносорбента культуру диплоидных клеток легкого эмбриона человека заражают штаммом ЦMВ AD-169. Культура клеток депонирована в коллекции клеточных культур Государственного НИИ контроля и стандартизации медицинских биологических препаратов им. Л.А. Тарасевича. Все процедуры получения и контроля иммуносорбента проводят аналогично тому, как описано в примере 1. PRI me R 3. To prepare a solid-phase immunosorbent, the culture of diploid cells of a human lung embryo is infected with strain CMB AD-169. Cell culture is deposited in the collection of cell cultures of the State Research Institute for Control and Standardization of Medical Biological Preparations named after L.A. Tarasevich. All procedures for the preparation and control of immunosorbent are carried out in the same way as described in example 1.

П р и м е р 4. Для приготовления препарата "ранних" белков ЦМВ с целью его использования для получения иммуносорбента культуру диплоидных клеток, описанную в примере 3, заряжают ЦМВ, штамм "Дов". Остальные процедуры приготовления и контроля иммуносорбента проводят как описано в примере 1. PRI me R 4. For the preparation of the preparation of the "early" CMV proteins in order to use it to obtain the immunosorbent, the diploid cell culture described in Example 3 is charged with CMV, the Dov strain. The remaining procedures for the preparation and control of the immunosorbent are carried out as described in example 1.

П р и м е р 5. Исследование сывороток в ИФА проводят по ранее описанному методу (Voller et al., 1979) с использованием антител против иммуноглобулинов человека, меченных пероксидазой. Каждую сыворотку исследуют в разведении 1:100 как с вирусным, так и с контрольным антигенами. В результате проведенных исследований была установлена пороговая величина оптической плотности (ОП) при реакции антител с вирусным и контрольным антигенами, разграничивающая положительные и отрицательные сыворотки, которая составила 0,2 оптические единицы. Если разность оптических плотностей (АOП) при реакции сыворотки с вырусным и контрольным антигенами больше 0,2 О.Е., то сыворотка расценивается как положительная, т.е. содержащая антитела к "ранним" белкам ЦМВ. Example 5. The study of sera in ELISA is carried out according to the previously described method (Voller et al., 1979) using antibodies against human immunoglobulins labeled with peroxidase. Each serum is examined at a dilution of 1: 100 with both viral and control antigens. As a result of the studies, a threshold value of optical density (OD) was established during the reaction of antibodies with viral and control antigens, delimiting positive and negative sera, which amounted to 0.2 optical units. If the difference in optical densities (AOP) during the reaction of serum with the tier and control antigens is more than 0.2 O.E., then the serum is regarded as positive, i.e. containing antibodies to the "early" CMV proteins.

Приведенные примеры приготовления иммуносорбента с использованием различных штаммов ЦМВ и разных типов клеток, в которых этот вирус способен размножаться, а также результаты исследования на сконструированных иммуносорбентах панели сывороток, содержащих и не содержащих антител к "ранним" белкам ЦМВ свидетельствуют о возможности использования любого доступного штамма ЦМВ, активно размножающегося в подходящей линии культуры клеток. Это является доказательством промышленной применимости предлагаемого способа приготовления иммуносорбента для быстрой диагностики ЦМВ-инфекции в ИФА тест-системе для выявления антител к ЦМВ. The examples of preparation of an immunosorbent using various strains of CMV and different types of cells in which this virus is capable of multiplying, as well as the results of a study on engineered immunosorbents of a panel of sera containing and not containing antibodies to “early” CMV proteins, indicate the possibility of using any available strain of CMV actively propagating in a suitable cell culture line. This is evidence of the industrial applicability of the proposed method for the preparation of immunosorbent for the rapid diagnosis of CMV infection in the ELISA test system for the detection of antibodies to CMV.

Было обследовано 56 лиц, в сыворотках которых на прототипной тест-системе были выявлены антитела к ЦМВ. Из этой группы обследованных у 31 пациента с клинически выраженным заболеванием (пневмония, спленомегалия, гепатит и др. ) цитомегаловирусная инфекция была подтверждена выделением вируса из мочи или гистологическим по обнаружению в моче "гигантских" клеток. 25 доноров на момент обследования были практически здоровы. 56 individuals were examined whose serum antibodies to CMV were detected on a prototype test system. Of this group examined in 31 patients with a clinically expressed disease (pneumonia, splenomegaly, hepatitis, etc.), the cytomegalovirus infection was confirmed by the isolation of the virus from the urine or by histological detection of "giant" cells in the urine. 25 donors at the time of the examination were almost healthy.

Результаты исследования сывороток на разработанной тест-системе сравнительно с прототипом представлены в табл.2. The results of the study of sera on the developed test system in comparison with the prototype are presented in table.2.

Приведенные данные показывают, что в ИФА тест-системе фирмы "Аbbott" невозможно дифференцировать "анамнестические" антитела от антител, синтезированных в ответ на протекающую в данный момент инфекцию. С помощью предлагаемого иммуносорбента антитела к "ранним" белкам были выявлены только в группе больных с подтвержденной другими методами ЦМВ-инфекцией. The data show that in the ELISA test system of the firm "Abbott" it is impossible to differentiate "anamnestic" antibodies from antibodies synthesized in response to the current infection. Using the proposed immunosorbent, antibodies to "early" proteins were detected only in a group of patients with CMV infection confirmed by other methods.

Полученные результаты свидетельствуют об эффективности предлагаемого способа получения иммуносорбента для ранней и быстрой диагностики ЦМВ-инфекции. The results obtained indicate the effectiveness of the proposed method for producing an immunosorbent for early and rapid diagnosis of CMV infection.

С использованием иммуносорбента, приготовленного разработанным способом, к настоящему времени обследовано более 300 сывороток от больных людей с подозрением на ЦМВ-инфекцию. В 36 случаях, подтвержденных также выделением вируса на чувствительной культуре клеток, были выявлены антитела к "ранним" белкам ЦМВ. Using an immunosorbent prepared by the developed method, more than 300 sera from sick people with suspected CMV infection have been examined to date. In 36 cases, also confirmed by the isolation of the virus on a sensitive cell culture, antibodies to “early” CMV proteins were detected.

Было зарегистрировано 100% совпадение результатов вирусологического и серологического обследования. 100% coincidence of the results of virological and serological examinations was recorded.

Claims (1)

СПОСОБ ПРИГОТОВЛЕНИЯ ИММУНОСОРБЕНТА ДЛЯ ДИАГНОСТИКИ ЦИТОМЕГАЛОВИРУСНОЙ ИНФЕКЦИИ, отличающийся тем, что, с целью диагностики "текущей" цитомегаловирусной инфекции, клеточные монослойные культуры инфицируют цитомегаловирусом, через 48 - 72 ч после их заражения выделяют вирусоспецифические белки из ядерных фракций инфицированных клеток и используют их для сорбции в лунках полистироловых 96-луночных пластин в качестве целевого продукта. METHOD FOR PREPARING AN IMMUNOSORBENT FOR DIAGNOSTIC OF CYTOMEGALOVIRUS INFECTION, characterized in that, in order to diagnose a "current" cytomegalovirus infection, monolayer cell cultures are infected with cytomegalovirus, virus-specific cells are used for infection 48 to 72 hours after infection, and their specific cells are used for their specificity well polystyrene 96-well plates as the target product.
SU4912446 1991-02-15 1991-02-15 Method of immunosorbent preparing for diagnosis of cytomegaloviral infection RU2028156C1 (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU4912446 RU2028156C1 (en) 1991-02-15 1991-02-15 Method of immunosorbent preparing for diagnosis of cytomegaloviral infection

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU4912446 RU2028156C1 (en) 1991-02-15 1991-02-15 Method of immunosorbent preparing for diagnosis of cytomegaloviral infection

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2028156C1 true RU2028156C1 (en) 1995-02-09

Family

ID=21561172

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU4912446 RU2028156C1 (en) 1991-02-15 1991-02-15 Method of immunosorbent preparing for diagnosis of cytomegaloviral infection

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2028156C1 (en)

Cited By (2)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2000016061A2 (en) * 1998-09-16 2000-03-23 Unitarnoe Gosudarstvennoe Moskovskoe Predpriyatie Po Proizvodstvu Bakteriinykh Preparatov Ministerstva Zdravookhraneniya Rossiiskot Federatsii Method for diagnosing the active stage of a cytomegalovirus infection in human substrates
RU2528896C1 (en) * 2013-07-19 2014-09-20 Сейфаддин Гашим Оглы Марданлы Method for preparing immunosorbent for diagnosing herpes simplex type i

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Abbott CMV total ABEJA. *

Cited By (3)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
WO2000016061A2 (en) * 1998-09-16 2000-03-23 Unitarnoe Gosudarstvennoe Moskovskoe Predpriyatie Po Proizvodstvu Bakteriinykh Preparatov Ministerstva Zdravookhraneniya Rossiiskot Federatsii Method for diagnosing the active stage of a cytomegalovirus infection in human substrates
WO2000016061A3 (en) * 1998-09-16 2000-06-02 Unitarnoe G Mo Predpr Proizv B Method for diagnosing the active stage of a cytomegalovirus infection in human substrates
RU2528896C1 (en) * 2013-07-19 2014-09-20 Сейфаддин Гашим Оглы Марданлы Method for preparing immunosorbent for diagnosing herpes simplex type i

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Asano et al. Viral replication and immunologic responses in children naturally infected with varicella-zoster virus and in varicella vaccine recipients
Balcarek et al. Neonatal screening for congenital cytomegalovirus infection by detection of virus in saliva
Pedersen et al. Recurrent aphthous ulceration: a possible clinical manifestation of reactivation of varicella zoster or cytomegalovirus infection
Piura et al. Serum IgG and IgA antibodies specific for Chlamydia trachomatis in salpingitis patients as determined by the immunoperoxidase assay
Neva et al. Isolation of a cytopathogenic agent from an infant with a disease in certain respects resembling roseola infantum
Gonczol et al. A rapid microneutralization assay for cytomegalovirus
Ross et al. Specific IgM antibody in serum of patients with herpes zoster infections
Betts et al. Comparative activity of immunofluorescent antibody and complement-fixing antibody in cytomegalovirus infection
Pien et al. Herpesviruses in renal transplant patients
Hanshaw et al. Cytomegalovirus macroglobulin in cell-associated herpesvirus infections
RU2082417C1 (en) Antiviral agent, vaccine based on thereof, method of its preparing, therapeutic agent and method of detection of rna-viruses
Ten Napel et al. Acute cytomegalovirus infection and the host immune response. I. Development and maintenance of cytomegalovirus (CMV) induced in vitro lymphocyte reactivity and its relationship to the production of CMV antibodies
Kennedy et al. A major role for viruses in acute childhood encephalopathy
Llanes-Rodas et al. Rapid diagnosis of measles from urinary sediments stained with fluorescent antibody
RU2028156C1 (en) Method of immunosorbent preparing for diagnosis of cytomegaloviral infection
Beutner et al. Strain-specific local and systemic cell-mediated immune responses to cytomegalovirus in humans
Olson et al. Respiratory tract excretion of cytomegalovirus in Thai children
Balfour Jr et al. A study of erythema infectiosum: Recovery of rubella virus and echovirus-12
Griffiths Chronic cytomegalovirus infection
Griffiths Diagnosis of cytomegalovirus infection
Lennette et al. Herpesviridae: cytomegalovirus
Stierle et al. Parvovirus associated antigen in the synovial membrane of patients with rheumatoid arthritis.
Driessen et al. Haemadsorption in vaccinia-infected tube tissue cultures
Telenti et al. Screening with a shell vial assay for antiviral activity against cytomegalovirus
Parsons et al. # 26: Investigating CMV Pathogenesis and Breast Milk Transmission In Premature Infants Who Acquire Symptomatic CMV Viremia