RU2001103C1 - Штамм бактерий BACILLUS LICHENIFORMIS - продуцент термостабильных амилолитических ферментов - Google Patents

Штамм бактерий BACILLUS LICHENIFORMIS - продуцент термостабильных амилолитических ферментов

Info

Publication number
RU2001103C1
RU2001103C1 SU5021951A RU2001103C1 RU 2001103 C1 RU2001103 C1 RU 2001103C1 SU 5021951 A SU5021951 A SU 5021951A RU 2001103 C1 RU2001103 C1 RU 2001103C1
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
enzymes
thermostable
strain
activity
starch
Prior art date
Application number
Other languages
English (en)
Inventor
Ирина Николаевна Павлова
Натали Александровна Кичакова
Лили Григорьевна Жолнер
Ирина Яковлевна Захарова
нова Нелл Зелмановна Тинь
Original Assignee
Институт микробиологии и вирусологии им.Д.К.Заболотного АН УССР
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Институт микробиологии и вирусологии им.Д.К.Заболотного АН УССР filed Critical Институт микробиологии и вирусологии им.Д.К.Заболотного АН УССР
Priority to SU5021951 priority Critical patent/RU2001103C1/ru
Application granted granted Critical
Publication of RU2001103C1 publication Critical patent/RU2001103C1/ru

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Использование: биотехнологи  различные отрасли народного хоз йства в р де производств, где примен ютс  амилолитические ферменты, а именно в спиртовом, крахмало-паточном, пивоваренном, текстильном производствах где требуютс  ферменты , устойчивые к повышенным температурам. Сущность изобретени : штамм бактерий Bacillus lichenrformis ВКПМ В-2986 выделен из естественной почвенной ассоциации, продуцирует в определенных услови х не менее трех термостабильных амилолитических ферментов, активных при диапазоне значений рН 5,0 - 10,0, активен при 30 - 100° С с максимальной активностью ферментов в культуральной жидкости при 90 - 95° С термостабилен при 90°С в водных растворах рН 6,0 - 8,5 в течение 40 мин. Активность а-амилазы 1,78 ед/мл/мин. пуллуланазы 0,68 ед/мл/мин, а-глю- козидазы 3.49 ед/мл/мин. 4 табл.

Description

Изобретение относитс  к микробиологической промышленности, а именно к производству амилолитических ферментов при помощи микробиологического синтеза.
Амилолитические ферменты наход т широкое применение в различных област х народного хоз йства и используютс  в больших количествах дл  разжижени  и/или превращени  крахмала и крахмалосодер- жащего растительного сырь  в такие продукты , как и мальтодекстрины, сахарные сиропы, декстрозу, мальтозу и глюкозу. Особенности технологических процессов в р де производств, где примен ютс  амилолити- ческие ферменты, а именно в спиртовом, крахмало-паточном, пивоваренном, текстильном производствах, требуют использовани  ферментных препаратов, устойчивых к повышенным температурам. При ферментативной конверсии крахмала в глюкозу, мальтозу, фруктозу дл  целей пищевой промышленности обычно требуетс  несколько ферментов: альфа- и бета-амилаза , гидролизующие альфа-1,4-глюкозидные св зи с образованием мальтозы и олиго- мальтодекстринов: глюкоамилаза, расщепл юща  альфа-1,4- и, с меньшей скоростью. альфа-1,6-глюкозидные св зи с образованием глюкозы; альфа- 1,4-глюкозидаза (маль- таза), разрывающа  альфа-1,4-св зь в молекуле мальтозы.
Глубокий гидролиз крахмала также необходим в спиртовой крахмало-паточной и текстильной промышленности. Дл  достижени  этой цели обычно используют вначале альфа-амилазу (при температуре 70-80°С и рН 6,0-6,5), затем раствор охлаждают, подкисл ют и добавл ют другой фермент - глюкоамилазу или бета-амилазу. При этом в молекуле крахмала часть глюкозидных св зей (альфа-1,6-св зи) остаютс  недоступными действию этих ферментов. Непродуктивные энергетические затраты (при снижении температуры гидролизуемо- го материала), а также значительное увеличение концентрации ионов (при изменении рН), затрудн ющие очистку конечного продукта , представл ют собой существенные недостатки такого процесса амилолиза. Избежать этих двух недостатков можно при использовании комплексов амилолитических ферментов различной специфичности (естественных или созданных искусственно ), работающих в одинаковых физико-химических услови х. Дл  более полной конверсии сырь  весьма важно, чтобы в таких препаратах содержалс  также фермент, способный к гидролизу альфа-1,6-глюкозид- ных св зей в молекуле крахмала и мальтоо- лигодекстринов, а именно один из
деветв щих ферментов (пуллуланаза или изоамилаза).
При промышленном использовании амилолитических ферментов необходимы
5 ферменты термостабильные, так как проведение процесса разваривани  и гидролиза крахмала в режиме 80-100°С  вл етс  предпочтительным , а также полезным с точки зрени  уменьшени  времени реакции и снижени  опасности микробного загр знени . Дл  подавл ющего большинства продуцентов амилолитических ферментов характерен предпочтительный биосинтез одного из ферментов. Способность к образованию
5 комплекса внеклеточных амилолитических ферментов, особенно термостабильных, обнаруживаетс  очень редко. В этой св зи можно назвать р д термофильных анаэробов из рода Clostrldlum. Так, штамм CI.
0 thermonydrosulfurlcum. Другой синтезирует термостабильную пуллуланазу и глюкоамилазу 1. Несколько анаэробных термофилов из рода Clostrldlum осуществл ет биосинтез амилазы и пуллуланазы 2,3, либо аль5 фа-амилазы и глюкоамилазы активных при высокой температуре 4.
Наиболее близким к за вл емому  вл етс штаммClostrldlum thermohydrosulfuricum E 101-69 5, образу0 ющий комплекс амилолитических ферментов при росте на полусинтетической среде следующего состава, г/л: крахмал 20; дрожжевой экстракт 5; триптон 10; м сной экстракт 3; КН2РСм 6,8; К2НРСМ ЗНаО 11,4;
5 FeSCM7H200,1;CaCl22H200,1;BDHO,001. Комплекс содержит альфа-амилазу, поллу- ланазу и альфа-глюкозидазу, при совместном действии которых амилоза и пуллулан расщепл ютс  до глюкозы.
0 Недостатком способа получени  препарата амилолитических ферментов из термофильного клостриди   вл етс  прежде всего то, что дл  использовани  в СССР этот штамм недоступен. Сложности культивиро5 вани  анаэробов в заводских услови х делают этот микроорганизм практически непригодным в качестве промышленного продуцента.
Устранение этих недостатков и упроще0 ние способа получени  термостабильных амилолитических ферментов достигаетс  путем использовани  отечественного продуцента - аэробной споровой палочки из рода Bacillus вид B.llchenlformls, предпоч5 тительно ВКПМ В--2986.
За вл емый штамм Bacillus llchenlformls ВКПМ В-2986 продуцирует в определенных услови х не менее трех термостабильных амилолитических ферментов,
активных при одних и тех же значени х рН
активных при одних и тех же значени х рН и температуры, что позвол ет рассматривать этот штамм как продуцент ферментов, составл ющих естественный комплекс, перспективный дл  одновременной обработки крахмала или крахмалосодержащего сырь  с целью его глубокого гидролиза.
Штамм ВКПМ В-2986 выделен из естественной почвенной ассоциации, воздействию мутагенных факторов не подвергалс . Микроорганизм непатогенен, а культураль- на  жидкость, полученна  при глубинном культивировании штамма, нетоксична.
Морфологи : микроорганизм, предлагаемый в качестве продуцента термостабильных амилолитических ферментов, имеет вид одиночных палочек размером 0, х 2,0-3,0 мк, редко встречаютс  короткие цепочки; клетки подвижные, окраска по Грамму положительна ; у 23-24-часу роста в жидких средах по в- л ютс  споры, имеющие центральное положение и овальную форму.
При росте на агаризованных органических средах штамм дает обильный рост, колонии непрозрачные, шероховатые, врастают в агар. Стара  агарова  культура имеет коричневатый оттенок.
При культивировании в м со-пептонном бульоне наблюдаетс  обильный рост клеток, раствор становитс  мутным, к 16-18-часу роста по вл етс  красновато-коричневый оттенок.
Выращивание культуры на агаризованных средах, содержащих казеин или микробные клетки, сопровождаетс  обильным ростом и образованием зон гидролиза вокруг колоний.
Культуральные и биохимические свойства: штамм ВКПМ В-2986 растет при 18- 36°С (температурный оптимум 45°С) при значени х рН среды 5,0-9,5 (оптимальное значение рН 6,5-7.5) в аэробных услови х. Микроорганизм способен расти на средах, содержащих 7% NaCI.
Культура предлагаемого микроорганизма сбраживает с образованием кислоты арабинозу, ксилозу, фруктозу, сахарозу, трегалозу, мальтозу, раффинозу маннозу, маннит, сорбит, глицерин, декстрин, гликоген без выделени  газа, глюкозу ферментирует анаэробно; восстанавливает нитраты до нитритов, образует тирозиназу, катала- зоположительный. образует сероводород, утилизирует лимонную кислоту, восстанавливает лакмусовое молоко, разжижает желатин , вызывает гемолиз, быстро гидролизует казеин и крахмал. Штамм способен расти на средах с аммонийными сол ми в качестве единственного источника азота, а также на среде, содержащей в качестве источника углеродного и азотного питани  дрожжевые клетки (прессованные
пекарские дрожжи или БВК). На основании указанных свойств в соответствии с определителем Берги штамм идентифицирован как Bacillus licheniformis.
Штамм хранитс  в течение 19 лет при
4°С на кос ках с агаризованной средой следующего состава, г/л: сухие пекарские дрожжи 20; КН2Р04 2; MgSCM 7 Н20 1; вода водопроводна  до 1 л. Пересев культуры
0 осуществл етс  не реже одного раза в два мес ца.
Энгимологи : штамм В.licheniformis ВКПМ В-2986 при росте на среде известного состава синтезирует широкий набор вне5 клеточных ферментов, в том числе амилолитические. Дл  роста культуры и биосинтеза амилолитических ферментов источником углерода могут служить крахмал, гидролизованный крахмал, мальтоза, кукурузна  и друга  зернова  мука или их экстракты , дрожжевые клетки. Источником азота служат гептон, дрожжевой экстракт, м сной экстракт, дрожжевые клетки, мочевина , аммонийный азот. Синтезированные
5 штаммом амилолитические ферменты про вл ют альфа-амилазную, пуллуланазную и альфа-глюкозидазную активности, гидроли- зу  разветвленные и линейные альфа-глю- каны.
0Комплекс амилолитических ферментов
характеризуетс  следующими свойствами: способен гидролизовать крахмал, растворимый крахмал, амилопектин, гликоген, пуллулан, амилозу, а также расщепл ть син5 тетический хромогенный субстрат-п-нптро- фенил-альфа-О-глюкопиранозид;
благодар  наличию деветв щей активности (пуллуланазной) осуществл ет разрыв не только альфа-1,4-, но и альфа-1,6-глюко0 зидных св зей в молекуле крахмала и декстринов с образованием количества глюкозы и низкомолекул рных мальтоолч- госахаридов;
активен в диапазоне значений рН 5,05 10,0 с двум  заметными пиками активности (при рН 6,0 и рН 8,5);
активен при 30-100°С с максимальной активностью ферментов в виде культураль0 ной жидкости при 90-95°С; термостабилен, а именно способен сохран ть без изменений активность при 90°С в водных растворах (рН 6,0-8.5) в течение 40 мин, в присутствии ионов кальци (0,001 М)2 ч; при
5 температуре 100°С в присутствии ионов кальци  (0,01 М) активность не мен етс  в течение 20 мин.
Таким образом, штамм ВКПМ В-2986 осуществл ет биосинтез термостабильных
щг-лочестойких амилолитических ферментов , активных в одних и тех же физико-хими- ческих услови х, что позвол ет рекомендовать этот штамм в качестве продуцента ферментов, составл ющих естественный амилолитический комплекс.
Способ получени  термостабильных амилолитических ферментов с помощью за вл емого штамма состоит из двух стадий.
Стади  1. Выращивание инокулюма. Получение посевного материала (инокулюма ) осуществл ли на жидкой питательной среде следующего состава, г/л: сухие пекарские дрожжи 20; КН2РСм 2; MgSCM 7 Н20 1; вода водопроводна  до 1 л. Среду стерилизовали в течение 20 мин при 0,75 атм. Материал дл  засева колб получали путем смыва культуры B.lichenlformls ВКПМ В-2986, хран щейс  на скошенной агаризованной среде того же состава, как указано ранее. Культивирование проводили р колбах объемом 500 мл, содержащих 50 мл стерильной среды, на качалке (220 об/мин) при 45°С в течение 18-20 ч.
Стади  2. Биосинтез амилолитических ферментов. В 0,5-литровые колбы, содержащие определенный обьем среды известного состава, вносили инокулюм в количестве 3- 5% к объему среды и вели культивирование на качалке (220 об/мин) при определенной температуре в течение 72-168 ч. Начина  с 24 ч роста культуры каждые 24 ч отбирали пробы и определ ли в культуральной жидкости способность гидролизовать крахмал, амилопектин, амилозу, гликоген, пуллулан и пар ч-ни1 .лзфенил-альфа-О-глюкопираноз ид(ПНФГ), т.е. активность р да ферментов превращени  крахмала.
Активность культуральной жидкости или ее фильтрата по отношению к естественным субстратам определ ли по увеличению количества редуцирующих Сахаров (стандарт - глюкоза) в инкубационной смеси , содержащей исследуемый материал (0,1 мл), субстрат (0,1 мл 1%-ного раствора) и 0,05 М Трис-НСЬбуфер рН 8.5 до общего объема 2 мл. Реакцию проводили в течение 10 мин при 90°С. За единицу активности принимали такое количество фермента, которое обусловливало образование 1 мкмол глюкозы в услови х опыта за 1 мин.
Редуцирующие сахара определ ли по методу Нельсона-Шомоди.
Активность альфа-глюкозидэзы (маль- тазы)определ ли по способности гидролизовать хромогенный субстрат пзра-нитрофенил-альфа-О-глюкопираноз ид о реакционной смеси, содержащей 0,1 мл исследуемого материала. 0,1 мл 0,1%-ного раствора субстрата и 0,1 мл 0,05 М ТрисHCI-буфера рН 8,5. Реакцию останавливали, прилива  2 мл 1 М Ма2СОз. За единицу активности принимали такое количество фермента , которое обусловливало образование
одного мкмол пара-нитрофенола за 1 мин в услови х опыта. О количестве отщепленного пара-нитрофенола судили по интенсивности развившейс  окраски, учитываемой при 410 нм.
0 Использование за вл емого штамма В.licheniformis ВКПМ В-2986 в качестве продуцента комплекса термостабильных амилолитических ферментов может быть проиллюстрирован следующими примера5 ми.
П р и м е р 1. Выращивание инокулюма осуществл ли по способу, описанному ранее . Дл  биосинтеза амилолитических ферментов штаммом ВКПМ В-2986 в качестве
0 ферментационной использовали среду следующего состава, г/л: крахмал растворимый 40; сухие пекарские дрожжи 30; КНаРСм 4; MgS04 7 Н20 2; СаЗСм 2,5; вода водопроводна  до 1 л. Среду стерилизовали 20 мин при
5 0,5 атм. Простерилизованную среду засевали инокулюмом в количестве 5% к ее объему и инкубировали в течение 120 ч при 42°С на качалке. Каждые 24 ч определ ли активность амилолитических ферментов в культу0 ральной жидкости. Полученные данные представлены в табл.1.
П р и м е р 2. Выращивание инокулюма осуществл ли по способу, описанному ранее . В качестве ферментационной исполь5 зовали среду следующего состава, г/л: кукурузна  мука 120; кукурузный экстракт 20; (NN4)280/1 3; мочевина 4,5; мел 5; рН 7,2-7,4. Среду обрабатывали коммерческим препаратом альфа-амилаза (0,5 ед/г крах0 мала, исход  из того, что в муке содержитс  72% крахмала) при 50°С в течение 1 ч, а затем среду стерилизовали обычным способом .
Стерильную среду засевали 5% иноку5 люма и инкубировали на качалке в 0,5-литровых колбах, содержащих 50 мл среды, при 42° в течение 7 сут, отбира  пробы дл  определени  активности каждые 24 ч (начина  с 48 ч роста). Результаты представлены в
0 табл. 2.
П р и м е р 3. Выращивание инокулюма проводили в жидкой среде, как указано ранее . Ферментационные колбы объемом 0,5 л содержали по 0,1 л среды следующего
5 состава, г/л: крахмал растворимый 40; сухие пекарские дрожжи 20; КН2РСМ 2; МдЗСм v7H2U 1: СаЗСм 5; вода водопроводна  до 1 л. Простерилизованную среду засевали инокулюмом в количестве 3% к ее объему и инкубировали в течение 96 ч при 28, 37, 42,
46 и 54°С на качалке. Через каждые 24 ч отбирали пробы и определ ли активность ферментов превращени  крахмала в фильтрате культуральной жидкости. Максимальные значени  амилолитической активности культуры, выращиваемой при различной температуре, представлены в табл. 3.
Таким образом, за вл емый штамм B.lichenifoirmis ВКПМ В-2986 при культивировании на питательных средах известного состава осуществл ет биосинтез не менее 3 аминолитических ферментов, про вл ющих альфа-амилазную, пуллуланазную и альфа- глюкозидазную активности при одних и тех же значени х рН и температуры и демонстрирующих высокую термостабильность. При этом альфа-амилазна  и альфа-глюко- зидазна  активности за вл емого штамма были заметно выше таковых прототипа - штамма Clostridium thermohydrosulfuricum Е 101-39 (9). В табл. 4 приведены сравни0
тельные данные по амилолитической активности (максимальные значени ) за вл емого штамма и штамма-прототипа при глубинном культивировании в оптимальных дл  каждого из них услови х.
За вл емый штамм в большей степени пригоден дл  промышленного использовани , нежели штамм-прототип, так как он культивируетс  в аэробных услови х и на среде простого состава,
(56) LAppl. Environ. Mlcroblol.-1985.-49.- Р.1168-1173.
2.Agr.Blol. Chem.-1976.-40.-Р. 1515- 1522.
3.Appl. Microbiol. Blotechnol.-1987.27- Р.192-1988.
4.Патент Великобритании № 2145094, кл. С 12 N9/34, 1985.
5. J.Gen. Microbiol. 1987, 133, p. 883- 890.
Таблица 1
Динамика амилолитической активности штамма B.lichenlformls ВКПМ В-2986 в услови х
примера 1
- не определ ли (здесь и в последующих таблицах)
Таблица 2
Динамика амилолитической активности штамма B.llchenlformls ВКПМ В-2986 в услови х примера 2
Вли ние температуры выращивани  на амилолитическую активность штамма
B.licheniformis ВКПМ В-2986
Таблица 4
Сравнение активности ферментов превращени  крахмала штаммов B.llchenlformls ВКПМ
В-2986 и Cl.thermohydrosulfurlcum E 101-39
Таблица 3
Примечание. единицы активности прототипа (9) приведены в соответствие с использованными в насто щей разработке (мкмол глюкозы в мин на мл культуральной жидкости );
- мальтазна  активность прототипа (9) выражена через активность по ПНШГ в соответствии с единицами, указанными в каталоге фирмы Sigma Blochemlcals Organic Compounds... 1991, P.639, M. 3145.

Claims (1)

  1. Формула изобретени 
    ШТАММ БАКТЕРИЙ BACILLUS LICHENIFORMIS - ПРОДУЦЕНТ ТЕРМОСТАБИЛЬНЫХ АМИЛОЛИТИЧЕ- СКИХ ФЕРМЕНТОВ
    Продолжение табл. 4
    5 Штамм бактерий Bacillus llchenlformls ВКПМ В-2986-продуцент термостабильных амилолитических ферментов,
SU5021951 1991-11-11 1991-11-11 Штамм бактерий BACILLUS LICHENIFORMIS - продуцент термостабильных амилолитических ферментов RU2001103C1 (ru)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU5021951 RU2001103C1 (ru) 1991-11-11 1991-11-11 Штамм бактерий BACILLUS LICHENIFORMIS - продуцент термостабильных амилолитических ферментов

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU5021951 RU2001103C1 (ru) 1991-11-11 1991-11-11 Штамм бактерий BACILLUS LICHENIFORMIS - продуцент термостабильных амилолитических ферментов

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU2001103C1 true RU2001103C1 (ru) 1993-10-15

Family

ID=21594307

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU5021951 RU2001103C1 (ru) 1991-11-11 1991-11-11 Штамм бактерий BACILLUS LICHENIFORMIS - продуцент термостабильных амилолитических ферментов

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU2001103C1 (ru)

Cited By (5)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US8409639B2 (en) 2003-03-10 2013-04-02 Poet Research, Inc. Methods and systems for producing ethanol using raw starch and fractionation
RU2484826C1 (ru) * 2012-02-17 2013-06-20 Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Алтайский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации Средство, обладающее мочегонным действием
US8470550B2 (en) 2003-03-10 2013-06-25 Poet Research, Inc. Composition comprising raw starch for the production of ethanol
US8597919B2 (en) 2005-10-10 2013-12-03 Poet Research, Inc. Methods and systems for producing ethanol using raw starch and selecting plant material
US8815552B2 (en) 2009-03-03 2014-08-26 Poet Research, Inc. System for fermentation of biomass for the production of ethanol

Cited By (9)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Publication number Priority date Publication date Assignee Title
US8409639B2 (en) 2003-03-10 2013-04-02 Poet Research, Inc. Methods and systems for producing ethanol using raw starch and fractionation
US8409640B2 (en) 2003-03-10 2013-04-02 Poet Research, Inc. Methods and systems for producing ethanol using raw starch and fractionation
US8470550B2 (en) 2003-03-10 2013-06-25 Poet Research, Inc. Composition comprising raw starch for the production of ethanol
US8497082B2 (en) 2003-03-10 2013-07-30 Poet Research, Inc. Composition comprising corn flour and saccharification enzymes
US8679793B2 (en) 2003-03-10 2014-03-25 Poet Research, Inc. Method for producing ethanol using raw starch
US8748141B2 (en) 2003-03-10 2014-06-10 Poet Research, Inc. Methods and systems for producing ethanol using raw starch and fractionation
US8597919B2 (en) 2005-10-10 2013-12-03 Poet Research, Inc. Methods and systems for producing ethanol using raw starch and selecting plant material
US8815552B2 (en) 2009-03-03 2014-08-26 Poet Research, Inc. System for fermentation of biomass for the production of ethanol
RU2484826C1 (ru) * 2012-02-17 2013-06-20 Государственное бюджетное образовательное учреждение высшего профессионального образования "Алтайский государственный медицинский университет" Министерства здравоохранения и социального развития Российской Федерации Средство, обладающее мочегонным действием

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US4628031A (en) Thermostable starch converting enzymes
US4284722A (en) Heat and acid-stable alpha-amylase enzymes and processes for producing the same
Madi et al. Thermostable amylolytic enzymes from a new Clostridium isolate
Aguilar et al. Purification and characterization of an extracellular α-amylase produced by Lactobacillus manihotivorans LMG 18010T, an amylolytic lactic acid bacterium
US4604355A (en) Maltogenic amylase enzyme, preparation and use thereof
Wind et al. Characterization of a new Bacillus stearothermophilus isolate: a highly thermostable α-amylase-producing strain
Nusrat et al. Comparative studies on the production of extracellular α-amylase by three mesophilic Bacillus isolates
Ueda et al. Production of isoamylase by Escherichia intermedia
Antranikian et al. Conditions for the overproduction and excretion of thermostable α-amylase and pullulanase from Clostridium thermohydrosulfuricum DSM 567
US4647538A (en) Thermostable beta-amylase
Singh et al. Factors affecting alfa amylase production on submerged fermentation by Bacillus sp
US4604352A (en) Co-culture production of thermostable enzymers and ethanol
EP0140610A2 (en) A process for producing thermostable alpha-amylases by culturing micro-organisms at elevated temperatures
Jin et al. Isolation of new thermophilic aerobic bacteria which produce thermostable α-amylase
RU2001103C1 (ru) Штамм бактерий BACILLUS LICHENIFORMIS - продуцент термостабильных амилолитических ферментов
US4737459A (en) Regulation and enhancement of enzyme production
Akcan et al. Alpha-amylase production by Bacillus subtilis RSKK96 in submerged cultivation
Jyoti et al. Partial purification and characterization of an acidophilic extracellular α-amylase from Bacillus licheniformis JAR-26
CA1081633A (en) Heat and acid-stable alpha-amylase enzymes and processes for producing the same
RU2354697C2 (ru) Штамм мицелиального гриба aspergillus oryzae - продуцент кислой альфа-амилазы
Nouri et al. Production of alkaline protease by Aspergillus niger in a new combinational paper waste culture medium
JPH09168385A (ja) 新規なβ−グルコシダーゼ、その製造法および用途
US5827720A (en) α-glucosidase, and a process for producing the same
AL-ASADY Optimization of α-amylase production from a local isolate of Bacillus licheniformis and characterization of purified enzyme
Sharma et al. Amylase producing efficiency of Bacillus species isolated from Jammu soil