RU2001103C1 - Штамм бактерий BACILLUS LICHENIFORMIS - продуцент термостабильных амилолитических ферментов - Google Patents
Штамм бактерий BACILLUS LICHENIFORMIS - продуцент термостабильных амилолитических ферментовInfo
- Publication number
- RU2001103C1 RU2001103C1 SU5021951A RU2001103C1 RU 2001103 C1 RU2001103 C1 RU 2001103C1 SU 5021951 A SU5021951 A SU 5021951A RU 2001103 C1 RU2001103 C1 RU 2001103C1
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- enzymes
- thermostable
- strain
- activity
- starch
- Prior art date
Links
Landscapes
- Enzymes And Modification Thereof (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Использование: биотехнологи различные отрасли народного хоз йства в р де производств, где примен ютс амилолитические ферменты, а именно в спиртовом, крахмало-паточном, пивоваренном, текстильном производствах где требуютс ферменты , устойчивые к повышенным температурам. Сущность изобретени : штамм бактерий Bacillus lichenrformis ВКПМ В-2986 выделен из естественной почвенной ассоциации, продуцирует в определенных услови х не менее трех термостабильных амилолитических ферментов, активных при диапазоне значений рН 5,0 - 10,0, активен при 30 - 100° С с максимальной активностью ферментов в культуральной жидкости при 90 - 95° С термостабилен при 90°С в водных растворах рН 6,0 - 8,5 в течение 40 мин. Активность а-амилазы 1,78 ед/мл/мин. пуллуланазы 0,68 ед/мл/мин, а-глю- козидазы 3.49 ед/мл/мин. 4 табл.
Description
Изобретение относитс к микробиологической промышленности, а именно к производству амилолитических ферментов при помощи микробиологического синтеза.
Амилолитические ферменты наход т широкое применение в различных област х народного хоз йства и используютс в больших количествах дл разжижени и/или превращени крахмала и крахмалосодер- жащего растительного сырь в такие продукты , как и мальтодекстрины, сахарные сиропы, декстрозу, мальтозу и глюкозу. Особенности технологических процессов в р де производств, где примен ютс амилолити- ческие ферменты, а именно в спиртовом, крахмало-паточном, пивоваренном, текстильном производствах, требуют использовани ферментных препаратов, устойчивых к повышенным температурам. При ферментативной конверсии крахмала в глюкозу, мальтозу, фруктозу дл целей пищевой промышленности обычно требуетс несколько ферментов: альфа- и бета-амилаза , гидролизующие альфа-1,4-глюкозидные св зи с образованием мальтозы и олиго- мальтодекстринов: глюкоамилаза, расщепл юща альфа-1,4- и, с меньшей скоростью. альфа-1,6-глюкозидные св зи с образованием глюкозы; альфа- 1,4-глюкозидаза (маль- таза), разрывающа альфа-1,4-св зь в молекуле мальтозы.
Глубокий гидролиз крахмала также необходим в спиртовой крахмало-паточной и текстильной промышленности. Дл достижени этой цели обычно используют вначале альфа-амилазу (при температуре 70-80°С и рН 6,0-6,5), затем раствор охлаждают, подкисл ют и добавл ют другой фермент - глюкоамилазу или бета-амилазу. При этом в молекуле крахмала часть глюкозидных св зей (альфа-1,6-св зи) остаютс недоступными действию этих ферментов. Непродуктивные энергетические затраты (при снижении температуры гидролизуемо- го материала), а также значительное увеличение концентрации ионов (при изменении рН), затрудн ющие очистку конечного продукта , представл ют собой существенные недостатки такого процесса амилолиза. Избежать этих двух недостатков можно при использовании комплексов амилолитических ферментов различной специфичности (естественных или созданных искусственно ), работающих в одинаковых физико-химических услови х. Дл более полной конверсии сырь весьма важно, чтобы в таких препаратах содержалс также фермент, способный к гидролизу альфа-1,6-глюкозид- ных св зей в молекуле крахмала и мальтоо- лигодекстринов, а именно один из
деветв щих ферментов (пуллуланаза или изоамилаза).
При промышленном использовании амилолитических ферментов необходимы
5 ферменты термостабильные, так как проведение процесса разваривани и гидролиза крахмала в режиме 80-100°С вл етс предпочтительным , а также полезным с точки зрени уменьшени времени реакции и снижени опасности микробного загр знени . Дл подавл ющего большинства продуцентов амилолитических ферментов характерен предпочтительный биосинтез одного из ферментов. Способность к образованию
5 комплекса внеклеточных амилолитических ферментов, особенно термостабильных, обнаруживаетс очень редко. В этой св зи можно назвать р д термофильных анаэробов из рода Clostrldlum. Так, штамм CI.
0 thermonydrosulfurlcum. Другой синтезирует термостабильную пуллуланазу и глюкоамилазу 1. Несколько анаэробных термофилов из рода Clostrldlum осуществл ет биосинтез амилазы и пуллуланазы 2,3, либо аль5 фа-амилазы и глюкоамилазы активных при высокой температуре 4.
Наиболее близким к за вл емому вл етс штаммClostrldlum thermohydrosulfuricum E 101-69 5, образу0 ющий комплекс амилолитических ферментов при росте на полусинтетической среде следующего состава, г/л: крахмал 20; дрожжевой экстракт 5; триптон 10; м сной экстракт 3; КН2РСм 6,8; К2НРСМ ЗНаО 11,4;
5 FeSCM7H200,1;CaCl22H200,1;BDHO,001. Комплекс содержит альфа-амилазу, поллу- ланазу и альфа-глюкозидазу, при совместном действии которых амилоза и пуллулан расщепл ютс до глюкозы.
0 Недостатком способа получени препарата амилолитических ферментов из термофильного клостриди вл етс прежде всего то, что дл использовани в СССР этот штамм недоступен. Сложности культивиро5 вани анаэробов в заводских услови х делают этот микроорганизм практически непригодным в качестве промышленного продуцента.
Устранение этих недостатков и упроще0 ние способа получени термостабильных амилолитических ферментов достигаетс путем использовани отечественного продуцента - аэробной споровой палочки из рода Bacillus вид B.llchenlformls, предпоч5 тительно ВКПМ В--2986.
За вл емый штамм Bacillus llchenlformls ВКПМ В-2986 продуцирует в определенных услови х не менее трех термостабильных амилолитических ферментов,
активных при одних и тех же значени х рН
активных при одних и тех же значени х рН и температуры, что позвол ет рассматривать этот штамм как продуцент ферментов, составл ющих естественный комплекс, перспективный дл одновременной обработки крахмала или крахмалосодержащего сырь с целью его глубокого гидролиза.
Штамм ВКПМ В-2986 выделен из естественной почвенной ассоциации, воздействию мутагенных факторов не подвергалс . Микроорганизм непатогенен, а культураль- на жидкость, полученна при глубинном культивировании штамма, нетоксична.
Морфологи : микроорганизм, предлагаемый в качестве продуцента термостабильных амилолитических ферментов, имеет вид одиночных палочек размером 0, х 2,0-3,0 мк, редко встречаютс короткие цепочки; клетки подвижные, окраска по Грамму положительна ; у 23-24-часу роста в жидких средах по в- л ютс споры, имеющие центральное положение и овальную форму.
При росте на агаризованных органических средах штамм дает обильный рост, колонии непрозрачные, шероховатые, врастают в агар. Стара агарова культура имеет коричневатый оттенок.
При культивировании в м со-пептонном бульоне наблюдаетс обильный рост клеток, раствор становитс мутным, к 16-18-часу роста по вл етс красновато-коричневый оттенок.
Выращивание культуры на агаризованных средах, содержащих казеин или микробные клетки, сопровождаетс обильным ростом и образованием зон гидролиза вокруг колоний.
Культуральные и биохимические свойства: штамм ВКПМ В-2986 растет при 18- 36°С (температурный оптимум 45°С) при значени х рН среды 5,0-9,5 (оптимальное значение рН 6,5-7.5) в аэробных услови х. Микроорганизм способен расти на средах, содержащих 7% NaCI.
Культура предлагаемого микроорганизма сбраживает с образованием кислоты арабинозу, ксилозу, фруктозу, сахарозу, трегалозу, мальтозу, раффинозу маннозу, маннит, сорбит, глицерин, декстрин, гликоген без выделени газа, глюкозу ферментирует анаэробно; восстанавливает нитраты до нитритов, образует тирозиназу, катала- зоположительный. образует сероводород, утилизирует лимонную кислоту, восстанавливает лакмусовое молоко, разжижает желатин , вызывает гемолиз, быстро гидролизует казеин и крахмал. Штамм способен расти на средах с аммонийными сол ми в качестве единственного источника азота, а также на среде, содержащей в качестве источника углеродного и азотного питани дрожжевые клетки (прессованные
пекарские дрожжи или БВК). На основании указанных свойств в соответствии с определителем Берги штамм идентифицирован как Bacillus licheniformis.
Штамм хранитс в течение 19 лет при
4°С на кос ках с агаризованной средой следующего состава, г/л: сухие пекарские дрожжи 20; КН2Р04 2; MgSCM 7 Н20 1; вода водопроводна до 1 л. Пересев культуры
0 осуществл етс не реже одного раза в два мес ца.
Энгимологи : штамм В.licheniformis ВКПМ В-2986 при росте на среде известного состава синтезирует широкий набор вне5 клеточных ферментов, в том числе амилолитические. Дл роста культуры и биосинтеза амилолитических ферментов источником углерода могут служить крахмал, гидролизованный крахмал, мальтоза, кукурузна и друга зернова мука или их экстракты , дрожжевые клетки. Источником азота служат гептон, дрожжевой экстракт, м сной экстракт, дрожжевые клетки, мочевина , аммонийный азот. Синтезированные
5 штаммом амилолитические ферменты про вл ют альфа-амилазную, пуллуланазную и альфа-глюкозидазную активности, гидроли- зу разветвленные и линейные альфа-глю- каны.
0Комплекс амилолитических ферментов
характеризуетс следующими свойствами: способен гидролизовать крахмал, растворимый крахмал, амилопектин, гликоген, пуллулан, амилозу, а также расщепл ть син5 тетический хромогенный субстрат-п-нптро- фенил-альфа-О-глюкопиранозид;
благодар наличию деветв щей активности (пуллуланазной) осуществл ет разрыв не только альфа-1,4-, но и альфа-1,6-глюко0 зидных св зей в молекуле крахмала и декстринов с образованием количества глюкозы и низкомолекул рных мальтоолч- госахаридов;
активен в диапазоне значений рН 5,05 10,0 с двум заметными пиками активности (при рН 6,0 и рН 8,5);
активен при 30-100°С с максимальной активностью ферментов в виде культураль0 ной жидкости при 90-95°С; термостабилен, а именно способен сохран ть без изменений активность при 90°С в водных растворах (рН 6,0-8.5) в течение 40 мин, в присутствии ионов кальци (0,001 М)2 ч; при
5 температуре 100°С в присутствии ионов кальци (0,01 М) активность не мен етс в течение 20 мин.
Таким образом, штамм ВКПМ В-2986 осуществл ет биосинтез термостабильных
щг-лочестойких амилолитических ферментов , активных в одних и тех же физико-хими- ческих услови х, что позвол ет рекомендовать этот штамм в качестве продуцента ферментов, составл ющих естественный амилолитический комплекс.
Способ получени термостабильных амилолитических ферментов с помощью за вл емого штамма состоит из двух стадий.
Стади 1. Выращивание инокулюма. Получение посевного материала (инокулюма ) осуществл ли на жидкой питательной среде следующего состава, г/л: сухие пекарские дрожжи 20; КН2РСм 2; MgSCM 7 Н20 1; вода водопроводна до 1 л. Среду стерилизовали в течение 20 мин при 0,75 атм. Материал дл засева колб получали путем смыва культуры B.lichenlformls ВКПМ В-2986, хран щейс на скошенной агаризованной среде того же состава, как указано ранее. Культивирование проводили р колбах объемом 500 мл, содержащих 50 мл стерильной среды, на качалке (220 об/мин) при 45°С в течение 18-20 ч.
Стади 2. Биосинтез амилолитических ферментов. В 0,5-литровые колбы, содержащие определенный обьем среды известного состава, вносили инокулюм в количестве 3- 5% к объему среды и вели культивирование на качалке (220 об/мин) при определенной температуре в течение 72-168 ч. Начина с 24 ч роста культуры каждые 24 ч отбирали пробы и определ ли в культуральной жидкости способность гидролизовать крахмал, амилопектин, амилозу, гликоген, пуллулан и пар ч-ни1 .лзфенил-альфа-О-глюкопираноз ид(ПНФГ), т.е. активность р да ферментов превращени крахмала.
Активность культуральной жидкости или ее фильтрата по отношению к естественным субстратам определ ли по увеличению количества редуцирующих Сахаров (стандарт - глюкоза) в инкубационной смеси , содержащей исследуемый материал (0,1 мл), субстрат (0,1 мл 1%-ного раствора) и 0,05 М Трис-НСЬбуфер рН 8.5 до общего объема 2 мл. Реакцию проводили в течение 10 мин при 90°С. За единицу активности принимали такое количество фермента, которое обусловливало образование 1 мкмол глюкозы в услови х опыта за 1 мин.
Редуцирующие сахара определ ли по методу Нельсона-Шомоди.
Активность альфа-глюкозидэзы (маль- тазы)определ ли по способности гидролизовать хромогенный субстрат пзра-нитрофенил-альфа-О-глюкопираноз ид о реакционной смеси, содержащей 0,1 мл исследуемого материала. 0,1 мл 0,1%-ного раствора субстрата и 0,1 мл 0,05 М ТрисHCI-буфера рН 8,5. Реакцию останавливали, прилива 2 мл 1 М Ма2СОз. За единицу активности принимали такое количество фермента , которое обусловливало образование
одного мкмол пара-нитрофенола за 1 мин в услови х опыта. О количестве отщепленного пара-нитрофенола судили по интенсивности развившейс окраски, учитываемой при 410 нм.
0 Использование за вл емого штамма В.licheniformis ВКПМ В-2986 в качестве продуцента комплекса термостабильных амилолитических ферментов может быть проиллюстрирован следующими примера5 ми.
П р и м е р 1. Выращивание инокулюма осуществл ли по способу, описанному ранее . Дл биосинтеза амилолитических ферментов штаммом ВКПМ В-2986 в качестве
0 ферментационной использовали среду следующего состава, г/л: крахмал растворимый 40; сухие пекарские дрожжи 30; КНаРСм 4; MgS04 7 Н20 2; СаЗСм 2,5; вода водопроводна до 1 л. Среду стерилизовали 20 мин при
5 0,5 атм. Простерилизованную среду засевали инокулюмом в количестве 5% к ее объему и инкубировали в течение 120 ч при 42°С на качалке. Каждые 24 ч определ ли активность амилолитических ферментов в культу0 ральной жидкости. Полученные данные представлены в табл.1.
П р и м е р 2. Выращивание инокулюма осуществл ли по способу, описанному ранее . В качестве ферментационной исполь5 зовали среду следующего состава, г/л: кукурузна мука 120; кукурузный экстракт 20; (NN4)280/1 3; мочевина 4,5; мел 5; рН 7,2-7,4. Среду обрабатывали коммерческим препаратом альфа-амилаза (0,5 ед/г крах0 мала, исход из того, что в муке содержитс 72% крахмала) при 50°С в течение 1 ч, а затем среду стерилизовали обычным способом .
Стерильную среду засевали 5% иноку5 люма и инкубировали на качалке в 0,5-литровых колбах, содержащих 50 мл среды, при 42° в течение 7 сут, отбира пробы дл определени активности каждые 24 ч (начина с 48 ч роста). Результаты представлены в
0 табл. 2.
П р и м е р 3. Выращивание инокулюма проводили в жидкой среде, как указано ранее . Ферментационные колбы объемом 0,5 л содержали по 0,1 л среды следующего
5 состава, г/л: крахмал растворимый 40; сухие пекарские дрожжи 20; КН2РСМ 2; МдЗСм v7H2U 1: СаЗСм 5; вода водопроводна до 1 л. Простерилизованную среду засевали инокулюмом в количестве 3% к ее объему и инкубировали в течение 96 ч при 28, 37, 42,
46 и 54°С на качалке. Через каждые 24 ч отбирали пробы и определ ли активность ферментов превращени крахмала в фильтрате культуральной жидкости. Максимальные значени амилолитической активности культуры, выращиваемой при различной температуре, представлены в табл. 3.
Таким образом, за вл емый штамм B.lichenifoirmis ВКПМ В-2986 при культивировании на питательных средах известного состава осуществл ет биосинтез не менее 3 аминолитических ферментов, про вл ющих альфа-амилазную, пуллуланазную и альфа- глюкозидазную активности при одних и тех же значени х рН и температуры и демонстрирующих высокую термостабильность. При этом альфа-амилазна и альфа-глюко- зидазна активности за вл емого штамма были заметно выше таковых прототипа - штамма Clostridium thermohydrosulfuricum Е 101-39 (9). В табл. 4 приведены сравни0
тельные данные по амилолитической активности (максимальные значени ) за вл емого штамма и штамма-прототипа при глубинном культивировании в оптимальных дл каждого из них услови х.
За вл емый штамм в большей степени пригоден дл промышленного использовани , нежели штамм-прототип, так как он культивируетс в аэробных услови х и на среде простого состава,
(56) LAppl. Environ. Mlcroblol.-1985.-49.- Р.1168-1173.
2.Agr.Blol. Chem.-1976.-40.-Р. 1515- 1522.
3.Appl. Microbiol. Blotechnol.-1987.27- Р.192-1988.
4.Патент Великобритании № 2145094, кл. С 12 N9/34, 1985.
5. J.Gen. Microbiol. 1987, 133, p. 883- 890.
Таблица 1
Динамика амилолитической активности штамма B.lichenlformls ВКПМ В-2986 в услови х
примера 1
- не определ ли (здесь и в последующих таблицах)
Таблица 2
Динамика амилолитической активности штамма B.llchenlformls ВКПМ В-2986 в услови х примера 2
Вли ние температуры выращивани на амилолитическую активность штамма
B.licheniformis ВКПМ В-2986
Таблица 4
Сравнение активности ферментов превращени крахмала штаммов B.llchenlformls ВКПМ
В-2986 и Cl.thermohydrosulfurlcum E 101-39
Таблица 3
Примечание. единицы активности прототипа (9) приведены в соответствие с использованными в насто щей разработке (мкмол глюкозы в мин на мл культуральной жидкости );
- мальтазна активность прототипа (9) выражена через активность по ПНШГ в соответствии с единицами, указанными в каталоге фирмы Sigma Blochemlcals Organic Compounds... 1991, P.639, M. 3145.
Claims (1)
- Формула изобретениШТАММ БАКТЕРИЙ BACILLUS LICHENIFORMIS - ПРОДУЦЕНТ ТЕРМОСТАБИЛЬНЫХ АМИЛОЛИТИЧЕ- СКИХ ФЕРМЕНТОВПродолжение табл. 45 Штамм бактерий Bacillus llchenlformls ВКПМ В-2986-продуцент термостабильных амилолитических ферментов,
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU5021951 RU2001103C1 (ru) | 1991-11-11 | 1991-11-11 | Штамм бактерий BACILLUS LICHENIFORMIS - продуцент термостабильных амилолитических ферментов |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU5021951 RU2001103C1 (ru) | 1991-11-11 | 1991-11-11 | Штамм бактерий BACILLUS LICHENIFORMIS - продуцент термостабильных амилолитических ферментов |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU2001103C1 true RU2001103C1 (ru) | 1993-10-15 |
Family
ID=21594307
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU5021951 RU2001103C1 (ru) | 1991-11-11 | 1991-11-11 | Штамм бактерий BACILLUS LICHENIFORMIS - продуцент термостабильных амилолитических ферментов |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU2001103C1 (ru) |
Cited By (5)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US8409639B2 (en) | 2003-03-10 | 2013-04-02 | Poet Research, Inc. | Methods and systems for producing ethanol using raw starch and fractionation |
RU2484826C1 (ru) * | 2012-02-17 | 2013-06-20 | Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Алтайский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации | Средство, обладающее мочегонным действием |
US8470550B2 (en) | 2003-03-10 | 2013-06-25 | Poet Research, Inc. | Composition comprising raw starch for the production of ethanol |
US8597919B2 (en) | 2005-10-10 | 2013-12-03 | Poet Research, Inc. | Methods and systems for producing ethanol using raw starch and selecting plant material |
US8815552B2 (en) | 2009-03-03 | 2014-08-26 | Poet Research, Inc. | System for fermentation of biomass for the production of ethanol |
-
1991
- 1991-11-11 RU SU5021951 patent/RU2001103C1/ru active
Cited By (9)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
US8409639B2 (en) | 2003-03-10 | 2013-04-02 | Poet Research, Inc. | Methods and systems for producing ethanol using raw starch and fractionation |
US8409640B2 (en) | 2003-03-10 | 2013-04-02 | Poet Research, Inc. | Methods and systems for producing ethanol using raw starch and fractionation |
US8470550B2 (en) | 2003-03-10 | 2013-06-25 | Poet Research, Inc. | Composition comprising raw starch for the production of ethanol |
US8497082B2 (en) | 2003-03-10 | 2013-07-30 | Poet Research, Inc. | Composition comprising corn flour and saccharification enzymes |
US8679793B2 (en) | 2003-03-10 | 2014-03-25 | Poet Research, Inc. | Method for producing ethanol using raw starch |
US8748141B2 (en) | 2003-03-10 | 2014-06-10 | Poet Research, Inc. | Methods and systems for producing ethanol using raw starch and fractionation |
US8597919B2 (en) | 2005-10-10 | 2013-12-03 | Poet Research, Inc. | Methods and systems for producing ethanol using raw starch and selecting plant material |
US8815552B2 (en) | 2009-03-03 | 2014-08-26 | Poet Research, Inc. | System for fermentation of biomass for the production of ethanol |
RU2484826C1 (ru) * | 2012-02-17 | 2013-06-20 | Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Алтайский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации | Средство, обладающее мочегонным действием |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
US4628031A (en) | Thermostable starch converting enzymes | |
US4284722A (en) | Heat and acid-stable alpha-amylase enzymes and processes for producing the same | |
Madi et al. | Thermostable amylolytic enzymes from a new Clostridium isolate | |
Aguilar et al. | Purification and characterization of an extracellular α-amylase produced by Lactobacillus manihotivorans LMG 18010T, an amylolytic lactic acid bacterium | |
US4604355A (en) | Maltogenic amylase enzyme, preparation and use thereof | |
Wind et al. | Characterization of a new Bacillus stearothermophilus isolate: a highly thermostable α-amylase-producing strain | |
Nusrat et al. | Comparative studies on the production of extracellular α-amylase by three mesophilic Bacillus isolates | |
Ueda et al. | Production of isoamylase by Escherichia intermedia | |
Antranikian et al. | Conditions for the overproduction and excretion of thermostable α-amylase and pullulanase from Clostridium thermohydrosulfuricum DSM 567 | |
US4647538A (en) | Thermostable beta-amylase | |
Singh et al. | Factors affecting alfa amylase production on submerged fermentation by Bacillus sp | |
US4604352A (en) | Co-culture production of thermostable enzymers and ethanol | |
EP0140610A2 (en) | A process for producing thermostable alpha-amylases by culturing micro-organisms at elevated temperatures | |
Jin et al. | Isolation of new thermophilic aerobic bacteria which produce thermostable α-amylase | |
RU2001103C1 (ru) | Штамм бактерий BACILLUS LICHENIFORMIS - продуцент термостабильных амилолитических ферментов | |
US4737459A (en) | Regulation and enhancement of enzyme production | |
Akcan et al. | Alpha-amylase production by Bacillus subtilis RSKK96 in submerged cultivation | |
Jyoti et al. | Partial purification and characterization of an acidophilic extracellular α-amylase from Bacillus licheniformis JAR-26 | |
CA1081633A (en) | Heat and acid-stable alpha-amylase enzymes and processes for producing the same | |
RU2354697C2 (ru) | Штамм мицелиального гриба aspergillus oryzae - продуцент кислой альфа-амилазы | |
Nouri et al. | Production of alkaline protease by Aspergillus niger in a new combinational paper waste culture medium | |
JPH09168385A (ja) | 新規なβ−グルコシダーゼ、その製造法および用途 | |
US5827720A (en) | α-glucosidase, and a process for producing the same | |
AL-ASADY | Optimization of α-amylase production from a local isolate of Bacillus licheniformis and characterization of purified enzyme | |
Sharma et al. | Amylase producing efficiency of Bacillus species isolated from Jammu soil |