RU1792597C - Method for fish sperm stimulation - Google Patents
Method for fish sperm stimulationInfo
- Publication number
- RU1792597C RU1792597C SU904799169A SU4799169A RU1792597C RU 1792597 C RU1792597 C RU 1792597C SU 904799169 A SU904799169 A SU 904799169A SU 4799169 A SU4799169 A SU 4799169A RU 1792597 C RU1792597 C RU 1792597C
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- sperm
- fish
- solution
- increase
- activity
- Prior art date
Links
Classifications
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A40/00—Adaptation technologies in agriculture, forestry, livestock or agroalimentary production
- Y02A40/80—Adaptation technologies in agriculture, forestry, livestock or agroalimentary production in fisheries management
- Y02A40/81—Aquaculture, e.g. of fish
Landscapes
- Medicines Containing Material From Animals Or Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Изобретение относитс к промышленном рыбоводству. Изобретение может быт1 использовано дл стимул ции спермы рыб. Цель изобретени - увеличение продолжительности времени поступательного движени и повышени активности сперматозоидов . Дл достижени этой цепи в качестве биологически активного, стимулирующего вещества предложен простагладин - 11-дезоксипр6стагландйн Е (Допростон), разведенный на физрастворе дл пресноводных рыб в концентраций от 0,1 до 1,5 мкг/мл раствора. Использование предло- женногб способа увеличивает активность сперматозоидов рыб в 4-6 раз по сравнению с тактовой дл необработанной спермы . 1 табл. J The invention relates to commercial fish farming. The invention can be used1 to stimulate fish sperm. The purpose of the invention is to increase the length of time for translational motion and increase sperm activity. To achieve this chain, prostagladine 11-deoxypro 6 staglandine E (Doprostone), diluted in saline solution for freshwater fish in concentrations from 0.1 to 1.5 µg / ml, has been proposed as a biologically active, stimulating substance. Using the proposed method increases the sperm activity of fish by 4-6 times compared to the clock cycle for untreated sperm. 1 tab. J
Description
Изобретение относитс к промышленному рыбоводству, в частности к способам искусственного разведени рыб. Изобретение может быть использовано дл стимул - ции спермы рыб.The invention relates to commercial fish farming, in particular to methods for artificial fish farming. The invention can be used to stimulate fish sperm.
|В рыбоводстве известен способ стиму- спермы рыб биологически активными веществами, а именно гибберелином, гете- роауксином или его калиевой солью, пре- дус|{латривающий обработку спермы рыб веществами.| In fish farming, there is a known method for stimulating sperm of fish with biologically active substances, namely gibberelin, heteroauxin or its potassium salt, which is precursor | {that latters the treatment of fish sperm with substances.
Известен способ повышени качества . спермы рыб путем обработки ее водным раствором хлористого кали . Обработка спермы по этому способу эллиминирует слабые сперматозоиды, за счет чего улучшаетс ; качество спермы.A known method of improving quality. sperm of fish by treating it with an aqueous solution of potassium chloride. Sperm processing by this method eliminates weak sperm, thereby improving; sperm quality.
.Известно также использование пара- ами;нобензойной кис л оты-био логически активного вещества дл стимул ции спермы .. It is also known to use para-benzoic acid, a biologically active substance, to stimulate sperm.
Недостатками этих спо.собов вл етс продолжительное выдерживание спермы вThe disadvantages of these methods are the prolonged exposure of sperm to
активирующем растворе и Незначительный активирующий эффект.activating solution and slight activating effect.
Цель изобретени -увеличение продол жительнрсти времени поступательного движени и повышение активности сперматозоидов .. .The purpose of the invention is to increase the length of time of translational motion and increase sperm activity ...
Изобретение осуществл етс следующим образом.The invention is carried out as follows.
Простогландин EI Допростон-В разводили физраствором дл пресноводных рыб до концентрации в нем 11 -дезоксйпростог- ландин EI до 1,5 мкг/мл раствора. Состав физраствора дл пресноводных рыб: NaCI- 7,5 г, КС - 0,2 г, - 0,2 г, ЫаНСОз - 0,2 г, дистиллированной воды до литра. Средство готовили следующим образом: берем исходную ампулу препарата Допростон-В, содержащую 5 мг/мл 11-дезоксипростог- ландина EI и разводим этот препарат физраствором в 10000 раз. Таким образом получаем средство, содержащее 0,5 мкг/мл упом нутого простогландина EI. Стимулирующее действие средства основано на том.Prostoglandin EI Doproston-B was diluted with saline for freshwater fish to a concentration of 11-deoxyprostoglandin EI in it up to 1.5 μg / ml. The composition of saline for freshwater fish is: NaCl - 7.5 g, KS - 0.2 g, 0.2 g, NaHCO3 - 0.2 g, distilled water to a liter. The preparation was prepared as follows: we take the initial ampoule of the Doproston-B preparation containing 5 mg / ml 11-deoxyprostoglandin EI and dilute this preparation with saline 10,000 times. Thus, an agent containing 0.5 µg / ml of said prostoglandin EI is obtained. The stimulating effect of the drug is based on that.
4 Ю ГО СЛ Ю XI4 Yu GO SL Yu XI
что простогландины, вл сь высокоактивными веществами, действуют на клеточном уровне.that prostaglandins, being highly active substances, act at the cellular level.
Хран т средство в прохладном месте.Keep the product in a cool place.
Испытани предлагаемого средства проводили в лабораторных услови х на сперме плотвы, леща и карпа, полученной после гипофизарной инъекции.Tests of the proposed agent were carried out in laboratory conditions on the sperm of roach, bream and carp obtained after pituitary injection.
Сперму отцеживали, общепризнанным в рыбоводстве способом, в сухие пробирки, которые помещали в охлажденный термос и в нем перевозили сперму от рыбоводного хоз йства до лаборатории. Эксперименты ставили следующим образом.Sperm was filtered off, in a manner generally recognized in fish farming, into dry test tubes, which were placed in a cooled thermos bottle and transported semen from the fish farm to the laboratory. The experiments were set as follows.
На чистое сухое предметное стекло наносили каплю стимулирующего раствора глазной пипеткой. В этот раствор с помощью препаровальнрй иглы вносили небольшое количество спермы. Качество спермы и стимул тора было посто нным во всех опытах. Рассчитывали ошибку выборки и достоверность различий с контролем. За контроль принимали активность спермы в отсто нной воде. Сперму помещенную в раствор стимул тора хорошо перемешивают и выдерживают одну минуту. В разбавл ющем растворе сперма остаетс неподвижной . При добавлении к этой разбавленной сперме воды сперматозоиды становились подвижными. С помощью микроскопа МБИ-3 при увеличении 8x10 наблюдали за их поведением при естественном или искусственном освещении, в зависимости от условий эксперимента; Секундомером Агат засекали врем обработки спермы, то есть период выдерживани спермы в растворе разбавител без добавлени простой воды, а также засекали продолжительность поступательного движени сперматозоидов с точностью до 0,2 сек. В качестве контрол использовали поведение спермы от этого же самца в обычной воде без применени простагландинового препарата. О качестве средства судили по поведению спермы после обработки ее препаратом по отношению продолжительности поступательного движени сперматозоидов, обработанных стимулирующим раствором, и необработанных сперматозоидов. ПродолжительностьA drop of a stimulating solution was applied to a clean, dry glass slide with an eye dropper. A small amount of sperm was added to this solution using a dissecting needle. Sperm quality and stimulant were constant in all experiments. The sampling error and the significance of differences with control were calculated. Sperm activity in septic water was taken as a control. Sperm placed in a stimulator solution is well mixed and incubated for one minute. In the dilution solution, the sperm remains stationary. When water was added to this diluted semen, the sperm became motile. Using an MBI-3 microscope, a magnification of 8x10 was used to observe their behavior under natural or artificial light, depending on the experimental conditions; The Agate stopwatch detected the time of sperm processing, i.e. the period of keeping the sperm in the diluent solution without adding simple water, and also recorded the duration of the sperm progression with an accuracy of 0.2 sec. As a control, the behavior of sperm from the same male in ordinary water without the use of a prostaglandin preparation was used. The quality of the agent was judged by the behavior of the sperm after its treatment with the drug in relation to the duration of the progressive movement of sperm treated with a stimulating solution and untreated sperm. Duration
поступательного движени сперматозоидов у необработанной спермы прин та нами за 100%.the translational motion of sperm in untreated sperm was taken by us for 100%.
Пример. Сперма карпа в воде была подвижной 71,3 с. а сперма этого же самца после обработки предлагаемым способом концентрации простагландина 0,6 мкг/мл оставалась подвижной в течение 438,8 с, таким образом: 71,3 с составл ет 100%, аExample. Carp semen in water was motile 71.3 s. and the sperm of the same male after treatment with the proposed method, the concentration of prostaglandin 0.6 μg / ml remained mobile for 438.8 s, thus: 71.3 s is 100%, and
438,8 с составл ет Х%,438.8 s is X%,
отсюда X -. 4388, 1°° 615.4%, то естьfrom here X -. 4388, 1 °° 615.4%, i.e.
/1 ,о/ 1, o
продолжительность поступательного движени сперматозоидов после обработки спермы простагландином увеличилась более чем в 6 раз.the duration of sperm movement after sperm treatment with prostaglandin increased by more than 6 times.
В таблице приведены результаты испытани предлагаемого способа на плотве, леще и карпе. При высоких концентраци х простагландина от 5000 до 300 мкг/мл раствора сперматозоиды остаютс неподвижными и погибают. При использовании простагландина в концентраци х от 300 доThe table shows the test results of the proposed method on roach, bream and carp. At high concentrations of prostaglandin from 5000 to 300 µg / ml, the spermatozoa remain motionless and die. When using prostaglandin in concentrations from 300 to
100 мкг/мл активными станов тс 10-20% всех сперматозоидов. В опытах при использовании простогландина в концентраци х от 10 до 5 мкг/мл раствора активными станов тс 50-70% всех сперматозоидов. В100 µg / ml, 10-20% of all sperm cells become active. In experiments using prostoglandin in concentrations of 10 to 5 µg / ml of solution, 50-70% of all sperm cells become active. AT
опытах с использованием простагландина в концентрации от 1,5 до 0,1 мкг/мл раствора отмечаетс значительное увеличение периода поступательного движени сперматозоидов . Дальнейшее снижение концентрации простагландина ведет к тому, что сперматозоиды станов тс подвижными уже в растворе разбавител , что вл етс отрицательным моментом, так как это ведет к уменьшению периода поступательногоIn experiments using prostaglandin at a concentration of from 1.5 to 0.1 µg / ml of solution, a significant increase in the period of translational movement of spermatozoa was noted. A further decrease in the concentration of prostaglandin leads to the fact that spermatozoa become mobile already in the diluent solution, which is a negative point, since this leads to a decrease in the period of translational
движени сперматозоидов. Наилучший результат получен от использовани препарата с концентрацией 0,6 мкг/мл раствора. Оптимальна концентраци простаглэнди- на от 0,01 до 1,5 мкг/мл раствора. Предлагаемый способ позвол ет увеличить продолжительность времени поступательного движени и повысить активность сперматозоидов .sperm motions. The best result was obtained from the use of a preparation with a concentration of 0.6 µg / ml of solution. The optimal concentration of prostaglandin is from 0.01 to 1.5 µg / ml of solution. The proposed method allows to increase the length of time of translational motion and increase sperm activity.
Claims (1)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU904799169A RU1792597C (en) | 1990-03-05 | 1990-03-05 | Method for fish sperm stimulation |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU904799169A RU1792597C (en) | 1990-03-05 | 1990-03-05 | Method for fish sperm stimulation |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU1792597C true RU1792597C (en) | 1993-02-07 |
Family
ID=21500308
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU904799169A RU1792597C (en) | 1990-03-05 | 1990-03-05 | Method for fish sperm stimulation |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU1792597C (en) |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102125544A (en) * | 2010-12-17 | 2011-07-20 | 暨南大学 | Inducer for activating expression of fish lipid metabolism control gene and application thereof |
-
1990
- 1990-03-05 RU SU904799169A patent/RU1792597C/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Авторское свидетельство СССР № 1}269770, кл. А 01 К 61/00, 1983. * |
Cited By (1)
Publication number | Priority date | Publication date | Assignee | Title |
---|---|---|---|---|
CN102125544A (en) * | 2010-12-17 | 2011-07-20 | 暨南大学 | Inducer for activating expression of fish lipid metabolism control gene and application thereof |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
Nozaki et al. | Salmonid pituitary gonadotrophs II. Ontogeny of GTH I and GTH II cells in the rainbow trout (Salmo gairdneri irideus) | |
Lynn et al. | The thyroid gland and its functions in cold-blooded vertebrates | |
Saga et al. | Salmonid pituitary gonadotrophs, III. Chronological appearance of GTH I and other adenohypophysial hormones in the pituitary of the developing rainbow trout (Oncorhynchus mykiss irideus) | |
Dales et al. | Effects of thyroxine and thiourea on the early development of chum salmon (Oncorhynchus keta) | |
Rothschild | Sea‐urchin spermatozoa | |
Dawes | Maintenance in vitro of Fasciola hepatica | |
DE69132835T2 (en) | Process for inhibiting the formation, maturation, mobility and viability of sperm with minerals in a bioavailable form | |
Post | Carbonic acid anesthesia for aquatic organisms | |
Tan-Fermin et al. | Seminal plasma composition, sperm motility, and milt dilution in the Asian catfish Clarias macrocephalus (Gunther) | |
Cambré et al. | Chronological appearance of the different hypophysial hormones in the pituitary of bass larvae (Dicentrarchus labrax) during their early development: an immunocytochemical demonstration | |
Brillard et al. | Possible causes of subfertility in hens following insemination near the time of oviposition | |
Durotoye et al. | Stimulation of the production of progesterone by the corpus luteum of the ewe by the perfusion of melatonin in vivo and by treatment of granulosa cells with melatonin in vitro | |
RU1792597C (en) | Method for fish sperm stimulation | |
Byrne et al. | Effects of a cationic detergent on the gills and blood chemistry of rainbow trout Salmo gairdneri | |
Douvres et al. | In vitro cultivation of Ostertagia ostertagi, the medium stomach worm of cattle. I. Development from infective larvae to egg-laying adults | |
Goos et al. | Hypothalamic neurosecretion and metamorphosis in Xenopus laevis: I. The effect of propylthiouracil | |
RU1805844C (en) | Physiological salt solution for fishes | |
Leone | Ergothioneine in the equine ampullar secretion | |
Rogers | The reversible inhibition of exsheathment in some parasitic nematodes | |
Ohta et al. | Induction of sperm maturation | |
Yasuraoka et al. | In vitro cultivation of the heterophid trematode, Metagonimus yokogawai, from the metacercaria to adult | |
Lazarus et al. | Uptake of phenothiazine labelled with sulphur-35 by the tissues of nematode parasites and their hosts | |
KUTSUMI et al. | Effect of thiabendazole as an ovicide on helminth eggs in nightsoil | |
Iuchi et al. | Mode of Action of some Stimulants of the Hatching Enzyme Secretion in Fish Embryos* (hatching/secretion/fish embryo/Medaka) | |
WO2019041730A1 (en) | Colorless iodine disinfectant for pets, preparation method therefor, and usage method thereof |