RU1554377C - Method of purifying alkaline phosphatase - Google Patents

Method of purifying alkaline phosphatase

Info

Publication number
RU1554377C
RU1554377C SU884364063A SU4364063A RU1554377C RU 1554377 C RU1554377 C RU 1554377C SU 884364063 A SU884364063 A SU 884364063A SU 4364063 A SU4364063 A SU 4364063A RU 1554377 C RU1554377 C RU 1554377C
Authority
RU
Russia
Prior art keywords
alkaline phosphatase
enzyme
buffer
activity
chloride
Prior art date
Application number
SU884364063A
Other languages
Russian (ru)
Inventor
И.Ю. Сахаров
И.Е. Макарова
Э.А. Аренс
В.М. Лахтин
Г.А. Ермолин
Original Assignee
Всесоюзный Научно-Исследовательский Институт Прикладной Биохимии Научно-Производственного Объединения "Биолар" Ан Ссср
Научно-исследовательская лаборатория биологически активных веществ гидробионтов
Институт биохимии им.А.Н.Баха
Всесоюзный кардиологический научный центр АМН СССР
Priority date (The priority date is an assumption and is not a legal conclusion. Google has not performed a legal analysis and makes no representation as to the accuracy of the date listed.)
Filing date
Publication date
Application filed by Всесоюзный Научно-Исследовательский Институт Прикладной Биохимии Научно-Производственного Объединения "Биолар" Ан Ссср, Научно-исследовательская лаборатория биологически активных веществ гидробионтов, Институт биохимии им.А.Н.Баха, Всесоюзный кардиологический научный центр АМН СССР filed Critical Всесоюзный Научно-Исследовательский Институт Прикладной Биохимии Научно-Производственного Объединения "Биолар" Ан Ссср
Priority to SU884364063A priority Critical patent/RU1554377C/en
Application granted granted Critical
Publication of RU1554377C publication Critical patent/RU1554377C/en

Links

Landscapes

  • Enzymes And Modification Thereof (AREA)

Abstract

Изобретение относитс  к биохимии, а именно к способам очистки щелочной фос- фатазы тонкого кишечника тюлен . Цель изобретени  - повышение активности фермента . Раствор, содержащий фермент, хро- матографируют на конканавалине А, иммобилизованном на сополимере оксиэ- тилметакрилата и зтилендиметакрилатэ. Сорбцию провод т раствором 20 мМ трис- HCI буфера рН 7,5, содержащего 0,4-0,6 М хлористый натрий, 1 мМ хлористый кальций, 1 мМ хлористый марганец и 1--20 мМ хлористый магний. Элюирование целевого продукта осуществл ют той же буферной системой, дополнительно содержащей 50 мМ -метил-О-маннопирановид, с линейной скоростью 30-100 см/ч. Способ позвол ет получать щелочную фосфатазу с удельной активностью 3000-3500 ед/мг белка. сл СThe invention relates to biochemistry, and in particular to methods for the purification of alkaline phosphatase of the small intestine of seals. The purpose of the invention is to increase the activity of the enzyme. The enzyme-containing solution is chromatographed on concanavalin A immobilized on a copolymer of hydroxyethyl methacrylate and ztilendimethacrylate. Sorption is carried out with a solution of 20 mM Tris-HCI pH 7.5 buffer containing 0.4-0.6 M sodium chloride, 1 mM calcium chloride, 1 mM manganese chloride, and 1--20 mM magnesium chloride. Elution of the target product is carried out with the same buffer system, optionally containing 50 mM-methyl-O-mannopyranoids, with a linear speed of 30-100 cm / h. The method allows the production of alkaline phosphatase with a specific activity of 3000-3500 u / mg protein. sl c

Description

Изобретение относитс  к получению очищенной щелочной фосфатазы животного происхождени , котора  находит применение в генной инженерии, иммуногистохими- ческих процедурах и иммуноферментном анализе, научно-исследовательской работе.The invention relates to the production of purified alkaline phosphatase of animal origin, which is used in genetic engineering, immunohistochemical procedures and enzyme immunoassay, scientific research.

Цель изобретени  - повышение активности препарата щелочной фосфатазы.The purpose of the invention is to increase the activity of an alkaline phosphatase preparation.

Изобретение осуществл ют следующим образом.The invention is carried out as follows.

120мг коммерческого препарата щелочной фосфатазы тюлен  с удельной активностью , равной 58-60 ед. на 1 мг белка, раствор ют в 20 мМ трис-HCI, рН 7,4, содержащего 1-20 мМ MgCb, 1 мМ СаС, 1 мМ120 mg of a commercial preparation of alkaline phosphatase seals with a specific activity of 58-60 units. per 1 mg of protein, dissolved in 20 mm Tris-HCI, pH 7.4, containing 1-20 mm MgCb, 1 mm CaC, 1 mm

MnCl2, 0,5 М NaCI. Раствор фермента нанос т на колонку с конканавалином А, иммобилизованным на сополимере оксиэ- тилметакрилата и этилендиметилметакри- лата, уравновешенную тем же буфером. После отмывки колонки фермент элюируют стартовым буфером, дополнительно содержащим 50 мМ а-метил-О-маннопиранозида. Все хроматографические процедуры провод т при 4°С. Скорость элюции 30-100 см/ч. Активные фракции объедин ют и определ ют ферментативную активность по п-нитро- фенилфосфату и концентрацию белка по Лоури, Способ позвол ет получить препараты щелочной фосфатазы тюлен  с удельнойMnCl2, 0.5 M NaCI. The enzyme solution is applied to a column of concanavalin A immobilized on a copolymer of hydroxyethyl methacrylate and ethylene dimethyl methacrylate, equilibrated with the same buffer. After washing the column, the enzyme is eluted with a start buffer additionally containing 50 mM a-methyl-O-mannopyranoside. All chromatographic procedures were carried out at 4 ° C. The elution rate is 30-100 cm / h. The active fractions are combined and the enzymatic activity of p-nitrophenylphosphate and protein concentration are determined according to Lowry. The method allows the preparation of alkaline phosphatase seals with specific

сл слnext word

I со vi VJI with vi VJ

31-гинног 11,ю. 3300 ЗБОО РД/МГ белка Применение в ачег.тве полимерного носител  сополимера оксиэтилметакрилзга и этилендимеглкрил та позвол ет повысить степень разделени  смеси веро тно вследствие дополнительных различий в силе гидрофобных взаимодействий матрицы носител  с присутствующими в раздел емой смеси белками и одновременно заметно увеличить линейную скорость элюции, что сокращает продолжительность хрома- тографического цикла и продолжительность воздействи  инактивирующих факторов.31-ginnog 11, ju. 3300 ZBOO RD / MG protein. The use of hydroxyethyl methacrylzene and ethylene dimethyl crystallite copolymer in polymer carrier allows one to increase the degree of separation of the mixture, probably due to additional differences in the strength of hydrophobic interactions of the carrier matrix with the proteins present in the separated mixture and, at the same time, significantly increase the linear elution rate, which reduces the duration of the chromatographic cycle and the duration of exposure to inactivating factors.

Верхн   граница скорости элюирова- ни  100 см/ч обусловлена снижением степени очистки препарата, тогда как нижн   граница (30 см/ч) - снижением количества перерабатываемого сырь  из-за увеличени  продолжительности хроматографического цикла.The upper limit of the elution rate of 100 cm / h is due to a decrease in the degree of purification of the preparation, while the lower limit (30 cm / h) is due to a decrease in the amount of processed raw materials due to an increase in the duration of the chromatographic cycle.

Неспецифическое св зывание удаетс  предотвратить в присутствии 0,4-0,6 NaCI, При понижении концентрации NaCI ниже 0,4 М наблюдаетс  понижение удельной активности целевого продукта. Повышение концентрации NaCI в буферном растворе не приводит к какому-нибудь заметному улучшению качествп щелочной фосфзтазы.Non-specific binding can be prevented in the presence of 0.4-0.6 NaCI. With a decrease in NaCI concentration below 0.4 M, a decrease in the specific activity of the target product is observed. An increase in the concentration of NaCI in the buffer solution does not lead to any noticeable improvement in the quality of alkaline phosphatase.

Добзп.-,ение 1-20 м№ McjCh в злюатную систему при десорбции способствует стаби- активной тетрамерной формы щелочной Фосфэтазы тюлен . Верхн   граница концентрации хлористого магни  20 мМ обусловлена снижением селективности разделени  и уменьшением значени  активности полового продукта, нижн   граница 1 - уменьшением стабильности и активности фермента. Активность целевого продукта до ЗЗСО-3500 ед/мг балка.The addition of 1–20 m№ McjCh to the zlate system during desorption promotes the stable tetrameric form of alkaline phosphatase seals. The upper limit of the concentration of magnesium chloride of 20 mM is due to a decrease in the selectivity of separation and a decrease in the activity of the reproductive product, the lower limit 1 is due to a decrease in the stability and activity of the enzyme. The activity of the target product to ZZSO-3500 u / mg beam.

Пример 1. 120 мг коммерческого препарата щелочной фосфатазы тюлен  с удегьной активностью, равной 58 ед/мг белка, раствор ют в 40 мл 20 мМ трис-НС1, рН 7,4, содержащего 10 мМ MgCh, 1 мМ MnCl2. 1 мМ CaCl2. 0,5 М NaCI (буфер А). Раствор фермента нанос т на колонку скон- канавалином А, иммобилизованным на сополимере оксиэтиленметакрилата и этилендиметакрилата (26x94 мм), уравновешенную буфером А, и отмывают тем же буфером до А280. равной 0,01-0,03. Фермент элюируют стартовым буфером, содержащим 50 мМ а-метил-О-мэннопиранозида. Хроматографию провод т при 4°С. Скорость элюции - 50 см/ч. Фракции, содержащие ферментативную активность, объедин ют и диализуют против буфера А без МпСЬ и СэС1з. Активность полученного препарата щелочной фосфатазы равна 3500 ед/мг белка.EXAMPLE 1 120 mg of a commercial preparation of alkaline phosphatase seals with a fugitive activity of 58 u / mg protein are dissolved in 40 ml of 20 mM Tris-HCl, pH 7.4, containing 10 mM MgCh, 1 mM MnCl2. 1 mM CaCl2. 0.5 M NaCl (buffer A). The enzyme solution was applied to the column with concavalin A immobilized on a copolymer of hydroxyethylene methacrylate and ethylene dimethacrylate (26x94 mm), equilibrated with buffer A, and washed with the same buffer to A280. equal to 0.01-0.03. The enzyme is eluted with start buffer containing 50 mM a-methyl-O-mannopyranoside. Chromatography was performed at 4 ° C. The elution rate is 50 cm / h. Fractions containing enzymatic activity are pooled and dialyzed against buffer A without MpCb and CeCl3. The activity of the obtained alkaline phosphatase preparation is equal to 3500 units / mg protein.

Пример 2. 15 мг коммерческого препарата щелочной фосфатазы тюлен  с удельной активностью 58 ед/мг белка раствор ют в 5 мл 20 мМ трис-HCI, рН 7,4,Example 2. 15 mg of a commercial alkaline phosphatase seal preparation with a specific activity of 58 u / mg protein was dissolved in 5 ml of 20 mM Tris-HCI, pH 7.4.

содержащего 1 мМ MgCl2, 1 мМ MnCl2, 1 мМ 0,5 М NaCI (буфер Б). Раствор фермента нанос т на колонку с конканавалином А, иммобилизованным на сополимере оксиэ- тилметакрилата и этилендиметакрилатаcontaining 1 mm MgCl2, 1 mm MnCl2, 1 mm 0.5 M NaCl (buffer B). The enzyme solution is applied to a column of concanavalin A immobilized on a copolymer of hydroxyethyl methacrylate and ethylene dimethacrylate

(9x91 мм), уравновешенную буфером Б и отмывают тем же буфером до А280 0,01-0,03. Фермент элюируют стартовым буфером, содержащим 50 мМ метил-0-маннопиранози- да. Хроматографию провод т при 4°С.(9x91 mm), balanced with buffer B and washed with the same buffer to A280 0.01-0.03. The enzyme is eluted with a start buffer containing 50 mM methyl-0-mannopyranoside. Chromatography was performed at 4 ° C.

Скорость элюции 30 см/ч. Фракции, содержащие ферментативную активность, объедин ют и диализуют против буфера А без MnCl2 и CaCl2- Активность полученного препарата щелочной фосфатазы равна 3300Elution rate 30 cm / h. Fractions containing enzymatic activity are combined and dialyzed against buffer A without MnCl2 and CaCl2. The activity of the obtained alkaline phosphatase preparation is 3300

ед/мг белка.u / mg protein.

Пример 3. 120 мг коммерческого препарата щелочной фосфатазы тюлен  с удельной активностью 58 ед/мг белка раствор ют в 40 мл 20 мМ трис-HCI, рН 7.4,Example 3. 120 mg of a commercial preparation of alkaline phosphatase seals with a specific activity of 58 units / mg protein was dissolved in 40 ml of 20 mM Tris-HCI, pH 7.4,

содержащего 20 мМ MgCte, 1 мМ MnCl2, 1 мМ , 0,5 М NaC (буфер С). Раствор фермента нанос т на колонку с конканавалином А, иммобилизованным на сополимере оксиэтилметакрилата и этилендиметакрилата (26x94 мм), уравновешенную буфером С, и отмывают тем же буфером до А280, равной 0,01-0,03. Фермент элюируют стартовым буфером, содержащим 50 мМ метил-О-маннопиранозида. Хроматографию провод т при 4°С. Скорость элюции 100 см/ч. Фракции, содержащие ферментативную активность, объедин ют и диализуют против буфера А без и CaCl2. Активность полученного препаратаcontaining 20 mM MgCte, 1 mM MnCl2, 1 mM, 0.5 M NaC (buffer C). The enzyme solution was applied to a column of concanavalin A immobilized on a copolymer of hydroxyethyl methacrylate and ethylene dimethacrylate (26x94 mm), equilibrated with buffer C, and washed with the same buffer to A280 of 0.01-0.03. The enzyme is eluted with a start buffer containing 50 mM methyl O-mannopyranoside. Chromatography was performed at 4 ° C. Elution rate 100 cm / h. Fractions containing enzymatic activity were pooled and dialyzed against buffer A without and CaCl2. The activity of the drug

щелочной фосфатазы равна 3370 ед/мг белка .alkaline phosphatase is equal to 3370 u / mg protein.

Пример 4. 15 мг коммерческого препарата щелочной фосфатазы тюлен  с удельной активностью, равной 60 ед/мгExample 4. 15 mg of a commercial preparation of alkaline phosphatase seals with a specific activity of 60 u / mg

белка, раствор ют в 5 мл 20 мМ трис-HCI, рН 7,4, содержащего 0,5 мМ MgCl2,1 мМ MnClz, 1 мМ CaCl2. 0.5 М NaCI (буфер Г)- Раствор фермента нанос т на колонку с конканавалином А, иммобилизованным наprotein, dissolved in 5 ml of 20 mM Tris-HCI, pH 7.4, containing 0.5 mM MgCl2.1 mM MnClz, 1 mM CaCl2. 0.5 M NaCI (buffer D) - The enzyme solution is applied to a column with concanavalin A immobilized on

сополимере оксиэтилметакрилата и этилендиметакрилата (9x91 мм), уравновешенную буфером Г, и отмывают тем же буфером до А280, равной 0,01-0,03. Фермент элюируют стартовым буфером, содержащим 50 мМa copolymer of hydroxyethyl methacrylate and ethylene dimethacrylate (9x91 mm), equilibrated with buffer G, and washed with the same buffer to A280 equal to 0.01-0.03. The enzyme is eluted with start buffer containing 50 mM

а-метил-О-маннопиранозида. Хроматографию провод т при 4°С. Скорость элюции 25 см/ч. Фракции, содержащие ферментативную активность, объедин ют и диализуют против буфера без MnCl2 и CaCl2. Активность полученного препарата щелочной фосфэтазы равна 2500 ед/мг белка.a-methyl-O-mannopyranoside. Chromatography was performed at 4 ° C. Elution rate 25 cm / h. Fractions containing enzymatic activity are pooled and dialyzed against a buffer without MnCl2 and CaCl2. The activity of the obtained alkaline phosphatase preparation is 2500 units / mg protein.

Пример 5. 15 мг к9ммерческого препарата щелочной фосфатазы тюлен  с удельной активностью, равной 55 ед/мг белка, раствор ют в 5 мл 20 мМ трис-НС1, рН 7,4, содержащего 25 мМ MgCl2. 1 мМ MnCl2. 1 мМ CaCl2. 0,5 М NaCI (буфер Д). Раствор фермента нанос т на колонку с конканавалином А, иммобилизованном на сополимере оксиэтилметакрилата и этилен- диметакрилата (9x91 мм), уравновешенную буфером Д и отмывают тем же буфером до А280, равной 0,01-0,03. Фермент элюируют стартовым буфером, содержащим 50 мМ а- метил-О-маннопиранозида. Хроматографию провод т при 4°С, Скорость элюции 105 см/ч. Фракции, содержащие ферментативную активность, объедин ют и диализу- ют против буфера Д без MnCte и CaCte. Активность полученного препарата щелочной фосфатазы равна 2450 ед/мг белка.EXAMPLE 5 15 mg of a 9-commercial alkaline phosphatase seal preparation with a specific activity of 55 u / mg protein is dissolved in 5 ml of 20 mM Tris-HCl, pH 7.4, containing 25 mM MgCl2. 1 mM MnCl2. 1 mM CaCl2. 0.5 M NaCI (buffer D). The enzyme solution was applied to a column of concanavalin A immobilized on a copolymer of hydroxyethyl methacrylate and ethylene dimethacrylate (9x91 mm), equilibrated with buffer D and washed with the same buffer to A280 equal to 0.01-0.03. The enzyme is eluted with start buffer containing 50 mM a-methyl-O-mannopyranoside. Chromatography was performed at 4 ° C. Elution rate 105 cm / h. Fractions containing enzymatic activity are pooled and dialyzed against buffer D without MnCte and CaCte. The activity of the obtained alkaline phosphatase preparation is equal to 2450 units / mg protein.

Пример 6. Препарат щелочной фосфатазы тюлен  очищают в услови х способа-прототипа хроматографией на кон- канавалине А, иммобилизованном на сефа- розе. Дл  сорбировани  фермента и промывки используют буферную систему: 20 мМ трис-HCI рН 7,5, 1 мМ CaCl2, 1 мМ MnCl2. 0,9% NaCI и 0.05% тритона Х-100. Десорбцию и элюирование фермента осуществл ют в той же буферной системе, дополнительно содержащей  -метил-Dманнопирэнозид Р концрмтрлции or нул  до 0,2 М. Линейна  скорость ;)люции 7,5 см/ч. Получают препарат щелочной Фосф.чтазы с удельной активностью 1500 ед/мг белка.EXAMPLE 6 An alkaline phosphatase preparation of seals is purified under the conditions of the prototype method by chromatography on concavalin A immobilized on sepharose. A buffer system is used for sorption of the enzyme and washing: 20 mM Tris-HCI pH 7.5, 1 mM CaCl2, 1 mM MnCl2. 0.9% NaCI and 0.05% Triton X-100. The desorption and elution of the enzyme is carried out in the same buffer system, additionally containing -methyl-D-mannopyranoside Р concentration or zero to 0.2 M. Linear speed;) lucidity 7.5 cm / h. An alkaline phosphatase preparation with a specific activity of 1500 u / mg protein is obtained.

Способ позвол ет получать активный препарат щелочной фосфатазы тюлен  при сокращении продолжительности производительного цикла.The method allows the preparation of an active alkaline phosphatase preparation of seals while shortening the production cycle.

Claims (1)

Формула изобретени  Способ очистки щелочной фосфатазы, предусматривающий хроматографию ферментного препарата из животных тканей на конканавалине А, иммобилизованном на полимерной матрице, при сорбции в буферной системе, содержащей 20 мМ трис-сол - нокислый буфер рН 7,5. хлористый натрий, 1мМ хлористый кальций и 1 мМ хлористый марганец, и элюировании целевого продукта той же буферной системой, дополнительно содержащей 50 мМ оме- тил-0-маннопиранозид, отличающий- с   тем, что, с целью повышени  активности фермента, используют ферментный препарат щелочной фосфатазы из тонкого кишечника тюлен , в качестве полимерной матрицы берут сополимер оксиэтилметакрилата и этилендиметакрилата. в буферную систему дл  сорбции фермента дополнительно ввод т 1-20 мМ хлористого магни , а хлористый натрий используют в концентрации 0,4-0,6 М, элюирование же осуществл ют с линейной скоростью 30-100 см/ч.SUMMARY OF THE INVENTION A method for purifying alkaline phosphatase, which involves chromatography of an enzyme preparation from animal tissues on concanavalin A immobilized on a polymer matrix by sorption in a buffer system containing 20 mM Tris-hydrochloric acid buffer, pH 7.5. sodium chloride, 1 mM calcium chloride and 1 mM manganese chloride, and eluting the target product with the same buffer system additionally containing 50 mM omethyl-0-mannopyranoside, characterized in that, in order to increase the activity of the enzyme, an alkaline enzyme preparation is used phosphatase from the small intestine of seals, as a polymer matrix take a copolymer of hydroxyethyl methacrylate and ethylene dimethacrylate. An additional 1-20 mM of magnesium chloride is added to the buffer system for sorption of the enzyme, and sodium chloride is used at a concentration of 0.4-0.6 M, while elution is carried out at a linear speed of 30-100 cm / h.
SU884364063A 1988-01-14 1988-01-14 Method of purifying alkaline phosphatase RU1554377C (en)

Priority Applications (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU884364063A RU1554377C (en) 1988-01-14 1988-01-14 Method of purifying alkaline phosphatase

Applications Claiming Priority (1)

Application Number Priority Date Filing Date Title
SU884364063A RU1554377C (en) 1988-01-14 1988-01-14 Method of purifying alkaline phosphatase

Publications (1)

Publication Number Publication Date
RU1554377C true RU1554377C (en) 1992-11-07

Family

ID=21349893

Family Applications (1)

Application Number Title Priority Date Filing Date
SU884364063A RU1554377C (en) 1988-01-14 1988-01-14 Method of purifying alkaline phosphatase

Country Status (1)

Country Link
RU (1) RU1554377C (en)

Non-Patent Citations (1)

* Cited by examiner, † Cited by third party
Title
Авторское свидетельство СССР fsb 1218677, кл. С 12 N 9/16, 1984. Jasura S., Nagoka S. Jamashlta T. Namihlsha Т. - Сотр. Blochem. Physlol. 1985, 8213,4pp.587-593. *

Similar Documents

Publication Publication Date Title
US3842061A (en) Method for isolation of antithrombin from animal tissue materials by adsorption on sulfated carbohydrate gel
US4264738A (en) Process for purification of proteolytic enzymes
EP0792281B1 (en) Process for purification of factor viii
US5573936A (en) Process for purifying echinocandin B deacylase
Danishefsky et al. Synthesis of heparin-sepharoses and their binding with thrombin and antithrombin-heparin cofactor
Mattock et al. Partial purification and properties of an enzyme from rat liver that catalyses the sulphation of L-tyrosyl derivatives
US3746622A (en) Composition and process
US4066506A (en) Method of separating and purifying two active forms of urokinase using affinity chromatography
GB2025977A (en) Process for the purification and concentratio of urokinease
RU1554377C (en) Method of purifying alkaline phosphatase
Ramseyer et al. Purification of the cAMP receptor protein by affinity chromatography
Labrou et al. Biomimetic-dye affinity chromatography for the purification of mitochondrial L-malate dehydrogenase from bovine heart
US3926730A (en) Separation and purification of alpha-amylase
JPH0114240B2 (en)
US4100028A (en) Method for purification of proteolytic enzymes
JPS61236726A (en) Purification of plasminogen activator
Scouten [24] Propyl lipoamide glass
Schröder et al. Interaction of polyribosomal components and polyribonucleotides with microtubule proteins
WO1988001294A1 (en) Process for separating single-strand tpa and double-strand tpa from each other
KR830001822B1 (en) Production method of euro kinase
RU1426089C (en) Method of purifying alkaline phosphatese
RU1777951C (en) Method for producing sorbent for separation of fibrous nectine
Brodelius et al. The Utilization of Immobilised Substrate/Product in Affinity Chromatography. A Model Study using a-Chymotrypsin
SU1472504A1 (en) Method of producing immobilized beta-glucosidase
RU2036236C1 (en) Method of purification of alkaline phosphatase from seal intestine