RU1789525C - Способ очистки ингибиторов протеаз из морской анемоны - Google Patents

Способ очистки ингибиторов протеаз из морской анемоны

Info

Publication number
RU1789525C
RU1789525C SU894763976A SU4763976A RU1789525C RU 1789525 C RU1789525 C RU 1789525C SU 894763976 A SU894763976 A SU 894763976A SU 4763976 A SU4763976 A SU 4763976A RU 1789525 C RU1789525 C RU 1789525C
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
inhibitor
inhibitors
purification
protease inhibitors
concentration
Prior art date
Application number
SU894763976A
Other languages
English (en)
Inventor
Планес Мария Де Лос Ангелес Чавес
Кабрера Илеана Мартинез
Гарсиа Хулиета Дельфин
Брито Хоакин Диаз
Брето Маргарита Маркес
Гонзалес Ямиле Гонзалес
Наталья Ивановна Ларионова
Новелла Федоровна Казанская
Original Assignee
МГУ им.М.В.Ломоносова
Гаванский Университет
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by МГУ им.М.В.Ломоносова, Гаванский Университет filed Critical МГУ им.М.В.Ломоносова
Application granted granted Critical
Publication of RU1789525C publication Critical patent/RU1789525C/ru

Links

Landscapes

  • Peptides Or Proteins (AREA)
  • Medicines Containing Plant Substances (AREA)
  • Medicines That Contain Protein Lipid Enzymes And Other Medicines (AREA)

Description

можности выделени  ингибиторов более широкого спектра действи .
Поставленна  цель достигаетс  предложенным способом, состо щим в том, что провод т гомогенизацию морской анемо- ны Stoichactis nelianthus, экстракцию, обработкуэкстракта раствором трихлоруксусной кислоты до ее конечной концентрации 5-10%, афиинную хроматог- рафию на трипсин-сефарозе в бикарбонат- ном или трис-HCi буфере 0,01-0,05 М в присутствии одновалентной соли в концентрации 0,2-0,5М и ионов Са+2 10-30 т.М, элюируют ингибитор раствором хлористого кали  в концентрации 0,5-1 М с рН 1,7-2, В качестве одновалентной соли могут быть использованы различные растворимые одновалентные соли, которые служат лишь дл  создани  в раств орах ибнном силы, ра вной 0,2-0,5. 8 частности, такими сол ми могут быть дешевые, доступные и стабильные реагенты . Наиболее часто примен емые в аффинной хроматографи .-г, СГ,- ШОз, KB г, NH4N03, NH4CI. NaCI. NaBr. NaF, NaNOa.
Отличием предлагаемого способа  вл - етс  использование в качестве исходного сырь  дл  получени  ингибиторов протеаз морской анемоны Stoichactis nslianthus. обработка экстракта раствором трихлоруксусной кислоты в конечной концентрации 5-10%, осуществление аффинной хроматог- рафии на трипсин-сефарозе в бикарбонат- ном или трис-НСГ буфере 0,01-0,05М в присутствии одновалентной соли в концентрации 0,2-0,5М и ионов 10-30 тМ, элюирование ингибитора раствором кали  в концентрации 0.5-1М с рН 1,7-2.
Использование в качестве исходного сырь  морской анемоны Stoichactis melianthus обеспечивает получение инги- битеров протеаз широкого спектра действи , способных ингибировать три основных типа протеаз: сериновые (трипсин), цистеи- новые (бромелаин) и аспартильные (пепсин )..Предлагаема  строга  последовательность стадии очистки: обработка трихлоруксусной кислотой в конечной концентрации 5-10%, аффинна  хромчтографи  на трипсин-сефарозе в би- карбонатном или трис-HCI буфере 0,01- 0.05М в присутствии одновалентной соли в концентрации 0.2-0,5М и ионов 10730 .тМ, элюирование ингибитора раствором хлористого кали  в концентрации 0,5-Ш с рН 1,7-2, обеспечивают повышение выхода ингибиторов до 150-200% и получение высокой степени очистки, более 90% активного ингибитора от веса препарата. Проведение элюировани  ингибитора рас- твор ом КСГс ,7 пр йвЬ д т;1г сГнйжё нйю
0
0 5 0
5 5
0 5 0 5
активности ингибитора из-за его нестабиль-- ности в сильно кислой среде, а использовав ние раствора с приводит к уменьшению выхода.
Эта последовательность стадий обеспечивает разрушение комплексов ингибиторов с протеазами на начальном этапе, что дает выход, превышающий 100%, и благо-,, при тствует эффективному взаимодействию ингибиторов с трипсином при проведении аффинной хроматографии на трипсин-сефарозе. При аффинной хроматографии осуществл ют удаление всех других белков, включа  токсины,, содержащихс  в экстракте морской анемоны , и получение ингибиторов в виде одного- пика. В некоторых случа х эта смесь инги-- « биторов может быть непосредственно использована . ИспЫ ьзаван й е на стадии системы равновесной элюции, котора  сочетает в себе бикарбонатный буфер или трис-HCI от 0,01 до 0,05 М в присутствии,.-,; одновалентной соли и ионов Са от 10 до 30 тМ при рН 8, с последующей заменой элю- ирующего буфера на кислый раствор с рН 1,7-2, содержащий хлористый калий в концентрации 0,5-1 М, позвол ет получить выход свыше 100%, содержание активных ингибиторов в препарате 50-70% (коммер- . ческий уровень).
Смесь ингибиторов может быть эффективно разделена при однократной гель- фильтрации на сефадексе G-50. При этом получают каждый ингибитор в отдельности и используют, если того требует применение , препарат более высокой ингибирую- щей способности. Использование 5-10 % уксусной кислоты в качестве элюэнтдпри хроматографии на сефадексе G-50 вли ет на стабильность, эффективное разделение трех ингибиторов и позвол ет - проводить пр мую лиофилизацию ингибиторов. Выход на этой стадии составл ет 90-100%. Основной ингибиторный пик имеет мол.мае. 9000- 10.000, содержит 93% активного ингибитора от веса препарата, (коммерческий уровень),
Предложенный способ иллюстрируетс  следующими примерами,
Пример 1. Цельные тела морской анемоны Stoichactis helianthus разрезают на маленькие кусочки, гомогенизируют в собственной жидкости, при этом происходит экстракци  ингибитора, центрифугируют . Супернатанты можно хранить до их последующего использовани  либо замороженными при -20° С, либо в лиофилизозан- ном виде.
Полученный экстракт обрабатывают трихлору ксусной кислотой ) до ее конечной концентрации э смеси, равной 5%. Осадки, полученные после центрифугировани , промывают ТХУ. Обьединенные супер- натанты диализуют s течение 24 ч против буфера, использующегос  при аффинной хромэтографии, причем в начале диализа замену буфера производ т через каждый час. Эта обработка позвол ет получить выход по ингибирующей активности от 100 до 150% по отношению к начальному экстрак-
ту.
Аффинную хроматографию на трипсин- сефарозе, содержащей 5-3 мг трипсина на 1 мл гел  сефэрозы, осуществл ют в бикар- бонатном или трис-Н CI буфере 0,01М з при- сутствии одновалентной соли 0.2М и ионов Сз+2 10 тМ при рН 7,3-8. После элюирова- ни  первой белковой фракции провод т за- .мену элюирующего буфера на кислый растзор, с рН 1,7, содержащий хлористый калий в концентрации 0.5М. Это дает выход 150% по отношению к начальному этапу. Фракции, содержащие ингибиторную активность , диализуют против 5% уксусной кислоты, а затем лисфилизуют. Лиофилизо- ванный препарат, содержащий 50% активного ингибитора, раствор ют в 5%-нсм растворе уксусной кислоты и подвергают гельхроматографии на сефадексе G-50, уравновешенном уксусной кислотой 5%. Гельхромзтографи  позвол ет осуществить разделение трех изоингибиторов различного молекул рного аеса. Основной ингиби- тбрный пик с молекул рной массой 9000 получаетс  с выходом 90% от общей инги- бирующей зктиэности и уровнем активности 93%. Его аминокислотный состав указан в табл. 1.
П р и м е р 2. Выделение и очистка ингибитора из морской анемоны проведены
с такой же последовательностью стадии, как и в примере 1, с той лишь разницей, что в качестве одновалентной соли использовали растворО.ЗБМ КС). Выход ингибитора 150%. После проведени  гельхроматогрзфии на сефадексе G-50 препарат с м.м. 9000 содержит 93% активного ингибитора от веса препарата . Остальные примеры проведены с такой же последовательностью стадии, что описаны в примере 1.
Результаты примеров приведены в табл.2.
Ингибиторы протеаз, полученные этим способом, имеют функциональные свойства , не описанные ранее в специализированной литературе, т.е. каждый ингибитор в отдельности может ингибироззть широкий спектр протеолитических ферментов. Из трех очищенных ингибиторов, фракци  с мол. массой 9000 и изоэлектричесхой точкой 8,4,  вл етс  основной из-за своей высокой ингибирующей активности против трех ранее упом нутых протеолитичесхмх ферментов . Тщательное исследование этого ингибитора показывает следующие его свойства: очень высока  ингибирующа  активность по отношению к трипсину и плаз- мину (+++), высока  ингибирующа  активность по отношению к химотрипсину, папаину и бромелаину (++), ингибирующа  активность средней силы по отношению к пепсину, химозину и кислой протеазе из Mucor miehei (+}. слабое ингибирование зла- стазы гранулоцитоа ().
Таким образом, предложенный способ по сравнению с прототипом позвол ет получить ингибиторы протеаз с широкой специфичностью с повышением выхода до 150% и содержанием активного вещества около 90%.
Ф о р м у л а и з о б р е т е н и  
Способ очистки ингибиторов протеаз из морской анемоны, предусматривающий го- -могениззцию тела животного, экстракцию ингибиторов, хроматографию и гель-хрома- тографию на сефадексе С-50, отличающийс  тем, что, с целью повышени  выхода ингибиторов и обеспечени  возможности выделени  ингибиторов более широкого спектра действи , используют морскую анемону
mpafraarpZfii-. и
r-- -vryrrv
вида Stoichactis helianthus, полученный экстракт обрабатывают раствором трихлорук- сусной кислоты до ее конечной концентрации 5-10%, осуществл ют аффинную хромзтографию на трипсинсефаро- зе в 0,01-0,05 М бикарбонатном или трис-HCl буфере з присутствии одновалентной соли в концентрации 0,2-0,5 М и ионов Сат2 в концентрации 10-30 мМ и элюируют ингибитор раствором хлористого кали  в концентрации 00.5-1 М с рН 1,7-2.
Аминокислотный состав ингибитора протеаз (м.м 9 кД)
Вли ние услови  обработки и проведени  аффинной хроматографии экстракта на результаты очистки
Таблица 1
Таблица2
SU894763976A 1988-12-12 1989-11-28 Способ очистки ингибиторов протеаз из морской анемоны RU1789525C (ru)

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
CU1988200A CU22054A1 (es) 1988-12-12 1988-12-12 Matodo de purificacion de inhibidores de proteasas de anamona marina staichactis heliantus y el producto asi obtenido

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU1789525C true RU1789525C (ru) 1993-01-23

Family

ID=5459533

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU894763976A RU1789525C (ru) 1988-12-12 1989-11-28 Способ очистки ингибиторов протеаз из морской анемоны

Country Status (2)

Country Link
CU (1) CU22054A1 (ru)
RU (1) RU1789525C (ru)

Also Published As

Publication number Publication date
CU22054A1 (es) 1993-04-30

Similar Documents

Publication Publication Date Title
Gutiérrez et al. Isolation and characterization of a metalloproteinase with weak hemorrhagic activity from the venom of the snake Bothrops asper (terciopelo)
Barrett Human cathepsin B1. Purification and some properties of the enzyme
Rindler-Ludwig et al. Cationic proteins from human neutrophil granulocytes evidence for their chymotrypsin-like properties
Blombäck Fibrinogen to fibrin transformation
Kincaid et al. Differential expression of calmodulin-binding proteins in B, T lymphocytes and thymocytes
US5270176A (en) Method for the selective cleavage of fusion proteins with lysostaphin
Jahngen et al. Aging and cellular maturation cause changes in ubiquitin-eye lens protein conjugates
Baba et al. Activation of boar proacrosin is effected by processing at both N‐and C‐terminal portions of the zymogen molecule
McLay Activities of cathepsins A and D in cod muscle
Barrabin et al. Isolation and characterization of gyroxin from Crotalus durissus terrificus venom
Geiger et al. The inhibition of human gingival collagenase by an inhibitor extracted from human teeth
RU1789525C (ru) Способ очистки ингибиторов протеаз из морской анемоны
De Haen et al. Isolation and amino-terminal sequence analysis of a new pancreatic trypsinogen of the African lungfish Protopterus aethiopicus
Takahashi et al. Distribution of proteinase inhibitors in snake venoms
Green et al. The purification and properties of a single chicken pepsinogen fraction and the pepsin derived from it
AU618035B2 (en) A method for the selective cleavage of fusion proteins
牧之段保夫 et al. Studies on fish muscle protease. VI. Separation of carp muscle cathepsins A and D, and some properties of carp muscle cathepsin A.
JEANNERET et al. Carboxypeptidase N from pig serum
Nakar et al. Isolation and characterization of a proteolytic factor from the venom of Vipera palaestinae
Fritz et al. Trypsin-plasmin inhibitors from leeches: Isolation, amino acid composition, inhibitory characteristics
Ward Properties of the major carboxypeptidase in the larvae of the webbing clothes moth, Tineola bisselliella
Cotter et al. Purification and characterisation of an ‘elastase-like’enzyme from rabbit polymorphonuclear leucocytes
Srivastava Characterization of a highly purified membrane proteinase from bovine lens
Nagasawa et al. A simple method for purification of bovine plasminogen
Moroz-Perlmutter et al. Biochemical and antigenic properties of a purified neurotoxin of Vipera palestinae venom