RU1805849C - Bacterial strain pseudomonas putida for production of preparation for plant growth promotion and plant protection from fusarium and erwinia - Google Patents
Bacterial strain pseudomonas putida for production of preparation for plant growth promotion and plant protection from fusarium and erwiniaInfo
- Publication number
- RU1805849C RU1805849C SU4843529A SU4843529A RU1805849C RU 1805849 C RU1805849 C RU 1805849C SU 4843529 A SU4843529 A SU 4843529A SU 4843529 A SU4843529 A SU 4843529A RU 1805849 C RU1805849 C RU 1805849C
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- strain
- putida
- plant growth
- phytopathogenic
- growth
- Prior art date
Links
Landscapes
- Agricultural Chemicals And Associated Chemicals (AREA)
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
Abstract
Использование: может быть использован дл получени бактериального препарата дл стимул ции роста растений и защиты растений от грибов рода Fusarium и бактерий Erwinia. Сущность изобретени : штамм бактерий Pseudomonas putida BKM В-1743Д выделен из ризосферы дикорастущих злаков в Арм нской ССР. Хорошо растет на различных средах в том числе синтетических, в услови х аэрации при 30°С, рН 7,0-7,5. Дл получени препарата штамм выращивают на МПБ до концентрации 10 кл/мл. Препарат обладает способностью к подавлению роста фитопато- генных грибов рода Fusarium, стимулирует рост растений, обладает способностью раствор ть минеральные фосфаты. 5 табл.Usage: can be used to obtain a bacterial preparation to stimulate plant growth and protect plants from fungi of the genus Fusarium and Erwinia bacteria. SUMMARY OF THE INVENTION: The bacterial strain Pseudomonas putida BKM B-1743D was isolated from the rhizosphere of wild-growing cereals in the Armenian SSR. It grows well on various media, including synthetic ones, under aeration conditions at 30 ° C, pH 7.0-7.5. To obtain the preparation, the strain is grown on BCH to a concentration of 10 cells / ml. The drug has the ability to suppress the growth of phytopathogenic fungi of the genus Fusarium, stimulates plant growth, and has the ability to dissolve mineral phosphates. 5 tab.
Description
Изобретение относитс к биотехнологии , и касаетс нового штамма бактерий Pseudomonas putida, который может быть использован дл получени бактериального препарата дл защиты растений от фитопа- тогенных грибов рода Fusarium и бактерий рода Erwinla или дл стимул ции роста растений .The invention relates to biotechnology, and relates to a new strain of bacteria Pseudomonas putida, which can be used to obtain a bacterial preparation for protecting plants from phytopathogenic fungi of the genus Fusarium and bacteria of the genus Erwinla or to stimulate plant growth.
Целью изобретени было получение нового штамма Pseudomonas putida, обладающего способностью к подавлению роста фитопатогенных грибов рода Pseudomonas и бактерий Erwinia и стимул ции роста растений .The aim of the invention was to obtain a new strain of Pseudomonas putida having the ability to inhibit the growth of phytopathogenic fungi of the genus Pseudomonas and Erwinia bacteria and stimulate plant growth.
Штамм Pseudomonas putida BS1380 был выделен из рихосферы дикорастущихThe strain Pseudomonas putida BS1380 was isolated from the wild
злаков в Арм нской ССР с использованием селективных сред Кинга В и $1. Основными критери ми отбора служили стимул ци роста растений и подавление роста фитопатогенных грибов рода Fusarium и бактерий рода Erwinia.cereals in the Armenian SSR using selective King B and $ 1 media. The main selection criteria were stimulation of plant growth and suppression of the growth of phytopathogenic fungi of the genus Fusarium and bacteria of the genus Erwinia.
Состав среды Кинга В (г/л):The composition of the medium of King B (g / l):
пептон - 20peptone - 20
глицерин (мл)- 10glycerin (ml) - 10
MgS04x7H20-1.5MgS04x7H20-1.5
агар - 15agar - 15
Состав среды SI (г/л)The composition of the medium SI (g / l)
сахароза - 10sucrose - 10
глицерин (мл)- 10glycerin (ml) - 10
гидролизат казеина - 5casein hydrolyzate - 5
МаНСОз- 1Mansoz-1
0000
о с about with
юYu
сwith
MgS04x7H20-1MgS04x7H20-1
KzHPCM - 2,3KzHPCM - 2.3
саркозил - 1,2sarcosyl - 1.2
тримётоприм (мг) - 20trimethoprim (mg) - 20
агар - 15 .agar - 15.
Штамм Pseudomonas putida BS1380 депонирован во Всесоюзной коллекции микроорганизмов при ИБФМ РАН под номером В КМ В-1743Д.The strain Pseudomonas putida BS1380 was deposited in the All-Union Collection of Microorganisms at the IBPM RAS under number В К В-1743Д.
Штамм P.putida ВШВ-11743 обладает следующими свойствами: Strain P.putida VShV-11743 has the following properties:
Ку л ьтура л ьно-морфо логические признакиCulture l morphological features
Клетки палочковидные, размером (2,2- 3,2) х (0,6-0,9) мк, подвижные, перитрихи, грамотрицательные, спор не образуют.The cells are rod-shaped, measuring (2.2-3.2) x (0.6-0.9) microns, motile, peritrichi, gram-negative, do not form spores.
Размеры клеток даны дл односуточной культуры, выращенной на МПА при 30 град.Cell sizes are given for a one-day culture grown on MPA at 30 degrees.
Штамм хорошо растет на следующих средах: МПБ (м сопептонный бульон). Кинга В: пептон - 20 г/л, глицерин - 10 мл/л, MgSCM х НаО - 1,5 г/л; на .минимальной- синтетической среде М9 следующего состава: 2НР04 - 7 г/л, КН2РСЦ - 3 г/л. NH4CI - 1 г/л, глюкоза - 1 г/л, На м сопептонном агаре колонии гладкие, блест щие, с ровными кра ми.The strain grows well on the following media: BCH (m sopeptone broth). Kinga B: peptone - 20 g / l, glycerin - 10 ml / l, MgSCM x NaO - 1.5 g / l; on a minimal synthetic medium M9 of the following composition: 2НР04 - 7 g / l, КН2РСЦ - 3 g / l. NH4CI - 1 g / l, glucose - 1 g / l. On m sopeptone agar, the colonies are smooth, shiny, with smooth edges.
В м сопептонном бульоне наблюдаетс помутнение, осадок и желто-зеленый флуоресцирующий пигмент.Turbidity, sediment and a yellow-green fluorescent pigment are observed in the m sopeptone broth.
На стандартных средах Кинга продуцирует желто-зеленый флуоресцирующий пигмент , феназиновые пигменты не образуют.On standard media, Kinga produces a yellow-green fluorescent pigment, phenazine pigments do not form.
Физиолого-биохимические признакиPhysiological and biochemical characteristics
Облигатный аэроб, температурный оптимум роста 28-30°С, не растет при 41°С, оптимум рН 7,0-7.5.Obligatory aerob, temperature optimum of growth 28-30 ° С, does not grow at 41 ° С, optimum pH 7.0-7.5.
Нитраты редуцирует, желатину не разжижает , молоко не пептонизирует, не использует в качестве источников углерода трегалозу и д-ксилозу, утилизирует этиловый спирт.It reduces nitrates, does not dilute gelatin, does not peptone milk, does not use trehalose and d-xylose as carbon sources, and utilizes ethyl alcohol.
Ассимилирует аммонийный и нитратный азот. В качестве источника углерода использует д-глюкозу,д-фруктозу, сахарозу, мальтозу, лактозу, ацетат, пропинат, бути- рат. сукцинат, пируват, фумарат, бензоат, лактат, цитрат, кэтехол, протокатехоат.Assimilates ammonium and nitrate nitrogen. It uses d-glucose, d-fructose, sucrose, maltose, lactose, acetate, propinate, butyrate as a carbon source. succinate, pyruvate, fumarate, benzoate, lactate, citrate, catechol, protocatechoate.
Оксидазна реакци положительна .The oxidase reaction is positive.
Аргининдегидролаза присутствует.Arginine dehydrolase is present.
Услови хранени штамма:The storage conditions of the strain:
Штамм бактерий Pseudomonas putida ВКМ В-1743Д хран т на чашках, кос ках с МПА, или со средой Кинга В при 5-7°С. Пересевы на свежие среды - один раз в мес ц. Может хранитьс не менее 1 года в 15% глицерине при -20-70°С, в лиофильно- высушенном состо нии с сахаро-желатино- вым агаром. или в полужидкойThe bacterial strain Pseudomonas putida VKM B-1743D is stored on plates, braids with MPA, or with King B medium at 5-7 ° C. Reseeding on fresh environments - once a month c. It can be stored for at least 1 year in 15% glycerol at -20-70 ° C, in a freeze-dried state with sugar-gelatin agar. or semi-fluid
агаризованной среде под вазелиновым маслом следующего состава:agar medium under vaseline oil of the following composition:
Nutrient Broth (Difco) - 4 г/л NaCI - 5 г/лNutrient Broth (Difco) - 4 g / l NaCI - 5 g / l
агар - б г/л рН - 6,8agar - b g / l pH - 6.8
Штамм P.putida ВКМ В-1743Д не патогенен и имеет генетическую метку - устойчивость к рифампи-цину (100-200 мкг/мл),The strain P.putida VKM B-1743D is not pathogenic and has a genetic label - resistance to rifampicin (100-200 μg / ml),
0 что позвол ет контролировать его приживаемость на корн х растений.0 which allows to control its survival on the roots of plants.
Дл инокулировани сем н используют биомассу клеток штамма F.putida ВКМ В- 1743Д, выращенную в жидкой среде КингаTo inoculate the seeds, the biomass of cells of the F.putida strain VKM B-1743D grown in King's liquid medium is used
5 в или в м сопептонном бульоне (МПБ) на качалке при 30°С в течение 16-18 часов. Обработку сем н производ т из расчета 106- 10 клеток на 1 г сем н.5 in or in m sopeptone broth (MPB) on a rocking chair at 30 ° C for 16-18 hours. Seed treatment is carried out at a rate of 106-10 cells per 1 g of seed.
Примеры 1-3, демонстрирующиеExamples 1-3 showing
0 антагонизм штамма F.putida ВКМ В-1743Д в отношении фитопатогенных грибов рода .Fusarium.0 antagonism of F.putida strain VKM B-1743D against phytopathogenic fungi of the genus F.usarium.
П р и м е р 1. Штамм P.putida ВКМ В-1743Д выращивают на среде МПБ доPRI me R 1. The strain P.putida VKM B-1743D grown on medium BCH to
5 плотности 10 кл/мл. 1 мл ночной культуры осаждают с помощью шприца Millipore на нитроцеллюлозный фильтр 0,45 мкм Millipore. Фильтр помещают на чашку с сусло-агаром или средой Чапека, содержащей5 densities 10 cells / ml. 1 ml of overnight culture is pelleted using a Millipore syringe onto a Millipore 0.45 μm nitrocellulose filter. The filter is placed on a cup with wort agar or Chapek medium containing
0 предварительно внесенный мицелий .фйто- патогенного гриба Fusarium moniiiformi. Чашку инкубируют при комнатной температуре (25°С) в течение 3-4 суток и визуально регистрируют зоны подавлени грибного0 previously introduced mycelium. Phytopathogenic fungus Fusarium moniiiformi. The cup is incubated at room temperature (25 ° C) for 3-4 days and zones of inhibition of fungal infection are visually recorded.
5 роста вокруг фильтров. Зоны угнетени роста грибного мицели штаммом P.Putida ВКМ В-1743Д вокруг фильтра составл ют от 12 до 17 мм.5 growth around the filters. Zones of growth inhibition of fungal mycelium by P. Putida strain VKM B-1743D around the filter range from 12 to 17 mm.
П р и м е р 2. Осуществл ют аналогичноPRI me R 2. Carry out similarly
0 примеру 1, но в качестве индикаторного фи- топатогенного гриба используют Pusarium heterospprum. Зоны угнетени роста грибного мицели F.heterosporum штаммом F.putida ВКМ В-1743Д составл ют от 10 до0 example 1, but Pusarium heterospprum is used as an indicator phytopathogenic fungus. Zones of growth inhibition of fungal mycelium of F.heterosporum strain F.putida VKM B-1743D are from 10 to
5 15мм.5 15mm.
П р и м е р 3. Осуществл ют аналогично примеру 1. использу в качестве индикаторного фитопатогенного гриба Fusarium solani. Зоны угнетени роста мицели Example 3. Carried out analogously to example 1. using Fusarium solani as an indicator phytopathogenic fungus. Mycelial growth inhibition zones
0 F.solani штаммом F.putida ВКМ В-1743Д составл ют от 10 до 15 мм.F.solani strain F.putida VKM B-1743D ranged from 10 to 15 mm.
Примеры 4-6, демонстрирующие антагонизм штамма P.putida ВКМ В-1743Д в отношении фитопатогенных бактерий ро5 да Erwi-nia.Examples 4-6 demonstrating the antagonism of the P.putida strain VKM B-1743D against phytopathogenic bacteria of the genus 5 and Erwinia.
П р и м е р 4. На чашку МПА высевают штрихом штамм P.putida ВКМ В-1743Д и выращивают при 30°С в течение 24 часов. Затем на поверхность чашки нанос т с помощью пульверизатора суспензию клетокPRI me R 4. A strain of P.putida VKM B-1743D is streaked onto an MPA plate and grown at 30 ° C for 24 hours. Then, a suspension of cells is applied to the surface of the dish using a spray gun.
Через 5 дней роста растений в климатической камере при 25°С сравнивают размеры контрольных (необработанных) и опытных растений (рис.4). Высота опытных растений на 5-е сутки составл ет в среднем 103±6,5 мм, а контрольных - 50±15 мм.After 5 days of plant growth in a climate chamber at 25 ° C, the sizes of control (untreated) and experimental plants are compared (Fig. 4). The height of the experimental plants on the 5th day averages 103 ± 6.5 mm, and the control - 50 ± 15 mm.
П р и м е р 9. Осуществл ют аналогично примеру 8, использу , в отличие от примера 8, семена капусты сорта Июньска . Скорость прорастани опытных растений также превышает скорость прорастани контрольных растений. Высота опытных растений на 7 сутки составл ет 50±12 мм, а, контрольных -30±8мм.Example 9. Carry out analogously to example 8, using, in contrast to example 8, seeds of cabbage of the June variety. The germination rate of the test plants also exceeds the germination rate of the control plants. The height of the experimental plants on day 7 is 50 ± 12 mm, and that of the control plants is 30 ± 8 mm.
Как видно из примеров 8 и 9, предлагаемый штамм Ps. putida ВШ В-1743Д обладает способностью стимулировать рост редиса и капусты в гнотобиотических услови х . Таким образом, в предыдущих приме- pax показаны два типа стимул ции роста растений: непр ма или опосредованна стимул ци за счет подавлени почвенных фитопатогенов; пр ма стимул ци роста растений в.отсутствии фитопатогенов (гно- тобиотические услови ), по-в идимому, за счет непосредственного воздействи штамма на растение. Одним из таких механизмов пр мой стимул ци и вл етс , по-видимому, способность штамма раствор ть минераль- ные фосфаты. Стимул ци роста растений складываетс из опосредованной стимул ции (за счет подавлени фитопатогенов) (пример 7) и пр мой стимул ции в отсутствие фитопатогенов (пример 8,9).As can be seen from examples 8 and 9, the proposed strain of Ps. putida VSh V-1743D has the ability to stimulate the growth of radish and cabbage under hypnotic biotic conditions. Thus, in the previous examples, two types of stimulation of plant growth are shown: indirect or indirect stimulation due to suppression of soil phytopathogens; direct stimulation of plant growth in the absence of phytopathogens (hypnotic biotic conditions), apparently, due to the direct effect of the strain on the plant. One of the mechanisms of direct stimulation is, apparently, the ability of the strain to dissolve mineral phosphates. Plant growth stimulation consists of indirect stimulation (by suppressing phytopathogens) (Example 7) and direct stimulation in the absence of phytopathogens (Example 8.9).
Примерю. Демонстрирующий способность штамма P.putida ВКМ В-1743Д раствор ть минеральные фосфаты. Используетс - метод дл идентификации растворени минеральных фосфатов бактери ми Erwinia herbicola. Готов т среду, содержащую 2% очищенного агара (purified agar Difco), 1% глюкозы, 0,1% MgS04,0,1% NaCI и 0,5% NH/iCI. В качестве источника нерастворимого фосфата используют гидроксила- патит (ГАП), подготовленный следующим образом. ГАП стерилизуют автоклавирова- нием, отмывают 10 раз стерильной биди- стиллированной водой, высушивают и растирают в стерильных услови х до пол- учени гомогенного пудрообразного порошка . К 100 мл минеральной среды добавл ют 5 г порошка ГАП, довод т рН до 7,2 (Ш NaOH) и по 10 мл этой среды наслаивают в чашки Петри на 10 мл предвари- тельно разлитого 1% очищенного агара. В приготовленной таким образом среде содержание водорастворимых фосфатов составл ет менее 1 мм. Культуры вTry it on. Demonstrating the ability of the P.putida strain VKM B-1743D to dissolve mineral phosphates. A method is used to identify the dissolution of mineral phosphates by Erwinia herbicola bacteria. A medium is prepared containing 2% purified agar Difco, 1% glucose, 0.1% MgS04.0.1% NaCI and 0.5% NH / iCI. Hydroxylapatite (HAP) prepared as follows is used as a source of insoluble phosphate. HAPs are autoclaved, washed 10 times with sterile bidistilled water, dried and triturated under sterile conditions until a homogeneous powdery powder is obtained. 5 g of HAP powder is added to 100 ml of the mineral medium, the pH is adjusted to 7.2 (III NaOH), and 10 ml of this medium are layered in Petri dishes per 10 ml of pre-poured 1% purified agar. In a medium thus prepared, the content of water-soluble phosphates is less than 1 mm. Cultures in
стационарной фазе роста высевают на чашки с указанной средой и через 48 часов регистрируют зоны растворени ГАП.the stationary phase of growth is plated on plates with the indicated medium, and after 48 hours, the HAP dissolution zones are recorded.
Используемые в качестве положительного контрол 6 штаммов бактерий рода Erwinia очень слабо раствор ют ГАП. Штаммы E.coll В и P.putida 40a не способны к растворению ГАП и росту на этой среде. Штамм P.putida ВКМ В-1743Д хорошо растет и на этой среде образует прозрачные зоны растворени .ГАП.Six strains of bacteria of the genus Erwinia used as a positive control dissolve HAP very poorly. Strains of E.coll B and P.putida 40a are not capable of dissolving HAP and growth on this medium. The strain P.putida VKM B-1743D grows well and forms transparent dissolution zones on this medium. HAP.
П р и м е р 11. Действие препарата на основе штамма P.putida ВКМ В-1743Д на инфицированные фитопатогенными грибами рода Fusarlum растени .Example 11. The effect of a preparation based on the P.putida strain VKM B-1743D on plants infected with phytopathogenic fungi of the genus Fusarlum.
Семена огурцов сорта Тепличный и томатов сорта Черный принц инокулиру- ют в суспензии штамма, как указано выше. Предварительно готов т почву, инфицированную фитопатогеннуми грибами. .В стерильную почву (простерилизованную автоклавированием в течение 1 часа при 1 атм.) внос т гомогенизированную и разведенную в 100 раз смесь 5-суточного мицели фитопатогенных грибов Fusarium heterosporum, F.moniliformj, F.solani из расчета 100 мл суспензии на 500 г стерильной почвы.The seeds of greenhouse cucumbers and Black Prince tomatoes are inoculated in suspension of the strain, as described above. Soil infected with phytopathogenic fungi is preliminarily prepared. . In a sterile soil (sterilized by autoclaving for 1 hour at 1 atm.), A mixture of 5-day-old 5-day-old mycelium of phytopathogenic fungi Fusarium heterosporum, F.moniliformj, F.solani is applied at a rate of 100 ml of suspension per 500 g of sterile the soil.
Семена огурцов и томатов, инокулиро- ванные бактериальной суспензией и контрольные - . неинокулированные, высаживались в горшки с инфицированной почвой в 12-ти повторност х. Через 1.0-20 дней роста в климатической камере провод т учет заболевших растений, имеющих ти- пичные признаки корневых гнилей и фузариозного ув дани .Seeds of cucumbers and tomatoes inoculated with bacterial suspension and control. uninoculated, planted in pots with infected soil in 12 replicates. After 1.0–20 days of growth, the diseased plants with typical signs of root rot and fusarium infection are counted in the climatic chamber.
Данные этого эксперимента представлены в табл.3.The data of this experiment are presented in table.3.
Как видно из табл.3, обработка сем н огурцов и томатов штаммов P.putida ВКМ В-1743Д в услови х искусственного фитопа- тогенного фона уменьшает заболеваемость растений на 82 и 63% соответственно. Защитный эффект достигаетс путем эффективной колонизации корней растений клетками штамма P.putida ВКМ В-1743Д и супрессии этим штаммом грибов рода Fusarium. Штамм P.putida AKM В-1743Д показал высокую проживаемость на корн х растений. К концу эксперимента титр штамма составл л в среднем 106 клеток на 1 г корн .As can be seen from Table 3, treatment of seeds of cucumbers and tomatoes of P.putida VKM B-1743D strains under conditions of artificial phytopathogenic background reduces the incidence of plants by 82 and 63%, respectively. A protective effect is achieved by efficiently colonizing plant roots with cells of the P.putida VKM B-1743D strain and suppressing this strain of Fusarium fungi. The strain P.putida AKM B-1743D showed high liveability on plant roots. At the end of the experiment, the strain titer averaged 106 cells per gram of root.
Пример12. Использование препарата на основе штамма P.putida ВКМ В-1743Д дл защиты капусты в услови х естественного фитопатогенного фона.Example 12. Use of a preparation based on the P.putida strain VKM B-1743D for protecting cabbage under conditions of a natural phytopathogenic background.
Семена капусты сортов Слава, Подарок .Дауэрвайс обрабатывают суспен (10 кл/мл) фитопатогенных бактерий Erwlnia carotovora var. carotovora. После ин- кубировани чашек в течение 24 часов при 30°С визуально регистрируют зоны подавлени роста фитопатогенных бактерий вок- руг штриха штамма P.putida BKM В-1743Д. На рис.2 представлено подавление роста фитопатогенного штамма бактерий Erw. carotovora var. carotovora несколькими штаммами-антагонистами из коллекции ла- боратории биологии плазмид ИБФМ РАН, в том числе и штаммом P.putida BKM B- 1743Д. Зоны угнетени роста фи чэпатоген- ных бактерий Erv.Carotovora var. carotovora штаммом P.putida BKM В-1743Д составл ют 8-12 мм, чтоуказывает на антагонизм штамма P.putida BKM В-1743Д в отношении этого вида фитопатогенных бактерий.Cabbage seeds of varieties Slava, Podarok. Dauerweis is treated with a suspension (10 cells / ml) of phytopathogenic bacteria Erwlnia carotovora var. carotovora. After incubation of the plates for 24 hours at 30 ° C, zones of inhibition of growth of phytopathogenic bacteria around the line of the strain P.putida BKM B-1743D are visually recorded. Figure 2 shows the inhibition of the growth of the phytopathogenic bacterial strain Erw. carotovora var. carotovora by several antagonist strains from the collection of a laboratory of plasmid biology, IBPM RAS, including the P.putida strain BKM B-1743D. Zones of growth inhibition of phytopathogenic bacteria Erv.Carotovora var. carotovora strain P.putida BKM B-1743D are 8-12 mm, which indicates the antagonism of the strain P.putida BKM B-1743D against this type of phytopathogenic bacteria.
П р и м е р 5. Осуществл ют аналогично примеру 4, использу в качестве индикатор- ных фитопатогенных бактерий штамм Erw.carotovora var.atroseptica. Зоны угнетени роста этих фитопатогенных бактерий штаммом P.putida BKM В-1743Д составл ют 10-13 мм, что показывает антагонистиче- ские возможности штамма P.putida BKM В-1743Д в отношении фитопатогенных бактерий Erw. carotovora var.atroseptica.Example 5. Carry out analogously to example 4, using strain Erw.carotovora var.atroseptica as indicator phytopathogenic bacteria. The growth inhibition zones of these phytopathogenic bacteria by the P.putida BKM B-1743D strain are 10–13 mm, which shows the antagonistic potential of the P.putida BKM B-1743D strain with respect to the phytopathogenic bacteria Erw. carotovora var.atroseptica.
П р и м е р 6. Осуществл ют аналогично примеру 4, использу в качестве индикатор- ной культуры фитопатогенные бактерий Erv.herbicola. Зоны угнетени роста Erv.herbicola штаммом P.putida BKM. B- 1743Д составл ет 10-12 мм, что также указывает на антагонизм штамма P.putida BKM В-1743Д в отношении этого вида фитопатогенных бактерий.Example 6. Carried out analogously to example 4, using phytopathogenic bacteria Erv.herbicola as an indicator culture. Zones of growth inhibition of Erv.herbicola by P.putida BKM strain. B-1743D is 10-12 mm, which also indicates the antagonism of the P. putida BKM B-1743D strain against this type of phytopathogenic bacteria.
Пример, демонстрирующий способность штамма P.putida BKM В-1743Д подавл ть рост фитопатогенов в ризосфере огурцов. An example demonstrating the ability of the P.putida BKM B-1743D strain to inhibit the growth of phytopathogens in the rhizosphere of cucumbers.
Семена огурцов сорта Тепличный ино- кулируют в суспензии клеток штамма, как указано выше. Суспензию готов т следующим образом: в колбы емкостью 750 мл заливают 250 мл стерильной среды Кинга В или МПБ,%внос т в нее стационарную культуру штамма в количестве 1-2-мл. Выращивание культуры осуществл ют при 30°С на качалке (250 об/мин) в течение 12-16 часов до конечного титра (3-5) х 10 клеток/мл. При необходимости суспензию клеток разбавл ют Na-фосфатным буфером (рН 7,0) или водопроводной водсй. Предварительно готов т почву с естественным фитопатоген- ным фоном, вз тую из очагов гибели огур- цов от корневых гнилей. В зараженную почву высевают обработанные и контрольные - необработанные семена. Через 2 недели роста в климатической камере при 25°С сравнивают размеры опытных и контрольных растений. Как видно из табл.1, обработка сем н клетками штамма P.putida BKM В-1743Д приводит к двукратному увеличению всех параметров роста огурцов в услови х фитопатогенного фона.Greenhouse cucumber seeds are inoculated in a suspension of strain cells, as described above. The suspension is prepared as follows: 250 ml of King B sterile medium or MPB are poured into 750 ml flasks; a stationary culture of the strain in the amount of 1-2 ml is introduced into it. Cultivation was carried out at 30 ° C on a shaker (250 rpm) for 12-16 hours to a final titer (3-5) x 10 cells / ml. If necessary, the cell suspension is diluted with Na-phosphate buffer (pH 7.0) or tap water. The soil with a natural phytopathogenic background, taken from the foci of death of cucumbers from root rot, is preliminarily prepared. The treated and control seeds are untreated into the infected soil - untreated seeds. After 2 weeks of growth in a climate chamber at 25 ° C, the sizes of the experimental and control plants are compared. As can be seen from Table 1, seed treatment with cells of the strain P. putida BKM B-1743D leads to a twofold increase in all growth parameters of cucumbers under phytopathogenic conditions.
В примере показано, что обработка сем н огурцов суспензией клеток штамма приводит к увеличению роста огурцов в услови х фитопатогенного фона. Т.е. показан супрессирующий эффект инокул ции штаммом P.putida BKM В-1743Д в естественных услови х. Данна почва показывает при анализе высокий фон фитопатогенных грибов и бактерий с преобладанием грибов роста Fusarium. Инокубированные и неинокулированные семена огурцов сорта Тепличный высевают не только в почву с естественным фитопатогенным фоном, но и в стерильную почву (простерилизованную автоклавированием в течение 1 часа, при 1 атм). При этом получают следующие данные , представленные в табл.2.In the example, it was shown that treatment of cucumber seeds with a suspension of strain cells leads to an increase in cucumber growth under phytopathogenic conditions. Those. The suppressive effect of inoculation with P.putida BKM B-1743D strain under natural conditions is shown. In the analysis, this soil shows a high background of phytopathogenic fungi and bacteria with the predominance of Fusarium growth fungi. Inoculated and uninoculated seeds of Teplichny cucumbers are sown not only in soil with a natural phytopathogenic background, but also in sterile soil (sterilized by autoclaving for 1 hour, at 1 atm). In this case, the following data are obtained, presented in table.2.
Сравнение этих данкых с данными табл.1 показывает, что стерилизаци почвы приводит к эффекту, сравнимому с эффектом бактеризации сем н в услови х фитопатогенного фона. Бактеризаци сем н в услови х стерильной почвы дает незначительный стимулирующий эффект. Это указывает на то, что основным механизмом стимул ции в этом эксперименте вл етс супресси почвенных фитопатогенов штаммом P.putida ВКМ-1743Д.A comparison of these data with the data of Table 1 shows that soil sterilization leads to an effect comparable to the effect of bacterization of seeds under phytopathogenic conditions. Bacterization of seeds under sterile soil conditions gives a slight stimulating effect. This indicates that the main stimulation mechanism in this experiment is the suppression of soil phytopathogens by the P.putida strain VKM-1743D.
Примеры 8,9 демонстрируют способность штамма P.putida BKM В-1743Д стимулировать рост растений в гнотобиотических услови х.Examples 8.9 demonstrate the ability of the P.putida BKM B-1743D strain to stimulate plant growth under hypnotic biotic conditions.
П р и м е р 8. Семена редиса сорта Тепличный обрабатывают в течение 30 мин. 10% раствором Н202 и провер ют на стерильность, выдержива на чашках с МПА. Нестерильные семена, образующие на МПА зоны бактериального или грибного роста, выбраковывают. Обработку стерильных сем н штаммом P.putida BKM В-1743Д провод т как в примере 7, Семена высевают в пробирку со стерильной средой следующего состава: (на 1 л).PRI me R 8. The seeds of the radish varieties Teplichny processed for 30 minutes 10% H202 solution and checked for sterility by standing on MPA plates. Non-sterile seeds forming bacterial or fungal growth zones on MPA are discarded. Treatment of sterile seeds with P.putida strain BKM B-1743D was carried out as in Example 7. Seeds were seeded in a test tube with sterile medium of the following composition: (per 1 liter).
CaCla х 2НаО. 0,44 г КМОз .1,9 г К . 0,83мг Са(МОз)2 х 6Had 0,036мг КН2Р04 0,17 г КзВОз 6,2 мг МазМо04 х 2Н20 0,25 мг MgS04x7H20 0,37 г MnS04x4H20 22 гм CuSQ4x5H20 0,025мг ZnSO4 x7H20 8,6мг FeSCM . 16,5мг №2хЭДТА 16,7мгCaCla x 2 HaO. 0.44 g CMOs. 1.9 g K. 0.83 mg Ca (MO3) 2 x 6Had 0.036 mg KH2P04 0.17 g KZOz 6.2 mg MazMo04 x 2H20 0.25 mg MgS04x7H20 0.37 g MnS04x4H20 22 gm CuSQ4x5H20 0.025 mg ZnSO4 x7H20 8.6 mg FeSCM. 16.5 mg No. 2x EDTA 16.7 mg
зией штамма ВКМ В-1743Д, как указано выше . В дальнейшем провод т три обработки вегетирующих растений в следующих фазах роста: перва - 5-7 насто щих листьев; втора - зав зывание кочана: треть - средне- го кочана. Обработку провод т суспензией клеток плотностью 10 кл/мл при средней инокул ционной нагрузке 3x10 клеток на одно растение. Эксперимент провод т в услови х высокого естественного фитопато- генного фона, включающего грибы рода Fusarium. Результаты эксперимента представлены в табл,4.ziya strain VKM B-1743D, as described above. Subsequently, three treatments of vegetative plants are carried out in the following growth phases: first - 5-7 real leaves; the second is the heading of a head of cabbage: the third is of the middle head of head. The treatment is carried out with a suspension of cells with a density of 10 cells / ml with an average inoculation load of 3x10 cells per plant. The experiment was carried out under conditions of high natural phytopathogenic background, including fungi of the genus Fusarium. The experimental results are presented in table 4.
Обработка сем н и вегетирующих рас- тений препаратом штамма приводит к снижению заболевани капусты, в естественных услови х на 17%.Treatment of seeds and vegetative plants with the strain preparation leads to a decrease in cabbage disease, in vivo by 17%.
П р и м е р 13. Бактерий рода Erwinia вл ютс основным возбудителем корневой гнили картофел .Example 13. Bacteria of the genus Erwinia are the main causative agent of potato root rot.
Проверка эффекта обработки картофел штаммом ВКМ-В1743Д проводилась также в естественных услови х, т.е. наприродном ба- зальном фоне почвенных патогенов.The effect of processing potatoes with the VKM-V1743D strain was also tested in vivo, i.e. on a natural basal background of soil pathogens.
Исследовани проводились на картофеле сорта Невский. Клубни обрабатывали с использованием распылительной установки . Норма расхода бактериальной суспен- зии плотностбю-.IO10 кл/мл составл ла 0,5 лResearch was conducted on Nevsky potato. The tubers were sprayed. The rate of consumption of the bacterial suspension of density-.IO10 cells / ml was 0.5 l
на 1 т посадочного материала. Посадочный материал весом 3,6 т высажен на опытном участке площадью 0,4 га.per 1 ton of planting material. Planting material weighing 3.6 tons was planted on a pilot plot of 0.4 ha.
Конечный показатель-урожай картофел с опытного участка. Данные сравнени урожа с опытного и контрольного участка той же площади представлены в табл.5.The final indicator is the yield of potatoes from the experimental plot. Comparison data of the crop from the experimental and control plots of the same area are presented in Table 5.
Таким образом штамм Pseudomonas putida ВКМ В-1743Д обладает способностью к подавлению роста фитопатогенных грибов: Fusarium moniliformi, Fusarium heterosporum, Fusarium solani и бактерий Erwinia carotovora var. carotovora, Erwlnia carotovora var. atrosptica, Erwinia herbicola. Штамм не токсичен, не патогенен по отношению к растени м, обладает стимулирующим действием на рост растений, снижает заболеваемость при инфекции фитопато- генными грибами рода Fusorium, .обладает способностью раствор ть минеральные фосфаты, что позвол ет использовать этот штамм дл создани на его основе препарата , предназначенного дл стимул ции роста растений и защиты их от грибов рода Fusarium и бактерий рода Erwinia.Thus, the strain Pseudomonas putida VKM B-1743D has the ability to suppress the growth of phytopathogenic fungi: Fusarium moniliformi, Fusarium heterosporum, Fusarium solani and bacteria Erwinia carotovora var. carotovora, Erwlnia carotovora var. atrosptica, Erwinia herbicola. The strain is non-toxic, non-pathogenic to plants, has a stimulating effect on plant growth, reduces the incidence of infection with phytopathogenic fungi of the genus Fusorium, has the ability to dissolve mineral phosphates, which allows the use of this strain to create a drug based on it intended to stimulate plant growth and protect them from fungi of the genus Fusarium and bacteria of the genus Erwinia.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU4843529A RU1805849C (en) | 1990-06-26 | 1990-06-26 | Bacterial strain pseudomonas putida for production of preparation for plant growth promotion and plant protection from fusarium and erwinia |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU4843529A RU1805849C (en) | 1990-06-26 | 1990-06-26 | Bacterial strain pseudomonas putida for production of preparation for plant growth promotion and plant protection from fusarium and erwinia |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU1805849C true RU1805849C (en) | 1993-03-30 |
Family
ID=21523294
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU4843529A RU1805849C (en) | 1990-06-26 | 1990-06-26 | Bacterial strain pseudomonas putida for production of preparation for plant growth promotion and plant protection from fusarium and erwinia |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU1805849C (en) |
-
1990
- 1990-06-26 RU SU4843529A patent/RU1805849C/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Авторское свидетельство СССР N 853846, кл. А 01 N 63/00, 1977. Авторское свидетельство СССР Ms 1621508, кл. С 12 N 1/20, 1990. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
CN116162577B (en) | Bacillus mucilaginosus and application thereof | |
CN114032182B (en) | Fungus with functions of antagonizing pathogenic bacteria of garlic root rot and promoting growth | |
EP0401560B1 (en) | Antibacterial, anti-nematode and/or plant-cell activating composition, and chitinolytic microorganisms for producing the same | |
AU2004284329B2 (en) | Fungus capable of controlling poaceous plant disease damage, and utilizing the same, controlling agent, method of controlling and biomaterial | |
CN112602717B (en) | Medicine for preventing and controlling rice blast germs | |
CN117004508B (en) | Bacillus composite microbial inoculum and application thereof in citrus disease prevention and control | |
RU2529958C1 (en) | Strain of nitrogen-fixing bacteria pseudomonas sp for obtaining biological product against diseases of wheat caused by phytopathogenic fungi, and increase in productivity | |
CN110106115B (en) | Bacillus subtilis synergist and application thereof in preparation of bacillus subtilis microbial inoculum | |
CN114480143B (en) | Trichoderma harzianum M6 for preventing and treating sclerotinia sclerotiorum of sunflower and application thereof | |
CN114058542B (en) | Paenibacillus polymyxa microbial inoculum and control effect thereof on carrot root rot | |
RU1805849C (en) | Bacterial strain pseudomonas putida for production of preparation for plant growth promotion and plant protection from fusarium and erwinia | |
CN115725445A (en) | Paenibacillus polymyxa and suspension and application thereof | |
CN111471627B (en) | Serratia marcescens BSZ and application thereof | |
CN110878271B (en) | Bacillus licheniformis MES816 and product and application thereof | |
EP0172914B1 (en) | Pseudomonas solanacearum m4s strain, composition containing the same for controlling soil-borne diseases of solanaceous plant, and method for controlling said soil-borne diseases with the same | |
CN114085788A (en) | Pseudomonas japonicae strain and application thereof | |
CN113416679A (en) | Bacillus methylotrophicus, microbial inoculum comprising bacillus methylotrophicus and application of bacillus methylotrophicus | |
EP3476930B1 (en) | Pseudozyma | |
CN115895972B (en) | Composite microbial inoculum and application thereof in prevention and control of tobacco soil-borne diseases | |
CN115851534B (en) | Bacillus belicus strain for tobacco rhizosphere and application of bacillus belicus strain in prevention and control of tobacco diseases | |
CN116042461B (en) | Streptomyces rohder and application thereof in disease prevention and control of medlar | |
CN117701476B (en) | Bacillus bailii with antagonism to pathogenic fungi and application thereof | |
CN116769607B (en) | Application of endophytic fungus A21-1-1 in preventing and controlling rice blast | |
US5434120A (en) | Ustilago trichophora mycoherbicidal compositions and methods of use | |
KR100269417B1 (en) | Microorganism of the genus ascochyta and use thereof |
Legal Events
Date | Code | Title | Description |
---|---|---|---|
REG | Reference to a code of a succession state |
Ref country code: RU Ref legal event code: QZ4A Effective date: 19990601 |
|
REG | Reference to a code of a succession state |
Ref country code: RU Ref legal event code: QZ4A Effective date: 19990601 |