RU2024905C1 - Способ определения активности иммунокомпетентных клеток в эксперименте - Google Patents

Способ определения активности иммунокомпетентных клеток в эксперименте Download PDF

Info

Publication number
RU2024905C1
RU2024905C1 SU4927857A RU2024905C1 RU 2024905 C1 RU2024905 C1 RU 2024905C1 SU 4927857 A SU4927857 A SU 4927857A RU 2024905 C1 RU2024905 C1 RU 2024905C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
lymphocytes
activity
complement
sheep erythrocytes
blood
Prior art date
Application number
Other languages
English (en)
Inventor
Ю.М. Гринзайд
В.И. Мельникова
Original Assignee
Пятигорский научно-исследовательский институт курортологии и физиотерапии
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Пятигорский научно-исследовательский институт курортологии и физиотерапии filed Critical Пятигорский научно-исследовательский институт курортологии и физиотерапии
Priority to SU4927857 priority Critical patent/RU2024905C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2024905C1 publication Critical patent/RU2024905C1/ru

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)

Abstract

Использование: экспериментальная медицина, иммунология. Цель: повышение экономичности и упрощение способа. Сущность: из крови животного выделяют лимфоциты и стандартизируют их, инкубируют эритроциты барана в присутствии комплемента с лимфоцитами и без лимфоцитов, а активность рассчитывают как отношение первого показателя к второму.

Description

Изобретение относится к медицине, а именно к иммунологии.
Известен способ определения активности иммунокомпетентных клеток, заключающийся в том, что вначале из лимфоидных органов животного после забоя получают лимфоциты путем гомогенизации этих органов, после чего отмывают и стандартизуют эту взвесь. В расплавленную агарозу или агар вносят 0,1 мл 10%-ной суспензии эритроцитов барана (ЭБ), после чего туда же добавляют 0,1 мл взвеси лимфоцитов, разливают по чашкам Петри и инкубируют при 37оС в течение 1-2 ч. Затем на поверхность агарозы (агара) наслаивают комплемент морской свинки, инкубируют 30 мин при температуре 37оС и производят подсчет зон гемолиза, ассоциируемых с антителообразующими клетками -АОК (Прямой метод локального гемолиза. Кн.: Иммунологические методы. Под. ред. Г.Фримеля. М. , Медицина, 1987. с. 61-62). Принцип метода заключается в том, что лимфоциты животного, сенсибилизированные к ЭБ, синтезируют антиэритроцитарные антитела, которые в присутствии комплемента гемолизируют эти эритроциты.
Данный способ недостаточно экономичен и прост в исполнении. При эксперименте на мелких лабораторных животных он требует либо больших объемов забираемой крови (концентрация взвеси до 50 млн. клеток/мл), изъятие которой несовместимо с жизнью, либо извлечения селезенки, из-за чего также приходится животных забивать. Это лишает возможности тестирования по данному показателю хронических экспериментов. Сам агар при температуре плавления (свыше 45оС) также обладает гемолитическим действием и не может быть разлит с достаточной точностью.
Цель изобретения - повышение экономичности и упрощение способа.
Поставленная цель достигается путем предварительной иммунизации животных эритроцитами барана, выделения и стандартизации взвеси лимфоцитов и проведения гемолиза эритроцитов барана лимфоцитарными антителами в присутствии комплемента. Лимфоциты выделяют из крови, инкубацию стандартизированных эритроцитов с эритроцитами барана и комплементом проводят в пробирках, активность оценивают по отношению числа эритроцитов барана после инкубации в пробирке, содержащей лимфоциты и комплемент, к таковому в пробирке, содержащей лимфоциты.
Способ осуществляют следующим образом. Группе животных, например крыс, производят внутрибрюшную иммунизацию 2,5 мл 10% взвеси ЭБ. Спустя 5 сут производят забор гепаринизированной крови в количестве 2-2,5 мл их хвоста. Затем проводят выделение взвеси лимфоцитов на градиенте фиколл-верографина (уд.вес. 1,077 г/л), после чего эту взвесь дважды отмывают забуференным физраствором и стандартизуют в питательной среде (например среда 199) до концентрации 2 млн. клеток/мл. Для каждого животного берут 3 пробирки. В первую и вторую пробирки помещают по 0,15 мл среды 199, в третью - по 0,15 мл 20% -ного раствора комплемента морской свинки. Во все три пробирки помещают по 0,2 мл стандартизированной взвеси лимфоцитов, после чего туда же добавляют 0,2 мл 0,5%-ной взвеси эритроцитов. Пробирки инкубируют в течение 60 мин при температуре 37оС. После этого во второй и третьей пробирках проводят сравнительный подсчет концентрации эритроцитов.
Отношение концентрации эритроцитов в пробирке N 2 (содержит смесь лимфоцитов с эритроцитами барана без комплемента) к таковой в пробирке N 3 (содержит полный ассортимент гемолитической системы - эритроциты барана, лимфоциты и комплемент) называется гемолитическим индексом и характеризуют В-клеточную активность культуры лимфоцитов (продукцию гемолизинов). Содержимое пробирки N 1 (смесь ЭБ с лимфоцитарной взвесью) используется для последующей постановки теста Е-розеткообразования по стандартной методике ("Оценка субпопуляций Т-лимфоцитов у человека: T-супрессоры и Т-помощники". Методические рекомендации. Авт.: А.С.Павлюк и др. М., 1982. с. 8-12). Таким образом, представляется возможность без забоя животных в одной культуре лимфоцитов определить и В-клеточную активность, и Т-клеточную рецепцию параллельно.
Способ может быть проиллюстрирован следующими примерами.
1. Крыса-самка линии Вистар исследована по известному способу и предлагаемой методике. Количество АОК селезенки на 1 чашку - 600, гемолитический индекс лимфоцитов селезенки - 2,55. Гемолитический индекс лимфоцитов крови (ГИ) - 2,29.
2. Крыса-самка N 2 линии Вистар. Количество АОК - 392, ГИ селезенки 2,05, ГИ крови - 2,07.
3. Крыса-самка линии Вистар также исследована по способам прототипа и изобретения. Количество АОК-1696, ГИ селезенки - 3,97, ГИ крови - 3,52.
Для обоснования способа было изучено 30 крыс линии Вистар (интактных), у которых изучена активность В-лимфоцитов по способу прототипа (уровень АОК селезенки) и по методике изобретения (гемолитический индекс). Причем, для досконального уточнения информативности параметров, гемолитический индекс изучен с двумя вариантами культур лимфоцитов: из селезенки и из крови. Средний уровень АОК на чашку Петри составил 445,5 ± 48,1, гемолитического индекса с лимфоцитами селезенки - 2,65± ±0,30, с лимфоцитами крови - 2,40 ± 0,19. Обращало внимание практическое отсутствие расхождения между уровнем ГИ селезенки и ГИ крови (Р>0,6). Был проведен регрессионно-корреляционный анализ связи между тремя изученными параметрами. Коэффициенты парной корреляции составили: 1) между уровнем АОК и ГИ селезенки +0,57 ± 0,15 (Р<0,001); 2) между уровнем АОК селезенки и ГИ крови +0,72 ± 0,13 (Р<0,001); 3) между уровнями ГИ селезенки и крови +0,66 ± 0,14 (Р<0,001). Линейные регрессионные модели этих связей были соответственно: 1) Y= 0,35X-108,0; 2) Y=0,28X-115,6; 3) Y=0,42X-128,5.
Высокая корреляция между уровнями АОК селезенки и гемолитическим индексом лимфоцитов крови указывает на очевидную информативность последнего показателя.
Таким образом, способ экономичен, так как при определении гемолитического индекса крови нет необходимости забивать животных, что позволяет обходиться в эксперименте меньшим их количеством. Способ более прост по сравнению с известным за счет исключения постановки сложной и трудоемкой реакции локального гемолиза в агаре.

Claims (1)

  1. СПОСОБ ОПРЕДЕЛЕНИЯ АКТИВНОСТИ ИММУНОКОМПЕТЕНТНЫХ КЛЕТОК В ЭКСПЕРИМЕНТЕ путем предварительной иммунизации животных эритроцитами барана, выделения и стандартизации взвеси лимфоцитов, проведения гемолиза эритроцитов барана лимфоцитарными антителами в присутствии комплемента с последующим расчетом, отличающийся тем, что, с целью упрощения и повышения экономичности способа, лимфоциты выделяют из крови, инкубацию стандартизированных лимфоцитов с эритроцитами барана и комплементом проводят в пробирках, а активность рассчитывают как отношение числа эритроцитов барана после инкубации в пробирке, содержащей лимфоциты и комплемент, к таковому в пробирке, содержащей лимфоциты.
SU4927857 1993-07-23 1993-07-23 Способ определения активности иммунокомпетентных клеток в эксперименте RU2024905C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU4927857 RU2024905C1 (ru) 1993-07-23 1993-07-23 Способ определения активности иммунокомпетентных клеток в эксперименте

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU4927857 RU2024905C1 (ru) 1993-07-23 1993-07-23 Способ определения активности иммунокомпетентных клеток в эксперименте

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2024905C1 true RU2024905C1 (ru) 1994-12-15

Family

ID=21569974

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU4927857 RU2024905C1 (ru) 1993-07-23 1993-07-23 Способ определения активности иммунокомпетентных клеток в эксперименте

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2024905C1 (ru)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
"Иммунологические методы." Под ред. Г.Фримеля. М., Медицина, 1987, с.61-62. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Zola et al. Techniques for the production and characterization of monoclonal hybridoma antibodies
Cinader et al. Acquired immune tolerance to human albumin and the response to subsequent injections of diazo human albumin
Lopez et al. Phylogenetic studies on T cells: I. Lymphocytes of the shark with differential response to phytohemagglutinin and concanavalin A
Thompson et al. New granulocyte antigens demonstrated by microgranulocytotoxicity assay
Tonkonogy et al. A new alloantigenic system associated with the Mls locus in the mouse
Hildemann et al. Alloantibody production measured by plaque assay in relation to strong and weak histoincompatibility
Thorsby HL—A Antigens and Genes-I. A Study of Unrelated Norwegians
RU2024905C1 (ru) Способ определения активности иммунокомпетентных клеток в эксперименте
Caldwell et al. Serologically detected lymphocyte antigens in Holstein cattle 1
US4745053A (en) Process for producing human interferon and method for assaying the interferon productivity of blood
Grewal et al. Bovine T lymphocytes—An improved technique of E rosette formation
Baran et al. Cell sorting using a universally applicable affinity chromatography matrix: solid-phase anti-fluorescein isothiocyanate antibody
Lavelle et al. Identification of a new platelet aggregating factor released by sensitized leukocytes
Gengozian A Blood Factor in the Marmoset, Saguinus fuscicollis-its Detection, Mode of Inheritance, and Species Specificity1
SU1730592A1 (ru) Способ определени естественной киллерной активности клеток
RU2080061C1 (ru) Способ отбора крупного рогатого скота на устойчивость к туберкулезу
Edwards‐Moulds et al. Methods for the detection of Jk heterozygotes: interpretations and applications
Poloskey et al. Genetic studies in inbred rats. IV. Xenoantisera against rat erythrocyte (Ag‐C) antigens
Tønnesen et al. Recovery of peripheral lymph cells from congenitally athymic nude rats
Walter et al. Abnormal membrane surface properties during maturation of rat reticulocytes elicited by bleeding as measured by partition in two‐polymer aqueous phases
Cushing et al. The Ju blood typing system of the sperm whale and specific soluble substances
CA1211047A (en) Process for cell surface phenotyping of lymphocyte subpopulations
Fujino et al. The Y system of Skipjack Tuna blood groups
SU1758556A1 (ru) Способ определени розеткообразующей реакции нейтрофилов
SU1649444A1 (ru) Способ выделени лейкоцитов из крови