RU1792969C - Method of bacterial spore concentration - Google Patents

Method of bacterial spore concentration

Info

Publication number
RU1792969C
RU1792969C SU884505320A SU4505320A RU1792969C RU 1792969 C RU1792969 C RU 1792969C SU 884505320 A SU884505320 A SU 884505320A SU 4505320 A SU4505320 A SU 4505320A RU 1792969 C RU1792969 C RU 1792969C
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
spore
spores
days
suspension
bacterial
Prior art date
Application number
SU884505320A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
Игорь Алексеевич Бакулов
Владимир Андреевич Гаврилов
Юрий Васильевич Числов
Муталиф Ибрагимович Калабеков
Андрей Васильевич Никитин
Original Assignee
Всесоюзный научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Всесоюзный научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии filed Critical Всесоюзный научно-исследовательский институт ветеринарной вирусологии и микробиологии
Priority to SU884505320A priority Critical patent/RU1792969C/en
Application granted granted Critical
Publication of RU1792969C publication Critical patent/RU1792969C/en

Links

Landscapes

  • Medicines Containing Antibodies Or Antigens For Use As Internal Diagnostic Agents (AREA)
  • Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)

Abstract

Область использовани : микробиологи , концентрирбвание сп6р,споровые вакцины , вакцина против сибирской  звы, Сущность изобретени : в суспензию спор внос т полиэтилёнимин до конечной концентрации 0,05.-6,1%. Провод т отстаива- Ние при температуре 1-15°С и рН 6,0-8,0. Врем  осаждени  спор составл ет 4-5 суток . Способ обеспечивает оптимальные ус- лоёи  дли сохранени  жизнеспособности микроорганизмов. 1 табл.Field of application: microbiologists, concentration of sp6p, spore vaccines, anthrax vaccine. Summary of the invention: polyethyleneimine is added to a spore suspension to a final concentration of 0.05.-6.1%. Settling is carried out at a temperature of 1-15 ° C and a pH of 6.0-8.0. The spore deposition time is 4-5 days. The method provides optimal conditions for maintaining the viability of microorganisms. 1 tab.

Description

Изобретение относитс  к биологиче- скфй промышленности и может быть использовано при изготовлении живых споровых лирфилизированных вакцин и концентратов жиЬых споровых жидких вакцин против бактериальных болезней.животных.The invention relates to the biological industry and can be used in the manufacture of live spore lyophilized vaccines and concentrates of live spore liquid vaccines against bacterial diseases.

В насто щее врем  при изготовлении жиЬых споровых лирфилизированных вакцин дл  ко.нцентрировани  спор примен ют спбсоб их осаждени  путем отстаивани .At present, in the manufacture of live spore lyophilized vaccines, they are used to co-concentrate spores by precipitation by settling.

Осаждение бактериальных спор, полученных на плотных питательных средах и раеуспендированных в физиологическом растворе, проходит за 10 и более суток.Precipitation of bacterial spores obtained on solid nutrient media and re-suspended in physiological saline takes 10 or more days.

Осаждение спор, полученных суспензи- онным способом в реакторе, проходит значит ельно дольше (более, чем за 35 суток), что объ сн етс  повышенной в зкостью жидкой фазы, св занной с наличием в жидкости белкового субстрата - продукта лизиса бактериальных клеток и не утилизированных компонентов питательной среды.The precipitation of spores obtained by the suspension method in the reactor takes much longer (more than 35 days), which is explained by the increased viscosity of the liquid phase due to the presence of a protein substrate in the liquid, a product of lysis of bacterial cells and not utilized components of the nutrient medium.

Поскольку биологическа  промышленность переходит на более прогрессивный суспензионный способ изготовлени  вакцин , то такое длительное (более мес ца) к он- центрированиё спорового материала использовать не технологично.Since the biological industry is switching to a more progressive suspension method of manufacturing vaccines, it is not technologically feasible to use such a long (more than a month) to center the spore material.

Нецелесообразно также примен ть известный способ концентрировани  спорового материала путем центрифугировани . При центрифугировании, особенно больш их объемов споросодержащей жидкости, очень трудно создать услови , гтри которых полностью исключались бы загр знение отдел емых спор (полуфабриката вакцины) микрбфлорой воздуха и выброс спорового материала во внешнюю среду.It is also not practical to use the known method for concentrating spore material by centrifugation. When centrifuging, especially with large volumes of spore-containing liquid, it is very difficult to create conditions in which the contamination of the separated spores (prefabricated vaccine) with air microflora and the release of spore material into the environment would be completely excluded.

Наиболее близким  вл етс  способ кон- центрировани  микроорганизмов малых размеров путем отстаивани  с использованием белкового щелочного экстракта в качестве вспомогательного вещества.The closest is a method for concentrating small microorganisms by settling using an alkaline protein extract as an adjuvant.

К недостаткам этого способа относитс  то, что осаждение осуществл ют в услови хThe disadvantages of this method include the fact that the deposition is carried out under conditions

ел Сate with

vi юvi y

N ЧN h

ОЮOY

(температура 90°С и рН 3,0), которые  вл ютс  губительными дл  живых микроорга- нйзмов и поэтому данный способ невозможно использовать при изготовлении живых бактериальных вакцин.(temperature 90 ° C and pH 3.0), which are detrimental to live microorganisms and therefore this method cannot be used in the manufacture of live bacterial vaccines.

Целью насто щего изобретени   вл ет: с  повышение жизнеспособности микроорганизмов ..The aim of the present invention is: to increase the viability of microorganisms.

Поставленна  цель достигаетс  тем, что при отделении микроорганизмов от жидкой фазы, включающем осаждение с использованием вспомогательного вещества, в качестве вспомогательного вещества используют полиэтиленимин (-CHz CH2NH-)n в оптималь ной концентрации 0,05 - 0,1 %. Другое отли чие состоит в том, что осаждение провод т притемпературе 1-15°С...The goal is achieved in that when separating microorganisms from the liquid phase, including precipitation using an auxiliary substance, polyethyleneimine (-CHz CH2NH-) n at an optimum concentration of 0.05 - 0.1% is used as an auxiliary substance. Another difference is that the deposition is carried out at a temperature of 1-15 ° С ...

Кроме того, осаждение осуществл ют при рН 6,0-8,0. ..-: :. . ,/ .In addition, precipitation was carried out at a pH of 6.0-8.0. ..-::. . , /.

Пример 1. Суспензию, содержащую в 1 мл 215 млн жизнеспособных спор вакци- OHworo сибире звенного штамма 55-ВНИ- ИВВиМ, полученную в реакторе, имеющую рН 7,0 ± 0,2, разливают, соблюда  стерильность , в 2 двухлйтровыхроллерных флакона по 2 литра в каждый. В один (опытный) флакон добавл ют 10 мл 10%-ногбводйбго раствора полиэтиленимина (ПЭЙ), просте- рилизованного при температуре 120 ±2°С в течение 30 минут, при этом концентраци  ПЭИ-в споросодёржащей жидкости составл ет 0,05%. Второй флакон используют в качестве контрольного. Из контрольного флакона отбирают исходную пробу в количестве 1 мл и методом 10-кратных разведении в физиологическом растворе с последующим посевом разведении на чашки Петри с 2%-ным м со-пептонным агаром, их инкубированием при 37 ± 1°С в течение 20-24 часов и подсчетом выросших колоний определ ют число жизнеспособных спор в 1 мл пробы, Оба флако на помещаютвходо-; дйльник при температуре 4 ± 2°С. В течение 5 дней через каждые 24 часа из верхней, средней и нижней части опытного флакона отбирают пробы споровой суспензии в количестве 1 мл, объедин ют их в усредненную пробу, в которой определ ют число жизнеспособных спор по методу, описанному выше. Таким же путем определ ют число спор в пробах из контрольного флакона.Example 1. A suspension containing in 1 ml of 215 million viable spores of the vaccine OHworo anthrax sibira strain 55-VNI-IVViM, obtained in a reactor having a pH of 7.0 ± 0.2, is poured, observing sterility, in 2 two-liter vials of 2 liter in each. To one (test) vial was added 10 ml of a 10% aqueous solution of polyethyleneimine (PE) sterilized at a temperature of 120 ± 2 ° C for 30 minutes, while the concentration of PEI-in spore-containing liquid was 0.05%. The second bottle is used as a control. An initial sample of 1 ml was taken from a control vial and diluted 10 times in physiological saline followed by inoculation into Petri dishes with 2% m-peptone agar, incubating them at 37 ± 1 ° C for 20-24 hours and counting the grown colonies, the number of viable spores in 1 ml of the sample is determined. Both flasks are placed on the input; dylnik at a temperature of 4 ± 2 ° C. Within 5 days, every 24 hours, 1 ml of spore suspension samples are taken from the upper, middle and lower parts of the test vial, and they are combined into an average sample, in which the number of viable spores is determined by the method described above. In the same way, the number of spores in the samples from the control vial is determined.

Полученные результаты отражены в таблице. . - ;. . : , ;The results are shown in the table. . -;. . :,;

Из данных табл. 1 видно, что в опытном флаконе после 4-дневного отстаивани  в. надосадке из 215 млн спор/мл осталось лишь 10 млн спор/мл, следовательно, остальные споры находились в осадке и их количество составило 95% от общего числаFrom the data table. 1 shows that in the test vial after 4 days of standing in. only 10 million spores / ml remained from the supernatant of 215 million spores / ml; therefore, the remaining spores were sedimented and their amount was 95% of the total

спор в суспензии. В последующие сутки процент спор в надосадке не увеличилс . В контрольном флаконе в течение 5-дневного срока практически не было зарегистрирова- но осаждени  спор. Его выдержали еще 30 дней в холодильнике, но и в этом случае в осадке оказалось не более 50% спор, причем осадок был неплотный и легко разбивалс .,- .. . .... .. .- ; - .spore in suspension. Over the next day, the percentage of spores in the supernatant did not increase. In the control vial, spore deposition was practically not recorded during the 5-day period. It was kept for another 30 days in the refrigerator, but even in this case there was no more than 50% of the spores in the sediment, moreover, the sediment was loose and easily broken., - ... .... .. .-; -.

При сравнении внешнего вида суспензии после 4-дневного отстаивани  в опытном и контрольном флаконах было зарегистрировано, что в опытном флаконе прошло хорошее осаждение бактериальныхWhen comparing the appearance of the suspension after 4 days of settling in the experimental and control vials, it was recorded that good bacterial deposition was carried out in the experimental vial

спор- надосадок был почти прозрачный, а осадок плотный. В контрольном флаконе признаки осаждени  не были выражены.the spore supernatant was almost transparent, and the sediment was dense. In a control vial, signs of precipitation were not expressed.

По окончании осаждени  (4 суток) из опытного флакона, соблюда  стерильность,At the end of the deposition (4 days) from the experimental vial, observe sterility,

декантируют надосадок. Осадок в количестве 80-100 мл, содержащий.4-5 млрд жизнеспособных спор/мл, используют дл  изготовлени  концентрата вакцины или дл  приготовлени  лиофилизированной вакциньтротив сибирской  звы животных,decant the supernatant. A precipitate in an amount of 80-100 ml, containing 4-5 billion viable spores / ml, is used to make a vaccine concentrate or to prepare a lyophilized vaccine against anthrax in animals,

В практике биопредпри тий при осаждении бактериальных спор целесообразно использовать 18-литровые стерильные баллоны с сифонами дл  перекачивани  жидкостей ..In the practice of biological enterprises during the deposition of bacterial spores, it is advisable to use 18-liter sterile cylinders with siphons for pumping liquids.

При добавлении в споровую суспензию ПЭИ в количестве 0,1% осаждение бактериальных спор проходит так же хорошо, как и при добавлении 0,05%. После 4-д невногоWhen PEI is added to the spore suspension in an amount of 0.1%, the precipitation of bacterial spores proceeds as well as when adding 0.05%. After 4 days

осаждени  при температуре 4 ± 2 °С в осадке наход тс  95% спор.precipitation at 4 ± 2 ° C. 95% of the spores are in the sediment.

При добавлении в споровую суспензию ПЭИ в количестве 0,0125% и меньше или 0,4% и больше Осаждение спор проходитWhen PEI is added to a spore suspension in an amount of 0.0125% or less or 0.4% or more, Spore precipitation occurs

медленно. За 5 суток отстаивани  при температуре 4 ±2°С в осадке наход тс  меньше 30% бактериальных спор.slow. After 5 days of settling at a temperature of 4 ± 2 ° C, less than 30% of bacterial spores are in the sediment.

При использовании температуры 16ЬС и выше осаждение бактериальных спор не замедл етс . Однако в этих услови х часть микроорганизмов может перейти из споровой в вегетативную форму, что  вл етс  недопустимым при изготовлении вакцины. При использовании температуры нижеWhen using a temperature of 16 ° C or higher, the deposition of bacterial spores does not slow down. However, under these conditions, part of the microorganisms can go from spore to vegetative form, which is unacceptable in the manufacture of a vaccine. When using temperatures below

0°С происходит кристаллизаци  споровой суспензии, котора  может привести к гибели части микроорганизмов. . :At 0 ° C, the spore suspension crystallizes, which can lead to the death of some microorganisms. . :

При рН 5,0 или 9,0 осаждение бактериальных спор не замедл етс . Однако кисла At pH 5.0 or 9.0, the precipitation of bacterial spores does not slow down. However sour

или щелочна  среда  вл етс  неблагопри тным фактором и может привести к гибели части микроорганизмов. :or an alkaline environment is an unfavorable factor and can lead to the death of some microorganisms. :

Использование предлагаемого способа концентрированм  бактериальных спор, поUsing the proposed method for concentrated bacterial spores, according

;pat; pat

11

сравнению с существующими способами, обеспечивает следующие преимущества:Compared with existing methods, it provides the following advantages:

а) в качестве вспомогательного вещества , примен емого дл  отделени  спор от жидкой фазы, используют полиэтилени- мин в оптимальной концентрации 0,05- 0,1%;, .-. ; a) as an adjuvant used to separate spores from the liquid phase, polyethyleneimine is used in an optimum concentration of 0.05-0.1% ;, .-. ;

I б) позвол ет проводить концентрирова- ние бактериальных спор при температуре 1-%°С;I b) allows the concentration of bacterial spores at a temperature of 1% ° C;

17929691792969

в) дает возможность осуществл ть отделение спор от жидкой фазы при рН 6,0-8,0;c) allows the separation of spores from the liquid phase at pH 6.0-8.0;

г) позвол ет получать в стерильных услови х из споросодержащей жидкости концентрированный споровой материал - полуфабрикат дл  изготовлени  лиофилизи- рованных вакцин или концентрата жидких вакцин;d) allows to obtain, under sterile conditions, from a spore-containing liquid a concentrated spore material - a semi-finished product for the manufacture of lyophilized vaccines or a liquid vaccine concentrate;

д) врем  осаждени  бактериальных спор составл ет 4-5 суток.e) the settling time of bacterial spores is 4-5 days.

Claims (1)

Формула изобретени The claims I Способ концентрирована бактериальных спор, включающий внесение в суспензию спор вспомогательного вещества с последующим отстаиванием полученной cv еси и отделением осадка, отличаюИзменение числа бактериальных спор в надосадке при отстаивании суспензии вакцинного сибире звенного штамма 55-ВНИЙВВиМI The method concentrates bacterial spores, including introducing an auxiliary substance into the spore suspension, followed by settling of the obtained cv and separating the precipitate; щий с   тем, что, с целью повышени  жизнеспособности микроорганизмов, в качестве вспомогательного вещества используют полиэтиленимин, внос т в суспензию до конечной концентрации 0,05 - 0,1%, а отстаивание провод т при температуре 1- 15°СирН6-8.In order to increase the viability of microorganisms, polyethyleneimine is used as an auxiliary substance, they are introduced into the suspension to a final concentration of 0.05 - 0.1%, and sedimentation is carried out at a temperature of 1-15 ° СрН6-8.
SU884505320A 1988-12-20 1988-12-20 Method of bacterial spore concentration RU1792969C (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU884505320A RU1792969C (en) 1988-12-20 1988-12-20 Method of bacterial spore concentration

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU884505320A RU1792969C (en) 1988-12-20 1988-12-20 Method of bacterial spore concentration

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU1792969C true RU1792969C (en) 1993-02-07

Family

ID=21406762

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU884505320A RU1792969C (en) 1988-12-20 1988-12-20 Method of bacterial spore concentration

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU1792969C (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
J. Biol. Chemistry, 1981, v. 256, р. 7557; Авторское свидетельство СССР :№ 835170, кл. С .12 N 1/02, 1983. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Edward The pleuropneumonia group of organisms: a review, together with some new observations
Herbert et al. Crystalline bacterial catalase
Robinson The laboratory diagnosis of human parasitic amoebae
Müller et al. Lectin, a possible basis for symbiosis between bacteria and sponges
Avery et al. Studies on the chemical nature of the substance inducing transformation of pneumococcal types. Inductions of transformation by a desoxyribonucleic acid fraction isolated from pneumococcus type III.
US20060134729A1 (en) Process for the universal detection of microorganisms and reaction environment permitting the implementation of the process
JPS60176580A (en) Culture of freeze drying microorgansim
EP2027263B1 (en) Process for separating and determining the viral load in a pancreatin sample
Newton et al. Chromatium cytochrome
Pate et al. Asticcacaulis biprosthecum sp. nov. Life cycle, morphology and cultural characteristics
Tomlinson et al. Nematode biochemistry: I. Culture methods
Heckman et al. Trout leukocytes: growth in oxygenated cultures
Baveja et al. Isoenzyme studies of Giardia lamblia isolated from symptomatic cases
RU1792969C (en) Method of bacterial spore concentration
RU2491341C2 (en) New method for recovery and viral load test in pancreatine sample
JP7317464B2 (en) Test method for the presence or absence of mycoplasma
US3072538A (en) Isolation of bacteria
Rushizky et al. Ribonuclease-sensitive infectious units from tomato bushy stunt virus
Masker et al. Bacteriophage T7 deoxyribonucleic acid replication in vitro: VI. Synthesis of biologically active T7 DNA
CN110713535B (en) Production system and process method for preparing phycocyanin through low-temperature alcohol extraction
Baernstein et al. The rate of reproduction of Entamoeba histolytica in microcultures from inocula of single trophozoites in cell-free medium prepared from embryos of the chick
Rice et al. The concentration, microculture, and sensitivity testing of M. tuberculosis
Sutton et al. The DNA content of Rhizobium (strain NZP 2257) bacteroids and bacteria
RU1238292C (en) Strain of bacterium listeria monocytogenes used for production antigen for forecasting listeriosis
Elnazeer et al. Isolation, excystation and in vitro Culture of Giardia-spp from fecal samples of suspected patients in RPMI media