RU1387414C - Recombinant plasmid dna psth 2191 encoding synthesis of human somatotropin, and the strain of escherichia coli - a producer of human somatotropin - Google Patents
Recombinant plasmid dna psth 2191 encoding synthesis of human somatotropin, and the strain of escherichia coli - a producer of human somatotropinInfo
- Publication number
- RU1387414C RU1387414C SU864106294A SU4106294A RU1387414C RU 1387414 C RU1387414 C RU 1387414C SU 864106294 A SU864106294 A SU 864106294A SU 4106294 A SU4106294 A SU 4106294A RU 1387414 C RU1387414 C RU 1387414C
- Authority
- RU
- Russia
- Prior art keywords
- site
- ecori
- strain
- restriction enzyme
- psth
- Prior art date
Links
Images
Classifications
-
- Y—GENERAL TAGGING OF NEW TECHNOLOGICAL DEVELOPMENTS; GENERAL TAGGING OF CROSS-SECTIONAL TECHNOLOGIES SPANNING OVER SEVERAL SECTIONS OF THE IPC; TECHNICAL SUBJECTS COVERED BY FORMER USPC CROSS-REFERENCE ART COLLECTIONS [XRACs] AND DIGESTS
- Y02—TECHNOLOGIES OR APPLICATIONS FOR MITIGATION OR ADAPTATION AGAINST CLIMATE CHANGE
- Y02A—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE
- Y02A50/00—TECHNOLOGIES FOR ADAPTATION TO CLIMATE CHANGE in human health protection, e.g. against extreme weather
- Y02A50/30—Against vector-borne diseases, e.g. mosquito-borne, fly-borne, tick-borne or waterborne diseases whose impact is exacerbated by climate change
Landscapes
- Micro-Organisms Or Cultivation Processes Thereof (AREA)
- Preparation Of Compounds By Using Micro-Organisms (AREA)
Abstract
Description
Изобретение относится к микробиологической и медицинской промышленности, генетической инженерии и биотехнологии, а именно к рекомбинантной плазмидной ДНК, кодирующей вариант соматотропина человека, штамму Escherichia coli, содержащему эту плазмиду , - продуценту соматотропина человека. The invention relates to the microbiological and medical industries, genetic engineering and biotechnology, in particular to recombinant plasmid DNA encoding a variant of human growth hormone, a strain of Escherichia coli containing this plasmid, a producer of human growth hormone.
Цель изобретения состоит в повышении выхода целевого продукта. The purpose of the invention is to increase the yield of the target product.
Повышение выхода соматотропина обеспечивается за счет модификации плазмиды ДНК pSTH 19-I/P-trp так, что последовательность участка, расположенного между trp-промотором и инициирующим ATG-кодоном, встроенным перед последовательностью, кодирующей соматотропин человека (участка инициации трансляции) заменена на другую нуклеотидную последовательность, которая обеспечивает более высокий синтез целевого продукта. The increase in the growth hormone yield is ensured by modifying the pSTH 19-I / P-trp DNA plasmid so that the sequence of the region located between the trp promoter and the initiating ATG codon inserted before the sequence encoding the human growth hormone (translation initiation region) is replaced by another nucleotide a sequence that provides higher synthesis of the target product.
Сущность рекомбинантной плазмидной ДНК pSTH 2191 (см.фиг.1) состоит в том, что она содержит репликон плазмиды pBR 322, фрагмент, содержащий промотор триптофанового оперона E.coli и фрагмент к ДНК соматотропина человека, кодирующий с 2-й по 191-ю аминокислоту гормона, перед которым встроен ATG-кодон (см.фиг.3), а именно состоит из следующих элементов:
плазмидной ДНК вектора pBR 322 с 29-й по 4168 п.о., размер которой 4140 п.о.,
фрагмента ДНК, содержащего trp-промотор E.coli, встроенный между геном bla плазмидной ДНК pRB 322 и единственным EcoRI-участком расщепления, размером 1176 п.о., EcoRI - Hind III - фрагмента, содержащего ДНК, кодирующую с 2-й по 191-ю аминокислоту СТГ, размером 713 п.о., перед которой встроена последовательность СAATTCTATG.The essence of recombinant plasmid DNA pSTH 2191 (see Fig. 1) is that it contains a replicon of
plasmid DNA of
of a DNA fragment containing the E. coli trp promoter inserted between the bla gene of
Размер гибридной плазмиды pSTH 2191 составляет около 6000 п.о. The size of the
Копийность плазмиды около 20 молекул на клетку. The copy number of the plasmid is about 20 molecules per cell.
ДНК плазмиды pSTH 2191 содержит уникальные сайты рестрикции EcoRI, Hind III, BamHI, EcoRV, BglII, HpaI, SalGI и SmaI и 2 сайта рестрикции Pst I. Положения всех перечисленных сайтов рестрикции относительно EcoRI сайта показаны на фиг.1. The
В состав плазмиды pSTH 2191 входят гены: bla-ген, обеспечивающий синтез β -лактамазы (устойчивость к ампициллину); tet-ген, обеспечивающий устойчивость к тетрациклину; STH-модифицированный ген соматотропина человека, кодирующий met-СТГ2-191. The composition of
Штамм - продуцент соматотропина человека - получен трансформацией клеток E.coli К 802 плазмидной pSTH 2191. Уровень синтеза гормона по данным простой радиальной иммунодиффузии в штамме-продуценте составляет при плотности культуры 4х108 клеток/мл 15-20 мг/л. Штамм депонирован во Всесоюзной коллекции микроорганизмов при ИБФМ АН СССР под номером ВКМ CR-267Д.The strain - the producer of human growth hormone - was obtained by transformation of E. coli K 802 cells with
П р и м е р 1. Конструирование рекомбинантной плазмидной ДНК pSTH 2191. PRI me R 1. Construction of recombinant
Схема конструирования представлена на фиг. 2. The design scheme is shown in FIG. 2.
10 мкм плазмиды pSTH 19-1.P-trp гидролизуют рестриктазой EcoRI в 50 мкл инкубационной смеси следующего состава: 100 mM NaCl, 50 mM трис-HCl, рН 7,5, 10 mM MgCl2, 1 mM дитиотрейтола, 10 ед. рестриктазы EcoRI, в течение 1 ч при 37оС. Полноту гидролиза проверяют с помощью электрофореза в 1%-ном агарозном геле.10 μm of the plasmid pSTH 19-1. P-trp is digested with EcoRI restriction enzyme in 50 μl of the incubation mixture of the following composition: 100 mM NaCl, 50 mM Tris-HCl, pH 7.5, 10 mM MgCl 2 , 1 mM dithiothreitol, 10 units. restriction enzymes EcoRI, for 1 h at 37 about C. The completeness of hydrolysis is checked by electrophoresis in 1% agarose gel.
К смеси добавляют 2,5 мкл 0,25 М раствора ЭДТА, 50 мкл смеси фенолхлороформ (1:1), встряхивают, в течение 30 с и разделяют фазы центрифугированием. Водную фазу экстрагируют равным объемом (50 мкл) хлороформа, затем добавляют к ней 5 мкл 3М ацетата натрия. рН 6,0, 150 мкл этанола. Смесь охлаждают при - 70оС в течение 10 мин и ДНК осаждают центрифугированием на центрифуге "Эппендорф"в течение 10 мин.2.5 μl of a 0.25 M EDTA solution, 50 μl of a phenol-chloroform mixture (1: 1) are added to the mixture, shaken for 30 s and the phases are separated by centrifugation. The aqueous phase is extracted with an equal volume (50 μl) of chloroform, then 5 μl of 3M sodium acetate is added to it. pH 6.0, 150 μl of ethanol. The mixture was cooled at - 70 C for 10 min and the DNA was precipitated by centrifugation in a centrifuge "Eppendorf" for 10 minutes.
ДНК растворяют в 50 мкл раствора бычьего сывороточного альбумина (500 мкг/мл), добавляют 50 мкл буфера, содержащего 24 mM CaCl2, 24 mM MgCl2, 0,4 M NaCl, 40 mM трис-HCl, рН 8,0 и 2 mM ЭДТА и смесь инкубируют при 20оС в течение 3 мин. Затем добавляют 1 мкл препарата нуклеазы BaI 31 (100 ед/мл). Через 1, 2, 3, 4 и 5 мин отбирают по 20 мкл инкубационной смеси и переносят в пробирки с 2 мкл 0,2 М ЭГТА, рН 8,0, охлажденные во льду.DNA was dissolved in 50 μl of bovine serum albumin solution (500 μg / ml), 50 μl of buffer containing 24 mM CaCl 2 , 24 mM MgCl 2 , 0.4 M NaCl, 40 mM Tris-HCl, pH 8.0 and 2 was added mM EDTA, and the mixture was incubated at 20 ° C for 3 min. Then add 1 μl of the preparation of nuclease BaI 31 (100 units / ml). After 1, 2, 3, 4, and 5 min, 20 μl of the incubation mixture were taken and transferred to tubes with 2 μl of 0.2 M EGTA, pH 8.0, cooled in ice.
Инкубационные смеси объединяют и ДНК очищают путем экстракции равным объемом смеси фенол-хлороформ (1:1), хлороформа и переосаждают спиртом. The incubation mixtures are combined and the DNA is purified by extraction with an equal volume of a phenol-chloroform mixture (1: 1), chloroform and reprecipitated with alcohol.
ДНК растворяют в 50 мкл воды. К 10 мл раствора ДНК добавляют 2 мкл буфера, содержащего 500 mM NaCl, 100 mM трис-HCl, рН 7,5, 100 mM MgCl2 и 10 mM дитиотрейтола, по 1 мкл 1 mM растворов dATP, dCTP, dTTP и dGTP, 2 мкл H2O и 2 мкл (1 ед./мкл) фрагмента Кленова ДНК-полимеразы 1 E.coli.DNA is dissolved in 50 μl of water. To 10 ml of a DNA solution add 2 μl of a buffer containing 500 mM NaCl, 100 mM Tris-HCl, pH 7.5, 100 mM MgCl 2 and 10 mM dithiothreitol, 1 μl of 1 mM dATP, dCTP, dTTP and dGTP solutions, 2 μl of H 2 O and 2 μl (1 unit / μl) of the Maple fragment of E. coli DNA polymerase 1.
Смесь инкубируют при комнатной температуре в течение 30 мин. Затем к смеси добавляют 10 мкл раствора форсфорилированного синтетического олигонуклеотида 5-ATCGAATCGAT-3 (1,0 мкг) в 66 mM трис-HCl буфере, рН 7,5, содержащем 1 mM АТР, 10 mM MgCl2 и 15 mM дитиотрейтола, 2 мкл 10 mM раствора АТР и 2 мкл ДНК-лигазы фага Т4 (1 ед./мкл). Смесь инкубируют при комнатной температуре 6 ч, затем к ней добавляют 1 мкл 0,25 М раствора ЭДТА и обрабатывают равным объемом смеси фенол-хлороформ и равным объемом хлороформа.The mixture was incubated at room temperature for 30 minutes. Then, 10 μl of a solution of forced-synthesized 5-ATCGAATCGAT-3 synthetic oligonucleotide (1.0 μg) in 66 mM Tris-HCl buffer, pH 7.5, containing 1 mM ATP, 10 mM MgCl 2 and 15 mM dithiothreitol, 2 μl 10 mM ATP solution and 2 μl of T4 phage DNA ligase (1 unit / μl). The mixture was incubated at room temperature for 6 hours, then 1 μl of a 0.25 M EDTA solution was added to it and treated with an equal volume of phenol-chloroform mixture and an equal volume of chloroform.
ДНК осаждают этанолом, как это описано ранее, и растворяют в 20 мл H2O.DNA is precipitated with ethanol as described previously and dissolved in 20 ml of H 2 O.
Далее ДНК гидролизуют рестриктазами ЕCoRI (30 ед.) и EcoRV (2 ед.) в стандартных условиях, обрабатывают смесь фенол-хлороформ, хлороформом и переосаждают этанолом. Next, the DNA is hydrolyzed with restriction enzymes CoRI (30 units) and EcoRV (2 units) under standard conditions, the mixture is treated with phenol-chloroform, chloroform and reprecipitated with ethanol.
ДНК растворяют в 10 мкл Н2О и фракционируют с помощью электрофореза в 5% -ном полиакриламидном геле, гель окрашивают бромистым этидием, вырезают полоску геля, содержащую фрагменты размером 5100-5200 п.о., и элюируют их из геля. Таким образом получают смесь плазмид для клонирования фрагмента, кодирующего соматотропин.DNA is dissolved in 10 μl of H 2 O and fractionated by electrophoresis in a 5% polyacrylamide gel, the gel is stained with ethidium bromide, a gel strip containing 5100-5200 bp fragments is cut out and eluted from the gel. Thus, a mixture of plasmids for cloning a fragment encoding somatotropin is obtained.
В том же полиакриламидном геле разделяют двойной EcoRI-EcoRV гидролизат исходной плазмиды pSTH 19-I/P-trp (2 мкг) и выделяют из геля меньший фрагмент размером 869 п.о., содержащий нуклеотидную последовательность, кодирующую соматотропин человека. In the same polyacrylamide gel, the double EcoRI-EcoRV hydrolyzate of the starting plasmid pSTH 19-I / P-trp (2 μg) was separated and a smaller fragment of 869 bp containing the nucleotide sequence encoding human somatotropin was isolated from the gel.
После переосаждения спиртом фрагменты ДНК растворяют в 10 мкл Н2О. Лигирование ДНК проводят в инкубационной смеси следующего состава: 1 мкл раствора плазмид (5100-5200 п;о.), 1 мкл раствора EcoRI-EcoRV - фрагмента (860 п.о.), 2 мкл 10 х лигазного буфера, 15 мкл Н2О, 1 мкл ДНК лигазы фага Т4 (1 ед. /мкл); 10 х лигазный буфер содержал 0,66 mM трис-HCl, рН 7,5, 50 mM MgCl2, 50 мМ дитиотрейтола и 10 мМ АТР. Инкубируют 4 ч при 14оС и затем 12 ч при 4оС. К инкубационной смеси добавляют 30 мг 10 мМ трис-HCl, рН 7,5, 1 мМ ЭДТА и трансформируют клетки штамма E.Coli НВ 101.After reprecipitation with alcohol, DNA fragments are dissolved in 10 μl of H 2 O. Ligation of DNA is carried out in an incubation mixture of the following composition: 1 μl of a plasmid solution (5100-5200 bp; v.), 1 μl of a solution of EcoRI-EcoRV fragment (860 bp ), 2 μl of 10 x ligase buffer, 15 μl of H 2 O, 1 μl of T4 phage ligase DNA (1 unit / μl); 10 x ligase buffer contained 0.66 mM Tris-HCl, pH 7.5, 50 mM MgCl 2 , 50 mM dithiothreitol and 10 mM ATP. Incubate 4 hours at 14 ° C and then for 12 hours at 4 ° C. To the incubation mixture was added 30 mg of 10 mM Tris-HCl, pH 7.5, 1 mM EDTA and transformed cells E.Coli HB 101 strain.
50 мл УТ-среды заражают 1-2 мл ночной культуры клеток штамма E.coli HB 101 и выращивают на качалке при 37оС до плотности 0,6 при 550 нм. Клетки собирают центрифугированием на холоде при 10000 об/мин в течение 10 мин. Осадок суспендируют в 25 мл холодного раствора: 50 мМ трис-HCl, рН 7,5, 50-70 мМ хлористого кальция, и выдерживают во льду 30 мин. Последующие операции проводят также в ледяной бане. Затем клетки снова осаждают в том же режиме и суспендируют в 2,5 мл того же раствора и оставляют на 30 мин. Лигазную смесь в объеме 50 мкл добавляют к 100 мкл полученной суспензии клеток и выдерживают 20 мин во льду, затем 2 мин при 42оС, после чего 10 мин при комнатной температуре. К каждой пробе добавляют 2 мл свежей УТ-среды и подращивают клетки 1 ч на качалке при 37оС. Клетки из исходной пробирки и из пробирок с разведением 1:10 и 1:100 высевают на чашки с УТ-агаром (5 г дрожжевого экстракта, 8 г бактотриптона, 5 г NaCl, 15 г бактоагара на 1 л среды) и антибиотиками (20 мг ампициллина и 20 мг тетрациклина на 2 л) по 0,5 мл на чашку. Колонии на чашках вырастают через 1420 ч при 37оС.50 ml YT-medium inoculated with 1-2 ml of an overnight culture of the strain E.coli HB 101 cells and grown on a shaker at 37 ° C to a density of 0.6 at 550 nm. Cells are harvested by centrifugation in the cold at 10,000 rpm for 10 minutes. The precipitate was suspended in 25 ml of a cold solution: 50 mM Tris-HCl, pH 7.5, 50-70 mM calcium chloride, and kept in ice for 30 minutes. Subsequent operations are also carried out in an ice bath. Then the cells are again precipitated in the same mode and suspended in 2.5 ml of the same solution and left for 30 minutes. The ligation mixture was in a volume of 50 l was added to 100 l of the resulting cell suspension and incubated for 20 minutes on ice, followed by 2 minutes at 42 ° C, then 10 minutes at room temperature. To each sample was added 2 ml of fresh YT medium, and cells were grown for 1 hour shaking at 37 ° C. Cells from the source tubes and the tubes of the dilution of 1:10 and 1: 100, plated on YT agar medium (5 g of yeast extract , 8 g of bactotriptone, 5 g of NaCl, 15 g of bactoagar per 1 liter of medium) and antibiotics (20 mg of ampicillin and 20 mg of tetracycline per 2 l), 0.5 ml per cup. Colonies grown on the plates after 1420 hours at 37 ° C.
Отбирают колоны, устойчивые к ампициллину и тетрациклину, и анализируют в них содержание гормона. Для этого клетки выращивают в 5 мл среды (0,5% дрожжевого экстракта, 0,8% бактотриптона, 0,5% хлористого натрия, рН 7,6), содержащей 20 мг/л ампициллина и 7 мг/л тетрациклина, при 37оС до оптической плотности 1 при 550 нм.Ampicillin and tetracycline resistant columns are selected and the hormone content analyzed. For this, cells are grown in 5 ml of medium (0.5% yeast extract, 0.8% bactotryptone, 0.5% sodium chloride, pH 7.6) containing 20 mg / l ampicillin and 7 mg / l tetracycline, at 37 about C to an optical density of 1 at 550 nm.
Клетки осаждают центрифугированием при 10000 об/мин в течение 10 мин. Осадок клеток суспендируют в 0,2 мл раствора 1 (50 мМ глюкозы, 10 мМ ЭДТА, 25 мМ трис-HCl, рН 8,0). Затем добавляют 0,2 мл раствора 2 (0,2 н. NaOH, 0,02% SDS) и суспензию инкубируют 5 мин при 0-5оС. Далее добавляют 0,1 мл раствора 3 (150 мМ трис-HCl, рН 8,0, 280 мМ MgCl2 4 мМ CaCl2). Через 5 мин суспензию центрифугируют 10 мин при 12000хG, супернатант отбирают и переносят в чистую пробирку.Cells are pelleted by centrifugation at 10,000 rpm for 10 minutes. The cell pellet was suspended in 0.2 ml of solution 1 (50 mM glucose, 10 mM EDTA, 25 mM Tris-HCl, pH 8.0). Then add 0.2 ml of solution 2 (0.2 N. NaOH, 0.02% SDS) and the suspension is incubated for 5 min at 0-5 about C. Then add 0.1 ml of solution 3 (150 mm Tris-HCl, pH 8.0, 280 mM MgCl 2 4 mM CaCl 2 ). After 5 min, the suspension was centrifuged for 10 min at 12000 × G, the supernatant was collected and transferred to a clean tube.
Для приготовления агаровой пластинки два стекла размером 6х9 см или 9х12 см с проложенными по краям прокладками толщиной 1,5 мм скрепляют металлическими зажимами и заклеивают снизу пластырем или липкой лентой. Готовят 1,5% -ный раствор бактоагара (Дифко) в 10 мМ Na-фосфатном буфере, рН 7,2, охлаждают его до 40оС, добавляют 1/20 ч. водного раствора кроличьей лиофилизированной сыворотки к СТГ (40 мг/мл), полученную смесь заливают в форму. После затвердения агара одно из стекол снимают и в толще агара вырезают цилиндрические лунки диаметром 1,8 мм на расстоянии 1 см друг от друга. В лунки N 1-5 вносят по 6 мкл стандартных растворов СТГ с концентрациями 200, 100, 50, 25 и 12,5 мкг/мл соответственно. В лунку N 6 вносят 6 мкл лизата клеток.To prepare the agar plate, two glasses measuring 6x9 cm or 9x12 cm with 1.5 mm thick gaskets laid at the edges are fastened with metal clips and sealed with adhesive or tape on the bottom. Prepare a 1.5% solution of bacto agar (Difco) in 10 mM Na-phosphate buffer, pH 7.2, it was cooled to 40 ° C, added 1/20 hours. The aqueous solution was lyophilized rabbit serum for growth hormone (40 mg / ml ), the resulting mixture is poured into the mold. After hardening of the agar, one of the glasses is removed and cylindrical wells 1.8 mm in diameter at a distance of 1 cm from each other are cut out in the thickness of the agar. In wells N 1-5 contribute 6 μl of standard solutions of STH with concentrations of 200, 100, 50, 25 and 12.5 μg / ml, respectively. 6 μl of cell lysate was added to well No. 6.
Пластинку инкубируют во влажной камере при 37оС. Через 4 ч в агаре формируются видимые невооруженным глазом круги преципитации. Измеряют диаметр кругов преципитации и по данным для стандартных растворов СТГ строят калибровочную кривую зависимости квадрата диаметра круга от концентрации гормона, по которой определяют концентрацию гормона в лизате.The plate was incubated in a moist chamber at 37 C. After 4 hours the agar formed visible to the naked eye circles precipitation. The diameter of the precipitation circles is measured, and according to the data for standard STH solutions, a calibration curve is constructed of the square of the diameter of the circle on the concentration of the hormone, which determines the concentration of the hormone in the lysate.
Клетки из 3 мл ночной культуры осаждают в настольной центрифуге "Эппендорф" при 10000хG 2 мин. Осадок клеток суспендируют в 100 мкл раствора 1:2 мг/мл лизоцима, 50 мМ глюкозы, 10 мМ ЭДТА, 25 мМ трис-HCl, рН 8,0. Пробирки помещают в лед на 30 мин. Последующие операции также проводят во льду. Далее добавляют 200 мкл раствора 2:0,2 н. гидроокись натрия, 1% додецилсульфата натрия, и хорошо перемешивают. Через 5 мин добавляют 150 мкл 3М раствора ацетата натрия рН 4,8, перемешивают и оставляют на 1 ч. Затем раствор центрифугируют 5 мин при 10000хG. Из супернатанта плазмиду осаждают спиртом и растворяют в 50 мкл воды. Таким образом выделяют около 50 мкл плазмиды. Далее выделенные плазмиды анализируют с помощью электрофореза в 1% -ном агарозном геле без предварительного расщепления и после гидролиза рестриктазами. Cells from 3 ml of overnight culture are pelleted in an Eppendorf benchtop centrifuge at 10,000 x 2 minutes. The cell pellet is suspended in 100 μl of a 1: 2 mg / ml lysozyme solution, 50 mM glucose, 10 mM EDTA, 25 mM Tris-HCl, pH 8.0. Test tubes are placed on ice for 30 minutes. Subsequent operations are also carried out in ice. Then add 200 μl of a solution of 2: 0.2 N. sodium hydroxide, 1% sodium dodecyl sulfate, and mix well. After 5 min, add 150 μl of a 3M solution of sodium acetate, pH 4.8, mix and leave for 1 h. Then the solution is centrifuged for 5 min at 10000xG. From the supernatant, the plasmid is precipitated with alcohol and dissolved in 50 μl of water. Thus, about 50 μl of the plasmid was isolated. Next, the isolated plasmids were analyzed by electrophoresis in a 1% agarose gel without preliminary digestion and after digestion with restriction enzymes.
Для уточнения структуры плазмидных ДНК проводят анализ нуклеотидной последовательности в участке между EcoRI- и HpaI-сайтами. To clarify the structure of plasmid DNA, the nucleotide sequence is analyzed in the region between the EcoRI and HpaI sites.
На основании определения содержания гормона, рестрикционного анализа и определения первичной структуры была отобрана плазмида, обозначенная pSTH 2191, кодирующая синтез соматотропина, представляющего собой смесь двух вариантов гормона (дез-Фен1)-соматотропина и (дез-Фен1-Про2)-соматотропина примерно в равном отношении.Based on the determination of the hormone content, restriction analysis, and determination of the primary structure, a plasmid designated
П р и м е р 2. Получение штамма E.coli K 802 - продуцента соматотропина человека, не содержащего N-концевого метионина. PRI me R 2. Obtaining a strain of E. coli K 802 - producer of human growth hormone that does not contain N-terminal methionine.
Плазмиду pSTH 2191 трансформируют в штамм E.coli К 802 по методу, описанному в примере 1, и получают штамм - продуцент соматотропина человека. Штамм депонирован во Всесоюзной коллекции микроорганизмов при ИБФМ АН СССР под номером ВКМ CR-267Д.
Содержание гормона в биомассе определяют путем лизиса бактерий и измерения гормона в лизате методом простой радиальной диффузии в агаре, как это описано в примере 1. Содержание гормона составляет 15-20 мг на 1 л культуры при выращивании штамма до плотности ОД550 = 1, что в 2,2 раза превышает содержание гормона в штамме прототипа ВКМ R 26-Д.The hormone content in the biomass is determined by lysis of bacteria and measurement of the hormone in the lysate by simple radial diffusion in agar, as described in example 1. The hormone content is 15-20 mg per 1 liter of culture when the strain is grown to a density of OD 550 = 1, which 2.2 times the hormone content in the strain of the prototype VKM R 26-D.
Штамм E.coli К 802, содержащий рекомбинантную плазмиду pSTH 2191 характеризуется следующими признаками. The E. coli K 802 strain containing the
Морфологические признаки клетки прямые, палочковидной формы, грамотрицательные, неспороносные. Morphological signs of the cell are straight, rod-shaped, gram-negative, non-spore-bearing.
Культурные признаки. Клетки хорошо растут на обычно используемых питательных средах. При росте на питательном агаре "Дифко" колонии гладкие, круглые, блестящие, серые, края колоний ровные. При росте в жидких средах УТ, LB образуют ровную интенсивную муть. Cultural signs. Cells grow well on commonly used culture media. When growing on the Difco nutrient agar, the colonies are smooth, round, shiny, gray, the edges of the colonies are even. When growing in liquid media, UT and LB form a uniform intense haze.
Физико-биохимические признаки. Оптимальная температура культивирования 37оС, оптимум рН от 6,8 до 7,5.Physico-biochemical characteristics. The optimal cultivation temperature is 37 ° C, the optimum pH of from 6.8 to 7.5.
В качестве источника углерода используют многие углеводы, спирты, органические кислоты. As a carbon source, many carbohydrates, alcohols, and organic acids are used.
В качестве источника азота используют как минеральные соли в аммонийной или нитратной форме, так и органические в виде пептона, триптона, аминокислот. As a source of nitrogen, both mineral salts in ammonium or nitrate form, and organic salts in the form of peptone, tryptone, amino acids, are used.
Устойчивость к антибиотикам. Проявляют устойчивость к ампициллину, обусловленную наличием плазмиды. Проявляют устойчивость к тетрациклину 20 мг/л на агаре, 5-7 мг/л в жидкой среде. Antibiotic resistance. Resistant to ampicillin due to the presence of a plasmid. Resistant to tetracycline 20 mg / l on agar, 5-7 mg / l in a liquid medium.
Для получения соматотропина человека, не содержащего N-концевого метионина, проводят культивирование штамма ВКМ CR 267Д на питательной среде известного состава, собирают биомассу бактерий центрифугированием, проводят разрушение клеток и экстракцию из них белков и гормон очищают от бактериальных белков, используя известные методы. To obtain human growth hormone that does not contain N-terminal methionine, the VKM CR 267D strain is cultured on a nutrient medium of known composition, the bacterial biomass is collected by centrifugation, the cells are destroyed and proteins are extracted from them, and the hormone is purified from bacterial proteins using known methods.
Claims (2)
Priority Applications (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU864106294A RU1387414C (en) | 1986-08-15 | 1986-08-15 | Recombinant plasmid dna psth 2191 encoding synthesis of human somatotropin, and the strain of escherichia coli - a producer of human somatotropin |
Applications Claiming Priority (1)
Application Number | Priority Date | Filing Date | Title |
---|---|---|---|
SU864106294A RU1387414C (en) | 1986-08-15 | 1986-08-15 | Recombinant plasmid dna psth 2191 encoding synthesis of human somatotropin, and the strain of escherichia coli - a producer of human somatotropin |
Publications (1)
Publication Number | Publication Date |
---|---|
RU1387414C true RU1387414C (en) | 1994-12-30 |
Family
ID=21252340
Family Applications (1)
Application Number | Title | Priority Date | Filing Date |
---|---|---|---|
SU864106294A RU1387414C (en) | 1986-08-15 | 1986-08-15 | Recombinant plasmid dna psth 2191 encoding synthesis of human somatotropin, and the strain of escherichia coli - a producer of human somatotropin |
Country Status (1)
Country | Link |
---|---|
RU (1) | RU1387414C (en) |
-
1986
- 1986-08-15 RU SU864106294A patent/RU1387414C/en active
Non-Patent Citations (1)
Title |
---|
Авторское свидетельство СССР N 1248280, кл. C 12N 15/00, 1984. * |
Similar Documents
Publication | Publication Date | Title |
---|---|---|
AU624353B2 (en) | Process for integration of a chosen gene on the chromosome of a bacterium and bacterium obtained by the said process | |
Tommassen et al. | Regulation of the pho regulon of Escherichia coli K-12: cloning of the regulatory genes phoB and phoR and identification of their gene products | |
Shinagawa et al. | Regulation of the pho regulon in Escherichia coli K-12: genetic and physiological regulation of the positive regulatory gene phoB | |
Kodaira et al. | The dnaX gene encodes the DNA polymerase III holoenzyme τ subunit, precursor of the γ subunit, the dnaZ gene product | |
JPH07108221B2 (en) | Rennin production method | |
Shiba et al. | Suppressors of the secY24 mutation: identification and characterization of additional ssy genes in Escherichia coli | |
RU1838413C (en) | Method of expression of dacs/daocs activity in escherichia coli cells | |
AU743599B2 (en) | High expression (escherichia coli) expression vector | |
Aisaka et al. | Cloning and constitutive expression of the N-acetylneuraminate lyase gene of Escherichia coli | |
FR2559781A1 (en) | NOVEL HYBRID PLASMIDIC VECTOR OF E. COLI PROVIDING THE POWER TO FERMENT SUCROSE AND ITS PREPARATION METHOD | |
US4343906A (en) | Hybrid plasmid of pBR322 and Streptomyces plasmid and E. coli containing same | |
HU194316B (en) | Process for preparing alpha-l human leukocyte interferone | |
US4362817A (en) | Hybrid plasmid and process of making same | |
RU1387414C (en) | Recombinant plasmid dna psth 2191 encoding synthesis of human somatotropin, and the strain of escherichia coli - a producer of human somatotropin | |
JPH0838189A (en) | Preparation of vitamin c precursor using living organism modified genetically | |
Müller et al. | Cloning of mglB, the structural gene for the galactose-binding protein of Salmonella typhimurium and Escherichia coli | |
RU2077586C1 (en) | RECOMBINANT PLASMID DNA PTHY 315 ENCODING HYBRID PROTEIN TUMOR NECROSIS α-FACTOR - THYMOSIN-a1 | |
US4845031A (en) | Recombinant DNA process for producing useful polypeptides | |
EP0284185B1 (en) | A method for production of L-phenylalanine by recombinant E. coli | |
JPH06233687A (en) | Recombinant dna | |
RU1660388C (en) | Recombinant plasmid dna pvgib encoding bovine gamma-interferon, method of its preparing and yeast strain saccharomyces cerevisiae - a producer of bovine gamma-interferon | |
RU1770359C (en) | Recombinant plasmid dna pj db (msil), encoding of human interleukin-2 synthesis in yeast cells saccharomyces cerevisiae, method of its preparation, and yeast strain saccharomyces cerevisiae - a producer of human interleukin-2 | |
SU1708847A1 (en) | Recombinant plasmid dna pbghtrp3, encoding cattle growth hormone, and the strain of bacteria escherichia coli - a producer of cattle growth hormone | |
SU1703690A1 (en) | Recombinant plasmid dna pvn22, encoding human interferon @@@-i1 synthesis, and the strain of bacterium pseudomonas sp - a producer of human interferon @@@-i1 | |
RU2054042C1 (en) | Recombinant plasmid dna eco 1831ri encoding synthesis of restriction endonuclease eco 1831ri, strain of bacterium escherichia coli - a producer of restriction endonuclease eco 1831ri |