RU2024021C1 - Method of tuberculosis diagnosis - Google Patents
Method of tuberculosis diagnosis Download PDFInfo
- Publication number
- RU2024021C1 RU2024021C1 SU4934091A RU2024021C1 RU 2024021 C1 RU2024021 C1 RU 2024021C1 SU 4934091 A SU4934091 A SU 4934091A RU 2024021 C1 RU2024021 C1 RU 2024021C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- evaporation
- minutes
- chloroform
- supernatant
- extraction
- Prior art date
Links
Landscapes
- Other Investigation Or Analysis Of Materials By Electrical Means (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к медицине, а именно к бактериологии, и может быть использовано для идентификации микробактерий туберкулеза (Mycobacterium tuberculosis). The invention relates to medicine, namely to bacteriology, and can be used to identify tuberculosis microbacteria (Mycobacterium tuberculosis).
Известны различные способы диагностики туберкулеза, включающие выявление микробактерий туберкулеза (МБТ) в патологическом материале. There are various methods for the diagnosis of tuberculosis, including the identification of microbacterium tuberculosis (MBT) in pathological material.
Известен способ обнаружения МБТ путем прямой бактериоскопии (см. Перельман М. И. , Корякин В.А. и Протопопова И.М. Туберкулез. М.: Медицина, с. 32-33). Для этого на обезжиренное стекло наносят каплю физиораствора и мокроту больного, которые тщательно растирают до однородности. Высушивают, фиксируют спиртом и красят фуксином Циля-Нильсена. Препарат микроскопируют. МБТ окрашиваются в красный цвет, а окружающий фон - в синий. A known method for detecting MBT by direct bacterioscopy (see Perelman M.I., Koryakin V.A. and Protopopova I.M. Tuberculosis. M .: Medicine, p. 32-33). To do this, a drop of saline solution and sputum of the patient are applied to fat-free glass, which are thoroughly ground to homogeneity. It is dried, fixed with alcohol and stained with fuchsin Ziehl-Nielsen. The drug is microscopic. MBTs are colored red and the surrounding background is blue.
Также известен и бактериологический способ диагностики туберкулеза, включающий посев исследуемого материалa на питательную среду Левенштейна-Йенсена. Культивирование проводят в течение 14-90 дней (см. Перельман М.И., Карякин В.А. и Протопопова И.М. Туберкулез. М.: Медицина, с. 32-33). Затем культуру пересевают на глицериновые среды, инкубируют с последующей обработкой кислотами и щелочами. В заключение проводят пробу на устойчивость - мазки опускают в растворы: 1 - серной кислоты, 2 - едкого калия (натрия), 3 - жавелевой воды. После чего мазки докрашивают и микроскопируют. Also known is the bacteriological method for the diagnosis of tuberculosis, including the sowing of the test material on a Levenshtein-Jensen nutrient medium. Cultivation is carried out for 14-90 days (see Perelman M.I., Karyakin V.A. and Protopopova I.M. Tuberculosis. M .: Medicine, p. 32-33). Then the culture is subcultured on glycerol medium, incubated, followed by treatment with acids and alkalis. In conclusion, a stability test is carried out - smears are immersed in solutions: 1 - sulfuric acid, 2 - potassium hydroxide (sodium), 3 - javelin water. Then the smears are stained and microscopic.
По наличию в микроскопической картине бесцветных продолговатых и морщинистых палочек микобактерий туберкулеза диагностируют туберкулез. By the presence in the microscopic picture of colorless oblong and wrinkled rods of mycobacterium tuberculosis, tuberculosis is diagnosed.
К недостаткам данных способов следует отнести низкую чувствительность методов и длительные сроки постановки диагноза, обусловленные культивированием бактерий. The disadvantages of these methods include the low sensitivity of the methods and the long periods of diagnosis due to the cultivation of bacteria.
Наиболее близкими по технической сущности к предлагаемому является способ диагностики туберкулеза путем обнаружения туберкулостеариновой кислоты, являющейся биомаркером микобактерий туберкулеза (J, Clin. Investig., v. 63, N 5, 1979, p. 813-819). Closest to the technical nature of the proposed is a method for the diagnosis of tuberculosis by detecting tuberculostearic acid, which is a biomarker of mycobacterium tuberculosis (J, Clin. Investig., V. 63, N 5, 1979, p. 813-819).
Известный способ осуществляют следующим образом. The known method is as follows.
2-4 мл мокроты больного обеззараживают автоклавированием (при 121оС в течение 60 мин при Р = 1,1 кр/см2), обрабатывают 5 мл 3%-ного водного раствора лаурилсульфата и 1%-ным раствором гидроксида натрия при перемешивании в течение 20 мин. Полученную смесь центрифугируют при 3 тыс. оборотов в мин в течение 30 мин, рН раствора доводят серной кислотой до 7,0 и лиофилизируют. Затем образцы переносят в 2-миллилитровую стеклянную ампулу и экстрагируют в течение ночи смесью хлороформ - метанол (2 : 1, V/V) при комнатной температуре. После центрифугирования в течение 20 мин при 4000 об/мин супернатант переносят в новую ампулу и концентрируют досуха в токе азота. После чего приливают 1 мл 3%-ного метанольного раствора хлористого водорода и ампулу запаивают. Метанолиз проходит при 80оС в течение 20 ч, по окончании ампулу центрифугируют при 4000 об/мин 20 мин. Супернатант упаривают досуха в токе азота и добавляют 100 мл н-гексана. Полученную смесь обрабатывают в ультрасониковой бане 1 мин при 125 В, затем раствор анализируют методом тонкослойной хроматографии (ТСХ). Условия TCX: пластины приготавливают нанесением слоя 0,25 мм силикагеля (Silicagel Go F 254, Merсk A.G., Darmstadt, Germany). В качестве растворителя используют смесь н-гексана и диэтилового эфира (9 : 1). Через 30-40 мин пятно, соответствующее метиловому эфиру, соскабливают с пластины и экстрагируют этилацетатом. Перед инжекцией в газохроматографическую колонку образец был упарен досуха и растворен в гексане.2-4 ml Sputum patient disinfected by autoclaving (at 121 ° C for 60 minutes at P = 1.1 cr / cm 2) was treated with 5 ml of 3% aqueous solution of lauryl sulfate and 1% sodium hydroxide solution while stirring within 20 minutes The resulting mixture was centrifuged at 3 thousand rpm for 30 minutes, the pH of the solution was adjusted with sulfuric acid to 7.0 and lyophilized. Then the samples were transferred to a 2-ml glass ampoule and extracted overnight with a mixture of chloroform-methanol (2: 1, V / V) at room temperature. After centrifugation for 20 min at 4000 rpm, the supernatant is transferred to a new vial and concentrated to dryness in a stream of nitrogen. Then 1 ml of a 3% methanol solution of hydrogen chloride is poured and the ampoule is sealed. Methanolysis held at 80 ° C for 20 hours, at the end of the ampoule is centrifuged at 4000 rev / min for 20 minutes. The supernatant was evaporated to dryness under a stream of nitrogen and 100 ml of n-hexane was added. The resulting mixture was treated in an ultrasonic bath for 1 min at 125 V, then the solution was analyzed by thin layer chromatography (TLC). TCX conditions: plates are prepared by applying a layer of 0.25 mm silica gel (Silicagel Go F 254, Merck AG, Darmstadt, Germany). A mixture of n-hexane and diethyl ether (9: 1) was used as a solvent. After 30-40 minutes, the spot corresponding to methyl ether was scraped off the plate and extracted with ethyl acetate. Before injection into the gas chromatographic column, the sample was evaporated to dryness and dissolved in hexane.
Образец снимали на приборе: масс-спектрометр (Varian Assaciatis, Instrument Dis, Palo Alto, Calif, MaT model 112), соединенный с газовым хроматографом (Varian. Associates, model 112). The sample was taken using a mass spectrometer (Varian Assaciatis, Instrument Dis, Palo Alto, Calif, MaT model 112) connected to a gas chromatograph (Varian. Associates, model 112).
Условия хроматографирования следующие: стеклянная колонка, вн. диаметр 2 мм, заполненная 3,7% ОУ-17 на хромосорбе W, HP 80/100 меш, длина колонки - 3 м. Температура инжектора - 270оС, температура печи - 230оС. Газ-носитель - гелий, его скорость - 20 мл/мин. Условия работы масс-спектрометра следующие. Температура сепаратора - 250оС, температура ионного источника - 230оС, энергия электронов 70 еВ. Измерение проводили при детектировании по одному иону, соответственно по 312 m/z (молекулярный ион) и по 167 m/z. По наличию в полученном масс-спектре характерного молекулярного иона туберкулостеариновой кислоты диагностируют туберкулез. Общее время анализа составляет 4 сут. К недостаткам данного способа следует отнести длительность и многоэтапность операций, предшествующих хромато-масс-спектрометрическому исследованию пробы.The chromatographic conditions are as follows: glass column, ext. diameter 2 mm, filled with 3.7% OS-17 on Chromosorb W, HP 80/100 mesh column length - 3 m injector temperature -. 270 C, the furnace temperature - 230 ° C. Carrier gas - helium, its speed - 20 ml / min. The operating conditions of the mass spectrometer are as follows. Separator Temperature - 250 ° C Ion source temperature - 230 ° C, electron energy 70 eV. The measurement was carried out during detection by one ion, respectively, by 312 m / z (molecular ion) and by 167 m / z. By the presence in the obtained mass spectrum of a characteristic molecular ion of tuberculostearic acid, tuberculosis is diagnosed. The total analysis time is 4 days. The disadvantages of this method include the duration and multi-stage operations preceding the chromato-mass spectrometric study of the sample.
Целью предлагаемого способа диагностики является сокращение времени определения и упрощение способа. The aim of the proposed diagnostic method is to reduce the determination time and simplify the method.
Поставленная цель достигается тем, что способ диагностики туберкулеза проводят путем забора пробы, ее автоклавирования, экстракции хлороформ-метанольной смесью, упаривания, метилирования, растворения в гексане и хромато-масс-спектрометрического определения туберкулостеариновой кислоты. This goal is achieved in that a method for the diagnosis of tuberculosis is carried out by sampling, autoclaving, extraction with chloroform-methanol mixture, evaporation, methylation, dissolution in hexane and chromatography-mass spectrometric determination of tuberculostearic acid.
Сопоставительный анализ с прототипом показывает, что отличительными признаками заявляемого способа являются: отделение органического слоя после проведения экстракции, его высушивание над безводным сульфатом натрия и проведение метилирования при температуре кипения метилирующей смеси в течение 15-20 мин. Comparative analysis with the prototype shows that the distinguishing features of the proposed method are: separation of the organic layer after extraction, its drying over anhydrous sodium sulfate and methylation at the boiling temperature of the methylating mixture for 15-20 minutes
Эти отличия позволяют сделать вывод о соответствии заявляемого технического решения критерию изобретения "новизна". These differences allow us to conclude that the claimed technical solution meets the criteria of the invention of "novelty."
Сравнение заявляемого решения с другими техническими решениями показывает, что прием отделения органического слоя от водной фазы образца является широко используемым в органической химии, так же как и удаление следов воды из органического экстракта с помощью безводной соли Na2SO4.A comparison of the proposed solution with other technical solutions shows that the method of separating the organic layer from the aqueous phase of the sample is widely used in organic chemistry, as well as the removal of traces of water from the organic extract using anhydrous Na 2 SO 4 salt.
Однако указанные приемы не использовались ранее для подготовки безводного образца к хромато-масс-спектрометрическому анализу. Введение данных приемов в заявленный способ позволило исключить технически сложный прием - лиофильную сушку биосубстрата и тем самым сократить общее время анализа на 4-6 ч. However, these techniques have not been used previously to prepare an anhydrous sample for chromatography-mass spectrometric analysis. The introduction of these techniques in the inventive method eliminated the technically difficult technique - freeze drying of the biosubstrate and thereby reduce the total analysis time by 4-6 hours.
Авторами заявляемого способа экспериментальным путем установлено, что в предлагаемом способе процесс метилирования происходит за 15-20 мин. Необходимым условием является проведение этой реакции при температуре кипения метилирующей смеси (t = 65-70оС) в колбе с обратным холодильником. Данный прием позволяет сократить время диагностики на сутки, поскольку в известном способе процесс метилирования идет в течение 20 ч (при t = 80оС).The authors of the proposed method experimentally found that in the proposed method, the methylation process occurs in 15-20 minutes The necessary condition is to conduct the reaction at the boiling point mixture methylates (t = 65-70 ° C) to reflux. This method allows to reduce the time of diagnosis for a day, as in the known method the methylation process is within 20 hours (t = 80 ° C).
Таким образом, авторами заявляемого способа диагностики установлено новое свойство анализируемой смеси - процесс метилирования происходит за 15-20 мин, что позволяет сделать вывод о соответствии технического решения критерию "существенные отличия". Thus, the authors of the proposed diagnostic method established a new property of the analyzed mixture - the methylation process takes 15-20 minutes, which allows us to conclude that the technical solution meets the criterion of "significant differences".
Заявленный способ диагностики туберкулеза осуществляют следующим образом. The claimed method for the diagnosis of tuberculosis is as follows.
Для анализа забирают от 2 до 10 мг биосубстрата-мокроты, содержимого плевральной полости или дренажной жидкости. Биосубстрат автоклавируют при температуре 121оС в течение 60 мин, к нему добавляют 5 мл гидроксида натрия (4%), встряхивают 10 мин, нейтрализуют разбавленной H2SO4 до рН 7,0 и заливают экстрагирующей смесью - хлороформ : метанол, взятых в соотношении 2 : 1. Соотношение биосубстрата и экстрагента составляет 1 : 1. Экстракцию проводят при комнатной температуре в течение 20 ч. Затем смесь центрифугируют 15 мин при 3000 об/мин, отделяют нижний органический слой, который высушивают над Na2SO4(безводным). После чего экстракт отфильтровывают от Na2SO4 и упаривают досуха в токе азота. Остаток метилируют в 3%-ном растворе HCl в метаноле при температуре кипения 65-70оС в течение 15-20 мин. Затем раствор упаривают в токе азота, остаток растворяют в 10 мл гексана и анализируют на хромато-масс-спектрометре (ХМС) методом селективного ионного детектирования (SIM) при m/z 312 и записи полного масс-спектра метилата С19 кислоты. Основные фрагментарные ионы масс-спектра туберкулостеариновой (TbS) кислоты: (m/z) 312, 269, 199, 171, 167, 149, 141, 113.For analysis, 2 to 10 mg of sputum biosubstrate, the contents of the pleural cavity or drainage fluid are taken. Biosubstrates autoclaved at 121 ° C for 60 minutes, thereto was added 5 ml of sodium hydroxide (4%) is shaken for 10 minutes, neutralized with dilute H 2 SO 4 to pH 7.0 and extraction mixture is poured - chloroform: methanol, taken in 2: 1 ratio. The ratio of biosubstrate and extractant is 1: 1. Extraction is carried out at room temperature for 20 hours. Then the mixture is centrifuged for 15 minutes at 3000 rpm, the lower organic layer is separated, which is dried over Na 2 SO 4 (anhydrous) . After which the extract is filtered off from Na 2 SO 4 and evaporated to dryness in a stream of nitrogen. The residue is methylated in a 3% HCl solution in methanol at the boiling point of 65-70 ° C for 15-20 min. Then the solution is evaporated in a stream of nitrogen, the residue is dissolved in 10 ml of hexane and analyzed on a chromatography-mass spectrometer (XMS) by selective ion detection (SIM) at m / z 312 and recording the complete mass spectrum of C 19 acid methylate. The main fragmented ions of the mass spectrum of tuberculostearic (TbS) acid: (m / z) 312, 269, 199, 171, 167, 149, 141, 113.
ХМС-анализ выполняют на приборе хромато-масс-спектрометре фирмы LKB 20-91 с ЭВМ РДП1134. Условия хроматографирования: стеклянная капиллярная колонка (l = 25) с неподвижной жидкой фазой SE-30; температура инжектора - 350оС; температура термостата - 140 ->> 320оС, 4'/мин; газ-носитель - Не, VHe - 20 мл/мин.The XMS analysis is performed on an instrument with a LKB 20-91 chromatography-mass spectrometer with an RDP1134 computer. Chromatography conditions: glass capillary column (l = 25) with a stationary liquid phase SE-30; injector temperature - 350 o C; thermostat temperature - 140 - >> 320 о С, 4 '/ min; carrier gas - He, V He - 20 ml / min.
Условия снятия масс-спектра: температура сепаратора - 320оС; температура ионного источника - 320оС; энергия ионизирующих электронов - 70 еВ. Ионный ток записывали по одному иону - m/z 312, т.е. в режиме селективного ионного детектирования. Минимальная определяемая концентрация TbS кислоты в образце составляла 100 мг/мл. Общее время анализа занимало 2 сут.Mass spectrum removal conditions: separator temperature - 320 о С; ion source temperature - 320 ° C; the energy of ionizing electrons is 70 eV. The ion current was recorded for one ion, m / z 312, i.e. in selective ion detection mode. The minimum detectable concentration of TbS acid in the sample was 100 mg / ml. The total analysis time took 2 days.
П р и м е р 1. Взята на исследование мокрота от больного Г., поступившего в гнойное отделение центра хирургической инфекции с предварительным диагнозом - гангрена легкого (N истории болезни 5850, дата взятия анализа 20.12.90). 10 мл мокроты автоклавировали при 121оС 30 мин, Р = =1,1 кР/см2. К обеззараженному биосубстрату добавили 5 мл 4%-ного раствора NaOH, содержимое встряхивали в течение 10 мин, затем нейтрализовали разбавленной H2SO4 до рН 7,0 и заливали экстрагентом хлороформ-метанол (2 : 1) в количестве 15 мл и оставляли на ночь при комнатной температуре. После центрифугирования отделяли нижний органический слой и высушивали его над безводным Na2SO4 в течение 20 мин. Отфильтровывали экстракт от Na2SO4 и упаривали досуха в токе азота. Сухой остаток метилировали 3%-ным раствором соляной кислоты в метаноле, приготовленном добавлением 5 мл хлористого ацетила к 100 мл сухого МеОН. Метилирование проводили десятью мл метилирующего агента при нагревании до температуры кипения (с обратным холодильником) в течение 15 мин. Метилированный продукт упаривали в токе азота досуха, остаток растворяли в 100 мкл гексана и анализировали на хромато-масс-спектрометре фирмы IKB 2091 с ЭВМ РДП-1134 с использованием стеклянной капиллярной колонки l = 25 м с неподвижной жидкой фазой SE-30. Хроматографирование проводили при температуре 140-320оС, 4о/мин; газ-носитель Не; температура инжектора - 350оС; температура ионного источника - 320оС; температура сепаратора - 320оС; энергия ионизирующих электронов - 70 еV. Запись масс-спектра ТBS кислоты вели при максимальной интенсивности 1357. В результате проведенного анализа установлено присутствие туберкулостеариновой кислоты в образце.PRI me R 1. Taken to the study of sputum from patient G., admitted to the purulent department of the center of a surgical infection with a preliminary diagnosis of lung gangrene (N case history 5850, date of analysis 20.12.90). 10 ml sputum was autoclaved at 121 ° C for 30 min, R = 1.1 kp / cm 2. 5 ml of a 4% NaOH solution was added to the disinfected biosubstrate, the contents were shaken for 10 min, then neutralized with diluted H 2 SO 4 to pH 7.0 and 15 ml of chloroform-methanol (2: 1) was added with the extractant and left on night at room temperature. After centrifugation, the lower organic layer was separated and dried over anhydrous Na 2 SO 4 for 20 minutes. The extract was filtered off from Na 2 SO 4 and evaporated to dryness in a stream of nitrogen. The dry residue was methylated with a 3% solution of hydrochloric acid in methanol prepared by adding 5 ml of acetyl chloride to 100 ml of dry MeOH. Methylation was carried out with ten ml of methylating agent while heating to boiling point (under reflux) for 15 minutes. The methylated product was evaporated to dryness under nitrogen flow, the residue was dissolved in 100 μl of hexane and analyzed on an IKB 2091 chromatography-mass spectrometer with an RDP-1134 computer using a glass capillary column l = 25 m with a stationary liquid phase SE-30. Chromatography was performed at a temperature of 140-320 about C, 4 about / min; carrier gas Not; injector temperature - 350 o C; ion source temperature - 320 ° C; separator temperature - 320 ° C; the energy of ionizing electrons is 70 eV. The TBS acid mass spectrum was recorded at a maximum intensity of 1357. As a result of the analysis, the presence of tuberculostearic acid in the sample was established.
П р и м е р 2. Проведен забор мокроты от больного С. с предварительным диагнозом двухсторонняя абсцедирующая пневмония (N истории болезни 1899). 10 мл мокроты автоклавировали (121оС, 30 мин, Р = 1,1 кр/см2) с добавлением к ней 5 мл 4%-ного водного раствора NaOH, содержимое встряхивали 10 мин, раствор нейтрализовали разбавленной H2SO4до рН 7,0 и заливали экстрагентом хлороформ-метанол (2 : 1, V/V) в количестве 15 мл и оставляли на ночь при комнатной температуре. После центрифугирования отделяли нижний органический слой и высушивали его над 15 г безводной NaSO4 в течение 20 мин. Экстракт отфильтровывали и упаривали досуха в токе азота. Сухой остаток метилировали 3%-ным раствором HCl в метаноле. Метилирование проводили 10 мл метилирующего агента при нагревании до температуры кипения (с обратным холодильником) в течение 20 мин. Прометилированный продукт упаривали в токе азота досуха, остаток растворяли в 100 мкл гексана и анализировали на хромато-масс-спектрометре (условия ХМС-анализа приведены выше). Запись масс-спектра в интервале выхода TbS кислоты проводили при интенсивности 2857. Туберкулостеариновой кислоты не обнаружено.PRI me R 2. Sponge was taken from patient C. with a preliminary diagnosis of bilateral abscessed pneumonia (N case history 1899). 10 ml of sputum were autoclaved (121 ° C, 30 min, P = 1.1 cr / cm 2 ) with 5 ml of 4% aqueous NaOH solution added to it, the contents were shaken for 10 min, the solution was neutralized with diluted H 2 SO 4 to pH 7.0 and filled with extractant chloroform-methanol (2: 1, V / V) in an amount of 15 ml and left overnight at room temperature. After centrifugation, the lower organic layer was separated and dried over 15 g of anhydrous NaSO 4 for 20 minutes. The extract was filtered and evaporated to dryness in a stream of nitrogen. The dry residue was methylated with a 3% solution of HCl in methanol. Methylation was carried out with 10 ml of methylating agent while heating to boiling point (under reflux) for 20 minutes. The methylated product was evaporated to dryness under a nitrogen stream, the residue was dissolved in 100 μl of hexane and analyzed on a chromatography-mass spectrometer (XMS analysis conditions are given above). The mass spectrum was recorded in the yield range of TbS acid at an intensity of 2857. No tuberculostearic acid was detected.
Из представленных материалов следует, что заявленный способ позволяет в 2 раза сократить общее время проведения анализа (2 сут вместе 4 по способу-прототипу) и значительно упростить его за счет исключения приемов лиофилизации. Для наглядного выявления различий сравниваемых технических решений приведен их сопоставительный анализ:
Известный способ 1. Взятие биопробы (мокрота) 2. Автоклавирование пробы при 121оС в течение 60 мин 3. Обработка 3%-ным водным раствором лаурилсульфата и 1% -ным водным раствором гидроксида натрия при перемешивании в течение 20 мин 4. Центрифугирование при 3 тыс. об. в мин в течение 30 мин. 5. Доведение рН до 7,0 (с использованием серной кислоты) 6. Лиофилизация 7. Экстракция смесью хлороформ - метанол (1 : 1) в течение 20 ч 8. Центрифугирование при 4 тыс. об. в мин в течение 20 мин 9. Концентрация в токе азота (досуха) 10. Добавление 1 мл 3%-ного метанольного раствора кислоты 11. Метанолиз при 80оС в течение 20 ч 12. Центрифугирование при 4 тыс. об. в мин в течение 20 мин 13. Упаривание супернатанта в токе азота 14. Добавление 100 мл н-гексана 15. Обработка смеси в ультрасониковой бане в течение 1 мин при 125 В 16. Анализ методом тонкослойной хроматографии на силикагеле, элюент н-гексан - диэтиловый эфир (9 : 1) 17. Соскабливание пятна через 30-40 мин, соответствующего метиловому эфиру и экстрагирования его этилацетатом 18. Упаривание досуха 19. Растворение в гексане 20. Анализ на хромато-масс-спектрометре 21. Условия хроматографирования: стеклянная колонка, l = 3 м, внутренний d = 2 мм, заполненная 3,7% ОУ-17 на хромосорбе WHP 80/100 меш,
t инжектора = 270оС.From the presented materials it follows that the claimed method allows to reduce the total analysis time by 2 times (2 days together 4 according to the prototype method) and significantly simplify it by eliminating the methods of lyophilization. To clearly identify the differences between the compared technical solutions, their comparative analysis is given:
The known method 1. Taking bioassays (sputum) 2. sample Autoclaving at 121 ° C for 60 min 3. Treatment of 3% aqueous sodium lauryl sulfate and 1% aqueous sodium hydroxide solution under agitation for 20 min at 4. Centrifugation 3 thousand about in minutes for 30 minutes 5. Bringing the pH to 7.0 (using sulfuric acid) 6. Lyophilization 7. Extraction with a mixture of chloroform - methanol (1: 1) for 20 hours 8. Centrifugation at 4 thousand vol. min during 20 min 9. The concentration of nitrogen stream (to dryness) 10. Addition of 1 ml of 3% methanolic acid solution 11. methanolysis at 80 ° C for 20 h 12. Centrifugation at 4 th. vol. per min for 20 min 13. Evaporation of the supernatant in a stream of nitrogen 14. Addition of 100 ml of n-hexane 15. Processing of the mixture in an ultrasonic bath for 1 min at 125 V 16. Analysis by thin-layer chromatography on silica gel, n-hexane-diethyl eluent ether (9: 1) 17. Scraping off the stain after 30-40 minutes, corresponding to methyl ether and extracting it with ethyl acetate 18. Evaporation to dryness 19. Dissolution in hexane 20. Analysis by chromatography-mass spectrometer 21. Chromatography conditions: glass column, l = 3 m, internal d = 2 mm, filled with 3.7% OU-17 on chrome osorbe WHP 80/100 mesh,
t injector = 270 about C.
t термостата = 230оС,
газ-носитель - гелий,
VHe = 20 мл/мин 22. Условия работы масс-спектрометра:
t сепаратора = 250оС,
t ионного источника = 230оС,
Е = 70 эВ, измерение проводили при селективном детектировании по ионам m/z 312 и 167.t thermostat = 230 о С,
carrier gas is helium,
V He = 20 ml / min 22. The operating conditions of the mass spectrometer:
separator t = 250 о С,
t ion source = 230 about With
E = 70 eV, the measurement was carried out with selective detection by ions m / z 312 and 167.
Общее время анализа - 4 сут
Заявляемый способ 1. + 2. + 3. Обработка 4%-ным водным раствором гидроксида натрия, встряхивание в течение 10 мин 4. - 5. + 6. - 7. +, соотношение растворителей 2 : 1, соотношение экстракта и экстрагента 1 : 1, + 8. +, при 3 тыс. об. в мин в течение 15 мин, отделение нижнего органического слоя, его высушивание над безводным сульфатом натрия, фильтрование 9. + 10. + 11. +, при 65-70оС в течение 15-20 мин 12. - 13. + 14. +, 10 мл н-гексана 15. - 16. - 17. - 18. - 19. - 20. + 21. Условия хроматографирования: стеклянная капиллярная колонка, l = 25 м, заполненная 5% SE-30 на хромосорбе,
t инжектора 350oС,
t термостата 140-320оС, 4о/мин,
газ-носитель - гелий,
VHe = 20 мл/мин 22. Условия работы масс-спектрометра:
t сепаратора = 320оС,
t ионного источника = 320оС
Е = 70 эВ, измерение проводили при селективном ионном детектировании по иону m/z 312.Total analysis time - 4 days
The inventive method 1. + 2. + 3. Processing 4% aqueous sodium hydroxide solution, shaking for 10 minutes 4. - 5. + 6. - 7. +, solvent ratio 2: 1, the ratio of extract to extractant 1: 1, + 8. +, at 3 thousand about. per minute for 15 minutes, the separation of the lower organic layer, drying it over anhydrous sodium sulfate, filtering 9. + 10. + 11. + at 65-70 ° C for 15-20 min 12 - 13 + 14. +, 10 ml of n-hexane 15. - 16. - 17. - 18. - 19. - 20. + 21. Chromatography conditions: glass capillary column, l = 25 m, filled with 5% SE-30 on chromosorb,
t injector 350 o With
t thermostat 140-320 C, of 4 / min,
carrier gas is helium,
V He = 20 ml / min 22. The operating conditions of the mass spectrometer:
separator t = 320 о С,
t ion source = 320 about With
E = 70 eV, the measurement was carried out with selective ion detection by ion m / z 312.
Общее время анализа - 2 сут
Основными отличительными приемами заявленного способа/ обеспечивающими движение поставленной цели/ являются высушивание органического слоя над безводным сульфатом натрия и проведение процесса метилирования в течение 15-20 мин при 65-70оС.Total analysis time - 2 days
The main distinguishing methods of the claimed method / providing movement of the goal / are drying the organic layer over anhydrous sodium sulfate and conducting the methylation process for 15-20 minutes at 65-70 about C.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU4934091 RU2024021C1 (en) | 1991-05-05 | 1991-05-05 | Method of tuberculosis diagnosis |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU4934091 RU2024021C1 (en) | 1991-05-05 | 1991-05-05 | Method of tuberculosis diagnosis |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2024021C1 true RU2024021C1 (en) | 1994-11-30 |
Family
ID=21573359
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU4934091 RU2024021C1 (en) | 1991-05-05 | 1991-05-05 | Method of tuberculosis diagnosis |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2024021C1 (en) |
Cited By (8)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US7906277B2 (en) | 1995-09-01 | 2011-03-15 | Corixa Corporation | Compound and methods for diagnosis of tuberculosis |
US7927610B2 (en) | 1998-05-05 | 2011-04-19 | Corixa Corporation | Compounds and methods for diagnosis and immunotherapy of tuberculosis |
US7927609B2 (en) | 1995-09-01 | 2011-04-19 | Corixa Corporation | Compounds and methods for immunotherapy and diagnosis of tuberculosis |
US7973153B2 (en) | 2001-02-01 | 2011-07-05 | Corixa Corporation | Fusion proteins of mycobacterium tuberculosis |
US7982025B2 (en) | 1999-10-07 | 2011-07-19 | Corixa Corporation | Fusion proteins of Mycobacterium tuberculosis |
US7989605B2 (en) | 1995-09-01 | 2011-08-02 | Corixa Corporation | Compounds and methods for immunotherapy and diagnosis of tuberculosis |
US8110201B2 (en) | 2002-02-15 | 2012-02-07 | Corixa Corporation | Fusion proteins of mycobacterium tuberculosis |
US8143386B2 (en) | 1999-04-07 | 2012-03-27 | Corixa Corporation | Fusion proteins of mycobacterium tuberculosis antigens and their uses |
-
1991
- 1991-05-05 RU SU4934091 patent/RU2024021C1/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Y. Clin. Ynvestig., 1979, V.63, N 5, P.813-819. * |
Cited By (15)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US7906277B2 (en) | 1995-09-01 | 2011-03-15 | Corixa Corporation | Compound and methods for diagnosis of tuberculosis |
US7927609B2 (en) | 1995-09-01 | 2011-04-19 | Corixa Corporation | Compounds and methods for immunotherapy and diagnosis of tuberculosis |
US8084042B2 (en) | 1995-09-01 | 2011-12-27 | Corixa Corporation | Compounds and methods for immunotherapy and diagnosis of tuberculosis |
US7989605B2 (en) | 1995-09-01 | 2011-08-02 | Corixa Corporation | Compounds and methods for immunotherapy and diagnosis of tuberculosis |
US7935353B2 (en) | 1997-05-20 | 2011-05-03 | Corixa Corporation | Compounds and methods for diagnosis and immunotherapy of tuberculosis |
US7927610B2 (en) | 1998-05-05 | 2011-04-19 | Corixa Corporation | Compounds and methods for diagnosis and immunotherapy of tuberculosis |
US7927611B2 (en) | 1998-05-05 | 2011-04-19 | Corixa Corporation | Compounds and methods for diagnosis and immunotherapy of tuberculosis |
US8071747B2 (en) | 1998-12-30 | 2011-12-06 | Corixa Corporation | Fusion proteins of mycobacterium tuberculosis |
US8143386B2 (en) | 1999-04-07 | 2012-03-27 | Corixa Corporation | Fusion proteins of mycobacterium tuberculosis antigens and their uses |
US8067016B2 (en) | 1999-10-07 | 2011-11-29 | Corixa Corporation | Fusion proteins of Mycobacterium tuberculosis |
US7982025B2 (en) | 1999-10-07 | 2011-07-19 | Corixa Corporation | Fusion proteins of Mycobacterium tuberculosis |
US7976844B2 (en) | 2000-06-20 | 2011-07-12 | Corixa Corporation | Fusion proteins of Mycobacterium tuberculosis |
US7973153B2 (en) | 2001-02-01 | 2011-07-05 | Corixa Corporation | Fusion proteins of mycobacterium tuberculosis |
US8110201B2 (en) | 2002-02-15 | 2012-02-07 | Corixa Corporation | Fusion proteins of mycobacterium tuberculosis |
US8110200B2 (en) | 2002-02-15 | 2012-02-07 | Corixa Corporation | Fusion proteins of Mycobacterium tuberculosis |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
EP2227692B1 (en) | Identification of pathogens in body fluids | |
US8569010B2 (en) | Mass spectrometric diagnosis of septicemia | |
Chinn et al. | Gas chromatography-chemical ionization mass spectrometry of cocaine and its metabolites in biological fluids | |
Dworzanski et al. | Pyrolytic methylation-gas chromatography of whole bacterial cells for rapid profiling of cellular fatty acids | |
Odham et al. | Demonstration of tuberculostearic acid in sputum from patients with pulmonary tuberculosis by selected ion monitoring. | |
Larsson et al. | Diagnosis of pulmonary tuberculosis by selected-ion monitoring: improved analysis of tuberculostearate in sputum using negative-ion mass spectrometry | |
US8846372B2 (en) | Identification of bacterial species and subspecies using lipids | |
RU2024021C1 (en) | Method of tuberculosis diagnosis | |
Fox | Carbohydrate profiling of bacteria by gas chromatography–mass spectrometry and their trace detection in complex matrices by gas chromatography–tandem mass spectrometry | |
US5059527A (en) | Detection of endotoxins of gram negative bacteria | |
Kamimura et al. | Quantitative determination of the β-adrenoceptor stimulant formoterol in urine by gas chromatography mass spectrometry | |
Jenden et al. | Simultaneous microestimation of choline and acetylcholine by gas chromatography | |
Kocsis et al. | Mass spectrometry for profiling LOS and lipid A structures from whole-cell lysates: directly from a few bacterial colonies or from liquid broth cultures | |
Wang et al. | Cell envelope of an iron-oxidizing bacterium: studies of lipopolysaccharide and peptidoglycan | |
Nicholls et al. | Organic acids in amniotic fluid | |
Gilbart et al. | Carbohydrate profiling of bacteria by gas chromatography-mass spectrometry: chemical derivatization and analytical pyrolysis | |
CN113984948A (en) | Combined diagnosis model for helicobacter pylori infection based on VOC marker and establishment method and application thereof | |
Stein et al. | Cytologic demonstration of nucleic acids in tissue culture | |
Sud et al. | Detection of 3-hydroxy fatty acids at picogram levels in biologic specimens. A chemical method for the detection of Neisseria gonorrhoeae? | |
JP5265357B2 (en) | Lipid antigen detection method using mass spectrometer | |
Ziegler et al. | Hippurate hydrolysis as a taxonomic criterion in the genus Streptomyces (order Actinomycetales) | |
RU2093581C1 (en) | Method of assay of mycobacterium biomass purity | |
Mayakova et al. | Gas chromatographic-mass spectrometric study of lipids and rapid diagnosis of Mycobacterium tuberculosis | |
Odham et al. | Mass spectrometric determination of selected microbial constituents using fused silica and chiral glass capillary gas chromatography | |
Harley et al. | Trace analysis of muramic acid in indoor air using an automated derivatization instrument and GC–MS2 or GC–MS3 |